李梓君,方柏山,楊仲麗,劉嘉
(華僑大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)福建省高等學(xué)校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建泉州 362021)
應(yīng)用易錯PCR定向進(jìn)化甘油脫氫酶
李梓君,方柏山,楊仲麗,劉嘉
(華僑大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)福建省高等學(xué)校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建泉州 362021)
經(jīng)過連續(xù)易錯聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Erro r-Prone PCR)向克雷伯桿菌(K lebsiella pneumoniae)甘油脫氫酶基因中引入突變,并構(gòu)建突變文庫.依據(jù)突變體催化番紅O顯色的特性,采用瓊脂平板法和96微孔板法相結(jié)合的高通量篩選方法,成功獲得突變體gldA-74,其酶活力是親本重組酶的2.73倍.通過軟件對突變體gldA-74酶基因和親本重組酶基因進(jìn)行分析對比,發(fā)現(xiàn)突變體gldA-74酶基因發(fā)生了一處點(diǎn)突變(A 964T),該突變使一處氨基酸被取代.將親本重組酶和進(jìn)化酶的高效表達(dá)產(chǎn)物經(jīng)Ni柱純化后,酶學(xué)性質(zhì)的測定結(jié)果表明,甘油的Km值由0.58 mmol·L-1升高至0.63 mmol·L-1,而NAD的Km值由0.74 mmol·L-1升高至0.77 mmol·L-1,并且酶的最適p H值由原來的11.5升高至12.5,而最適溫度由65℃降至55℃.
甘油脫氫酶;克雷伯桿菌;定向進(jìn)化;易錯聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)
甘油脫氫酶(Glycerol Dehydrogenase,GDH)主要催化甘油生成二羥基丙酮(Dihydroxyacetone, DHA).根據(jù)催化反應(yīng)中產(chǎn)物和電子受體的不同,GDH可分為3種類型[1].第1種為依賴NAD+的GDH[2](EC1.1.1.6),主要存在于各種細(xì)菌中,如Aerobacter aerogenes,Escherichia coli,Bacillus substilis和Cellu lom onas sp.等.第2種為依賴NADP+的 GDH(EC1.1.1.72和EC1.1.1.56),大多存在于霉菌和動物組織中[3].第3種為不依賴輔酶位于細(xì)胞膜上的 GDH,在醋酸菌中發(fā)現(xiàn)存在這類GDH[4].GDH的催化產(chǎn)物DHA因其分子中含3種官能團(tuán),化學(xué)性質(zhì)活潑,廣泛參與聚合、縮合等反應(yīng),所以被廣泛應(yīng)用于輕工、醫(yī)藥和食品等行業(yè)[5].由于應(yīng)用過程中常常需要酶在長時間內(nèi),以及在極端環(huán)境中保持較高活性,所以需要對天然的甘油脫氫酶進(jìn)行改造.酶的定向進(jìn)化是在體外模擬自然進(jìn)化的過程,不需事先了解酶的空間結(jié)構(gòu)和催化機(jī)制,通過人為地創(chuàng)造特殊的條件,模擬自然進(jìn)化機(jī)制(隨機(jī)突變、重組和自然選擇),在體外改造酶基因,并定向選擇出所需性質(zhì)的突變酶.易錯PCR以其操作簡便、有效等優(yōu)點(diǎn)成為目前應(yīng)用最為廣泛的進(jìn)化手段之一[6].本研究利用易錯PCR對克雷伯桿菌中 GDH進(jìn)行定向進(jìn)化,以期獲得酶活大幅提高,酶學(xué)性質(zhì)有所改善的突變酶.
1.1 菌株與質(zhì)粒
E.coliBL21(DE3)(p ET-32gldA)的構(gòu)建,以及表達(dá)載體p ET-32a(+)、菌株和質(zhì)粒的保存,均由華僑大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)福建省高等學(xué)校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室完成.
1.2 試劑
LB培養(yǎng)基.T4 DNA連接酶、dN TPs,限制酶、r Taq酶,購自大連TaKaRa公司.膠回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒均購自美國Omega公司,輔酶Ⅰ購自Amersco公司,其余試劑均為國產(chǎn)分析純.
1.3 定向進(jìn)化方法
1.3.1 甘油脫氫酶基因突變體文庫構(gòu)建 (1)引物.PrimerⅠ為5’-CGTCGGA TCCTACA TGCGCACTTA TTTGAG-3’);PrimerⅡ(5’-AA TGCTCGAGCGAA TTAACGCGCCAGCCAC-3’).
(2)易錯PCR反應(yīng)體系.20μL體系中含1×Taq DNA聚合酶緩沖液、0.2 mmol·L-1dA TP和dGTP,1 mmol·L-1dCTP和d TTP,6.0~8.5 mmol·L-1M g2+,0.3~0.8 mmol·L-1M n2+,1 mmol·L-1PrimerⅠ和PrimerⅡ,模板DNA為質(zhì)粒p ET-32gldA約50 ng.其中,M g2+和M n2+的濃度被調(diào)整,可以得到不同突變頻率的文庫.
(3)擴(kuò)增與鑒定.94℃,5 min;94℃,1 min;62℃,1.5 min;72℃,1.5 min;30個循環(huán);72℃,15 min.用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.8%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定易錯PCR產(chǎn)物,利用膠回收試劑盒切膠回收PCR產(chǎn)物,于-20℃保存.
(4)文庫構(gòu)建.將上述易錯PCR產(chǎn)物經(jīng)膠回收純化后,經(jīng)Bam H I-XhoⅠ雙酶切,與同樣雙酶切的載體p ET-32a(+)相連接,重組子引入E.coliBL 21(DE3),構(gòu)建突變體文庫.
1.3.2 突變體的篩選和鑒定 (1)篩選模型的建立[7].將菌體用無菌水稀釋,涂布于番紅O篩選平板(胰蛋白胨6.0 g·L-1,酵母浸膏 3.0 g·L-1,氯化鈉 10.0 g·L-1,甘油 18.4 g·L-1,番紅O 0.1 mmol·L-1,IPTG 1.0 mmol·L-1,氨芐青霉素75.0 mg·L-1,瓊脂粉10.0 g·L-1),觀察平板的單菌落的生長及變色情況.挑取顏色顯示均勻桃紅色的單菌落置于含75 mg·L-1氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),經(jīng)乳糖誘導(dǎo)后收集菌體進(jìn)行復(fù)篩鑒定.
(2)陽性轉(zhuǎn)化子的鑒定.按質(zhì)粒提取試劑盒方法抽提正向重組質(zhì)粒,經(jīng) HindⅢ,PstⅠ單雙酶切,用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.8%瓊脂糖凝膠電泳鑒定酶切產(chǎn)物.
1.4 誘導(dǎo)表達(dá)
挑取陽性克隆單菌落接種于含有75 m g·L-1氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中,于30℃培養(yǎng)至吸光度值(D)約0.4時,加入乳糖至終質(zhì)量濃度為2 g·L-1,于30℃下誘導(dǎo)培養(yǎng)5 h后離心收集菌體.
1.5 進(jìn)化酶酶活力及菌體蛋白含量測定
酶活力測定具體方法參照文[8].GDH使甘油脫氫生成二羥基丙酮,同時輔酶 ⅠNAD+被還原為NADH.NADH在340 nm的紫外光下有最大吸收,根據(jù)吸光度的增加情況,用初速度法可測定 GDH的活力.取1.5 mL反應(yīng)液(含30 mmol·L-1(NH4)2SO4,0.2 mol·L-1甘油,2 mmol·L-1NAD,1 μmol·L-1Fe(NH4)2(SO4)2,0.1 mol·L-1碳酸鉀緩沖溶液,p H=12.0),于45℃下恒溫后,加入適量酶液啟動反應(yīng),在340 nm波長下連續(xù)測定酶反應(yīng)過程中的吸光值(每隔6 s記錄一個數(shù)據(jù),時間1 min),通過計(jì)算可得到GDH的酶活(z).酶活的定義:在上述條件下,每分鐘還原1μmol甘油的酶量為1個酶活力單位.蛋白含量按Bradford法測定[9],以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì).
1.6 突變基因序列測定
對篩選到的陽性克隆進(jìn)行培養(yǎng)復(fù)篩,挑選在高p H值條件下仍有較高酶活力的突變體,提取質(zhì)粒并用自動序列儀進(jìn)行測序.測序由遼寧省大連寶生物公司完成.
1.7 進(jìn)化酶的純化
按照常規(guī)方法進(jìn)行鎳柱親和層析純化[8].SDS-PAGE(十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺膠體電泳):采用12%分離膠的不連續(xù)垂直平板電泳,考馬斯亮藍(lán)G-250染色.
2.1 易錯聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)
在高離子濃度M g2+或M n2+存在的條件下,Taq DNA聚合酶的保真性大大降低.在延伸的過程中,一些堿基被錯誤地引入到基因中,從而使基因發(fā)生突變.通過改變M g2+和M n2+的濃度,可以得到不同突變頻率的片段多樣性文庫.在其他成分恒定的條件下,選擇不同濃度的M g2+,M n2+進(jìn)行易錯PCR,結(jié)果如圖1所示.圖1(a)中,1~6表示M g2+濃度分別為6.0,6.5,7.0,7.5,8.0,8.5 mmol·L-1;圖1(b)中,1~6表示M n2+濃度分別為0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8 mmol·L-1.
從圖1可知,M gCl2濃度范圍在7.0~8.5 mmol·L-1間均適合該基因易錯PCR反應(yīng).為了確保易錯PCR的突變率控制在每個基因1~3個堿基突變,選擇M gCl2濃度7.0 mmol·L-1作為該基因易錯PCR反應(yīng)體系的最適濃度.在以上實(shí)驗(yàn)得到的最適M gCl2濃度的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步考察不同M n2+濃度對反應(yīng)體系的影響.結(jié)果表明,M n2+最適濃度為0.5 mmol·L-1.
圖1 不同離子濃度下的易錯PCRFig.1 Erro r-p rone PCR conducted with different ion concentration
2.2 突變體文庫的構(gòu)建及突變株的篩選和鑒定
在確定的易錯PCR條件下擴(kuò)增甘油脫氫酶基因,經(jīng)連續(xù)易錯PCR,產(chǎn)物經(jīng)純化后用Bam HⅠ-XhoⅠ雙酶切,與經(jīng)過同樣雙酶切的表達(dá)載體p ET-32a(+)相連接.連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至E.coliBL 21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中構(gòu)建突變文庫.研究中共獲得5 000余株的突變株.
2.2.1 突變株的初篩 將轉(zhuǎn)化后的E.coliBL 21(DE3)細(xì)胞涂布于番紅O篩選平板上,在37℃下培養(yǎng)約12 h,對突變體進(jìn)行篩選.甘油脫氫酶在催化甘油生成二羥基丙酮的同時,把 NAD+轉(zhuǎn)化成NADH.所生成的NADH會通過呼吸鏈?zhǔn)闺妱萆?產(chǎn)生強(qiáng)質(zhì)子流,增強(qiáng)了大腸桿菌細(xì)胞對番紅O的攝入,并使得番紅O在大腸桿菌內(nèi)聚集[7,10].通過番紅O篩選平板涂布,具有甘油脫氫酶活性的克隆顯示均勻的桃紅色,而無活性的克隆外圍則有一個透明圈,如圖2所示.
圖2 番紅O篩選平板初篩結(jié)果Fig.2 The screening result in safranin O plates
2.2.2 突變株的復(fù)篩 將初篩獲得的克隆子接種于LB培養(yǎng)基(含75 mg·L-1氨芐青霉素)中,在30℃下培養(yǎng)至D約0.4時,加入乳糖至終質(zhì)量濃度為2 g·L-1;30℃誘導(dǎo)培養(yǎng)5 h后,超聲破碎菌體并離心收集上清液.采用96孔板結(jié)合酶標(biāo)儀,測定初篩獲得的菌株在不同p H值下的酶活,最終獲得最佳突變體gldA-74,其甘油脫氫酶活力為2.202 m kat·L-1.
相比由張婷婷等[8]構(gòu)建的親本重組酶(酶活為0.805 mkat·L-1),酶活提高2.73倍;而相比于陳宏文等[1]由出發(fā)菌克雷伯桿菌經(jīng)培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件優(yōu)化后,所測得無細(xì)胞抽提液的酶活0.062 m kat· L-1,酶活提高35.7倍.
2.2.3 突變株酶切鑒定結(jié)果 將均勻桃紅色的克隆子在LB液體培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),然后抽提重組質(zhì)粒.重組質(zhì)粒用HindⅢ進(jìn)行單酶切鑒定時,應(yīng)出現(xiàn)約6 987 bp大小的一條帶;而用 HindⅢ/PstⅠ進(jìn)行雙酶切鑒定時,由于gldA-74上還存在兩個PstⅠ酶切位點(diǎn),應(yīng)得到兩條DNA條帶,其大小分別約為4 808,1 584 bp.
酶切鑒定結(jié)果表明連接正確,如圖3所示.圖3中:1,2分別為經(jīng) HindⅢ和經(jīng) HindⅢ/PstⅠ進(jìn)行酶切p ET-32gldA-74.
2.2.4 進(jìn)化酶與親本重組酶序列比較結(jié)果 突變后的基因委托上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行測序,將進(jìn)化酶與親本重組酶基因序列進(jìn)行對比.測序結(jié)果表明,利用易錯PCR的方法,成功地向甘油脫氫酶基因引入了突變,其中酶活力增高、最適p H值增大的gldA-74突變體酶基因有1個堿基發(fā)生了突變(即964位的A變?yōu)門).這處突變使得322位的I(異亮氨酸)突變?yōu)镕(苯丙氨酸).
2.3 甘油脫氫酶的分離與純化
選用的表達(dá)載體p ET-32a(+)中含有表達(dá)His6-Tagged的基因序列,進(jìn)化酶含有該融合標(biāo)簽,可以用鎳柱純化.另外,在該進(jìn)化酶的N端還含有一個Rrx-Tag TM,該融合標(biāo)簽有利于提高目的蛋白的可溶部分比例及活性.研究中,進(jìn)化酶經(jīng)鎳柱親和層析純化后可見單一條帶,而穿透液幾乎不含該條帶,基本上可以認(rèn)為得到比較純的蛋白.
當(dāng)以p ET-32a(+)為表達(dá)載體時,表達(dá)的目標(biāo)蛋白所含的融合基因的相對分子質(zhì)量約為20.4 ku,而研究中的 GDH的相對分子質(zhì)量約為34 ku[1].因此,突變質(zhì)粒所表達(dá)的融合蛋白的相對分子質(zhì)量應(yīng)為54 ku,如圖4所示.圖4中:1,2,3分別為純蛋白、穿透液和粗蛋白.
表1為純化結(jié)果.表1中:mt為總蛋白量;zt為總活力;ρ為蛋白質(zhì)量濃度;σ為比活力;η為回收率;n為純化倍數(shù).從表1可以看出,純化后進(jìn)化酶的回收率為24.1%,純化倍數(shù)是2.1.
圖3 表達(dá)載體酶切鑒定Fig.3 Enzyme digestion of exp ression vector
圖4 進(jìn)化酶的純化Fig.4 Purification of evolved emzyme
表1 進(jìn)化GDH的純化Tab.1 Purification of evolved GDH
2.4 甘油脫氫酶的酶學(xué)性質(zhì)分析
2.4.1 酶動力學(xué)參數(shù)比較 親本重組酶與進(jìn)化酶都以1/V和1/S作Lineweaver Burk雙倒數(shù)圖,結(jié)果如圖5所示.由此計(jì)算,得到親本重組酶的Km(甘油)為0.58 mmol·L-1,Km(NAD)為0.74 mmol· L-1,Vmax(甘油)為0.75 mmol·(L·min)-1,Vmax(NAD)為0.96 mmol·(L·min)-1;進(jìn)化酶的Km(甘油)為0.63 mmol·L-1,Km(NAD)為0.77 mmol·L-1,Vmax(甘油)為3.69 mmol·(L·m in)-1,Vmax(NAD)為4.75 mmol·(L·min)-1.
2.4.2 最適溫度比較 親本重組酶與進(jìn)化酶的最適反應(yīng)溫度,如圖6所示.從圖6可見,親本重組酶的最適溫度為65℃,說明GDH能在較高的溫度下進(jìn)行反應(yīng).但是,再繼續(xù)升高溫度,酶活力迅速下降;在70℃時,殘留的相對酶活力僅有20%.由圖6又可知,進(jìn)化酶的最適溫度為55℃,比親本重組酶的最適溫度降低了10℃.在50~60℃范圍內(nèi),進(jìn)化酶的相對酶活均維持在80%以上.
2.4.3 最適p H值的比較 在45℃,不同p H值的緩沖液中,檢測親本重組酶和進(jìn)化酶活力,結(jié)果如圖7所示.由圖7可以看出,甘油脫氫酶的酶活隨著反應(yīng)液p H值的變化而變化.親本重組酶在p H值為11.0時,甘油脫氫酶的酶活最大;而在p H值為10~12時,GDH的相對活性能保持在70%以上.
圖5 酶動力學(xué)參數(shù)的Line weaver Burk雙倒數(shù)圖Fig.5 Enzyme kinetic parameters of the Line weaver Burk double-reciprocal graph
由圖7還可以看出,進(jìn)化酶在p H值為12.5時酶活最大,比親本重組酶的最適p H值高.在p H值為10~13時,進(jìn)化酶的相對活性能保持在70%以上.中性環(huán)境酶活損失很大,在p H值為7的條件下,酶活僅為20%左右.進(jìn)化酶催化反應(yīng)耐強(qiáng)堿,說明 GDH存有較大的工業(yè)應(yīng)用價值.
圖7 pH值對酶活力的影響Fig.7 the effect of reaction pH on the specific activity of recombinant GDH and evolved GDH
圖6 溫度對酶活力的影響Fig.6 Effect of reaction temperature on the activity of recombinant GDH and evolved GDH
易錯PCR操作簡單,容易引入點(diǎn)突變.其突變頻率高于傳統(tǒng)的物理和化學(xué)誘變,是目前定向進(jìn)化領(lǐng)域最為常用的隨機(jī)突變手段.因此,采用易錯PCR對GDH進(jìn)行定向進(jìn)化.
首先運(yùn)用番紅O篩選平板對5 000余株突變體進(jìn)行初篩;然后,再利用96孔板結(jié)合酶標(biāo)儀測定經(jīng)初篩所得的菌株在不同p H值條件下的酶活,最終成功獲得突變體gldA-74.該突變體有一個有益突變(即I322F),使得進(jìn)化酶的酶活是親本重組酶的2.73倍.
將親本重組酶和進(jìn)化酶的高效表達(dá)產(chǎn)物經(jīng)鎳柱純化后,其酶學(xué)性質(zhì)測定表明:Km(甘油)由0.58 mmol·L-1升高至0.63 mmol·L-1,Km(NAD)由0.74 mmo l·L-1升高至0.77 mmol·L-1,并且酶的最適p H值也由11.5升高至12.5,最適溫度由65℃降至55℃.綜上所述,最終獲得的突變體gldA-74與親本重組酶相比,具有較高的催化活力和偏堿的最適p H值,更適合在偏堿的環(huán)境中應(yīng)用.
今后的研究方向有以下幾個方面:(1)應(yīng)用生物信息學(xué)工具,對定向進(jìn)化后的突變基因庫、蛋白質(zhì)序列、3D結(jié)構(gòu)、活性與功能的變化等做比對分析;(2)從根本上揭示突變酶的催化機(jī)理和折疊機(jī)制、蛋白質(zhì)一級序列與三級結(jié)構(gòu)的關(guān)系,以及結(jié)構(gòu)與功能的關(guān)系等,為探索酶法同時合成DHA和1,3-PD的新途徑提供理論依據(jù).
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(責(zé)任編輯:黃仲一英文審校:陳國華)
Directed Evolution of Glycerol Dehydrogenase by Error Prone PCR
L IZi-jun,FANGBai-shan, YANG Zhong-li,L IU Jia
(Key Laboratory of Industrial Biotechnology Fujian Province,Huaqiao University,Quanzhou 362021,China)
The GDH enzyme gene fromKlebsiella pneumoniaewas repeatedly amp lified by two sequential error-prone polymerase chain reaction(PCR),and the gene library was built.The mutant can catalyze safranin O to show colors,and on the base of this property,the gldA-74 mutant was obtained by high throughput screening method using active agar plates in combination with 96-wellmicrop lates.The activity of the gldA-74 mutant was showed 2.73 fold of that of the parent recombinase.Gene analysis of the gldA-74mutant indicated that the mutant enzyme had a pointmutation(A 964T) which resulted in an amino acid being rep laced.Then,the highly exp ressed productions of recombinase GDH and evolved GDH were purified by Ni-NTA and the enzymatic properties were determined.The results showed that theKmof GDH increased from 0.58 mmol·L-1to 0.63 mmol·L-1,and theKmof NAD increased as well,from 0.71 mmol·L-1to 0.77 mmol·L-1.The op timum pH of mutant enzyme also increased from 11.5 to 12.5 while the op timum temperature decreased from 65℃to 55℃.
glycerol dehydrogenase;Klebsiella pneumoniae;directed evolution;error-prone polymerase chain reaction
Q 554+.903
A
1000-5013(2010)06-0661-06
2008-12-28
方柏山(1957-),男,教授,主要從事生物化工的研究.E-mail:fangbs@hqu.edu.cn.
國家重點(diǎn)基礎(chǔ)研究發(fā)展(973)計(jì)劃項(xiàng)目(2006AA 020103);國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(20676048)