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      黃顙魚三倍體人工誘導(dǎo)方法的比較研究

      2012-09-04 08:22:34李永仁董少杰陳麗梅
      關(guān)鍵詞:化率靜水壓三倍體

      李永仁 董少杰 陳麗梅 楊 廣

      黃顙魚三倍體人工誘導(dǎo)方法的比較研究

      李永仁 董少杰 陳麗梅 楊 廣

      (天津農(nóng)學(xué)院a.水產(chǎn)科學(xué)系,b.天津市水產(chǎn)生態(tài)及養(yǎng)殖重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津300384)

      應(yīng)用熱休克、冷休克、6-DMAP和CB處理黃顙魚受精卵,探討誘導(dǎo)三倍體的適宜方法.4種方法均能誘導(dǎo)黃顙魚受精卵形成三倍體胚胎.受精卵經(jīng)熱休克處理(受精后第8min,40℃處理2min),誘導(dǎo)率為93.3%,孵化率為78.6%;冷休克法(受精后第3min,4℃處理15min)誘導(dǎo)率為63.3%,孵化率為82.3%;受精卵經(jīng)6-DMAP和CB處理得到的誘導(dǎo)率較低,分別為26.7%和10.0%.綜合考慮,熱休克法及冷休克法為誘導(dǎo)黃顙魚三倍體的適宜方法.

      黃顙魚;三倍體;誘導(dǎo)

      黃顙魚(Pelteobagrus fulvidraco)俗稱黃臘丁、黃鼓魚等,屬鯰形目、鲿科、黃顙魚屬[1],是目前國(guó)內(nèi)重要淡水養(yǎng)殖魚類,具有較好的市場(chǎng)前景[2].但是,由于該魚生長(zhǎng)速度慢、個(gè)體規(guī)格偏小,影響了該品種養(yǎng)殖的經(jīng)濟(jì)效益.人工誘導(dǎo)的三倍體魚具有不育、個(gè)體大、生長(zhǎng)快、壽命長(zhǎng)、肉質(zhì)好、成活率高等優(yōu)良品性[3],因此,有望利用三倍體誘導(dǎo)技術(shù)培育出優(yōu)質(zhì)黃顙魚苗種.

      國(guó)內(nèi)外通過多種方式對(duì)不同魚類開展了三倍體誘導(dǎo)實(shí)驗(yàn):楊彩卿等[4]應(yīng)用6-DMAP誘導(dǎo)三倍體黃顙魚;宋立民等[5]應(yīng)用冷、熱休克法誘導(dǎo)三倍體黃顙魚;尤鋒[6]利用冷休克法誘導(dǎo)黑鯛三倍體;林琪、桂建芳等[7-8]應(yīng)用靜水壓休克法分別對(duì)大黃魚和水晶彩鯽開展三倍體誘導(dǎo);Ojima、Peter等[9-10]應(yīng)用溫度休克法獲得了鯉魚和美洲紅點(diǎn)鮭三倍體.

      本文應(yīng)用冷休克、熱休克、6-DMAP以及CB等不同處理方式,誘導(dǎo)黃顙魚三倍體,以期選擇實(shí)用、高效的三倍體誘導(dǎo)方法.

      1 材料與方法

      1.1 材料

      黃顙魚親魚取自天津市漳河水產(chǎn)養(yǎng)殖有限公司養(yǎng)殖池,2齡,雌雄各30尾,雌魚體重98±18g,雄魚體重158±28g,性腺發(fā)育良好.

      誘導(dǎo)試劑:6-二甲基氨基嘌呤(6-DMAP)、細(xì)胞松弛素B(CB),均為美國(guó)Sigma公司產(chǎn)品.

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

      親魚注射絨毛膜促性腺激素(HCG)+馬來酸地歐酮(DOM),20h后擠壓取卵,解剖取精,并進(jìn)行人工授精.受精卵均勻散布于60目網(wǎng)片上,每個(gè)網(wǎng)片作為一組進(jìn)行處理.

      受精卵經(jīng)過溫度休克及藥物處理過程誘導(dǎo)三倍體,其中熱休克法設(shè)3個(gè)溫度梯度,3個(gè)起始時(shí)間梯度和3個(gè)持續(xù)時(shí)間梯度.每組設(shè)平行,具體操作見表1.

      1.2.2 倍性鑒定

      受精150d后,幼魚體長(zhǎng)達(dá)7~10cm,采用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)倍性.具體方法為:每組取幼魚30尾,尾柄取血,多聚甲醛固定,自然沉降;吸除上清,懸浮于PBS;用質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%triton X-100透化處理20min,10mg/L PI染色30min;離心棄上清,血細(xì)胞懸浮于PBS,細(xì)胞終濃度106~107個(gè)/mL.以流式細(xì)胞儀(美國(guó)Betecton Dickinson公司FACS tar Puls)于波長(zhǎng)488nm下檢測(cè)細(xì)胞DNA相對(duì)含量,處理組樣品若為對(duì)照組樣品DNA含量的

      1.5倍,即可判定為三倍體.

      1.3 數(shù)據(jù)處理

      不同處理組受精卵分別培育,統(tǒng)計(jì)受精率、孵化率、畸形率以及三倍體誘導(dǎo)率等數(shù)據(jù).

      受精率為原腸期存活胚胎數(shù)與總卵數(shù)之比;孵化第2天統(tǒng)計(jì)畸形率,畸形仔魚與孵出仔魚總數(shù)之比為畸形率;誘導(dǎo)率為三倍體仔魚數(shù)與正常仔魚數(shù)之比.

      2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      2.1 三倍體誘導(dǎo)效果

      流式細(xì)胞術(shù)測(cè)定黃顙幼魚二倍體和三倍體各30尾,測(cè)定結(jié)果表明:二倍體DNA相對(duì)含量為196~198、均值為196.57;三倍體DNA相對(duì)含量為278~293、均值為283.60,流式細(xì)胞術(shù)測(cè)定幼魚倍性的直方圖結(jié)果如圖1,橫坐標(biāo)代表單細(xì)胞內(nèi)DNA的相對(duì)含量.

      對(duì)各實(shí)驗(yàn)組分別統(tǒng)計(jì)受精率、孵化率、畸形率以及三倍體誘導(dǎo)率,結(jié)果如表1.

      表1 各實(shí)驗(yàn)組胚胎發(fā)育及三倍體誘導(dǎo)率Tab.1 Embryo development and triploid inductivity in test groups

      2.2 誘導(dǎo)方法的選擇

      如表1所示,在熱休克各組中,42℃處理組胚胎沒有孵出仔魚;38℃處理組雖然孵化率較高,但倍化率低;6min處理組倍化率較低,10min處理組孵化率低,且新生仔魚畸形率較高;在處理持續(xù)時(shí)間方面,2min組優(yōu)于3min組.因此,應(yīng)用熱休克法誘導(dǎo)黃顙魚三倍體的適宜條件為受精8min后,40℃溫水中處理2min,倍化率達(dá)到93.3%,是黃顙魚三倍體誘導(dǎo)的最佳方法.

      冷休克組倍化率低于熱休克組,為63.3%,但孵化率較高,達(dá)82.3%,較適于黃顙魚三倍體誘導(dǎo).誘導(dǎo)劑對(duì)比發(fā)現(xiàn),6-DMAP處理組與CB處理組不但誘導(dǎo)率低、孵化率低,而且畸形率高,加之藥品價(jià)格昂貴,不適于開展大規(guī)模誘導(dǎo).

      圖1 二倍體及三倍體黃顙魚DNA的相對(duì)含量Fig.1 DNA relative content of diploid and triploid Pelteobagrus fulvidraco

      3 討論

      3.1 黃顙魚三倍體誘導(dǎo)的適宜方法

      人工誘導(dǎo)魚類多倍體的常用的方法是溫度休克和靜水壓休克,由于靜水壓休克設(shè)備要求高,目前的報(bào)道以溫度休克為多.熱休克方法首次被用來處理三刺魚卵,獲得了三倍體成魚[11];隨后,在鱘魚、虹鱒和羅非魚方面也獲得了三倍體[12-14].冷休克方法:采用受精3min的三棘刺魚卵,0℃休克1.5~3.0h,獲得了三倍體幼魚[11];對(duì)受精10min后的鯉魚卵采用0℃休克10min,獲得了三倍體幼魚及成魚[9];以4~5℃水在受精后5min處理黑鯛受精卵10~15min,從而獲得三倍體[6].本實(shí)驗(yàn)表明,熱休克及冷休克處理黃顙魚受精卵均能在胚胎發(fā)育基本正常的前提下獲得較高的三倍體誘導(dǎo)率.條件適當(dāng)?shù)臒嵝菘颂幚硎裹S顙胚胎倍化率達(dá)到了90%以上,超過其他任何誘導(dǎo)方式,為黃顙魚三倍體誘導(dǎo)的適宜方法.冷熱休克均能對(duì)黃顙受精卵第二極體(PB2)的釋放產(chǎn)生抑制,這可能與黃顙魚屬溫水性魚類有關(guān)[3].

      6-DMAP為嘌呤毒素類似物,能夠抑制蛋白質(zhì)磷酸化,通過作用于特定的酶,破壞微管聚合中心,阻止紡錘體形成,從而抑制極體釋放[15].6-DMAP作為誘導(dǎo)劑廣泛應(yīng)用于貝類和魚類多倍體的誘導(dǎo)[3,15].楊彩卿等[4]應(yīng)用6-DMAP誘導(dǎo)黃顙魚三倍體,得到與本實(shí)驗(yàn)相似的結(jié)果,但倍化率較低.CB是誘導(dǎo)水產(chǎn)動(dòng)物多倍體的一種常用藥物,它的作用機(jī)理是通過阻遏新微絲的形成,促進(jìn)舊微絲解聚,使細(xì)胞分裂末期的收縮環(huán)難以形成,進(jìn)而造成極體不能釋放,染色體加倍[16].CB毒性較大,且有致癌性,水溶性較差,價(jià)格昂貴,不適合大規(guī)模生產(chǎn)[3].本實(shí)驗(yàn)表明,以CB誘導(dǎo)黃顙魚三倍體,畸形率高、孵化率低、倍化率低.

      3.2 黃顙魚三倍體誘導(dǎo)的特點(diǎn)

      常重杰等[17]應(yīng)用熱休克法對(duì)黃鱔的三倍體誘導(dǎo)率超過90%,靜水壓法對(duì)鳙魚三倍體的誘導(dǎo)率為80%~100%[18],而該實(shí)驗(yàn)表明,熱休克誘導(dǎo)黃顙魚三倍體最高為93.3%,與其他三倍體誘導(dǎo)的魚類相比,黃顙魚的誘導(dǎo)率較高.

      必須指出,在開展冷、熱休克法黃顙魚三倍體誘導(dǎo)得到高誘導(dǎo)率的同時(shí),也容易造成較高的胚胎畸形率:40℃熱休克造成的畸形率為32.5%~68.5%,冷休克法的畸形率為53.0%,CB處理組畸形率高達(dá)82.3%.因此,選擇適宜的誘導(dǎo)方式不應(yīng)僅考慮誘導(dǎo)率1個(gè)因素.

      對(duì)黃顙魚開展三倍體誘導(dǎo)時(shí),溫度休克的誘導(dǎo)效果明顯優(yōu)于化學(xué)藥物.6-DMAP與CB大量應(yīng)用于貝類多倍體誘導(dǎo)[19],貝類三倍體誘導(dǎo)率遠(yuǎn)高于其對(duì)黃顙魚的誘導(dǎo)率.推測(cè)原因可能為:硬骨魚類受精卵體積遠(yuǎn)大于貝類受精卵,且具有殼膜等附屬保護(hù)性構(gòu)造,導(dǎo)致在藥物處理時(shí),受精卵內(nèi)藥物濃度較低,無法有效抑制PB2的釋放.

      受精卵發(fā)育同步性是提高三倍體誘導(dǎo)效率的關(guān)鍵[19],因此魚卵的質(zhì)量與受精同步性尤為重要.實(shí)驗(yàn)過程中,6月上旬魚卵質(zhì)量較好,以后次之;注射激素后19~20h催產(chǎn)較好,時(shí)間過長(zhǎng)導(dǎo)致卵子過熟;精子在生理鹽水中不能久存,用剛解剖出來的精子進(jìn)行授精最好.

      借助人工干預(yù)受精過程的方法,誘導(dǎo)黃顙魚三倍體,受人工授精和誘導(dǎo)技術(shù)的限制,容易造成較高的畸形率和較低的孵化率,且誘導(dǎo)率難以達(dá)到100%.多倍體育種實(shí)踐表明,四倍體和二倍體雜交可生產(chǎn)100%三倍體[20],若人工誘導(dǎo)四倍體成功,將可探討通過四倍體和二倍體雜交產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)三倍體的可能性.

      [1] 尹洪濱,孫中武,姚道霞,等.黃顙魚受精早期精子卵掃描電鏡觀察[J].動(dòng)物學(xué)雜志,2007,42(4):95-100.

      [2] 蘇雪紅.黃顙魚人工繁殖及批量育苗技術(shù)研究[J].中國(guó)水產(chǎn),2005(9):28-30.

      [3] 謝湘筠.三倍體技術(shù)在魚類育種中的應(yīng)用[J].寧德師專學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2006,18(4):361-364.

      [4] 楊彩卿,韓爍.黃顙魚三倍體的誘導(dǎo)[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,36(19):8118-8119.

      [5] 宋立民,袁立來,劉肖蓮,等.2種鑒定黃顙魚三倍體個(gè)體方法的比較[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2009,28(2):207-209.

      [6] 尤鋒.黑鯛三倍體的人工誘導(dǎo)研究[J].海洋與湖沼,1993,24(3):248-255.

      [7] 林琪,吳建紹,曾志南.靜水壓休克誘導(dǎo)大黃魚三倍體[J].海洋科學(xué),2001,25(9):6-9.

      [8] 桂建芳,肖武漢,梁紹昌,等.靜水壓休克誘導(dǎo)水晶彩鯽三倍體和四倍體的細(xì)胞學(xué)機(jī)理初探[J].水生生物學(xué)報(bào),1995,19(1):49-55.

      [9] OKIMA Y,MAKINO S.Triploidy induced by cold shock in fertilized eggs of the carp[M].Proc Japan Acadser B,1978(54):359-362.

      [10] GALBREATH P F,SAMPLES B L.Optimization of thermal shock protocols for induction of triploidy in brooktrout[J].N Am J Aquacult,2000,62(4):249-259.

      [11] SWARUP H.Production of heteroploidy in the three-spined stickleback Gosterosteus aculeatus(L)[J].Nature,1956, 178:1124-1125.

      [12] VASETSKII S G.Changes in the ploidy of sturgeon larvae induced by heat treated of eggs of different stages of development[J].Dokl Akad Nauk,1967,172:1234-1237.

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      [14] DON J,AVTALION R R.The induction of triploidy in Oreochromis aureus by heat shock.[J].Theor Appl Genet,1986,72:186-192.

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      [18] ALDRIDGE F J,MARSTON R Q,SHIREMAN J V.Induced triploids and tetraploids in Bighead carp,Hypophthalmichthys nobilis,verified by multi-Embryo cytofluorometric analysis[J].Aquaculture,1990,87(2):121-131.

      [19] 李永仁,闕華勇,張國(guó)范.抑制櫛孔扇貝第一極體對(duì)受精卵染色體行為及胚胎倍性組成的影響[J].海洋科學(xué),2005,29(8):66-70.

      [20] 闕華勇,張國(guó)范,劉曉,等.雄性四倍體與雌性二倍體雜交培育全三倍體長(zhǎng)牡蠣(Crassostrea gigas)的研究[J].海洋與湖沼,2003,34(6):656-662.

      (責(zé)任編校 紀(jì)翠榮)

      Comparative study on triploid inducement methods in Pelteobagrus fulvidraco

      LI Yong-ren,DONG Shao-jie,CHEN Li-mei,YANG Guang
      (a.Department of Fishery Sciences,b.Tianjin Key Laboratory of Aqua-ecology and Aquaculture,Tianjin Agricultural College,Tianjin 300384,China)

      Heat shock,cold shook,6-DMAP and CB were used for triploid inducement in Pelteobagrus fulvidraco to ascertain a feasible method.The result indicated that all the four methods can induce triploid embryo from zygotes.The induction rate and hatching rate were 93.3%and 78.6%respectively from the zygotes treated by heat shock for 2minutes with 40℃water after fertilization 8minutes,and cold shock for 15minutes with 4℃water after fertilization 3minutes cause 63.3%of induction rate and 82.3%of hatching rate.Lower induction rate were 26.7%and 10.0%from the zygotes treated by 6-DMAP and CB respectively.In balance,the feasible methods for triploid inducement in Pelteobagrus fulvidraco were heat shock and cold shock.

      Pelteobagrus fulvidraco;triploids;inducement

      book=2012,ebook=77

      Q953.3

      A

      1671-1114(2012)02-084-04

      2011-08-31

      天津市基礎(chǔ)研究與前沿計(jì)劃資助項(xiàng)目(08JCYBJC27800);天津市教委基金資助項(xiàng)目(2008ZD21).

      李永仁(1978-),男,講師,從事水產(chǎn)動(dòng)物遺傳育種方面的研究.

      楊 廣(1965-),男,教授.主要從事水產(chǎn)養(yǎng)殖與病害防治方面的研究.

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