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      HDAC家族基因在缺血性腦損傷后大鼠腦組織中的表達(dá)變化

      2012-11-14 05:45:56殷俊輝郭尚春何海燕鄧志鋒
      關(guān)鍵詞:皮質(zhì)腦缺血家族

      牛 鑫,汪 泱,殷俊輝,胡 斌,郭尚春,何海燕,鄧志鋒

      (上海交通大學(xué)附屬第六人民醫(yī)院,1、四肢顯微外科研究所;2、神經(jīng)外科,上海 200233)

      近年來(lái)許多研究發(fā)現(xiàn),腦缺血后在缺血損傷區(qū)有血管新生,一定程度上能促進(jìn)缺血區(qū)神經(jīng)功能修復(fù),但其相關(guān)調(diào)控機(jī)制仍需要進(jìn)一步研究[1,2]。越來(lái)越多的證據(jù)表明,表觀遺傳學(xué)相關(guān)的信號(hào)通路在修復(fù)過(guò)程中可能起到重要作用。在表觀遺傳學(xué)調(diào)控的重要過(guò)程——組蛋白的修飾過(guò)程中,組蛋白乙?;窰DAC(histone deacetylase)家族是重要的參與者[3]。目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)18個(gè)HDAC家族成員,通過(guò)過(guò)乙?;蛞种埔阴;瘉?lái)上調(diào)或者下調(diào)基因的表達(dá),參與多種生命過(guò)程。其中HDAC1能夠促進(jìn)血管生成[4,5],HDAC4能夠抑制血管生成[6]。雖然HDAC1-11在大鼠腦中都有表達(dá)[7],但是,它們是否在腦缺血的過(guò)程中也發(fā)揮調(diào)控作用,是否參與腦缺血后血管新生調(diào)節(jié)機(jī)制,目前還沒(méi)有報(bào)道。我們通過(guò)構(gòu)建大鼠急性腦缺血模型,檢測(cè)腦缺血后24h缺血皮質(zhì)區(qū)HDAC家族成員HDAC1、HDAC2、 HDAC3、 HDAC4、 HDAC6、 HDAC10、HDAC11的表達(dá)水平,以明確其在腦缺血后的變化,初步探討其在腦缺血后血管新生中的可能調(diào)控作用。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 清潔級(jí)成年 (7~9周)雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,重量250~300g,由南昌大學(xué)醫(yī)學(xué)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供。所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)都按照動(dòng)物實(shí)驗(yàn)倫理委員會(huì)的規(guī)定進(jìn)行。

      1.1.2 主要儀器 實(shí)時(shí)定量PCR儀7500(美國(guó)ABI)

      1.3 主要試劑 QIAGEN Allprep RNA/DNA/Protein mini Kit試劑盒、Promega A3500 cDNA第一鏈合成試劑盒、TOYOBO Sybr Green 2×PCR Master熒光定量檢測(cè)試劑盒。

      1.2 方法

      1.2.1 動(dòng)物模型建立 參考改良的Longa法制作大腦中動(dòng)脈阻塞缺血損傷模型:麻醉大鼠后,暴露右側(cè)頸總動(dòng)脈,頸內(nèi)動(dòng)脈和頸外動(dòng)脈,于頸外動(dòng)脈近心端管壁上做一“V”形切口,從切口插入一特制4.0線栓至頸內(nèi)動(dòng)脈后,繼續(xù)緩慢滑入至大腦中動(dòng)脈起始部,阻塞大腦中動(dòng)脈,插入長(zhǎng)度約距頸總動(dòng)脈分叉處1.8cm;2h后取出線栓,縫合傷口放回籠內(nèi)。假手術(shù)組僅暴露動(dòng)脈,不做線栓阻塞缺血處理。MCAO大鼠麻醉清醒后參照Z(yǔ)ea Longa法行神經(jīng)功能評(píng)分,1~3分者納入實(shí)驗(yàn)研究對(duì)象。將大鼠隨機(jī)分缺血后1d組與假手術(shù)組。缺血處理后24h,用500ml無(wú)菌生理鹽水心臟灌注后游離出完整腦組織,-20℃下放置30min后,用RNase free刀片切取缺血皮質(zhì)區(qū)約100mg,存于RNase free EP管中,于-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。同時(shí)留取假手術(shù)組皮質(zhì)區(qū)為實(shí)驗(yàn)對(duì)照。

      1.2.2 RNA的提取 按QIAGEN Allprep RNA/DNA/Protein mini Kit提取分離試劑盒說(shuō)明書(shū)操作

      1.2.3 總RNA純度和濃度的檢測(cè) 使用超微量紫外分光光度計(jì)測(cè)定RNA濃度和純度,記錄OD260值。RNA純度檢測(cè):RNA溶液的OD260/OD280的比值(比值范圍1.8~2.1為純度合格)。樣品RNA濃度計(jì)算公式為:OD260×40×稀釋倍數(shù)(ng/μl)。

      1.2.4 cDNA的合成按Promega A3500 cDNA第一鏈合成試劑盒說(shuō)明書(shū)操作。

      1.2.5 實(shí)時(shí)定量PCR按TOYOBO Sybr Green 2×PCR Master熒光定量檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書(shū)操作。以GAPDH 為內(nèi)參。 反應(yīng)條件:95℃,1min;95℃ 15s,60℃ 15s,72℃ 40s。40個(gè)循環(huán)。引物序列及 PCR 產(chǎn)物片段大小見(jiàn)表1。

      1.2.6 數(shù)據(jù)分析 數(shù)據(jù)采用2-△△CT法進(jìn)行分析。t-檢驗(yàn)P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      2 結(jié)果

      表1 熒光定量PCR引物列表

      圖1 腦缺血后缺血皮質(zhì)區(qū)HDAC的表達(dá)變化

      HDAC家族各成員在腦缺血后表達(dá)水平均有所改變:如圖1所示,血皮質(zhì)區(qū)的HDAC1,HDAC10表達(dá)均高于假手術(shù)組。其中HDAC1的表達(dá)量顯著高于假手術(shù)組。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,腦缺血后體內(nèi)缺血缺氧環(huán)境可刺激HDAC1的表達(dá)。

      3 討論

      當(dāng)前,積極促進(jìn)缺血區(qū)的血運(yùn)重建已經(jīng)成為治療腦缺血性疾病的共識(shí)。然而腦缺血后血管新生機(jī)制十分復(fù)雜,積極深入探尋其新的調(diào)控途徑仍是眾多學(xué)者的研究重點(diǎn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,與假手術(shù)組比較,腦缺血后1d即可檢測(cè)到HDAC家族成員表達(dá)開(kāi)始改變;證實(shí)了腦缺血后,體內(nèi)缺血缺氧環(huán)境可迅速影響其的表達(dá)。根據(jù)Aurora等人的報(bào)道,HDAC1具有顯著的促進(jìn)血管生成的功能。在我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果中,缺血組大鼠大腦皮層的HDAC1表達(dá)水平顯著上調(diào),提示缺血手術(shù)后皮層代償性增生血管生長(zhǎng)促進(jìn)因子,促進(jìn)血管修復(fù),從而修復(fù)缺血帶來(lái)的損傷。這同時(shí)表明,HDAC1對(duì)于缺血損傷的應(yīng)激非常迅速。HDAC是廣泛表達(dá)于多種組織的表達(dá)調(diào)控因子。其它已經(jīng)被證實(shí)的可以在發(fā)育過(guò)程中或者癌癥發(fā)生過(guò)程中抑制血管生成的HDAC家族成員,比如,HDAC4,HDAC5,HDAC6[6,8-10],在本次實(shí)驗(yàn)中未顯示出與對(duì)照組的顯著性差異,或者,沒(méi)有被檢測(cè)到。這提示HDAC家族成員在不同的組織、生命過(guò)程中功能不同?;蛘卟煌易宄蓡T的應(yīng)激速度不同。腦缺血后血管新生過(guò)程早期很可能只包含HDAC1家族成員參與發(fā)揮作用。本實(shí)驗(yàn)初步明確了腦缺血后缺血皮質(zhì)區(qū)HDAC家族基因的表達(dá)變化,為今后深入探討HDAC家族基因?qū)δX缺血后血管新生的調(diào)控作用提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

      [1]高法梁,婁遠(yuǎn)蕾,阮瓊芳,等.缺血性腦損傷大鼠MicroRNA 210的動(dòng)態(tài)變化[J].實(shí)驗(yàn)與檢驗(yàn)醫(yī)學(xué),2010,28(3):230-234.

      [2]呂世剛,祝新根,張愛(ài)軍,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植對(duì)腦缺血區(qū)微血管增生及Notch1表達(dá)的影響[J].實(shí)驗(yàn)與檢驗(yàn)醫(yī)學(xué),2009,27(1):1-4.

      [3]de Ruijter AJ,van Gennip AH,Caron HN,et al.Histone deacetylases (HDACs):characterization of the classical HDAC family[J].Biochem J,2003,370(Pt 3):737-749.

      [4]Jeon HW,Lee YM.Inhibition of histone deacetylase attenuates hypoxia-induced migration and invasion of cancer cells via the restoration of RECK expression[J].Mol Cancer Ther,2010,9(5):1361-1370.

      [5]Aurora AB,Biyashev D,Mirochnik YX et al.NF-kappaB balances vascular regression and angiogenesis via chromatin remodeling and NFAT displacement[J].Blood,2010,116(3):475-484.

      [6]Geng H,Harvey CT,Pittsenbarger J,et al.HDAC4 protein regulates HIF1alpha protein lysine acetylation and cancer cell response to hypoxia[J].JBiol Chem,2011,286(44):38095-38102.

      [7]Broide RS,Redwine JM,Aftahi N,et al.Distribution of histone deacetylases 1-11 in the rat brain[J].JMol Neurosci,2007,31(1):47-58.

      [8]Urbich C,Rossig L,Kaluza D,et al.HDAC5 is a repressor of angiogenesis and determines the angiogenic gene expression pattern of endothelial cells[J].Blood,2009,113(22):5669-5679.

      [9]Li D,Xie S,Ren Y,et al.Microtubule-associated deacetylase HDAC6 promotes angiogenesis by regulating cell migration in an EB1-dependent manner[J].Protein Cell,2011,2(2):150-160.

      [10]Chen S,Sang N.Histone deacetylase inhibitors:the epigenetic therapeutics that repress hypoxia-inducible factors[J].J Biomed Biotechnol,2011,2011:197946.

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