• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      EB病毒相關(guān)胃癌的研究進(jìn)展

      2013-01-26 20:54:29宋飛雪裴霞霞
      中國(guó)全科醫(yī)學(xué) 2013年33期
      關(guān)鍵詞:甲基化淋巴細(xì)胞編碼

      宋飛雪,裴霞霞

      EB病毒(Epstein-Barr virus,EBV)是一種常見的具有致瘤性的人類皰疹病毒,全世界超過90%的成人都感染過EBV。EBV基因組大致包括末端重復(fù)序列(LTR)、4個(gè)內(nèi)部重復(fù)序列以及被內(nèi)部重復(fù)序列隔開的若干個(gè)單一序列區(qū)。只有少數(shù)幾個(gè)基因能在被EBV感染后形成的永生化淋巴母細(xì)胞系中表達(dá),這幾個(gè)基因可以表達(dá)6種核抗原(EBNA1~EBNA6)、3種潛伏膜蛋白(LMP1、LMP2、LMP3)和2種小核糖核酸(EBER1、EBER2)[1]。

      EBV具有較強(qiáng)的細(xì)胞轉(zhuǎn)化作用,與很多腫瘤的發(fā)生、發(fā)展有密切的聯(lián)系,如Burkitt淋巴瘤、霍奇金淋巴瘤、鼻咽癌等。1990年,Burke首次報(bào)道用聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)技術(shù)在未分化淋巴上皮瘤樣胃癌組織中檢出EBV DNA[2],之后越來越多的研究證明EBV與胃癌相關(guān)。EBV相關(guān)胃癌(EBV associated gastric carcinoma,EBVaGC)占胃癌的10%左右[3],各地區(qū)此比例不同。

      1 EBVaGC的流行病學(xué)和臨床特征

      EBER原位雜交(ISH)被用于確定EBVaGC,因?yàn)樵诿總€(gè)受感染的細(xì)胞中EBER都高度表達(dá)(107拷貝/細(xì)胞),胃癌細(xì)胞中EBER表達(dá)陽(yáng)性者即定義為EBVaGC。典型的腫瘤細(xì)胞核EBER1-ISH表達(dá)呈陽(yáng)性,四周被淋巴間質(zhì)環(huán)繞。EBVaGC標(biāo)本中,幾乎所有的癌細(xì)胞中EBER表達(dá)呈陽(yáng)性,而癌旁正常組織無(wú)EBER表達(dá),提示胃癌形成的早期即發(fā)生了EBV感染,感染EBV的腫瘤細(xì)胞單克隆增生,從而使EBVaGC組織中幾乎所有的癌細(xì)胞表達(dá)EBER[4]。

      1.1 流行病學(xué) 大多數(shù)研究顯示EBVaGC與年齡無(wú)明顯相關(guān)性,但EBVaGC發(fā)病在男性中占優(yōu)勢(shì),表明男性可能存在生活方式或職業(yè)因素方面的發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)。日本的一項(xiàng)研究表明,頻繁攝入咸的食物和暴露于木粉和/或鐵屑可引起胃上皮細(xì)胞機(jī)械性損傷,與EBVaGC高發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)相關(guān)[5]。與Burkitt淋巴瘤和鼻咽癌不同,EBVaGC是一種非地方性疾病,其廣泛分布在世界各地,但發(fā)病率因地區(qū)而異,美洲大陸國(guó)家如智利和美國(guó)EBVaGC發(fā)病率明顯高于亞洲國(guó)家[6]。

      1.2 臨床特征 EBVaGC具有明顯的臨床病理學(xué)特征,主要表現(xiàn)在男性發(fā)病率高并呈彌漫性分布[7]。以往研究均顯示EBVaGC在男性中的發(fā)病率較高,尚未有研究顯示其在女性中占優(yōu)勢(shì)。在其他消化道器官(結(jié)腸和食管)中未檢測(cè)到EBV編碼的小RNA表達(dá)[8],表明在消化道器官中,胃的上皮細(xì)胞和環(huán)境的改變對(duì)EBV相關(guān)腫瘤形成具有重要意義。在EBVaGC組織中可檢測(cè)到EBV DNA及大量經(jīng)其編碼的小RNA和EBER。EBVaGC可發(fā)生于任何類型胃腺癌,但中分化型和低分化型胃腺癌中EBVaGC的發(fā)病比其他類型的胃腺癌多見[3]。

      依據(jù)組織學(xué)分型,EBVaGC可分為淋巴上皮瘤樣胃癌和普通型胃癌,二者比例約為1∶4。超過80%的淋巴上皮瘤樣胃癌與EBV感染相關(guān)[9],典型的組織學(xué)表現(xiàn)為低分化癌并豐富的淋巴細(xì)胞浸潤(rùn)。而普通型胃癌中,一般是中、低分化型腺癌較易感染EBV[10]。這兩種組織學(xué)類型的EBVaGC均好發(fā)于胃的近端。

      部分EBVaGC在腫瘤局限于黏膜層時(shí)呈現(xiàn)出“花邊樣”改變:小腺管或索狀結(jié)構(gòu)呈不規(guī)則分枝及愈合增生形態(tài)。當(dāng)腫瘤侵及黏膜下層時(shí)常伴有大量淋巴細(xì)胞浸潤(rùn),多為CD8+的細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞[11],表明在EBVaGC中保留了腫瘤特異性細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞活性。除了CD8+T細(xì)胞浸潤(rùn),自然殺傷細(xì)胞、樹突細(xì)胞和Ki67陽(yáng)性細(xì)胞的平均值和等級(jí)在EBVaGC中明顯高于EBV陰性胃癌(EBV negative gastric carcinoma,EBVnGC)[12]。

      2 EBVaGC的發(fā)病機(jī)制

      EBVaGC的發(fā)病機(jī)制目前并不十分清楚,近年來國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)EBVaGC做了一系列研究,提出了多種相關(guān)學(xué)說,但尚未得到充分證據(jù)證實(shí)。

      2.1 EBV感染上皮細(xì)胞和B淋巴細(xì)胞的機(jī)制

      2.1.1 CD21依賴性EBV感染途徑 EBV通過不同的機(jī)制感染人類B淋巴細(xì)胞和上皮細(xì)胞。EBV通過外包膜糖蛋白gp350/220和B淋巴細(xì)胞表面豐富的CD21分子或人類補(bǔ)體受體2型(CR2)高親和性結(jié)合[13],通過受體介導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)吞噬作用進(jìn)入B淋巴細(xì)胞后,病毒的外膜與細(xì)胞質(zhì)小泡發(fā)生融合,將病毒衣殼釋放到細(xì)胞質(zhì)內(nèi)。

      2.1.2 CD21非依賴性EBV感染途徑

      2.1.2.1 EBV的gp350與其特異性的多聚體IgA結(jié)合 EBV的gp350與其特異性的多聚體IgA有效地結(jié)合,介導(dǎo)EBV對(duì)胃上皮細(xì)胞的黏附和感染。多聚體IgA通常存在于人類唾液中,可與上皮細(xì)胞表面受體分泌成分(SC)結(jié)合,而SC是一個(gè)在極化上皮細(xì)胞基底側(cè)表達(dá)的跨膜蛋白。因此,EBV與其特異性多聚體IgA結(jié)合,再通過IgA與SC結(jié)合形成EBV/IgA/SC復(fù)合體,從而感染上皮細(xì)胞。

      2.1.2.2 gH和gL在EBV感染上皮細(xì)胞中的作用 在缺乏CD21時(shí),EBV gH和gL復(fù)合體可能作為配體發(fā)揮作用。gH和gL復(fù)合體由gp85、gp25、gp42 3種糖蛋白構(gòu)成,參與病毒包膜與靶細(xì)胞的融合以及EBV感染細(xì)胞與鄰近細(xì)胞的融合。EBV可與CD21陰性上皮細(xì)胞高親和性結(jié)合,但缺乏gH/gL的重組病毒則失去這種能力[14],這表明上皮細(xì)胞可能存在特異性gH/gL受體支持其與EBV黏附?,F(xiàn)已證明gH/gL和整合素αvβ6、αvβ8結(jié)合可以誘發(fā)EBV和上皮細(xì)胞膜融合[15]。另外,從B細(xì)胞釋放出的EBV顆粒缺乏gp42,從而更易感染上皮細(xì)胞,但感染B細(xì)胞的能力減弱,而由感染上皮細(xì)胞釋放的EBV具有g(shù)p42,可有效地感染B細(xì)胞[16]。

      2.1.2.3 EBV編碼的膜蛋白BMRF2和極化上皮細(xì)胞整合素之間的相互作用 EBV編碼的膜蛋白BMRF2和極化上皮細(xì)胞整合素之間的相互作用被認(rèn)為是EBV黏附到細(xì)胞表面的一種方式。BMRF2不需要通過細(xì)胞間融合,BMRF2中的三肽Arg-Gly-Asp(RGD)可作為整合素β1、α5、α3、αv的配體而發(fā)揮作用[17]。在口腔上皮細(xì)胞中,BMRF2在EBV從細(xì)胞到細(xì)胞間擴(kuò)散中也發(fā)揮了重要作用[18]。但尚不清楚的是,BMRF2與整合素的作用是發(fā)生在EBV與上皮細(xì)胞黏附前還是之后。

      2.1.2.4細(xì)胞之間的接觸作用 EBV可能通過胃上皮細(xì)胞和感染EBV的淋巴細(xì)胞間的接觸作用進(jìn)入上皮細(xì)胞[19]。Shannon-Lowe等[20]研究表明,負(fù)載在B細(xì)胞表面的EBV顆??纱龠M(jìn)B細(xì)胞和共培養(yǎng)的上皮細(xì)胞之間形成病毒突觸(VS)樣細(xì)胞間連接。通過VS這樣一個(gè)黏附連接可以有效地將病毒從病毒感染的細(xì)胞轉(zhuǎn)移到未受感染的靶細(xì)胞而不通過細(xì)胞間融合。鼻咽和口咽部黏膜淋巴細(xì)胞明顯減少,而唾液中游離病毒可以先感染B細(xì)胞,然后通過B細(xì)胞和上皮細(xì)胞間的連接有效地轉(zhuǎn)移到咽上皮細(xì)胞中。

      2.1.2.5 EBV感染與胃黏膜損傷有關(guān) EBVaGC患者有更頻繁的木粉和金屬接觸史,膜損傷和后續(xù)的膜再生可能誘發(fā)胃黏膜感染EBV。墨西哥的一項(xiàng)調(diào)查發(fā)現(xiàn),從而使腫瘤細(xì)胞增殖,腫瘤侵襲能力增強(qiáng)。在EBVaGC癌變區(qū)域附近的潰瘍區(qū)域觀察到EBER[21]。胃黏膜損傷部位易聚集淋巴細(xì)胞或有淋巴系統(tǒng)經(jīng)過,因此猜測(cè)可能是感染EBV的淋巴細(xì)胞被聚集到損壞或再生的胃黏膜而發(fā)生EBV感染。

      2.2 EBV在胃癌發(fā)病中的作用

      2.2.1 CpG島甲基化 與正常細(xì)胞相比,在癌細(xì)胞中存在大量腫瘤抑制基因啟動(dòng)子區(qū)域的CpG島甲基化。在EBVaGC中啟動(dòng)子甲基化較頻繁,研究表明EBV相關(guān)腫瘤和高CpG島甲基化表型(CIMP)相關(guān)[22]。在EBVaGC中觀察到了鋅指蛋白4(CXXC4)和金屬蛋白酶抑制劑2(TIMP-2)的甲基化[23]。CXXC4是Wnt通路抑制基因,下調(diào)CXXC4可促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖和侵襲性[24],下調(diào)TIMP-2可能促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移。

      近年來研究表明,在EBVaGC中,約50%的EBVaGC LMP2A陽(yáng)性,LMP2A在胃癌細(xì)胞中可通過誘導(dǎo)細(xì)胞周期素E(cyclin E)的表達(dá)而促進(jìn)細(xì)胞增殖,也可有效抑制轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β1(TGF-β1)誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。據(jù)報(bào)道,LMP2A誘發(fā)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄激活因子-3(STAT3)的磷酸化,其可激活DNA甲基轉(zhuǎn)移酶1(DNMT1)轉(zhuǎn)錄和通過第10染色體同源丟失磷酸酶-張力蛋白基因(PTEN)啟動(dòng)子的CpG島甲基化造成PTEN表達(dá)損失,從而使腫瘤細(xì)胞增殖,腫瘤侵襲能力增強(qiáng)。在EBV感染的不顯著表達(dá)LMP2A的胃上皮細(xì)胞中可見DNMT1過表達(dá)[25]。

      然而,胃上皮感染EBV的早期階段DNA甲基化準(zhǔn)確的分子機(jī)制仍不完全清楚。

      2.2.2 微小RNA(miRNA)和致癌作用 miRNA是一類內(nèi)源性非編碼單鏈RNA分子,長(zhǎng)21~25 nt。miRNA可抑制mRNA翻譯合成蛋白質(zhì),并可能通過RNA介導(dǎo)的DNA甲基化從而導(dǎo)致基因沉默。miRNA在調(diào)節(jié)生長(zhǎng)、凋亡、變異、增殖等相關(guān)基因表達(dá)調(diào)控方面起著重要作用[26]。

      EBV編碼大量miRNA,EBV編碼的BamH I-A 向右開放讀碼框轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物(BART)miRNA作用于病毒基因3個(gè)非編碼區(qū)(UTRs):BALF5、LMP2A和LMP1,對(duì)這些病毒基因表達(dá)進(jìn)行負(fù)調(diào)節(jié),從而促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng),逃避宿主免疫反應(yīng),促進(jìn)腫瘤發(fā)生[27-29]。另一方面,EBV miRNA抑制p53正向細(xì)胞凋亡調(diào)控因子(PUMA)和促凋亡蛋白BIM等,抗細(xì)胞凋亡,促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng)[30]。EBV miRNA一部分結(jié)合基序只在EBV基因中發(fā)現(xiàn),而其他病毒基因組未發(fā)現(xiàn)。miR-200家族是miRNA中一員,其對(duì)上皮來源腫瘤的增殖,侵襲和轉(zhuǎn)移具有重要的調(diào)節(jié)作用。下調(diào)細(xì)胞miRNA家族miR-200可引起上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)變(EMT),從而促進(jìn)腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移[31]。這種現(xiàn)象在EBVaGC和鼻咽癌細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化過程中是一個(gè)重要步驟。EBV相關(guān)腫瘤的進(jìn)展可能是由于EBV調(diào)節(jié)病毒和宿主miRNA的表達(dá)。

      2.2.3 EBV編碼的BamH I-A區(qū)域的早期裂解基因BARF1的抗凋亡作用 BARF1是EBV編碼的癌基因,高達(dá)90%的EBVaGC組織中可檢測(cè)到BARF1[32]。研究表明BARF1為抗凋亡因子,在EBVaGC中研究發(fā)現(xiàn)胃癌細(xì)胞中BARF1的表達(dá)可以增加Bcl-2從而抑制凋亡,促進(jìn)癌細(xì)胞增殖[33]。

      3 EBVaGC的診斷和治療及預(yù)后

      3.1 診斷 對(duì)于胃癌,內(nèi)鏡是最有用的診斷方式。內(nèi)鏡下,EBVaGC表現(xiàn)為胃的上部出現(xiàn)表淺糜爛性病變。進(jìn)展期時(shí)表現(xiàn)為無(wú)明確界限的潰瘍[34]。腫瘤主要發(fā)生在除胃竇之外的部分。在超聲內(nèi)鏡下,EBVaGC表現(xiàn)為黏膜下低回聲結(jié)節(jié),其最大厚度與寬度比值遠(yuǎn)大于EBV陰性胃癌[35]。EBVaGC很少有淋巴結(jié)侵犯,特別是黏膜下早期即使有時(shí)影像學(xué)檢查懷疑淋巴結(jié)受侵,但大多病理活檢證實(shí)淋巴結(jié)無(wú)轉(zhuǎn)移[36]。

      另外,EBER1-ISH是確定EBV感染最靈敏的方法。對(duì)接受胃鏡檢查的患者應(yīng)用EBER1-ISH對(duì)其胃黏膜活檢樣本進(jìn)行診斷在接受治療前是非常有用的。EBVaGC患者的血清中抗EBV抗原抗體升高,但EBNA1抗體滴度在患者和健康人中差異不顯著。

      3.2 治療 到目前為止,EBVaGC尚無(wú)特定的治療方法。因?yàn)樵贓BVaGC中未分化型胃癌發(fā)病率較高,大多數(shù)EBVaGC患者行手術(shù)切除。多種腫瘤相關(guān)基因啟動(dòng)子的CpG島甲基化在胃癌的發(fā)展中發(fā)揮著重要的作用。相對(duì)于無(wú)EBV感染的胃癌,在EBVaGC中更頻繁地觀察到啟動(dòng)子甲基化。腫瘤抑制基因的甲基化是一個(gè)關(guān)鍵的異常,去甲基化劑可以促進(jìn)EBV潛伏感染細(xì)胞中EBV裂解性感染,可能導(dǎo)致癌細(xì)胞溶解,這種方法可以考慮應(yīng)用到治療EBVaGC[37]。另外,早期的EBVaGC淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移率低,可考慮行局部治療如內(nèi)鏡下治療。有報(bào)道稱對(duì)早期黏膜下EBVaGC患者經(jīng)行內(nèi)鏡下治療,超過4年未發(fā)現(xiàn)其復(fù)發(fā)[38]。

      有絲分裂原激活蛋白激酶(MAPK)、磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K)及蛋白激酶Cδ是細(xì)胞毒性藥物誘導(dǎo)裂解EBV的3條重要信號(hào)傳導(dǎo)通道,其中PI3K/Akt信號(hào)傳導(dǎo)通路參與很多重要生物學(xué)過程的調(diào)控,其過度激活可導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生,PKB/Akt和PI3K在免疫系統(tǒng)中起著負(fù)調(diào)節(jié)作用。PI3K的活化和PIP3的產(chǎn)生是B細(xì)胞受體介導(dǎo)信號(hào)途徑的關(guān)鍵,而PKB/Akt位于PI3K的下游,因此反饋調(diào)節(jié)PI3K途徑可認(rèn)為是下調(diào)B細(xì)胞反應(yīng)的一種機(jī)制。在正常組織中PI3K/Akt信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑處于活化狀態(tài),但是該通路如果被過度激活則可通過下調(diào)腫瘤抑制蛋白p53、刺激蛋白質(zhì)合成、抑制細(xì)胞凋亡等導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞的無(wú)限增殖,成為腫瘤預(yù)后不良的標(biāo)志,因此抑制該通路的激活有利于腫瘤治療。對(duì)于EBVaGC,化療十分棘手,因?yàn)槠鋵?duì)紫杉醇、順鉑、5-氟尿嘧啶(5-FU)等細(xì)胞毒性藥物顯著耐藥[39]。Shin等[40]研究結(jié)果顯示,5-FU聯(lián)合PI3K抑制劑——LY294002可能克服EBVaGC對(duì)5-FU 耐藥的現(xiàn)狀。

      另外,約50%的EBVaGC LMP2A陽(yáng)性,LMP2A在EBV潛伏感染及轉(zhuǎn)化細(xì)胞過程中發(fā)揮了重要作用,具有潛在的T 細(xì)胞激活表位,能介導(dǎo)殺傷性T細(xì)胞發(fā)揮作用,是EBV相關(guān)腫瘤治療的理想靶抗原[41]。腺病毒載體是目前介導(dǎo)基因轉(zhuǎn)移及基因治療最常用的載體系統(tǒng)之一,在腫瘤基因治療中本身可以作為佐劑,增強(qiáng)體液免疫和細(xì)胞免疫,提示腺病毒載體是目前介導(dǎo)外源基因轉(zhuǎn)染樹突細(xì)胞效率最高的較理想載體。利用腺病毒載體介導(dǎo)EBV LMP2A 基因在樹突細(xì)胞中表達(dá),刺激T細(xì)胞產(chǎn)生EBV-LMP2A 特異性細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞,有望用于EBVaGC的生物免疫治療。

      3.3 預(yù)后 大多數(shù)研究沒有顯示EBV與胃癌預(yù)后有關(guān)。而來自荷蘭的一項(xiàng)研究表明EBVaGC比EBVnGC淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移頻率低,EBVaGC相對(duì)于EBVnGC有良好的預(yù)后[42]。

      綜上所述,EBV感染與某些胃癌的發(fā)生發(fā)展相關(guān),但EBV感染胃黏膜上皮細(xì)胞的機(jī)制以及EBV在胃癌發(fā)生、發(fā)展中的作用還不清楚。進(jìn)一步深入研究EBV感染與EBVaGC的關(guān)系及其具體作用機(jī)制,對(duì)預(yù)防和治療EBVaGC具有指導(dǎo)意義,以期找到特異的診治方法及相應(yīng)的有效藥物。

      1 Carbone A,Gloghini A,Dotti G.EBV-associated lymphoproliferative disorders:classification and treatment[J].Oncologist,2008,13(5):577-585.

      2 Burke AP,Yen TS,Shekitka KM,et al.Lymphoepithelial carcinoma of the stomach with Epstein-Barr virus demonstrated by polymerase chain reaction[J].Modern Pathol,1990,3(3):377-380.

      3 Lee JH,Kim SH,Han SH,et al.Clinicopathological and molecular characteristics of Epstein-Barr virus-associated gastric carcinoma:a meta-analysis[J].J Gastroenterol Hepatol,2009,24(3):354-365.

      4 Akiba S,Koriyama C,Herrera-Goepfert R,et al.Epstein-Barr virus associated gastric carcinoma:epidemiological and clinicopathological features[J].Cancer Sci,2008,99(2):195-201.

      5 Imai S,Koizumi S,Sugiura M,et al.Gastric carcinoma:monoclonal epithelial malignant cells expressing Epstein-Barr virus latent infection protein[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1994,91(19):9131-9135.

      6 Tokunaga M,Uemura Y,Tokudome T,et al.Epstein-Barr virus related gastric cancer in Japan:a molecular patho-epidemiological study[J].Acta Pathol Jpn,1993,43(10):574-581.

      7 Camargo MC,Murphy G,Koriyama C,et al.Determinants of Epstein-Barr virus-positive gastric cancer:an international pooled analysis[J].Br J Cancer,2011,105(1):38-43.

      8 Kijima Y,Hokita S,Takao S,et al.Epstein-Barr virus involvement is mainly restricted to lymphoepithelial type of gastric carcinoma among various epithelial neoplasms[J].J Med Virol,2001,64(4):513-518.

      9 Nakamura S,Ueki T,Yao T,et al.Epstein-Barr virus in gastric carcinoma with lymphoid stroma.Special reference to its detection by the polymerase chain reaction and in situ hybridization in 99 tumors,including a morphologic analysis[J].Cancer,1994,73(9):2239-2249.

      10 Lee HS,Chang MS,Yang HK,et al.Epstein-Barr virus-positive gastric carcinoma has a distinct protein expression profile in comparison with Epstein-Barr virus-negative carcinoma[J].Clin Cancer Res,2004,10(5):1698-1705.

      11 Arikawa J,Tokunaga M,Satoh E,et al.Morphological characteristics of Epstein-Barr virus-related early gastric carcinoma:a case-control study[J].Pathol Int,1997,47(6):360-367.

      12 Kijima Y,Ishigami S,Hokita S,et al.The comparison of the prognosis between Epstein-Barr virus (EBV)-positive gastric carcinomas and EBV-negative ones[J].Cancer Lett,2003,200(1):33-40.

      13 Sixbey JW,Yao QY.Immunoglobulin A-induced shift of Epstein-Barr virus tissue tropism[J].Science,1992,255(5051):1578-1580.

      14 Molesworth SJ,Lake CM,Borza CM,et al.Epstein-Barr virus gH is essential for penetration of B cells but also plays a role in attachment of virus to epithelial cells[J].J Virol,2000,74(14):6324-6332.

      15 Chesnokova LS,Nishimura SL,Hutt-Fletcher LM.Fusion of epithelial cells by Epstein-Barr virus proteins is triggered by binding of viral glycoproteins gHgL to integrins alphavbeta6 or alphavbeta8[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2009,106(48):20464-20469.

      16 Borza CM,Morgan AJ,Turk SM,et al.Use of gHgL for attachment of Epstein-Barr virus to epithelial cells compromises infection[J].J Virol,2004,78(10):5007-5014.

      17 Xiao J,Palefsky JM,Herrera R,et al.Characterization of the Epstein-Barr virus glycoprotein BMRF-2[J].Virology,2007,359(2):382-396.

      18 Xiao J,Palefsky JM,Herrera R,et al.The Epstein-Barr virus BMRF-2 protein facilitates virus attachment to oral epithelial cells[J].Virology,2008,370(2):430-442.

      19 Speck P,Longnecker R.Infection of breast epithelial cells with Epstein-Barr virus via cell-to-cell contact[J].J Natl Cancer Inst,2000,92(22):1849-1851.

      20 Shannon-Lowe CD,Neuhierl B,Baldwin G,et al.Resting B cells as a transfer vehicle for Epstein-Barr virus infection of epithelial cells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2006,103(18):7065-7070.

      21 Takada K.Epstein-Barr virus and gastric cancers[J].Mol Pathol,2000,53(5):255-261.

      22 Kaneda A,Matsusaka K,Aburatani H,et al.Epstein-Barr virus infection as an epigenetic driver of tumorigenesis[J].Cancer Res,2012,72(14):3445-3450.

      23 Matsusaka K,Kaneda A,Nagae G,et al.Classification of Epstein-Barr virus-positive gastric cancers by definition of DNA methylation epigenotypes[J].Cancer Res,2011,71(23):7187-7197.

      24 Kojima T,Shimazui T,Hinotsu S,et al.Decreased expression of CXXC4 promotes a malignant phenotype in renal cell carcinoma by activating Wnt signaling[J].Oncogene,2009,28(2):297-305.

      25 Hino R,Uozaki H,Murakami N,et al.Activation of DNA methyltransferase 1 by EBV latent membrane protein 2A leads to promoter hypermethylation of PTEN gene in gastric carcinoma[J].Cancer Res,2009,69(7):2766-2774.

      26 Bartel DP.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.

      27 Lo AK,To KF,Lo KW,et al.Modulation of LMP1 protein expression by EBV-encoded microRNAs[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(41):16164-16169.

      28 Barth S,Pfuhl T,Mamiani A,et al.Epstein-Barr virus-encoded microRNA miR-BART2 down-regulates the viral DNA polymerase BALF5[J].Nucleic Acids Res,2008,36(2):666-675.

      29 Lung RW,Tong JH,Sung YM,et al.Modulation of LMP2A expression by a newly identified Epstein-Barr virus-encoded microRNA miR-BART22[J].Neoplasia,2009,11(11):1174-1184.

      30 Marquitz AR,Mathur A,Nam CS,et al.The Epstein-Barr virus BART microRNAs target the pro-apoptotic protein Bim[J].Virology,2011,412(2):392-400.

      31 Gibbons DL,Lin W,Creighton CJ,et al.ontextual extracellular cues promote tumor cell EMT and metastasis by regulating miR-200 family expression[J]. Genes Dev,2009,23(18):2140-2150.

      32 zur Hausen A,Brink AA,Craanen ME,et al.Unique transcription pattern of Epstein-Barr virus(EBV)in EBV-carrying gastric adenocareinomas:expression of the transforming BARF1 gene[J].Cancer Res,2000,60(10):2745-2748.

      33 Wang Q,Tsao SW,Ooka T,et al.Anti-apoptotic role of BARF1 in gastr ic cancer cells[J].Cancer Lette,2006,238(1):90-103.

      34 Yanai H,Nishikawa J,Mizugaki Y,et al.Endoscopic and pathologic features of Epstein-Barr virus-associated gastric carcinoma[J].Gastrointest Endosc,1997,45(3):236-242.

      35 Nishikawa J,Yanai H,Mizugaki Y,et al.Case report:hypoechoic submucosal nodules:a sign of Epstein-Barr virus-associated early gastric cancer[J].J Gastroenterol Hepatol,1998,13(6):585-590.

      36 Ojima H,F(xiàn)ukuda T,Nakajima T,et al.Discrepancy between clinical and pathological lymph node evaluation in Epstein-Barr virus-associated gastric cancers[J].Anticancer Res,1996,16(5B):3081-3084.

      37 Griffiths EA,Gore SD.DNA methyltransferase and histone deacetylase inhibitors in the treatment of myelodysplastic syndromes[J].Semin Hematol,2008,45(1):23-30.

      38 Iizasa H,Nanbo A,Nishikawa J,et al.Epstein-Barr virus(EBV)-associated gastric carcinoma[J].Viruses,2012,4(12):3420-3439.

      39 Ohtsu A.Current status and future prospects of chemotherapy for metastatic gastric cancer:a review[J].Gastric Cancer,2005,8(2):95-102.

      40 Shin JY,Kim JO,Lee SK,et al.LY294002 may overcome 5-FU resistance via down-regulation of activated p-AKT in Epstein-Barr virus-positive gastric cancer cells[J].BMC Cancer,2010,10:425.

      41 Liu X,Gao Y,Luo B,et al.Construction and antiapoptosis activities of recombinant adenoviral expression vector carrying EBV latent membrane protein 2A[J].Gastroenterol Res Pract,2011,2011:182832.

      42 van Beek J,zur Hausen A,Klein Kranenbarg E,et al.EBV-positive gastric adenocarcinomas:a distinct clinicopathologic entity with a low frequency of lymph node involvement[J].J Clin Oncol,2004,22(4):664-670.

      猜你喜歡
      甲基化淋巴細(xì)胞編碼
      遺傳性T淋巴細(xì)胞免疫缺陷在百草枯所致肺纖維化中的作用
      基于SAR-SIFT和快速稀疏編碼的合成孔徑雷達(dá)圖像配準(zhǔn)
      《全元詩(shī)》未編碼疑難字考辨十五則
      子帶編碼在圖像壓縮編碼中的應(yīng)用
      電子制作(2019年22期)2020-01-14 03:16:24
      Genome and healthcare
      鼻咽癌組織中SYK基因啟動(dòng)子區(qū)的甲基化分析
      探討CD4+CD25+Foxp3+調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞在HCV早期感染的作用
      胃癌DNA甲基化研究進(jìn)展
      基因組DNA甲基化及組蛋白甲基化
      遺傳(2014年3期)2014-02-28 20:58:49
      全甲基化沒食子兒茶素沒食子酸酯的制備
      呼图壁县| 仙桃市| 金平| 胶南市| 吉安市| 深州市| 霍林郭勒市| 民乐县| 霞浦县| 广西| 绍兴市| 曲靖市| 乌拉特后旗| 石屏县| 盘山县| 新野县| 都江堰市| 涞源县| 兰溪市| 双峰县| 白水县| 丹东市| 清流县| 通州市| 湖南省| 江门市| 日土县| 共和县| 屏东市| 泗阳县| 长岛县| 绩溪县| 黄山市| 塔河县| 乌兰察布市| 玛纳斯县| 云安县| 临武县| 汝州市| 新安县| 万山特区|