張春梅,陳杰昌,張喜軍
披針葉黃華(Thermopsis lanceolate)別名叫牧馬豆或野決明,多年生草本,全世界約有30種,我國有8種及3變種,主要分布于東北、華北、內(nèi)蒙古、陜西、甘肅、寧夏、青海、新疆、四川等地區(qū),俄羅斯、蒙古也有分布。生于河岸草地、沙丘、林下灌叢中以及田邊、路邊,偶進(jìn)入農(nóng)田[1]。全草藥用,能去痰,止咳,有興奮呼吸,升高血壓的功效,主治祛痰止咳[2]。其毒性為全草有毒,產(chǎn)生神經(jīng)系統(tǒng)興奮和氣官刺激癥狀[3]。在藥學(xué)上,傳統(tǒng)日用化工及精細(xì)化工等領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用,具有極好的開發(fā)利用價(jià)值。通過植物組織培養(yǎng)方法快速繁殖披針葉黃華,不但加速品種繁育速度,還可擴(kuò)大種質(zhì)資源,保持優(yōu)良品種的特性。種子是建立植物無菌體系的良好外植體[4]。但披針葉黃華種子種皮太硬,出苗時(shí)間長[5]。本研究采用披針葉黃華種子作為試材,探討了培養(yǎng)基中不同種類、濃度碳源和激素對(duì)披針葉黃華種子無菌苗萌發(fā)的影響,為今后其組織培養(yǎng)或新品種選育奠定基礎(chǔ)。
披針葉黃華種子,MS培養(yǎng)基、葡萄糖、山梨醇、蔗糖、海藻糖、果糖,6-BA、NAA、2,4-D。
1.2.1 培養(yǎng)基 以MS培養(yǎng)基為基本培養(yǎng)基,分別加入碳源(葡萄糖、山梨醇、蔗糖、海藻糖、果糖),激素(6-BA、NAA、2,4-D),碳源分別設(shè)120、160、200、240mg/L 四個(gè)濃度,激素分別設(shè)0.2、0.4、0.6、0.8 、1.0mg/L 五個(gè)濃度,不加碳源、激素為對(duì)照。將配比好的培養(yǎng)基pH調(diào)至6.8,分裝到罐頭瓶中,121℃滅菌20min。
1.2.2 種子處理 將披針葉黃華種子用紗布包好,置于自來水沖洗10min,瀝干水分后,置于超凈工作臺(tái)上,取225粒種子置于75%的酒精溶液中消毒1min,無菌水沖洗5次,用含量8%~9%NaClO的活性氯消毒6min,再將種子用紗布包好放在無菌水中充分沖洗5次,瀝干置于接種盤上備用。
1.2.3 置床及發(fā)芽 預(yù)先將處理好的披針葉黃華種子接種到含有不同濃度碳源(葡萄糖、蔗糖、山梨醇、海藻糖、果糖)不同濃度激素(6-BA、NAA、2,4-D)的 MS培養(yǎng)基中,每瓶3粒,3次重復(fù)。置于27℃光照強(qiáng)度為2 000Lx恒溫培養(yǎng)箱連續(xù)培養(yǎng)7d,觀察其生長,測(cè)量幼苗生長長度,比較不同種類、濃度碳源以及激素對(duì)披針葉黃華種子無菌苗生長的影響。
1.2.4 統(tǒng)計(jì)分析 采用DPS9.50數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)對(duì)所得結(jié)果進(jìn)行分析。
2.1.1 不同濃度葡萄糖碳源培養(yǎng)基對(duì)披針葉黃華種子無菌苗生長狀況的影響 由表1可知,在各濃度葡萄糖碳源培養(yǎng)基中,披針葉黃華種子均能萌發(fā)為無菌苗,但低濃度葡萄糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有促進(jìn)作用,高濃度葡萄糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有抑制作用,披針葉黃華無菌苗生長的最佳葡萄糖濃度為160mg/L,與濃度為240mg/L差異顯著,說明披針葉黃華無菌苗不宜在較高濃度葡萄糖培養(yǎng)基中生長。
表1 不同濃度葡萄糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長狀況的影響
2.1.2 不同濃度蔗糖碳源培養(yǎng)基對(duì)披針葉黃華種子無菌苗生長狀況的影響 由表2可知,在各濃度蔗糖碳源培養(yǎng)基中,披針葉黃華種子都能萌發(fā)為無菌苗,但低濃度蔗糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有促進(jìn)作用,高濃度蔗糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有抑制作用,披針葉黃華無菌苗生長的最佳蔗糖濃度為200mg/L,與濃度為240、160mg/L差異顯著,與濃度為120mg/L存在極顯著差異,說明披針葉黃華無菌苗不適宜在較高或較低濃度蔗糖培養(yǎng)基中生長。
表2 不同濃度蔗糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長狀況的影響
2.1.3 不同濃度山梨醇碳源培養(yǎng)基對(duì)披針葉黃華種子無菌苗生長狀況的影響 由表3可知,在各濃度山梨醇碳源培養(yǎng)基中,披針葉黃華種子都能萌發(fā)為無菌苗,但低濃度山梨醇對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有促進(jìn)作用,高濃度山梨醇對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有抑制作用,披針葉黃華無菌苗生長的最佳山梨醇濃度為160mg/L,與濃度為200、120mg/L間差異顯著,與濃度為240mg/L存在極顯著差異,說明披針葉黃華無菌苗不宜在較高或較低濃度山梨醇培養(yǎng)基中生長。
表3 不同濃度山梨醇對(duì)披針葉黃華無菌苗生長狀況的影響
2.1.4 不同濃度海藻糖碳源培養(yǎng)基對(duì)披針葉黃華種子無菌苗生長狀況的影響 由表4可知,在各濃度海藻糖碳源培養(yǎng)基中,披針葉黃華種子都能萌發(fā)為無菌苗,低濃度海藻糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有促進(jìn)作用,高濃度海藻糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有抑制作用,披針葉黃華無菌苗生長的最佳海藻糖濃度為200mg/L,但與濃度為240、160mg/L差異不顯著,與濃度為120mg/L差異顯著,說明披針葉黃華無菌苗不宜在較低濃度海藻糖培養(yǎng)基中生長。
表4 不同濃度海藻糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長狀況的影響
2.1.5 不同濃度果糖碳源培養(yǎng)基對(duì)披針葉黃華種子無菌苗生長狀況的影響 由表5可知,在各濃度果糖碳源培養(yǎng)基中,披針葉黃華種子都能萌發(fā)為無菌苗,低濃度果糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有促進(jìn)作用,高濃度果糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長有抑制作用,披針葉黃華無菌苗生長的最佳果糖濃度為160mg/L,但與濃度為120、200mg/L間差異不顯著,與濃度為240mg/L差異顯著,說明披針葉黃華無菌苗不宜在較高濃度果糖培養(yǎng)基中生長。
表5 不同濃度果糖對(duì)披針葉黃華無菌苗生長狀況的影響
由表6可知,在最佳濃度的不同碳源培養(yǎng)基中,披針葉黃華種子都能生長成無菌苗,無菌苗在濃度為160mg/L的葡萄糖碳源的培養(yǎng)基上生長最快(表1)。與濃度為200mg/L的蔗糖存在差異,其次為160mg/L的山梨醇和果糖培養(yǎng)基,200mg/L的海藻糖次之,對(duì)照最差。
表6 不同碳源最適濃度顯著性分析
用葡萄糖、山梨醇、果糖作為碳源時(shí)披針葉黃華無菌苗生長的最佳濃度為160mg/L,而當(dāng)碳源為蔗糖、海藻糖作為碳源時(shí),其最佳濃度為200 mg/L。由此可見,培養(yǎng)基中碳源種類不同時(shí),其對(duì)應(yīng)最佳濃度亦不同。
表7 披針葉黃華無菌苗在不同碳源培養(yǎng)基中平均生長速度差異性分析
由表7可知,披針葉黃華無菌苗生長的最佳碳源為山梨醇、蔗糖、葡萄糖,其次為果糖與海藻糖。
由表8、9可以看中,當(dāng)6-BA與NAA或2,4-D以一定比配合使用時(shí),有些培養(yǎng)基能誘導(dǎo)出無菌苗,且6-BA的愈傷誘導(dǎo)能力明顯強(qiáng)于NAA。0.2mg/L 6-BA +0.8mg/L NAA 誘導(dǎo)率達(dá)到22.5%,無菌苗生長率最佳培養(yǎng)基為改良 MS基本培養(yǎng)基0.8mg/L NAA+0.4mg/L 6-BA,其誘導(dǎo)率達(dá)到26.7%。這足以說明披針葉黃華無菌苗誘導(dǎo)依賴NAA與6-BA的組合。由此可見,不同基因型、不同外植體來源和激素的配比對(duì)植物無菌苗的誘導(dǎo)差異很大。
表8 6-BA與NAA的不同濃度配比對(duì)披針葉黃華無菌苗的影響
表9 6-BA與2、4-D的不同濃度配比對(duì)披針葉黃華無菌苗的影響
無菌苗形成過程是一個(gè)植物基因型、外植體來源、培養(yǎng)基成分、培養(yǎng)條件等諸多因素之間相互作用的復(fù)雜過程,其中生長調(diào)節(jié)物質(zhì)的種類、含量及組成比例是調(diào)控植物器官產(chǎn)生無菌苗的主導(dǎo)因素[6]。在很多植物中,誘導(dǎo)愈傷時(shí)使用較多的是單獨(dú) 2,4-D[7-8]或者 2,4-D 和 6-BA 組合[9-10]。而橡膠樹花藥無菌苗的誘導(dǎo)以2,4-D和KT的組合為主[11]。而中國植物研究所通過添加0.5mg/L NAA+1.0mg/L 6-BA+1.2 mg/L 2,4-D 3種激素的組合來誘導(dǎo)葉片無菌苗的產(chǎn)生,但是愈傷誘導(dǎo)率的大小在文章中未見有說明[12]。
眾所周知,不同的培養(yǎng)基所含的營養(yǎng)物質(zhì)的成分不同,且同一培養(yǎng)基中不同的糖濃度對(duì)同一種外植體的作用不同。在植物組織培養(yǎng)中,外植體無菌苗的形成與培養(yǎng)基的成分等都密不可分。文心蘭的不同生長發(fā)育時(shí)期所需蔗糖濃度不一。在一定范圍內(nèi)提高糖濃度對(duì)文心蘭各誘導(dǎo)生長階段有明顯的促進(jìn)作用。組織培養(yǎng)試驗(yàn)證明培養(yǎng)基中高滲透勢(shì)或液體培養(yǎng)基有利于營養(yǎng)素和激素的運(yùn)轉(zhuǎn),有利于根的發(fā)生和形成質(zhì)量。植物組織培養(yǎng)中,在植物組織和細(xì)胞培養(yǎng)中,一般采用蔗糖、果糖和葡萄糖作為碳源。糖對(duì)次生代謝的作用,首先表現(xiàn)在不同的碳源對(duì)次生代謝產(chǎn)物的積累及細(xì)胞的生長不一致[13]。植物離體細(xì)胞作為生物反應(yīng)器具有生產(chǎn)周期短、易規(guī)?;⒉皇芡饨绛h(huán)境干擾而且產(chǎn)量高、化學(xué)穩(wěn)定性和化學(xué)特性好等特點(diǎn)[14],利用植物離體細(xì)胞培養(yǎng)進(jìn)行次生代謝物質(zhì)的生產(chǎn)一直受到學(xué)術(shù)界的重視,也取得了很大進(jìn)展(如紫草寧、人參皂甙、紫杉醇等)[15-16]。無菌苗經(jīng)長期繼代后分化能力的保持問題,一直是細(xì)胞工程研究中的重要課題[17]。已有不少報(bào)道指出,無菌苗長期繼代后,分化能力降低是較為普遍的現(xiàn)象[18],像胡蘿卜、煙草和水稻,在繼代多次后,無菌苗分化植株的能力就會(huì)完全消失[19-20]也有一些植物的無菌苗在繼代中,它們分化能力是可以很好保持的。如玉米,花粉無菌苗繼代2年后仍有很強(qiáng)的植株再生能力[21],而無菌苗,有的品種繼代保存了近10年了,仍有很強(qiáng)的再生能力,而有的品種剛剛誘導(dǎo)出無菌苗不長時(shí)間后,就喪失再生能力。其原因可能與披針葉黃華的基因型有關(guān)。有文獻(xiàn)報(bào)道,改變碳源能夠誘導(dǎo)體胚發(fā)生[22-23]。但本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),不同碳源對(duì)披針葉黃華無菌苗生長的影響各異。葡萄糖和蔗糖有利于披針葉黃華無菌苗的生長,山梨醇和果糖對(duì)披針葉黃華無菌苗的生長影響較小,而海藻糖不利于披針葉黃華無菌苗的生長。披針葉黃華無菌苗在不同碳源培養(yǎng)基上的生長能力大小不同。其機(jī)理有待于進(jìn)一步探討。
[1] 李勇,晁向陽,張永康.披針葉黃華的研究,2007(1):81-82.
[2] 曾建飛.披針葉黃華,北京:中國高等植物圖鑒,2002,(2)104-105.
[3] 朱忠珂,趙寶玉.披針葉黃華總生物堿對(duì)小鼠的研究[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)2003(2)31-32.[4] 魏春雁.披針葉黃華的研究[M].長春:吉林科學(xué)出版社,2004.
[5] 周俊輝,周厚高,劉花全.植物組織培養(yǎng)中的內(nèi)生細(xì)菌污染問題[J].廣西植物,2003,23(1):41-47.
[6] 鄭先波,夏國海,崔紅.無籽西瓜種苗無菌苗生長研究[J].河南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2003,37(1):39-43.
[7] 沈雁,周煥起,曹紅星.不同外源激素對(duì)油棕?zé)o菌苗生長的影響[J].種子,2010,29(7):37-39.
[8] 張文君,楊春華,劉帆.不同激素配比對(duì)草地早熟禾無菌苗形成的影響[J].四川農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,28(2):187-190.
[9] 彭麗萍,張遠(yuǎn)兵,胡正和.中國櫻桃離體葉片無菌苗生長的研究[J].安徽農(nóng)學(xué)通報(bào),2010,16(17):51-53.
[10] 尹美強(qiáng),王玉國,溫銀元.梨棗葉片和莖段再生體系的建立[J].西北植物學(xué)報(bào),2005,25(10):1954-1959.
[11] Kumari J P,Asokan M P,Sobha S.Somatic embryogenesisand plant regeneration from immature anthers ofHevea brasiliensis(Muell.Arg.)[J].Current Science,2009,76(9):1242-1245.
[12] Kala R G,Kuruvila L,Kumari Jayasree P.Secondary embryogenesis and plant regeneration from leaf derived somatic embryos of Hevea brasiliensi[J].Journal of plantation crops,2008,36(3):218-222.
[13] Jin Hoon Kim,Jeong hwan Yun,Yong Soon Hwang.Pro duction of taxol and taxanes in Taxus brevifolia cell cultures:effect of sugar[J].Biotechnology,2005,17(1):101.
[14] 郭志剛.植物細(xì)胞培養(yǎng)生產(chǎn)珍稀名貴藥用植物替代資源的研究進(jìn)展[J].高科技與產(chǎn)業(yè)化,2005,12:42-43.
[15] 呂春茂,范海延,姜河.植物細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)合成次生代謝物質(zhì)研究進(jìn)展[J].云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2007,22(1):1-6.
[16] 李曉蕙,陳蕾.植物細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)的發(fā)展與應(yīng)用[J].安徽農(nóng)學(xué)通報(bào),2006,12(5):74-75.
[17] Hao Y J,Deng X X.Stress treatments and DNA methylation affect somatic embryogenesis from citrus callus[J].Acta Bot Sin,2002,44(6):673-677.
[18] Etienne H,Bertrand B.Somaclonal variation in coffea arabica:effects of genotype and embryogenic cell suspension age on frequency and phenotype of variants[J.Tree Physiol,2003,23(6):419-426.
[19] Button J.The effects of some carbonhydrates on the growth and organization of citrus ovular callus [J].Z Pflanzenphysiol,2001,88:61-68.
[20] Kochba J,Spiegel Roy P,Neumann H.Stimulation of embryogenesis in citrus tissue culture by galactose[J].Naturwissenschaften,2004,65:261-262.
[21] 武琳,鐘敏,涂國全.理化因子預(yù)處理對(duì)玉米芯糖化的影響[J].江西師范大學(xué)學(xué)報(bào),2010,34(1):98-101.23(6)419-426.
[22] 張俊娥,郭文武,鄧秀新.無菌苗倍性變化及其與體細(xì)胞胚胎發(fā)生能力的關(guān)系[J].遺傳學(xué)報(bào),2006,33(7):647-654.
[23] 范國強(qiáng),翟曉巧,蔣建平.不同種泡桐葉片無菌苗生長及其植株再生[J].林業(yè)科學(xué),2002,38(1):29-35.