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      六味參苓顆粒的質量標準研究

      2012-11-28 09:00:12孫健姿劉麗宏
      中國藥房 2012年35期
      關鍵詞:西洋參正丁醇麥冬

      雷 寧,王 玲,孫健姿,吳 誠,劉麗宏

      (解放軍第二炮兵總醫(yī)院藥學部,北京100088)

      六味參苓顆粒的質量標準研究

      雷 寧*,王 玲,孫健姿,吳 誠,劉麗宏#

      (解放軍第二炮兵總醫(yī)院藥學部,北京100088)

      目的:建立六味參苓顆粒的質量控制方法。方法:采用薄層色譜(TLC)法對處方中西洋參、黃芪、麥冬、茯苓、枳殼進行定性鑒別;采用高效液相色譜法測定西洋參中人參皂苷Rb1的含量。結果:TLC專屬性強,陰性對照無干擾;人參皂苷Rb1的濃度在26.4~792.0μg·mL-1范圍內(nèi)與峰面積積分值呈良好的線性關系(r=0.999 7),方法平均回收率為98.35%,RSD=2.09%(n=6)。結論:所建方法簡便、可行,可用于六味參苓顆粒的質量控制。

      六味參苓顆粒;薄層色譜法;高效液相色譜法;人參皂苷Rb1

      六味參苓顆粒是以臨床經(jīng)驗方為基礎,經(jīng)過現(xiàn)代制備工藝制成的中藥復方制劑,由西洋參、黃芪、麥冬、茯苓、五味子、枳殼6味中藥組成。臨床用于治療勞力過度、損傷心脾、耗傷氣陰所致的脫力勞傷,癥見倦怠乏力、肢體酸痛、足跟發(fā)軟、手腳顫抖、頭暈、困倦、煩躁不安、胸悶心悸、口干多汗,以及運動性疲勞見上述證候者。為有效控制其質量,確保臨床用藥安全、有效,筆者對處方中西洋參、黃芪、麥冬、茯苓、枳殼5味藥材用薄層色譜(TLC)法進行定性鑒別,并用高效液相色譜(HPLC)法對西洋參中的藥效成分人參皂苷Rb1進行了定量分析。以此建立的方法簡便可行、重復性好,可用于六味參苓顆粒的質量控制。

      1 儀器與試藥

      LC-20A HPLC儀,包括DGU-20A3脫氣機、LC-20AT溶劑輸送泵、SIL-20A自動進樣器、CTO-20A柱溫箱、SPD-20A紫外-可見檢測器、LCSolution色譜工作站(日本島津公司);RE-52AA旋轉蒸發(fā)器、SHZ-Ⅲ循環(huán)水真空泵(上海亞榮生化儀器廠);KQ-500V超聲波清洗器(昆山超聲儀器有限公司,功率:500 W,頻率:40 kHz);HWS28電熱恒溫水浴鍋(上海一恒科學儀器有限公司)。

      六味參苓顆粒(批號:20090310、20090317、20090324,規(guī)格:4.5 g/袋)及相應陰性樣品均由我院藥學部制劑室自制;人參皂苷Rb1、人參皂苷Re、人參皂苷Rg1、黃芪甲苷對照品和麥冬、茯苓、枳殼對照藥材(中國食品藥品檢定研究院,批號分別為 110704-200318、0754-9913、0703-200117、110781-200613、120955-200406、121117-100605、0981-200202);甲醇、乙腈(色譜純,美國Fisher公司);蒸餾水為我院自制雙重蒸餾水,其他試劑均為分析純。

      2 定性鑒別

      2.1 西洋參的TLC鑒別

      取本品10 g,研細,加甲醇30 mL,超聲處理30 min,放冷,濾過,收集濾液,蒸干,殘渣加水25 mL使溶解,用乙醚振搖提取2次,每次10 mL,棄去乙醚液,水層用水飽和的正丁醇振搖提取4次,每次15 mL。合并正丁醇提取液,用水洗滌2次,每次20 mL,分取正丁醇液,蒸干,殘渣加甲醇1 mL使溶解,作為供試品溶液;取缺西洋參的陰性樣品適量,同法制成陰性對照溶液;另取人參皂苷Rb1、Re、Rg1對照品適量,加甲醇制成每1 mL各含0.5 mg上述對照品的混合溶液,作為對照品溶液。照TL法[1]試驗,吸取上述3種溶液各μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以三氯甲烷-甲醇-水(13∶7∶2 V/V/V)在10℃放置分層的下層溶液為展開劑,展開,取出,晾干,噴以10%硫酸乙醇溶液,于105℃加熱至斑點顯色清晰,日光下檢視結果,供試品色譜中,在與對照品色譜相應的位置上,顯相同的紫紅色斑點;陰性對照無干擾。西洋參的TLC見圖1。C5, 。

      圖1 西洋參的TLC1.人參皂苷 Rb1、Re、Rg1混合對照品;2、3.供試品;4.陰性對照Fig 1 TLC of Panax quinguefolium1.mixed control of rinsenoside Rb1,Re,Rg1;2,3.test samples;4.negativecontrol

      2.2 黃芪的TLC鑒別

      取本品8 g,研細,加水飽和正丁醇80 mL,加熱回流1 h,濾過,濾液用氨試液洗滌2次,每次40 mL,合并正丁醇液,再用水洗滌2次,每次40 mL,棄去水液,將正丁醇液蒸干,殘渣加甲醇1 mL使溶解,作為供試品溶液;取缺黃芪的陰性樣品,同法制成陰性對照溶液;另取黃芪甲苷對照品,加甲醇制成每1 mL含0.5 mg的溶液,作為對照品溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述3種溶液各5μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以三氯甲烷-甲醇-水(13∶7∶2,V/V/V)在10℃放置分層的下層溶液為展開劑,展開,取出,晾干,噴以10%硫酸乙醇溶液,于105℃加熱至斑點顯色清晰,日光下檢視。結果,供試品色譜中,在與對照品色譜相應的位置上,顯相同顏色的斑點;陰性對照無干擾。黃芪的TLC見圖2。

      圖2 黃芪的TLC1、2.供試品;3.黃芪甲苷對照品;4、5.陰性對照Fig 2 TLC of Astragali Radix1,2.test samples;3.astragaloside Ⅳ control;4,5.negative controls

      2.3 麥冬的TLC鑒別

      取本品10 g,研細,加水飽和的正丁醇30 mL,超聲提取30 min,濾過,濾液蒸干,殘渣加水10 mL使溶解,加鹽酸2 mL,加熱回流1 h,放冷,用三氯甲烷振搖提取3次,每次20 mL,合并三氯甲烷層,水浴蒸干溶劑,殘渣加1 mL三氯甲烷使溶解,作為供試品溶液;取缺麥冬的陰性樣品,同法制成陰性對照溶液;另取麥冬對照藥材1 g,同法制成對照藥材溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述3種溶液各5μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以正己烷-乙酸乙酯(2∶1,V/V)為展開劑,展開,取出,晾干,噴以10%硫酸乙醇溶液,于105℃加熱至斑點顯色清晰,日光下檢視。結果,供試品色譜中,在與對照藥材色譜相應的位置上,顯相同顏色的斑點;陰性對照無干擾。麥冬的TLC見圖3。

      圖3 麥冬的TLC1.缺麥冬陰性對照;2、3.供試品;4.麥冬對照藥材Fig 3 TLC of Ophiopogon japonicus1.negative control without Radix Ophiopogonis;2,3.test sample;4.Ophiopogonis Radix reference substance

      2.4 茯苓的TLC鑒別

      取本品15 g,研細,加石油醚150 mL,超聲處理30 min,濾過,藥渣備用,濾液棄去,藥渣揮干溶劑,加乙醚150 mL,超聲處理10 min,濾過,藥渣備用,濾液蒸干,殘渣加乙酸乙酯2 mL溶解,作為供試品溶液;取缺茯苓的陰性樣品適量,同法制成陰性對照溶液;另取茯苓對照藥材1.0 g,加甲醇20 mL,超聲處理15 min,濾過,濾液回收溶劑至干,殘渣加甲醇約1 mL溶解,作為對照藥材溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述3種溶液各5μL,分別點于同一硅膠G板上,以石油醚-丙酮-乙酸乙酯(84∶15∶1,V/V/V)飽和15 min后的溶液為展開劑,展開,取出,晾干,置紫外燈(365 nm)下檢視。結果,供試品色譜中,在與對照藥材色譜相應的位置上,顯相同顏色的熒光斑點;陰性對照無干擾。茯苓的TLC見圖4。

      圖4 茯苓的TLC1.茯苓對照藥材;2、3.供試品;4.陰性對照Fig 4 TLC of Poria cocos1.Poria reference substance;2,3.test samples;4.negative control

      2.5 枳殼的TLC鑒別

      取本品10 g,研細,加甲醇30 mL,超聲提取30 min,濾過,濾液蒸干,殘渣加甲醇1 mL使溶解,作為供試品溶液;取缺枳殼的陰性樣品,同法制成陰性對照溶液;另取枳殼對照藥材1 g,同法制成對照藥材溶液。照TLC法[1]試驗,吸取上述3種溶液各5μL,分別點于同一硅膠G薄層板上,以乙酸乙酯-甲醇-水(100∶17∶13,V/V/V)的溶液為展開劑,展開,取出,晾干,紫外光(365 nm)燈下檢視。結果,供試品色譜中,在與對照藥材色譜相應的位置上,顯相同顏色的熒光斑點;陰性對照無干擾。枳殼的TLC見圖5。

      3 人參皂苷Rb1的含量測定

      圖5 枳殼的TLC1.供試品;2.枳殼對照藥材;3.陰性對照Fig 5 TLC of Crtras aurantium1.test sample;2.Aurantii Fructus reference substance;3.negativecontrol

      3.1 色譜條件與系統(tǒng)適用性試驗

      色譜柱:Shimpack ODSC18(250 mm×4.6 mm,5μm);流動相:乙腈-水,梯度洗脫(0~20 min,25%~35%乙腈;20~30 min,35%~40%乙腈;30~35 min,40%乙腈);流速:1.0 mL·min-1;檢測波長:203 nm;柱溫:35℃;進樣量:10μL。在此色譜條件下,吸取供試品、對照品、陰性對照溶液適量,進樣測定。結果,供試品中人參皂苷Rb1與其他組分峰能達到基線分離;陰性對照無干擾。理論板數(shù)按人參皂苷Rb1峰算應不低于2 500。色譜見圖6。

      3.2 溶液的制備

      3.2.1 對照品溶液 精密稱取人參皂苷Rb1對照品適量,加甲醇制成每1 mL含5.28 mg的對照品貯備液。

      3.2.2 供試品溶液 將適量本品研細,取約10 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入甲醇50 mL,稱定重量,超聲處理30 min,放冷,再稱定重量,用甲醇補足減失的重量,搖勻,濾過,精密量取濾液10 mL,置蒸發(fā)皿中,蒸干,殘渣加水15 mL使溶解,用乙醚振搖提取2次,每次10 mL,棄去乙醚液,水層用水飽和的正丁醇振搖提取3次,每次10 mL。合并正丁醇提取液,用水洗滌2次,每次10 mL,分取正丁醇液,置蒸發(fā)皿中,蒸干,殘渣加50%甲醇適量使溶解,并轉移至25 mL量瓶中,加50%甲醇稀釋至刻度,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得。

      圖6 高效液相色譜圖A.對照品;B.供試品;C.陰性對照;1.人參皂苷Rb1Fig 6 HPLCchromatogramsA.substance control;B.test sample;C.negative control;1.rinsenoside Rb1

      3.2.3 陰性對照溶液 取缺西洋參的陰性樣品適量,按“3.2.2”項下方法制成陰性對照溶液。

      3.3 線性關系考察

      分別精密吸取人參皂苷Rb1對照品貯備液0.05、0.10、0.20、0.50、0.80、1.00、1.20、1.50 mL,置10 mL量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,配制成不同濃度的對照品溶液,依次注入液相色譜儀,按上述色譜條件測定。以峰面積積分值(Y)為縱坐標,人參皂苷Rb1檢測濃度(X)為橫坐標,進行線性回歸,得回歸方程為Y=2 486X+15 753(r=0.999 7,n=6)。結果表明,人參皂苷Rb1檢測濃度在26.4~792.0μg·mL-1范圍內(nèi)與峰面積積分值呈良好的線性關系。

      3.4 精密度試驗

      精密吸取濃度為0.528 mg·mL-1的人參皂苷Rb1對照品溶液10μL,注入液相色譜儀,在上述色譜條件下重復測定6次。結果,RSD=1.57%(n=6),表明儀器精密度良好。

      3.5 加樣回收率試驗

      稱取已知人參皂苷Rb1含量的同一批號供試品(批號:20090324,含量:5.01 mg·g-1)約2.5 g,平行6份,精密稱定,分別精密加入人參皂苷Rb1對照品溶液適量,按“3.2.2”項下方法處理,照上述色譜條件測定,計算加樣回收率,結果見表1。

      表1 加樣回收率試驗結果(n=6)Tab 1 Results of recovery tests(n=6)

      3.6 樣品含量測定

      分別取3批樣品適量,按“3.2.2”項下方法制備供試品溶液,用0.45μm微孔濾膜濾過,照上述色譜條件測定,以外標法計算人參皂苷Rb1的含量。結果,3批六味參苓顆粒(批號:20090310、20090317、20090324,規(guī)格:4.5 g/袋)中人參皂苷Rb1的含量分別為4.99、5.06、5.01 mg·g-1,平均含量為5.02 mg·g-1。

      4 討論

      4.1 流動相的選擇

      制劑處方中的君藥西洋參是名貴中藥材,人參皂苷為其主要活性成分之一,常被用作西洋參制劑的定量標準成分。本文在考察流動相時,曾根據(jù)文獻研究了甲醇-水[2]、乙腈-0.4%磷酸[3]等梯度洗脫的效果,結果均不能將人參皂苷Rb1的色譜峰與其他峰完全分離,且峰形不佳。最后選擇乙腈-水梯度洗脫體系,結果能使樣品中人參皂苷Rb1的色譜峰得到良好分離。

      4.2 流動相梯度的優(yōu)化

      含量測定的難點主要在于將西洋參中人參皂苷Rb1與制劑中其他皂苷類成分完全分離。筆者在參考2010年版《中國藥典》中西洋參含量測定方法以及文獻[4,5]方法的基礎上,對流動相的梯度進行了優(yōu)化,從而實現(xiàn)了人參皂苷Rb1與麥冬、黃芪等藥材中皂苷類成分的基線分離。

      4.3 供試品溶液的制備方法

      西洋參制劑組方有簡有繁,成分復雜多樣,六味參苓顆粒組方中西洋參、黃芪、麥冬藥材均含有皂苷和多糖類成分。在供試品溶液的制備過程中,筆者先后考察了甲醇超聲提取、甲醇回流提取再大孔樹脂吸附等方法。結果均不理想,最后采取先用乙醚脫脂,后用正丁醇萃取富集皂苷,再用水洗滌正丁醇層去除糖類雜質的方法,在TLC鑒別和含量測定中均能較好運用。

      [1] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典(一部)[S].2010年版.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:附錄34.

      [2] 黃海欣.ELSD-HPLC法測定生脈飲中人參皂苷Re、Rg1和Rb1的含量[J].中國藥師,2010,13(7):1 045.

      [3] 鄒文光,黃 晨.HPLC測定血塞通膠囊中四種皂苷含量的研究[J].中國現(xiàn)代藥物應用,2010,4(10):99.

      [4] 馮 旭,鄧家剛,李 松.復方黃根顆粒的質量標準研究[J].中國藥房,2011,22(15):1 402.

      [5] 楊 軍,馬 靜,李學林.不同廠家參脈注射液特征指紋圖譜的比較[J].中國藥房,2011,22(7):633.

      Study on Quality Standard of Liuwei Shenling Granules

      LEI Ning,WANG Ling,SUN Jian-zi,WU Cheng,LIU Li-hong
      (Dept.of Pharmacy,Second Artillery Forces General Hospital of PLA,Beijing 100088,China)

      OBJECTIVE:To establish the quality control of Liuwei shenling granules.METHODS:Panax quinquefolium,Astragali Radix,Ophiopogon japonicus,Poria cocos and Citrus aurantium were identified by TLC.The content of ginsenoside Rb1in Panacis Quinquefolii Radix was determined by HPLC.RESULTS:The TLC identification method exhibited good specificities without interference form negative samples.The linear range of ginsenoside Rb1 was 26.4~792.0μg·mL-1(r=0.999 7)and the average recovery was 98.35%(RSD=2.09%,n=6).CONCLUSION:The established standard is simple,feasible and suitable for the quality control of Liuwei shenling granules.

      Liuwei shenling granules;TLC;HPLC;Ginsenoside Rb1

      R284.2;R283.627

      A

      1001-0408(2012)35-3328-03

      DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2012.35.23

      2011-09-07

      2011-11-20)

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