史馨怡 劉丹 陳黎黎 陳欣
(江蘇科技大學(xué)生物與化學(xué)工程學(xué)院,鎮(zhèn)江 212018)
類胡蘿卜素(Carotenoids)是一類呈黃色、橙紅色或紅色的多烯類化合物,主要包括β-類胡蘿卜素、蝦青素、葉黃素和蕃茄紅素等[1-3]。類胡蘿卜素廣泛存在于細(xì)菌、藻類、真菌和植物中,具有重要的生理保健功能,如吸收光能、保護(hù)光合作用系統(tǒng)、屏障紫外線、清除自由基以及穩(wěn)定色素蛋白的功能構(gòu)型等[1-4]。
國(guó)內(nèi)外已報(bào)道的類胡蘿卜素高產(chǎn)菌株主要有三孢布拉氏霉(Blakesle a trispora)和紅酵母(Rhodotorulasp.)。三孢布拉氏霉發(fā)酵產(chǎn)率雖然較高,但存在發(fā)酵技術(shù)工藝復(fù)雜、發(fā)酵周期長(zhǎng)、成本高等缺點(diǎn);而紅酵母生長(zhǎng)對(duì)營(yíng)養(yǎng)要求較簡(jiǎn)單,發(fā)酵工藝易于調(diào)控,培養(yǎng)周期短,菌體可綜合利用,且屬于我國(guó)飼料行業(yè)12種確認(rèn)的飼用微生物,發(fā)酵過程易于產(chǎn)業(yè)化,因而具有較高的應(yīng)用價(jià)值和開發(fā)前景[1]。目前對(duì)紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素的研究主要集中在對(duì)菌株篩選、培養(yǎng)基和發(fā)酵條件的優(yōu)化以及類胡蘿卜素的分離提取等方面[1,5-7],菌體中類胡蘿卜素含量可達(dá)到35 mg/g DCW[8],發(fā)酵的最高產(chǎn)量也已超過100 mg/L[7]。近年來利用代謝工程改造菌株進(jìn)行發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素的報(bào)道也逐漸增多,而利用逆境條件增加類胡蘿卜素發(fā)酵的研究較為少見。研究發(fā)現(xiàn),酵母細(xì)胞中類胡蘿卜素的含量會(huì)受到培養(yǎng)環(huán)境的影響,南極嗜冷菌在5℃培養(yǎng)時(shí)類胡蘿卜素含量比在25℃培養(yǎng)時(shí)有明顯增加[10,11],這是因?yàn)樵诘蜏丨h(huán)境中,類胡蘿卜素與膜結(jié)合可以增加膜的流動(dòng)性[2,12,13];在酸處理?xiàng)l件下,酵母細(xì)胞利用胞內(nèi)大量的氨基酸合成脅迫響應(yīng)蛋白,造成胞內(nèi)氨基酸匱乏,而胞內(nèi)氨基酸的匱乏會(huì)引起胞內(nèi)氧自由基的積累[14],酵母細(xì)胞能通過增加類胡蘿卜素的合成來消除胞內(nèi)氧自由基[2,15];細(xì)胞中的類胡蘿卜素還能清除活性氧(Reactive oxygen species,ROS)或通過與其他抗氧化劑如維生素E或維生素C的協(xié)同作用,增加其在干旱、高鹽等環(huán)境中的抗逆性[16]。
本文研究了低溫、低溫處理時(shí)間、酸處理和高鹽處理及其交互作用對(duì)一株紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素影響,旨在為紅酵母對(duì)低溫、高鹽和酸處理的生理應(yīng)答機(jī)制的解析提供理論依據(jù),同時(shí)對(duì)利用紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素也具有一定的指導(dǎo)意義。
1.1.1 菌株與試劑 紅酵母(Rhodotorulasp.),江蘇科技大學(xué)生物工程實(shí)驗(yàn)室保存。葡萄糖、蛋白胨、酵母膏:分析純,均為國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
1.1.2 儀器與設(shè)備 SW-C-J-1F超凈工作臺(tái)(蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司);310P-03精密臺(tái)式pH計(jì)(上海杰晟科學(xué)儀器有限公司);YXQ-SC41-280A手提式壓力蒸汽滅菌鍋(上海核子儀器廠);UV-9100紫外/可見光分光光度計(jì)(北京瑞利分析儀器公司);TGL-16G高速臺(tái)式離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠);202-00干燥箱(北京化玻聯(lián)醫(yī)療器械有限公司);FLY-211B臥式大容量全溫培養(yǎng)振蕩器(上海申賢恒溫設(shè)備廠)。
1.2.1 培養(yǎng)基 斜面培養(yǎng)基(g/L):YEPD培養(yǎng)基,酵母膏 10,蛋白胨 20,葡萄糖 20,瓊脂粉 2%(W/V),pH自然,121℃,15 min滅菌。發(fā)酵培養(yǎng)基:同斜面培養(yǎng)基。
1.2.2 不同逆境條件處理方法 在500 mL的三角瓶中配制發(fā)酵培養(yǎng)基,每瓶裝液量為100 mL,用接種環(huán)接入斜面培養(yǎng)基活化的紅酵母菌株1環(huán),于30℃搖床200 r/min振蕩培養(yǎng)。對(duì)低溫(15℃)處理不同時(shí)間的試驗(yàn)開始于(120-t)h,其他試驗(yàn)于培養(yǎng)菌濃度至OD600nm=2.0時(shí)進(jìn)行。分別考察不同低溫(控制T=5、10、15、20、25、30℃直至發(fā)酵結(jié)束)、低溫(15℃)處理不同時(shí)間(t=12、24、36、48、60、72 h)、高鹽處理(一次性加入滅菌的NaCl使其在發(fā)酵液中的濃度分別為1、2、3、4、5 mol/L),以及酸處理(一次性加入2 mol/L的HCl溶液,使發(fā)酵液pH分別為2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5)對(duì)發(fā)酵的影響。發(fā)酵至120 h結(jié)束,進(jìn)行類胡蘿卜素含量及生物量(DCW)的測(cè)定,每個(gè)處理3個(gè)重復(fù),同時(shí)以不接菌發(fā)酵液為空白對(duì)照。
1.2.3 不同逆境條件處理對(duì)紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素的影響 選擇低溫(T)、低溫處理時(shí)間(t)、高鹽和酸處理4種因素進(jìn)行研究,每個(gè)因素3個(gè)水平(表1),確定Box-Behnken設(shè)計(jì)的自變量,以類胡蘿卜素產(chǎn)量為響應(yīng)值,通過響應(yīng)曲面分析(Response surface analysis,RSA)考察4種逆境條件之間的交互作用。
表1 響應(yīng)面分析因素與水平
1.2.4 檢測(cè)方法 將發(fā)酵液轉(zhuǎn)入離心管中,8 000 r/min離心10 min,棄上清液,菌體用無菌水洗后再離心,65℃左右烘干至恒重計(jì)算DCW。
類胡蘿卜素含量檢測(cè)方法及產(chǎn)量計(jì)算方法參照文獻(xiàn)[1] 進(jìn)行。準(zhǔn)確稱取菌體0.1 g和石英砂0.05 g,充分研磨,加入6 mL丙酮:石油醚=11(VV)的混合液,28℃振蕩浸提30 min,然后8 000 r/min離心15 min,上清液即為胡蘿卜素浸提液。
類胡蘿卜素含量(μg/g干基)=(Aλmax×D×V)/(0.16×W)
式中:Aλmax為類胡蘿卜素浸提液最大波長(zhǎng)處的吸光度;D為色素浸提液稀釋倍數(shù);V為浸提所用丙酮和石油醚的總體積(mL);W為提取所用的發(fā)酵培養(yǎng)物重量(g);0.16為胡蘿卜素的摩爾消光系數(shù)。
類胡蘿卜素產(chǎn)量計(jì)算方法參照公式:
類胡蘿卜素產(chǎn)量(mg/L)=生物量×類胡蘿卜素含量
由圖1可以看出,隨著溫度(T)的增加,生物量(DCW)逐漸增加,當(dāng)T為30℃時(shí),DCW達(dá)到最高值17.46 g/L,說明T升高能促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng),低溫不利于細(xì)胞生長(zhǎng)。由于類胡蘿卜素對(duì)微生物膜流動(dòng)性的調(diào)節(jié)具有重要,所以低溫能增加細(xì)胞類胡蘿卜素含量,類胡蘿卜素含量隨著T的升高呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在T為15℃時(shí),類胡蘿卜素含量達(dá)到最高值1.31 mg/g DCW。類胡蘿卜素產(chǎn)量與DCW和類胡蘿卜素含量都相關(guān),溫度高能增加DCW,但類胡蘿卜素含量較低,而溫度低時(shí)DCW較低,但類胡蘿卜素含量高。隨著T的增加,類胡蘿卜素產(chǎn)量呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在T為15℃時(shí),類胡蘿卜素產(chǎn)量達(dá)到最高值19.07 mg/L。
由圖2可以看出,隨著低溫處理時(shí)間(t)的增加,DCW逐漸降低,當(dāng)t為72 h時(shí),DCW達(dá)到最低值13.09 g/L,而t為12 h時(shí),DCW的最高值17.18 g/L,說明t值越大對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)影響越大,低溫處理不利于細(xì)胞的生長(zhǎng)。類胡蘿卜素含量隨著處理時(shí)間的延長(zhǎng)呈現(xiàn)先上升后略有下降的趨勢(shì),在t為48 h時(shí),類胡蘿卜素含量達(dá)到最高值1.35 mg/g DCW;繼續(xù)延長(zhǎng)處理時(shí)間,可能由于類胡蘿卜素合成途經(jīng)相關(guān)的酶活性受到影響因而類胡蘿卜素含量出現(xiàn)了下降。由于類胡蘿卜素產(chǎn)量受到DCW和類胡蘿卜素含量的影響,延長(zhǎng)t能增加類胡蘿卜素含量,但DCW降低,而減少t時(shí)DCW增加,但類胡蘿卜素含量降低,隨著t的增加,類胡蘿卜素產(chǎn)量亦呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在t為48 h時(shí),類胡蘿卜素產(chǎn)量達(dá)到最高值18.95 mg/L。
由圖3可以看出,隨著pH的增加,DCW逐漸增加,當(dāng)pH為2.0時(shí),DCW僅為6.22 g/L,當(dāng)pH為4.5時(shí),DCW達(dá)到最高值17.12 g/L,說明酸處理對(duì)菌體生長(zhǎng)不利,pH較低不利于細(xì)胞的生長(zhǎng)。由于酸處理?xiàng)l件下紅酵母細(xì)胞會(huì)增加類胡蘿卜素的合成來替代SOD行使抗氧化功能而保護(hù)細(xì)胞,所以當(dāng)pH降低時(shí)紅酵母的類胡蘿卜素含量將增加,類胡蘿卜素含量隨著pH的升高呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在pH為3.5時(shí),類胡蘿卜素含量達(dá)到最高值1.27 mg/g DCW;pH較低時(shí),可能由于類胡蘿卜素合成途經(jīng)相關(guān)的酶活性受到影響因而類胡蘿卜素含量出現(xiàn)了下降。隨著pH的增加,類胡蘿卜素產(chǎn)量亦呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在pH為3.5時(shí),類胡蘿卜素產(chǎn)量達(dá)到最高值19.79 mg/L。
由圖4可以看出,隨著NaCl濃度(CNacl)的增加,DCW呈現(xiàn)先略有上升后明顯下降的趨勢(shì),當(dāng)CNaCl為1.0 mol/L時(shí),DCW達(dá)到最高值17.46 g/L,而CNaCl為5.0 mol/L時(shí),DCW僅為4.46 g/L,說明CNaCl的增加能提供細(xì)胞生長(zhǎng)需要的無機(jī)鹽而增加DCW,但過高的CNaCl造成較高的滲透壓影響了細(xì)胞的生長(zhǎng)。由于紅酵母在高鹽的條件下會(huì)增加類胡蘿卜素的合成,所以增加CNaCl能增加細(xì)胞類胡蘿卜素含量,但過高的CNaCl可能通過影響類胡蘿卜素合成途經(jīng)相關(guān)的酶活性而使類胡蘿卜素合成受到影響,所以過高的CNaCl也不利于類胡蘿卜素含量的增加。類胡蘿卜素含量隨著CNaCl的增加呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在CNaCl為2.0 mol/L時(shí),類胡蘿卜素含量達(dá)到最高值1.24 mg/g DCW;CNaCl繼續(xù)升高為5.0 mol/L時(shí),類胡蘿卜素含量降低到最低值0.98 mg/g DCW。由于類胡蘿卜素產(chǎn)量受到DCW和類胡蘿卜素含量的影響,隨著CNaCl的增加,類胡蘿卜素產(chǎn)量亦呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在CNaCl為2 mol/L時(shí),類胡蘿卜素產(chǎn)量達(dá)到最高值19.86 mg/L。
根據(jù)Box-Behnken優(yōu)化設(shè)計(jì)的4因素3水平實(shí)驗(yàn)方案,并以變量X1、X2、X3和X4分別代表T、t、pH及CNaCl,結(jié)果見表2。
通過Design Expert 7.0軟件進(jìn)行二次響應(yīng)面回歸分析,得到多元二次響應(yīng)面回歸模型:Y=27.02-0.52X1-0.021X2+0.52X3+0.49X4-0.11X1X2+0.77X1X3-0.82X1X4-0.83X2X3+0.057X2X4+0.10X3X4-5.76X12-4.47X22-3.18X32-2.21X42,其決定系數(shù)R2= 0.9845,試驗(yàn)值與預(yù)測(cè)值非常接近。方差分析表明,以上回歸方程較好地?cái)M合了試驗(yàn)數(shù)據(jù)。
由方差分析結(jié)果(表3)可知,上述回歸方程描述了各因子與響應(yīng)值之間線性關(guān)系顯著性,由F值檢驗(yàn)來判定,概率P值越小,則其相應(yīng)變量的顯著性越高。T,pH、CNaCl的影響以及T-pH、T-CNaCl和t-pH的交互作用對(duì)類胡蘿卜素產(chǎn)量的影響均顯著(P>F值分別為0.011 8,0.011 8,0.015 8,0.025 3,0.018 8,0.017 1)。t,T-T,t-CNaCl,pHCNaCl對(duì)類胡蘿卜素產(chǎn)量的影響不顯著(P>F值分別為0.908 6、0.726 8,0.854 9和0.738 7)。Model的P>F值<0.000 1,表明該二次方程模型達(dá)到極顯著水平,失擬相=1.06>0.05,表明失擬項(xiàng)相對(duì)于絕對(duì)誤差不顯著,說明該方程對(duì)試驗(yàn)擬合較好。相關(guān)系數(shù)r=338.30/343.63×l00%=98.45%,說明響應(yīng)值的變化有98.45%來源于所選變量,可以用此模型對(duì)類胡蘿卜素產(chǎn)量進(jìn)行分析。
響應(yīng)面圖形是響應(yīng)值對(duì)各試驗(yàn)因子X1、X2、X3、X4。所構(gòu)成的三維空間的曲面圖,從響應(yīng)面分析圖上形象地看出最佳參數(shù)及各參數(shù)之間的相互作用。本試驗(yàn)根據(jù)回歸方程進(jìn)行不同因子的響應(yīng)面分析,結(jié)果如圖5示。從圖5可以看出,在t為48 h,CNaCl為2.0 mol/L時(shí),T與pH的交互作用對(duì)類胡蘿卜素產(chǎn)量影響顯著,T與pH的提高可以增加類胡蘿卜素產(chǎn)量,但T要隨著pH的變化而有所變化,因?yàn)檫^高的處理溫度會(huì)影響類胡蘿卜素含量,過低的pH也會(huì)影響DCW,從而影響類胡蘿卜素產(chǎn)量。
在t為48 h,pH為3.5時(shí),T與CNaCl的交互作用對(duì)類胡蘿卜素產(chǎn)量影響顯著,T與CNaCl的提高可以增加類胡蘿卜素產(chǎn)量。但T要隨著CNaCl的變化而有所變化,因?yàn)檫^高的處理溫度會(huì)影響類胡蘿卜素含量,過高的CNaCl也會(huì)影響DCW從而影響類胡蘿卜素產(chǎn)量。
表2 響應(yīng)面分析方案及試驗(yàn)結(jié)果
在T為15℃,CNaCl為2.0 mol/L時(shí),t與pH的交互作用對(duì)類胡蘿卜素產(chǎn)量影響顯著,t與pH的提高可以增加類胡蘿卜素產(chǎn)量,但t要隨著pH的變化而有所變化,因?yàn)閠的增加以及過低的pH會(huì)影響DCW,過高的pH也會(huì)影響類胡蘿卜素含量從而影響類胡蘿卜素產(chǎn)量。
利用Design-Expert 7.0計(jì)算得到類胡蘿卜素發(fā)酵的最佳條件為:T=14.76℃,t=47.91 h,pH=3.54,CNaCl=2.12 mol/L,類胡蘿卜素產(chǎn)量的理論最高值為27.08 mg/L。在該條件下重新進(jìn)行3次重復(fù)試驗(yàn),得到類胡蘿卜素產(chǎn)量為(31.04±0.89)mg/L,高于試驗(yàn)中的最高值28.10 mg/L,說明采用響應(yīng)面分析法優(yōu)化得到的類胡蘿卜素發(fā)酵條件參數(shù)準(zhǔn)確可靠,具有一定的實(shí)用價(jià)值。
類胡蘿卜素廣泛存在于細(xì)菌、藻類、真菌和植物中,具有重要的生理保健功能。由于動(dòng)物及人體自身無法合成類胡蘿卜素,因而常被作為飼料、保健食品的添加劑。目前,通過大面積養(yǎng)殖鹽藻獲得類胡蘿卜素的方法最為成熟,但鹽藻的養(yǎng)殖對(duì)培養(yǎng)條件要求較高。利用紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素具有安全、成本低等優(yōu)點(diǎn)因而備受關(guān)注。在前期的研究中,經(jīng)過對(duì)培養(yǎng)基的優(yōu)化,該菌株類胡蘿卜素含量達(dá)到0.52 mg/g DCW,發(fā)酵最高產(chǎn)量達(dá)到11.61 mg/L[1]。由于低溫、高鹽度、酸處理等逆境有利于類胡蘿卜素的合成,為了進(jìn)一步提高類胡蘿卜素產(chǎn)量,考察了低溫、低溫處理時(shí)間、酸處理及高鹽處理對(duì)該菌株發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素的影響。在此基礎(chǔ)上利用響應(yīng)面分析法進(jìn)一步優(yōu)化培養(yǎng)條件,類胡蘿卜素產(chǎn)量達(dá)到31.04 mg/L,較不利用逆境條件處理時(shí)(11.61 mg/L)提高了2.67倍,類胡蘿卜素含量也顯著提高。目前國(guó)內(nèi)利用紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素報(bào)道的產(chǎn)量大多較低(6-30 mg/L),菌體中類胡蘿卜素含量也不高(一般低于1.0 mg/g DCW)[5,6],而利用逆境培養(yǎng)條件增加類胡蘿卜素發(fā)酵的研究較為少見,通過將菌體在逆境條件下培養(yǎng),類胡蘿卜素含量和產(chǎn)量均明顯提高,若在此基礎(chǔ)上利用流加及高密度發(fā)酵等策略進(jìn)一步增加類胡蘿卜素的產(chǎn)量,將有望達(dá)到或超過國(guó)外類胡蘿卜素發(fā)酵的最高水平。
表3 二次響應(yīng)面回歸模型方差分析
本研究考察了低溫、低溫處理時(shí)間、酸處理及高鹽處理對(duì)一株紅酵母(Rhodotorulasp.)發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素的影響,在此基礎(chǔ)上并利用響應(yīng)面分析方法研究了其交互作用。結(jié)果表明,在溫度為15℃條件下處理48 h,pH3.5,NaCl濃度為2 mol/L的條件下,類胡蘿卜素最高產(chǎn)量達(dá)到31.04 mg/L,說明逆境對(duì)紅酵母發(fā)酵生產(chǎn)類胡蘿卜素具有促進(jìn)作用。
[1] 陳欣. 紅酵母發(fā)酵產(chǎn)類胡蘿卜素條件的優(yōu)化[J] . 食品科學(xué),2009, 30(15):176-179.
[2] Gruszecki WI, Strzalka K. Carotenoids as modulators of lipid membrane physical properties[J] . Biochim Biophys Acta, 2005,1740(2):108-115.
[3] Garrido-Fernandez J, Maldonado-Barragan A, Caballero-Guerrero B,et al. Carotenoid production inLactobacillus plantarum[J] . Int J Food Microbiol, 2010, 140(1):34-39.
[4] Edge R, El-Agamey A, Land EJ, et al. Studies of carotenoid oneelectron reduction radicals[J] . Arch Biochem Biophys, 2007, 458(2):104-110.
[5] 唐棠, 黃乾明, 楊群峰. 紅酵母Y-5 產(chǎn)類胡蘿卜素培養(yǎng)基無機(jī)鹽組分的優(yōu)化[J] . 食品科學(xué), 2011, 32(3):130-133.
[6] 劉卉琳, 劉紹, 蘭時(shí)樂, 等. 紅酵母的鑒定及其固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)類胡蘿卜素的研究[J] . 食品科技, 2011, 36(6):9-13.
[7] Saenge C, Cheirsilp B. Potential use of oleaginous red yeastRhodotorula glutinisfor the bioconversion of crude glycerol from biodiesel plant to lipids and carotenoids[J] . Process Biochem, 2012, (46):210-218.
[8] Aksu Z, Tugba Eren A. Carotenoids production by the yeastRhodotorula mucilaginosa:use of agricultural wastes as a carbon source[J] . Process Biochem, 2005, 40:2985-2991.
[9] Yuan L, Rouvière P, LaRossa R, et al. Chromosomal promoter replacement of the isoprenoid pathway for enhancing carotenoid production inE. coli[J] . Metab Eng, 2006, 8:79-90.
[10] Subczynski WK, Markowska E, Gruszecki WI, et al. Effects of polar carotenoids on dimyristoyl-phosphatidylcholine membranes:a spin-label study[J] . Biochim Biophys Acta, 1992, 1105(1):97-108.
[11] Chattopadhyay MK, Jagannadham MV, Vairamani M, et al.Carotenoid pigments of an antarctic psychrotrophic bacteriumMicrococcus roseus:temperature dependent biosynthesis, structure,and interaction with synthetic membranes[J] . Biochem Biophys Res Commun, 1997, 239(1):85-90.
[12] Schonfeld M, Neumann J. Proton conductance of the thylakoid membrane:modulation by light[J] . FEBS Lett, 1977, 73(1):51-54.
[13] Jagannadham MV, Narayanan K, Rao CM, et al.In vivocharacteristics and localisation of carotenoid pigments in psychrotrophic and mesophilicMicrococcus roseususing photoacoustic spectroscopy[J] . Biochem Biophys Res Commun, 1996, 227(1):221-226.
[14] Suzuki T, Sugiyama M, Wakazono K, et al. Lactic-acid stress causes vacuolar fragmentation and impairs intracellular amino-acid homeostasis inSaccharomyces cerevisiae[J] . J Biosci Bioeng,2012, 113(4):421-430.
[15] Sowmya R, Sachindra NM. Evaluation of antioxidant activity of carotenoid extract from shrimp processing byproducts byin vitroassays and in membrane model system[J] . Food Chemistry,2012, 134(1):308-314.
[16] Kim SH, Ahn YO, Ahn MJ, et al. Down-regulation of betacarotene hydroxylase increases beta-carotene and total carotenoids enhancing salt stress tolerance in transgenic cultured cells of sweetpotato[J] . Phytochemistry, 2012, 74:69-78.