邱娜莎, 劉 暢, 嚴雅靜, 魏兆軍
(合肥工業(yè)大學 生 物與食品工程學院,安徽 合 肥 230009)
促咽側體素(Allatotropin,簡稱AT)是一種多功能的神經(jīng)肽,其功能包括促進保幼激素(JH)和促肌蛋白的生物合成、加速心臟搏動,抑制活性離子運輸?shù)龋?]。家蠶促咽側體素是一組結構相關的神經(jīng)肽家族的成員之一,這組神經(jīng)肽在昆蟲和其他無脊椎動物中廣泛分布。神經(jīng)肽受體的鑒定可以通過它們的生化分離、基因克隆及生物活性檢測等方法實現(xiàn),它們通常是根據(jù)第1次被發(fā)現(xiàn)的活性來命名的,AT受體首先是在煙草天蛾中得以鑒定的[2]。
G蛋白偶聯(lián)受體(GPCRs)家族的絕大多數(shù)成員在結構上都有一個7次疏水跨膜區(qū)域,神經(jīng)肽作為配體通過結合其高親和性受體對細胞靶點起作用[3]。神經(jīng)肽結合產(chǎn)生的信號可以介導一個GTP結合蛋白(G蛋白)的激活,導致第2信使的水平的改變,反之,使靶細胞和生物物體的功能產(chǎn)生變化[4]。本文克隆了家蠶促咽側體素受體基因(Bommo-ATR),對其蛋白三維結構和跨膜結構進行預測,構建系統(tǒng)遺傳樹,并進行了mRNA的發(fā)育變化分析。
家蠶品種P50由中國農(nóng)業(yè)科學院蠶業(yè)研究所提供,飼養(yǎng)條件(23±1)℃、每日光照14h,黑暗10h、70%~80%的相對濕度。從幼蟲5齡第1天起一直到成蟲第1天(其中包括幼蟲5齡階段7d、吐絲期3d、蛹期8d、成蟲期1d,共19d)解剖家蠶的腦-咽下神經(jīng)節(jié)復合體(Br-SG),每天解剖90頭,30個組織為一個樣品,每天取3個樣品。整個操作在冰上進行,解剖后將裝有腦-咽下神經(jīng)節(jié)復合體的EP管迅速放入-80℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
利用RNAiso Plus試劑盒(TaKaRa,大連)提取家蠶Br-SG的RNA,利用cDNA第1鏈合成試劑盒(TaKaRa,大連)合成cDNA,然后BRO16F和BRO16R擴增家蠶ATR的ORF,見表1所列。PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳后,在紫外條件下,用手術刀切出目的片段,再用膠回收試劑盒(TaKaRa,大 連)連 接 到 PMD-18T 載 體 中(TaKaRa,大連),篩選陽性克隆后進行序列測定(上海生工公司,上海)。
表1 擴增家蠶ATR所用的引物序列
通 過 SWISS-MODEL 的 First Approach mode(簡捷模式)行蛋白質三維結構的模擬。SWISS-MODEL服務器是以用戶輸入信息的最小化為目的設計的,直接提供家蠶ATR蛋白的氨基酸序列,選擇簡捷模式,在CPHmodels 2.0 server服務器上做結構預測,得到蛋白質三維結構后,運用RASWIN軟件來看蛋白質分子的三維模型[5]。
對于解剖所得的19d的樣品提取總RNA,使用DNase I處理除去基因組DNA后,取1μg總RNA反轉錄為cDNA(總體積25μL),取約10ng cDNA進行熒光定量PCR反應。利用純化后的PCR產(chǎn)物定量后來制作標準曲線 (含108~103個基因拷貝數(shù))。實時熒光定量PCR反應采用熒光染料SYBR Green I(TaKaRa,大連)在Bio-rad iCycler iQ (美國伯樂公司)用0.2mL薄壁PCR管(AXYGEN,美國)進行。熒光定量PCR反應體系為20μL(2個引物各1μL,模板cDNA 1μL,SYBR Green I Real-time PCR Master Mix 10μL,雙蒸水2μL)。用iQ 5Multicocolor Real-Time PCR Detection System (Bio-Rad)程序執(zhí)行,PCR反應程序為95℃預變性3min,95℃變性15s,58℃退火30s,72℃延伸30s;循環(huán)35次;熔解曲線從55~95℃,每5℃讀取一個熒光值。
本文采用以上步驟中稀釋成不同的濃度梯度的PCR回收產(chǎn)物作為已知起始拷貝數(shù)的標準品,利用Real-Time PCR測定不同稀釋梯度的CT值,進而制作成標準曲線。以拷貝數(shù)的lg值為橫坐標,以CT值為縱坐標做標準曲線,公式為:
其中,a值根據(jù)不同基因和不同PCR片段而不同。得出標準曲線后可以根據(jù)機器測定的未知樣品的CT值代入公式,得到樣品的起始拷貝數(shù)。
以家蠶腦和咽下神經(jīng)節(jié)的cDNA作為模板,利用BRO16F和BRO16R擴增獲得的PCR產(chǎn)物電泳后條帶清晰,大小約1.3kb,與預期的結果一致,如圖1所示。
圖1 擴增家蠶ATR的ORF的PCR結果
克隆到T載體后,序列測定獲得1 254bp的序列,分析表明包含家蠶ATR的ORF的全長序列,編碼416個氨基酸,如圖2所示。本文從測定的Bommo-ATR與基因組預測的比較來看,存在5個堿基差別,但氨基酸僅有1個發(fā)生變化(即23位的H替換為Y)。
Bommo-ATR推導氨基酸序列的二級結構預測[6]表明,家蠶的ATR為7次穿膜蛋白,N-端位于胞外,C-端位于胞內(nèi)。家蠶ATR蛋白跨膜結構域預測,如圖3所示。從圖3可以看出,7個穿膜結構域(transmembrane region,簡稱TM)分別為(按照416個氨基酸的的相對位置,方向為N-端 → C-端):75~97、110~132、147~169、190~209、237~259、299~321和331~353。Bommo-ATR的結構符合GPCR家族成員的典型特征[7]。
圖2 家蠶ATR ORF核苷酸和氨基酸序列
圖3 家蠶ATR蛋白跨膜結構域預測
進一步利用SWISS-MODEL的First Approach mode預測家蠶ATR的3D結構,如圖4所示,結果表明,家蠶ATR蛋白的3D結構包含18個螺旋,其中主要的α-螺旋有7個,與7次跨膜結構一致。
利用NJ方法,依據(jù)不同物種ATR的氨基酸序列構建的系統(tǒng)樹,如圖5所示,其中人的Orexin受體被選為外群。結果表明,家蠶的ATR與煙草天蛾的ATR關系最接近,其次與家蠶的另一個 促 咽 側 體 素 受 體 BNGR-A5[8](GenBank NM-001134268)關系較接近,家蠶的ATR與埃及伊蚊[9]、小金蜂[10]、赤擬谷 盜[11]的 ATR 距 離較遠,這與傳統(tǒng)的系統(tǒng)關系一致[12]。
圖4 預測的家蠶ATR蛋白3D結果
圖5 基于不同昆蟲ATR氨基酸序列的系統(tǒng)樹
從家蠶5齡第1天到發(fā)蛾第2天,每天解剖腦和咽下神經(jīng)節(jié)復合體,用于分析家蠶ATR的mRNA發(fā)育變化[13-14]。本試驗通過設定不同濃度梯度的ATR基因PCR產(chǎn)物作為熒光定量PCR的標準品,制備定量的標準曲線。本試驗利用熒光定量PCR的方法最低可以檢測到103拷貝數(shù)的模板,家蠶ATR基因的標準曲線的線性擬合方程為:
其中,Y為CT;X為模板拷貝數(shù)的lg值。標準曲線在103~108之間顯示了很強的線性相關性,定量標準曲線的相關性系數(shù)為0.997 5,表明所制作的標準曲線非常理想,適合用來檢測ATR基因的拷貝數(shù)。ATR基因擴增標準曲線如圖6a所示。ATR基因熒光定量PCR反應的熔解曲線如圖6b所示。
由圖6b可看出,隨著溫度的升高,熒光信號隨之下降。這是因為溫度的升高會導致越來越多的DNA雙鏈被打開,與之結合的SYBR GreenⅡ染料也被釋放出來。熒光強度發(fā)生變化的拐點(熔點,Tm)處可以清楚地看到一個單一的峰,PTTH基因大約是在85℃,這個峰所對應的是擴增產(chǎn)物的熔解溫度。同時除了單一的峰之外,沒有雜峰,表明實驗中沒有污染、引物二聚體和假陽性現(xiàn)象。
圖6 家蠶ATR基因擴增標準曲線和熔解曲線
家蠶ATR基因發(fā)育變化如圖7所示。
圖7 家蠶Br-SG中ATR基因mRNA發(fā)育變化
從圖7可以看出,5齡幼蟲、預蛹期、蛹期和成蟲4個階段中,5齡幼蟲表達量最高,其次為蛹后期,蛹前期和成蟲階段表達量最低。5齡幼蟲第2天表達量最高,5齡1~5d持續(xù)維持較高的表達水平,化蛹后持續(xù)下降,蛹后期表達量重新升高,化蛾時急劇降低。幼蟲期ATR表達量水平較高,可能是該階段家蠶ATR與AT結合,促進分泌保幼激素(JH),從而維持幼蟲的正常發(fā)育[1]。
化蛹后表達量下降,此時變態(tài)發(fā)育占主導角色,幼蟲體態(tài)的維持被打破,與ATR表達量較低是相適應的。蛹后期表達量重新升高,可能與AT在這個時期促進成蟲肌蛋白的合成有關?;旰蟊磉_量下降,與這個時期家蠶各神經(jīng)肽表達量均較低的情況相吻合[15]。
本研究利用RT-PCR方法克隆了家蠶促咽側體素受體(Bommo-ATR)全長基因序列,并運用實時熒光定量PCR技術對家蠶5齡期至化蛾共19d的ATR表達量進行分析,主要結果有:
(1)家蠶ATR基因全長ORF序列為1 254bp,編碼416個氨基酸。預測的氨基酸序列的二級結構為7次跨膜蛋白,符合GPCR家族成員的典型特征。
(2)家蠶腦-咽下神經(jīng)節(jié)復合體(Br-SG)中ATR五齡1~5d持續(xù)維持較高的表達水平,化蛹后持續(xù)下降,蛹后期表達量重新升高,化蛾時急劇降低。
[1] Li S,Ouyang Y C,Ostrowski E,et al.Allatotropin regulation of juvenile hormone synthesis by the corpora allata from the lubber grasshopper,Romaleamicroptera[J].Peptides,2005,26(1):63-72.
[2] Horodyski F M,Verlinden H,F(xiàn)ilkin N,et al.Isolation and functional characterization of an allatotropin receptor fromManducasexta[J].Insect Biochemistry and Molecular Biology,2011,41(5):804-814
[3] Fan Y,Sun P,Wang Y,et al.The G protein-coupled receptors in the silkworm,Bombyxmori[J].Insect Biochemistry and Molecular Biology,2010,40(8):581-591.
[4] Hull J J,Ohnishi A,Moto K,et al.Cloning and characterization of the pheromone biosynthesis activating neuropeptide receptor from the silkmoth,Bombyxmori:significance of the carboxyl terminus in receptor internalization[J].J Biol Chem,2004,279(49):51500-51507.
[5] Kiefer F,Arnold K,Bordoli L,et al.The SWISS-MODEL Repository and associated resources[J].Nucleic Acids Research,2009,37:387-392.
[6] Abrol R,Kim S K,Bray J K,et al.Characterizing and predicting the functional and conformational diversity of seven-transmembrane proteins [J].Methods,2011,55(4):405-414.
[7] Pierce K L,Premont R T,Lefkowitz R J,et al.Seven-transmembrane receptors[J].Molecular Cell Biology,2002,3(9):639-650.
[8] Yamanaka N,Yamamoto S,Zitnan D,et al.Neuropeptide receptor transcriptome reveals unidentified neuroendocrine pathways[J].PLoS ONE,2008,3(8):e3048
[9] Nouzova M,Brockhoff A,Mayoral J G,et al.Functional characterization of an allatotropin receptor expressed in the corpora allata of mosquitoes [J].Peptides,2011,34:201-208.
[10] Hauser F,Neupert S,Williamson M,et al.Genomics and peptidomics of neuropeptides and protein hormones present in the parasitic waspNasoniavitripennis[J].J Proteome Res,2010,9(10):5296-5310.
[11] Vuerinckx K,Verlinden H,Lindemans M,et al.Characterization of an allatotropin-like peptide receptor in the red flour beetle,Triboliumcastaneum[J].Insect Biochem Mol Biol,2011,41(10):815-822.
[12] 袁 鋒.昆蟲分類學[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2006:43-372.
[13] Collin C,Hauser F,Hansen K K,et al.Identification of the drosophila and tribolium receptors for the recently discovered insect RYamide neuropeptides[J].Biochem Biophys Res Commun,2011,412(4):578-583.
[14] Cheng Y,Luo L,Jiang X,et al.Expression of pheromone biosynthesis activating neuropeptide and its receptor(PBANR)mRNA in adult femaleSpodopteraexigua(Lepidoptera:Noctuidae)[J].Arch Insect Biochem Physiol,2010,75(1):13-27.
[15] 于 淼.家蠶PTTH基因轉錄調控及相關神經(jīng)肽的發(fā)育表達[D].合肥:合肥工業(yè)大學,2010.