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      溫郁金中二萜類化合物C抑制結(jié)腸腺癌細胞增殖并誘導凋亡的實驗研究*

      2011-05-15 07:35:16雁呂爍馬忠俊
      胃腸病學 2011年3期
      關鍵詞:二萜郁金提物

      沈 雁呂 賓# 張 爍馬忠俊

      浙江中醫(yī)藥大學附屬第一醫(yī)院消化內(nèi)科1(310006) 浙江大學藥學院現(xiàn)代中藥研究所2

      結(jié)腸癌是臨床上常見的消化系惡性腫瘤,其發(fā)病率和死亡率在所有癌癥中均位居前列,5年生存率低,且治療費用高昂[1,2]。Fearon等[3]提出了結(jié)腸癌的多步驟發(fā)生理論,即正常黏膜→增生黏膜→腺瘤→原位癌→浸潤癌的發(fā)生途徑。推測該過程或許與體內(nèi)結(jié)腸腺上皮細胞表型惡性轉(zhuǎn)化、增殖與凋亡行為失衡有關。

      溫郁金是姜科姜黃屬植物溫郁金(Curcuma wenyujinY.H.Chen et C.Ling)的干燥塊根,其藥性寒,味辛、苦,歸心、肝、膽經(jīng),具有活血止痛、行氣解郁、清心涼血、利膽退黃等功效[4]。從傳統(tǒng)中藥中提取活性成分為開發(fā)新型抗腫瘤藥物開辟了廣闊的道路。研究[5]發(fā)現(xiàn),溫郁金提取物在體外能明顯抑制胃癌的發(fā)生和發(fā)展。二萜類化合物C為溫郁金醚提物中的活性單體。本實驗通過觀察二萜類化合物C對結(jié)腸腺癌SW620細胞增殖、凋亡和細胞周期的影響,旨在探討其抗腫瘤作用的分子機制,從而為結(jié)腸癌的藥物研發(fā)以及臨床治療提供新選擇。

      材料與方法

      一、藥物制備、細胞株、主要試劑和儀器

      溫郁金干燥根莖 10 kg,以 8倍量(80 L)95%乙醇回流提取4次,回收溶劑得粗提物247 g??偨嘁?00 ml水分散均勻,依次用1倍量(500 ml)石油醚、二氯甲烷、正丁醇萃取,得二氯甲烷萃取物95.1 g。二氯甲烷部分以石油醚/乙酸乙酯為洗脫劑,硅膠柱層析得10個流分A~J。流分E以乙腈(70%)-水(30%)為流動相,制備色譜進一步分離得8個流分(0~80 min,每 10 min 1個流分),即 E1~E8。 其中 E8 以乙腈(45%)-水(55%)等度洗脫,二次制備得二萜類化合物 C(5.0 mg,tR 43.7 min),分子質(zhì)量為380,分子式為C22H36O5[6]。

      人結(jié)腸腺癌細胞株SW620購自中國科學院上海生科院細胞庫。Leibovitz’s L-15培養(yǎng)基、0.25%胰酶(杭州吉諾生物醫(yī)藥技術(shù)有限公司)、胎牛血清(Gibco公司)、MTT 干粉(Ameresco公司)、Annexin V-FITC/PI凋亡試劑盒(Biouniquer公司)、PI 染液(Sigma 公司)、5-氟尿嘧啶(5-Fu)注射液(天津金耀氨基酸有限公司,分子質(zhì)量130.08)。

      倒置相差顯微鏡(Olympus公司),CO2培養(yǎng)箱、離心機(Thermo),酶標儀(BioTek),流式細胞儀(BD公司)。

      二、方法

      1.細胞培養(yǎng):將SW620細胞加入含10%胎牛血清的L-15培養(yǎng)基中,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。

      2.MTT法檢測細胞增殖情況:取對數(shù)生長期細胞,用含10%胎牛血清的L-15培養(yǎng)基調(diào)整細胞濃度為 5×104/ml,接種于 96 孔培養(yǎng)板,每孔 200μl,培養(yǎng)24 h后吸棄上清液。實驗組每孔加入含二萜類化合物C的L-15培養(yǎng)基200μl,使其終濃度分別為10~70μg/ml,共7組;陰性對照組每孔加入200μl培養(yǎng)基;空白對照組加不含細胞的血清培養(yǎng)基;陽性對照組每孔加入含5-Fu的培養(yǎng)基200μl,使其終濃度同二萜類化合物C;每個劑量設3個復孔。培養(yǎng)24、48和72 h后,每孔加5 mg/ml MTT溶液20μl,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,然后用快速翻板法棄上清;每孔加 DMSO 150μl,振蕩 10 min,上酶標儀測定吸光度(A)值,檢測波長為490 nm。計算細胞生長抑制率,抑制率(%)=[(陰性對照組A值-空白對照組A值)-(實驗對照組A值-空白對照組A值)]/(陰性對照組A值-空白對照組A值)×100%。

      3.倒置相差顯微鏡觀察細胞形態(tài)學變化:取對數(shù)生長期細胞,用含10%胎牛血清的L-15培養(yǎng)基調(diào)整細胞濃度為2×105/ml,取3 ml加入中號培養(yǎng)皿,培養(yǎng)24 h后吸棄上清液;將含二萜類化合物C的培養(yǎng)基3 ml加入培養(yǎng)皿中,使其終濃度分別為40、55、70μg/ml。 同時以加入等體積培養(yǎng)基的細胞作為陰性對照組,每組重復3次。倒置相差顯微鏡下觀察48 h后細胞生長狀態(tài)。

      4.細胞凋亡和細胞周期變化的檢測:取對數(shù)生長期細胞,用含10%胎牛血清的L-15培養(yǎng)基調(diào)整細胞濃度為2×105/ml,取3 ml加入中號培養(yǎng)皿,培養(yǎng)24 h后吸棄上清液;將含二萜類化合物C的培養(yǎng)基3 ml加入培養(yǎng)皿中,使其終濃度分別為40、55、70μg/ml。同時以加入等體積培養(yǎng)基的細胞作為陰性對照組。分別培養(yǎng)24 h、48 h后,以不含EDTA的胰酶消化細胞,PBS漂洗2次,2000 r/min離心5 min。先加入500μl Binding Buffer懸浮細胞后,再加入5μl Annexin V-FITC混勻,室溫避光反應5~15 min后,上機檢測細胞凋亡率;加入70%冷乙醇,4℃固定12 h,再加入1 ml PI染液,室溫避光孵育20 min后,上機檢測細胞周期。激發(fā)波長為488 nm,并用相應軟件進行數(shù)據(jù)分析。

      三、統(tǒng)計學分析

      結(jié) 果

      一、MTT測定結(jié)果

      不同濃度的二萜類化合物C和5-Fu對SW620細胞增殖均有不同程度的抑制作用,其中60μg/ml二萜類化合物C作用72 h時的細胞抑制率最高,達95.30%±1.48%。同一時間點二萜類化合物C的抑制能力隨其濃度的增加而升高(P<0.05);除70μg/ml組作用48 h和72 h時的抑制率無明顯差異外,其余同一濃度二萜類化合物C的抑制能力隨其作用時間的延長而升高(P<0.05)。作用24 h、48 h和72 h時,二萜類化合物C對SW620細胞的半數(shù)有效抑制濃度分別為 28.31、15.58 和 6.14μg/ml。 此外,二萜類化合物C的抑制能力均顯著高于相同時間點和濃度的 5-Fu(P<0.01)(見圖1)。

      二、倒置相差顯微鏡結(jié)果

      不同濃度二萜類化合物C均能誘導SW620細胞凋亡,呈現(xiàn)出特征性形態(tài)改變,如胞膜皺縮、細胞逐漸變圓、體積縮小、細胞間隙增寬、細胞從基質(zhì)上脫離等;且這種改變與藥物濃度呈正相關,70μg/ml組多數(shù)SW620細胞處于晚期凋亡階段,培養(yǎng)基中可見較多的細胞碎片漂浮。而陰性對照組SW620細胞呈梭形、簇狀生長,并隨著時間的延長,細胞數(shù)目增多、密度增高(見圖2)。

      三、細胞凋亡結(jié)果

      不同濃度二萜類化合物C均能誘導活性SW620細胞進入早期和(或)晚期凋亡階段。同一時間點其促凋亡能力隨濃度的增加而升高(P<0.01),且同一濃度二萜類化合物C作用48 h時的SW620細胞凋亡率(包括早期和晚期)顯著高于24 h組(P<0.01)。 70μg/ml二萜類化合物 C 作用 48 h 時的凋亡率最高,達84.97%±0.58%(見圖3)。

      圖1 不同濃度二萜類化合物C和5-Fu作用24、48和72 h時對SW620細胞增殖的抑制率

      圖2 二萜類化合物C作用48 h時SW620細胞的形態(tài)學特點

      圖3 不同濃度不同時間點二萜類化合物C誘導SW620細胞凋亡的比較

      作用24或48 h后,各濃度二萜類化合物C組的G2期比例較陰性對照組明顯減少,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.01);作用48 h后,同一濃度二萜類化合物C的G2期比例較24 h組減少,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。此外,二萜類化合物C作用48 h后,55、70μg/ml組 SW620 細胞周期于 G0/G1期前可見明顯的亞二倍體峰(凋亡峰)(見圖4)。

      討 論

      腫瘤的發(fā)生是人類正常細胞增殖與凋亡之間平衡失調(diào)導致表型惡性轉(zhuǎn)化的結(jié)果:周圍環(huán)境中各種促癌信號的過度刺激引起細胞內(nèi)外有序的信號傳遞網(wǎng)絡發(fā)生異常,進而導致下游各種基因突變并逐漸累積,最終促使細胞由正常表型發(fā)展成為增殖失控、凋亡失能的癌性表型。因此,通過阻滯細胞周期以抑制增殖過程的啟動或促進細胞凋亡,均能起到較好的抗癌作用。

      溫郁金是臨床上常用的中藥,其抗腫瘤作用正日益受到關注。本課題的前期研究[5]結(jié)果顯示,溫郁金的水提物、醚提物和醇提物在體外均能抑制人胃癌SGC-7901細胞增殖,且后兩者尚具有良好的凋亡誘導效應,其作用機制可能與下調(diào)血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)、環(huán)氧合酶-2(cyclooxygenase-2,COX-2)水平以減少瘤灶內(nèi)微血管密度(microvessel density,MVD)[7]、提高血漿和組織中生長抑素表達[8]、抑制胰島素樣生長因子(insulin-like growth factor,IGF)Ⅰ和Ⅱ的分泌[9]等有關。近來對溫郁金抗癌成分的研究主要集中于姜黃素和欖香烯,而其他活性成分的相關研究較少。國內(nèi)外大量研究發(fā)現(xiàn),溫郁金醇提物的主要成分姜黃素可分別以腫瘤細胞本身[10]、腫瘤相關蛋白[11,12]、相關基因[13]、相關信號轉(zhuǎn)導通路[14,15]為靶標發(fā)揮高效的抗癌活性;溫郁金醚提物的主要成分欖香烯能通過下調(diào)Bcl-2表達[16,17]、抑制端粒酶活性[17]、阻斷細胞周期[18]等方式誘導癌細胞凋亡,具有多效性。

      在此基礎上,本研究從溫郁金醚提物中提取了一種新型二萜類化合物C,其化學結(jié)構(gòu)和性質(zhì)均有別于姜黃素和欖香烯[6]。同時,選擇臨床上結(jié)直腸癌的主要化療藥物5-Fu作為陽性對照,其能通過在體內(nèi)轉(zhuǎn)化為5-氟尿嘧啶脫氧核苷酸(5F-dUMP)而抑制脫氧胸苷酸合成酶,影響DNA的生物合成,抑制腫瘤細胞的分裂增殖。本研究結(jié)果顯示二萜類化合物C對SW620細胞增殖具有明顯的抑制作用,并呈時間依賴性和濃度依賴性,且二萜類化合物C的抑制作用明顯強于相同時間點和濃度的5-Fu。倒置相差顯微鏡可見二萜類化合物C能引起SW620細胞發(fā)生典型的凋亡改變,如細胞皺縮、變圓、體積縮小、脫離基質(zhì)等。流式細胞術(shù)結(jié)果提示,二萜類化合物C能隨著作用時間的延長和濃度的增高而使處于G2期細胞的比例明顯減少,并顯著誘導細胞凋亡。

      圖4 不同濃度不同時間點二萜類化合物C對SW620細胞周期分布的影響

      綜上所述,溫郁金醚提物中二萜類化合物C對人結(jié)腸腺癌SW620細胞具有高效的抑制增殖和促進凋亡的作用,可能是其發(fā)揮抗腫瘤作用的機制之一。但鑒于人類生命活動調(diào)控的復雜性,二萜類化合物C的抗癌效應或許存在更多潛在機制,有待進一步探討。更為深入的研究將為溫郁金抗腫瘤成分的開發(fā)及其臨床應用產(chǎn)生巨大的推動作用,為結(jié)腸癌的藥物治療開拓全新的思路。

      1 Jemal A,Tiwari RC,Murray T,et al;American Cancer Society.Cancer statistics,2004.CA Cancer J Clin,2004,54(1):8-29.

      2 Maroun J,Ng E,Berthelot JM,et al.Lifetime costs of colon and rectal cancer management in Canada.Chronic Dis Can,2003,24(4):91-101.

      3 Fearon ER,Vogelstein B.A genetic model for colorectal tumorigenesis.Cell,1990,61(5):759-767.

      4 甑權(quán).藥性論.見:高學敏主編.中藥學.北京:中國中醫(yī)藥出版社,2002.367-368.

      5 徐毅,呂賓,丁志山,等.不同溫郁金提取物抑制胃癌細胞SGC-7901增殖和誘導凋亡的實驗研究.浙江醫(yī)學,2004,26(7):503-505.

      6 Ma ZJ,Meng ZK,Zhang P.Chemical constituents from the radix of Curcuma wenyujin.Fitoterapia,2009,80(6):374-376.

      7 俞林峰,呂賓,徐磊,等.溫郁金對飲用MNNG大鼠胃黏膜血管內(nèi)皮生長因子和環(huán)氧合酶-2表達的影響.胃腸病學,2007,12(3):140-143.

      8 徐毅,呂賓,項柏康,等.溫郁金對鼠血漿和胃組織生長抑素水平的影響.中國中西醫(yī)結(jié)合消化雜志,2004,12(4):222-224.

      9 何必立,呂賓,徐毅,等.溫郁金對胃癌細胞的抑制作用及其對IGF-Ⅰ、IGF-Ⅱ表達的影響.世界華人消化雜志,2004,12(11):2761-2763.

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      12 Lee SS,Tsai CH,Yang SF,et al.Hypoxia inducible factor-1α expression in areca quid chewing-associated oral squamous cell carcinomas.Oral Dis,2010,16(7):696-701.

      13 Chen A,Xu J,Johnson AC.Curcumin inhibits human colon cancer cell growth by suppressing gene expression of epidermal growth factor receptor through reducing the activity of the transcription factor Egr-1.Oncogene,2006,25(2):278-287.

      14 Beevers CS,Li F,Liu L,et al.Curcumin inhibits the mammalian target of rapamycin-mediated signaling pathways in cancer cells.Int J Cancer,2006,119(4):757-764.

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      16 陳浩,師亮,成志勇,等.β-欖香烯對人骨髓瘤細胞RPMI-8226增殖與凋亡的影響.中國實驗血液學雜志,2010,18(2):368-371.

      17 陳春美,楊衛(wèi)忠,王春華,等.欖香烯誘導人腦膠質(zhì)瘤U251細胞凋亡及對端粒酶活性和hTERT表達影響的研究.中國腫瘤臨,2006,33(5):280-283.

      18 Li X,Wang G,Zhao J,et al.Antiproliferative effect of beta-elemene in chemoresistant ovarian carcinoma cells is mediated through arrest of the cell cycle at the G2-M phase.Cell Mol Life Sci,2005,62(7-8):894-904.

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