古 磊(綜述),甄 云(審校)
廣東醫(yī)學(xué)院附屬西鄉(xiāng)人民醫(yī)院神經(jīng)外科,廣東 深圳 518102
自從Nogo-A蛋白及其受體NgR被發(fā)現(xiàn),中樞神經(jīng)損傷再生機制的研究就成為神經(jīng)科學(xué)研究領(lǐng)域的熱點。隨著對Nogo-A、NgR研究的深入,人們對其從分子到蛋白,從表達到分布、功能,都有了一定的認識,但仍存在問題和困惑。本文主要就Nogo-A、NgR對中樞神經(jīng)損傷修復(fù)影響的研究現(xiàn)狀作一綜述。
Nogo-A是由Nogo基因表達的一種具有軸突再生抑制作用的蛋白質(zhì)分子,分子量為126 KD,全長有1163個氨基酸,共有三個結(jié)構(gòu)域。第一個結(jié)構(gòu)域Nogo-66靠近羧基端,位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔或細胞膜外,與特定受體NgR結(jié)合能夠誘導(dǎo)軸突生長錐潰變、塌陷,抑制神經(jīng)軸突再生[1]。第二個結(jié)構(gòu)域amino-Nogo-A在N-末端區(qū)域,與抑制成纖維細胞3T3的擴散有關(guān),對神經(jīng)元的影響甚微,但與Nogo-66在抑制軸突生長方面可發(fā)揮協(xié)同作用。第三個功能結(jié)構(gòu)域NiG在中間,該區(qū)域抑制軸突生長和成纖維細胞播散,并誘導(dǎo)生長錐萎陷[1]。
關(guān)于Nogo-A在體內(nèi)的分布,2001年Josephson等[2]首先采用原位雜交技術(shù)發(fā)現(xiàn)在運動神經(jīng)元和感覺神經(jīng)元、三叉神經(jīng)節(jié)、三叉神經(jīng)腦橋核、紅核及海馬等神經(jīng)元內(nèi)都有Nogo-A mRNA表達,但在星形膠質(zhì)細胞和施萬細胞中未見分布。而Huber等[3]用共聚焦和免疫電鏡揭示出Nogo-A主要在少突膠質(zhì)細胞的細胞體和突起表達,位于最內(nèi)的軸突旁和最外層的髓鞘膜上,是其發(fā)揮軸突抑制作用的便利條件。
Nogo-A作為中樞神經(jīng)元髓鞘的組成成分有什么生理作用呢?有實驗發(fā)現(xiàn),在非病理條件下,胚胎發(fā)育早期Nogo-A可以參與髓鞘的形成,與神經(jīng)環(huán)路連接有關(guān),在海馬連接的發(fā)育中起關(guān)鍵作用,同時促進神經(jīng)細胞遷移和軸突生長,保證軸突朝靶組織定向生長,尤其是保證軸突沿軸索方向長距離生長[4]。在成年中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,Nogo蛋白的抑制作用有助于保持神經(jīng)聯(lián)系的特異性,防止神經(jīng)在不必要的區(qū)域出芽,形成不必要和錯誤的投射,保持中樞神經(jīng)系統(tǒng)穩(wěn)定[5]。孟蒂等[6]最新研究發(fā)現(xiàn),在疼痛傷害性刺激動物模型中,Nogo-A在大鼠中腦導(dǎo)水管周圍灰質(zhì)中表達變化,并且與內(nèi)源性阿片系統(tǒng)之間也存在一定的聯(lián)系,說明Nogo-A也參與了痛覺調(diào)制過程,參與傷害性刺激反應(yīng)。
NgR是一種廣泛存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)且為神經(jīng)元特有的蛋白,因其能夠與Nogo-66分子特異性結(jié)合發(fā)揮軸突生長抑制作用而被發(fā)現(xiàn)。NgR由473個氨基酸殘基組成,從N端至C端包含1個信號肽、3個氨基酸重復(fù)序列LRRNT/LRR/LRRCT構(gòu)成配體結(jié)合域、特異性C末端以及1個糖基化磷脂酰肌醇結(jié)構(gòu)。
NgR位于細胞膜的表面,靠糖基化磷脂酰肌醇錨定在細胞膜的表面[1]。Hunt等[7]采用原位雜交技術(shù),發(fā)現(xiàn)NgR mRNA在大腦皮層、海馬結(jié)構(gòu)、杏仁體和背側(cè)丘腦內(nèi)高度表達,在紅核和前庭神經(jīng)核內(nèi)中度表達,在白質(zhì)內(nèi)表達很弱;小腦內(nèi)小腦深核NgR mRNA表達強度高于顆粒細胞和Purkinje細胞;前腦的大部,包括紋狀體、丘腦網(wǎng)狀核、下丘腦和基底前腦NgR mRNA表達很弱或無表達。
NgR蛋白作為一種神經(jīng)抑制因子的受體廣泛存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的神經(jīng)元,它在非病理狀態(tài)下的生理功能也引起了人們的關(guān)注。Huo等[8]的報道認為,NgR和其配體Nogo-A在海馬發(fā)育過程中對海馬神經(jīng)元的連接、神經(jīng)環(huán)路的形成起到關(guān)鍵作用,因此,其對學(xué)習(xí)和記憶有促進作用,與中樞神經(jīng)系統(tǒng)的發(fā)育密切相關(guān)。
Nogo-A主要分布在少突膠質(zhì)細胞中,位于中樞神經(jīng)系統(tǒng)白質(zhì)中,而作為受體的NgR主要分布在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的灰質(zhì)神經(jīng)元。二者通過什么途徑結(jié)合來發(fā)揮抑制神經(jīng)元軸突再生作用呢?中樞神經(jīng)損傷時,少突膠質(zhì)細胞和髓磷脂釋放出細胞內(nèi)的Nogo-A到細胞外基質(zhì),通過三種途徑和受體NgR結(jié)合[9]:①細胞方式,即完整少突膠質(zhì)細胞表面的Nogo-66與損傷神經(jīng)元的NgR結(jié)合。②細胞膜方式,即從受損少突膠質(zhì)細胞脫落下來的含Nogo-66的膜片段與損傷神經(jīng)元的NgR結(jié)合。③完全溶解的少突膠質(zhì)細胞釋放Amino-Nogo和Nogo-66的可溶性蛋白水解片段,與NgR結(jié)合。在中樞神經(jīng)損傷時,往往三種結(jié)合方式同時存在。由于NgR通過糖基化磷脂酰肌醇錨定在神經(jīng)元細胞膜的外面,需要有輔助的跨膜蛋白轉(zhuǎn)導(dǎo)抑制信號到細胞內(nèi)。因此,NgR可與細胞膜上的p75NTR和LINGO-1兩種跨膜蛋白結(jié)合形成具有完整信號傳遞功能的復(fù)合體(NgR/LINGO-1/p75),向細胞內(nèi)傳遞髓磷脂相關(guān)抑制因子的抑制信號。NgR也可以與跨膜蛋白TROY及LINGO-1結(jié)合,形成另外一種具有完整信號傳遞功能的復(fù)合體(NgR/LINGO-1/TROY)來向細胞內(nèi)傳遞抑制信號。當NgR/LINGO-1/p75或TROY復(fù)合體把抑制信號傳遞到細胞內(nèi),則激活下游的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)分子RhoA使其去磷酸化轉(zhuǎn)變?yōu)榛钚孕问降腞hoA-GTP,RhoA-GTP與其主要的效應(yīng)蛋白ROCK結(jié)合后,激活其蛋白激酶活性,導(dǎo)致生長錐塌陷,抑制神經(jīng)再生[10]。此外,Nogo-A抑制中樞神經(jīng)軸突再生可能還有其他的途徑[11]。一是通過GTP酶RhoA和Racl發(fā)揮作用:Nogo-A通過G蛋白偶聯(lián)受體[G(i)/G]途徑使細胞內(nèi)Ca2+濃度短時間內(nèi)急驟升高,激活細胞內(nèi)Ca2+依賴性蛋白激酶C,從而抑制生長錐生長,阻止軸突的延伸;另一個途徑是在細胞損傷后通過amino-Nogo的釋放發(fā)揮抑制作用。但amino-Nogo發(fā)揮抑制神經(jīng)再生作用并不是通過與NgR結(jié)合實現(xiàn)的,其發(fā)揮抑制作用的機制目前尚不清楚。
近十年來大部分的研究認為,在腦缺血損傷后Nogo-A及NgR表達升高,甚至在損傷一個月后,二者表達還處于較高水平,推測Nogo-A及NgR有可能參與了腦缺血的病理損傷發(fā)生及進展過程,并在腦缺血損傷后的修復(fù)中發(fā)揮抑制作用。但吳功雄等[12]研究認為,大鼠腦梗死后3 d內(nèi)Nogo-A含量下降,到發(fā)病后第7天開始上升,2周達高峰,考慮因為梗死早期腦組織經(jīng)歷缺血、變性、壞死,此時各種蛋白質(zhì)及神經(jīng)遞質(zhì)的合成均降低,Nogo-A的表達減少;在梗死后期,由于神經(jīng)組織及結(jié)締組織的修復(fù)加快,特別是少突膠質(zhì)細胞的增生,Nogo-A的表達量升高,對神經(jīng)纖維生長的抑制加強,這可能是造成成年哺乳動物腦缺血損傷后神經(jīng)再生障礙的重要原因之一。此外,孫廣珍等[13]在最近的實驗中發(fā)現(xiàn),大鼠大腦中動脈閉塞后的第5、7、10天,在大腦缺血的遠隔部位小腦皮層Nogo-A蛋白表達明顯增高,說明大腦中動脈閉塞后不僅引起局部腦組織的缺血改變,還會通過神經(jīng)纖維聯(lián)系引起遠隔部位小腦發(fā)生繼發(fā)性免疫損害,其中,軸突生長抑制因子Nogo-A在繼發(fā)性免疫損害過程中發(fā)揮了較強作用。由此可見,Nogo-A及NgR不但在腦缺血損傷后修復(fù)中抑制了神經(jīng)再生及神經(jīng)功能的恢復(fù),而且在腦缺血損傷的病理過程也可能發(fā)揮了重要作用,甚至在腦缺血的遠隔部位也發(fā)揮了免疫損傷的作用。
在腦缺血后治療中,有研究顯示,使用Nogo-A抗體治療腦梗死大鼠,能觀察到從未受損皮質(zhì)到皮質(zhì)下區(qū)域形成新的軸突連接,促進大鼠相應(yīng)神經(jīng)系統(tǒng)功能恢[14]。而在Tsai等[15]的最新研究報道中顯示,在缺血性腦卒中模型中給予Nogo-A抗體(11C7)治療,通過標記的生物素示蹤神經(jīng)纖維分析發(fā)現(xiàn),Nogo-A可以促進缺血皮質(zhì)的神經(jīng)纖維發(fā)芽到紅核,能夠有效地促進癱瘓肢體的功能恢復(fù),即使在缺血發(fā)生的晚期使用也有效。Kilic等[16]的最新報道認為,Nogo-A能夠促進腦梗死后殘留神經(jīng)元的存活,因此,應(yīng)該意識到應(yīng)用Nogo-A抗體促進神經(jīng)元軸突再生療法的危害。Nogo-A抗體在急性腦卒中階段不能應(yīng)用。
對于腦缺血再灌注損傷模型的研究,杜秀民等[17]得出,腦缺血再灌注后2~12 h Nogo-A在缺血側(cè)皮質(zhì)區(qū)和紋狀體區(qū)表達增高,并達到峰值,之后下降,在48 h時再次升高達到峰值,之后逐漸下降,對于Nogo-A出現(xiàn)兩次表達高峰的原因,可能主要由于缺血、缺氧使細胞失去活性以及再灌注損傷的反彈作用所致,具體原因目前尚不清楚。
關(guān)于Nogo-A及NgR在脊髓損傷中的研究國內(nèi)外已經(jīng)有了大量報道。使用Nogo-A抗體或者運用基因技術(shù)敲除Nogo-A基因,都能在脊髓損傷模型中觀察到神經(jīng)軸突的廣泛再生,對受損傷脊髓的功能恢復(fù)有較明顯療效,這已經(jīng)得到大部分研究者的認可,現(xiàn)在已經(jīng)開始進入臨床試驗階段[18]。Ⅰ期臨床試驗已經(jīng)成功申請建立了多國合作的抗Nogo-A治療急性脊髓損傷的臨床實驗中心,現(xiàn)在正在籌備Ⅱ期在多個國家實施臨床實驗。針對NgR抗體的應(yīng)用,也多有報道。Atalay等[19]通過向脊髓損傷大鼠體內(nèi)加入NEP1-40,阻斷Nogo-66與其受體結(jié)合后發(fā)現(xiàn),大鼠體內(nèi)鈣粘蛋白(一種神經(jīng)細胞黏附和軸突出芽的標志)的表達增加,并且可增加運動功能的恢復(fù)。但Steward等[20]研究顯示,在大鼠脊髓損傷模型中用NgR受體阻斷NgR,并沒有發(fā)現(xiàn)受損脊髓軸突的明顯再生和肢體運動功能的恢復(fù)。此外,還有采用C3轉(zhuǎn)移酶滅活Rho、其他NgR拮抗劑阻斷Nogo與NgR結(jié)合、化學(xué)合成小干擾RNA (siRNA)沉默NgR基因、分別對NgR、p75NTR、Rho-A進行RNA干擾等手段,也都發(fā)現(xiàn)能夠促進脊髓損傷后軸突的再生。
目前對于Nogo-A和NgR在顱腦創(chuàng)傷中的研究還比較少。在大鼠彌漫性軸索損傷的研究中發(fā)現(xiàn),腦內(nèi)NgR蛋白和NgR mRNA的表達水平在彌漫性軸索損傷后明顯下降,在傷后72 h降到最低,此后逐漸恢復(fù)[21]。也有人發(fā)現(xiàn),在大鼠顱腦創(chuàng)傷后,阻斷或抑制Nogo-A的表達,能夠促進中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷后結(jié)構(gòu)和功能的恢復(fù)[22]。近期林在楷等[23]研究發(fā)現(xiàn),人顱腦創(chuàng)傷后血清中Nogo-A蛋白水平顯著增高且與損傷程度及預(yù)后有一定關(guān)系,能在一定程度上有助于判斷顱腦損傷的嚴重程度和預(yù)后。對于顱腦創(chuàng)傷后Nogo-A和NgR在腦組織中的變化還有待進一步研究。
實驗性自身免疫腦脊髓炎的病理標志是軸突損傷。Karnezis等[24]研究表明,Nogo-A是自身免疫腦脊髓炎發(fā)展的重要因素,對Nogo-A的阻斷可能有助于保持和(或)恢復(fù)免疫損傷后中樞神經(jīng)系統(tǒng)的神經(jīng)完整性。Nogo-A與NgR在免疫反應(yīng)中的作用機制目前還不清楚,在中樞神經(jīng)免疫損傷中扮演了什么角色還有待進一步研究。
目前對于Nogo-A和NgR作用機制的研究已經(jīng)取得了長足進展,針對其作用的各個環(huán)節(jié)進行干擾、抑制、拮抗來促進受損的神經(jīng)恢復(fù),都已經(jīng)取得了一定成果。但是Nogo-A和NgR復(fù)雜信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的面紗還沒有揭開,同時二者作為正常神經(jīng)纖維髓鞘的組成成分,其生理功能目前還不甚明確,還需要更深入的研究。另外,關(guān)于Nogo-A和NgR的研究,目前主要集中在腦的缺血性損傷和脊髓的創(chuàng)傷領(lǐng)域,而在顱腦創(chuàng)傷方面的研究相對較少。因此,對于Nogo-A和NgR的研究還有很長的路要走。
[1]Oertle T,Van D,Haar ME,et a1.Nogo-A inhibits neurite outgrowth and cell spreading with three discrete regions[J].J Neurosci,2003,23(13):5393-5406.
[2]Josephson A,Widenfalk J,Widmer HW,et al.Nogo mRNA expression in adult and fetal human and rat nervous tissue and in weight drop injury[J].Exp Neurol,2001,169:319-328.
[3]Huber AB,Weinmann O,Bramle C,et al.Patterns of Nogo mRNA and protein expression in the developing and adult rat and after CNS lesions[J].J Neurosci,2002,22:3553-3567.
[4]Weinmann O,Schnell L,Ghosh A.Intrathecally infused antibodies against Nogo-A penetrate the CNS and downregulate the endogenous neurite growth inhibitor Nogo-A[J].Mol Cell Neurosci,2006,32(1-2):161-173.
[5]Zhao X,Wu J,Kuang F,et al.Silencing of Nogo-A in rat oligodendrocyte cultures enhances process branching[J].Neurosci Lett,2011,499(1):32-36.
[6]孟蒂,劉丹,房春燕,等.大鼠PAG內(nèi)Nogo-A和CGRP參與痛覺調(diào)制的研究[J].神經(jīng)解剖學(xué)雜志,2011,27(1):67-71.
[7]Hunt D,Marson MRJ,Campebell G,et a1.Nogo receptor mRNA expression in intact and regenerating CNS neurons[J].Mol Cell Neurosci,2002,20(1153):537-552.
[8]Huo Y,Yuan RD,Ye J,et al.Expression of Nogo-A and Nogo receptor in neonatal rats visual system during development[J].Zhonghua Yan Ke Za Zhi,2011,47(1):54-58.
[9]Bareyre FM,Haudenschild B,Schwab ME.Long-lasting sprouting and gene expression changes induced by the monoelonal antibody IN-1 in the adult spinal cord[J].J Neurosci,2002,22(16):7097.
[10]Hsieh SH,Ferraro GB,Fournier AE.Myelin-associated inhibitors regulate cofilin phosphorylation and neuronal inhibition through LIM kinase and Slingshot phosphatase[J].J Neurosci,2006,26(3):1006-1015.
[11]楊志高,沈洪興.Nogo/NgR信號通路相關(guān)分子及其在脊髓神經(jīng)再生中的作用[J].中國脊柱脊髓雜志,2009,19(9):713-716.
[12]吳功雄,王玉蘋,張海偉,等.大鼠腦梗塞后功能恢復(fù)過程中Nogo-A mRNA及其蛋白質(zhì)的表達[J].中國病理生理雜志,2006,22(5):972-976.
[13]孫廣珍,車玉琴,竇文波,等.腦梗死后遠隔部位小腦皮層Nogo-A蛋白表達[J].免疫學(xué)雜志,2011,1(29):90-92.
[14]Tsai SY,Markus TM,Andrews EM,et al.Intrathecal treatment with anti-Nogo-A antibody improves functional recovery in adult rats after stroke[J].Exp Brain Res,2007,182(2):261-266.
[15]Tsai SY,Papadopoulos CM,Schwab ME,et al.Delayed anti-Nogo-A therapy improves function after chronic stroke in adult rats[J].Stroke,2011,42(1):186-190.
[16]Kilic E,ElAli A,Kilic U,et al.Role of Nogo-A in neuronal survival in the reperfused ischemic brain [J].J Cereb Blood Flow Metab,2010,30(5):969-984.
[17]杜秀民,劉紅,劉廣義.大鼠腦缺血-再灌注損傷后Nogo-A及IGF-1的:表達和意義[J].中國老年學(xué)雜志,2008,6(28):1061-1063.
[18]Zo rner B,Schwab ME.Anti-Nogo on the go:from animal models to a clinical trial[J].Ann N Y Acad Sci,2010,98(11):22-34.
[19]Atalay B,Bavbek M,Cekinmez M,et al.Antibodies neutralizing Nogo-A increase pan-cadherin expression and motor recovery following spinal cord injury in rats[J].Spinal Cord,2007,45(12):780-786.
[20]Steward O,Sharp K,Yee KM,et al.A re-assessment of the effects of a Nogo-66 receptor antagonist on regenerative growth of axons and locomotor recovery after spinal cord injury in mice[J].Exp Neurol,2008,209(2):446-468.
[21]沈劍虹,文立,馬進.大鼠彌漫性軸索損傷對腦內(nèi)NgR表達的影響[J].交通醫(yī)學(xué),2007,21(4):347-349,354.
[22]Marklund N,Morales D,Clausen F,et al.Functional outcome is impaired following traumatic brain injury in aging nogo-A/Bdeficient mice[J].Neuroscience,2009,163(2):540-551.
[23]林在楷,田恒力,吳炳山,等.急性閉合性顱腦損傷患者血清Nogo-A蛋白的變化[J].上海交通大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2010,30(1):70-72.
[24]Karnezis T,Mandemakers W,Mcqualter JL,et al.The neurite outgrowth inhibitor Nogo-A is involved in autoimmune-mediated demyelination[J].Nat Neurosci,2004,7(7):736.