（湖南農(nóng)業(yè)大學動物科學技術(shù)學院，湖南長沙410128）

斷奶應(yīng)激一直是困擾養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展的主要問題之一，早期斷奶受影響最大的是腸道，特別是在斷奶前后，仔豬的腸道生長發(fā)育非常快[1]，斷奶往往導致其形態(tài)、結(jié)構(gòu)和功能均發(fā)生很大的變化，加上飼料、環(huán)境等多種外界因素的影響，仔豬非常容易產(chǎn)生斷奶應(yīng)激。在近半個世紀來的研究中，功能性氨基酸的研究一直是各國學者研究的熱點[2-3]，其中精氨酸就是一個亮點[4]。精氨酸是一種重要的堿性氨基酸，具有許多十分重要的生物學功能。其在幼齡哺乳動物和成年動物體內(nèi)分別為必需氨基酸和條件性必需氨基酸[5-7]；精氨酸參與了動物機體內(nèi)多種酶的代謝過程，是許多重要物質(zhì)合成的前體物質(zhì)[8]；此外，精氨酸還可作為豬體內(nèi)胰島素的促分泌素[9-12]，提示其對調(diào)控豬生長發(fā)育與繁殖生理的重要意義。本研究擬探索精氨酸對斷奶仔豬生產(chǎn)性能、血清激素水平和生化指標的影響，以期為精氨酸的科學應(yīng)用提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗動物與飼養(yǎng)管理

飼養(yǎng)試驗于2013年4月在江西某規(guī)?；i場進行。選用21d、體重為6.2kg左右的三元雜交斷奶仔豬270頭，按體重相近、公母比例一致的原則隨機均分為5組，每組6個重復，每個重復9頭。A組為對照組，飼喂基礎(chǔ)日糧（2.05%水平的丙氨酸）；B、C、D、E組分別在基礎(chǔ)日糧的基礎(chǔ)上添加0.5%、1.0%、1.5%和2.0%水平的Arg。試驗期為7d，按照豬場正常程序進行驅(qū)蟲和防疫。試驗期間每日觀察并記錄仔豬的健康狀況，記錄死淘情況。

1.2 試驗日糧

參照NRC（1998）營養(yǎng)需要推薦及飼養(yǎng)標準配制基礎(chǔ)日糧，日糧組成及營養(yǎng)成分見表1。（每千克基礎(chǔ)日糧含：銅，10mg；鐵，100mg；硒，0.3mg；鋅，100mg；錳，10mg；維生素D3，386IU；維生素A，3086IU；維生素E，15.4IU；維生素K，2.3mg；維生素B2，3.9mg；泛酸，15.4mg；煙酸，23mg；維生素B12，15.4ug；氨基酸含量（%）為：丙氨酸，0.88；精氨酸，0.97；半胱氨酸，0.38；谷氨酸鹽，3.30；甘氨酸，0.64；組氨酸，0.40；異亮氨酸，0.65；亮氨酸，1.54；賴氨酸，0.91；蛋氨酸，0.33；苯丙氨酸，0.90；脯氨酸，1.36；絲氨酸，0.80；蘇氨酸，0.62；色氨酸，0.16；酪氨酸，0.43；纈氨酸，0.74。）

1.3 檢測指標及方法

1.3.1 生長性能

試驗開始和結(jié)束時，以欄為單位對所有試驗豬進行空腹稱重，統(tǒng)計耗料量，計算平均日增重（ADG）、平均日采食量（ADFI）和料肉比（F/G）。

ADG=（末重－初重）/天數(shù)/頭數(shù)；ADFI=欄總采食量/天數(shù)/欄頭數(shù)；F/G=ADFI/ADG。

1.3.2 血清生化參數(shù)測定

飼養(yǎng)試驗結(jié)束后，每個重復選擇體重接近的仔豬2頭進行前腔靜脈采血10mL，3000r/min離心10min分離血清，用CX4型全自動生化分析儀測定血清總蛋白（TP）、白蛋白（ALB）、低密度脂蛋白（LDL）、尿素氮（SUN）、膽堿（CHOL）的含量以及乳酸脫氫酶（LDH）、谷草轉(zhuǎn)氨酶（GOT）、堿性磷酸酶（ALP）、谷丙轉(zhuǎn)氨酶（GPT）的活性。測定方法按照試劑盒說明進行，試劑盒均購買于天根生物有限公司。

1.3.3 血清免疫指標以及激素的測定

試驗試驗結(jié)束后，每個重復選擇體重接近的仔豬2頭進行前腔靜脈采血10mL，3000r/min離心10min分離血清，血清三碘甲狀腺原氨酸（T3）和四碘甲狀腺原氨酸（T4）胰島素（Ins），胰高血糖素（PG）、皮質(zhì)醇（Cor）采用放射免疫試劑盒測定，試劑盒購自北京原子高科技股份有限公司。

1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

試驗數(shù)據(jù)用平均值±標準差的形式表示，利用SPSS17.0軟件進行統(tǒng)計分析處理，其中，P＜0.05表示差異顯著。

2 結(jié)果與分析

2.1 精氨酸對斷奶仔豬生長性能的影響

表2顯示了不同水平Arg對斷奶仔豬生產(chǎn)性能的影響，與A組相比，C、D、E3組的平均日采食量顯著提高（P＜0.05），而料肉比則顯著降低（P＜0.05）；D、E2組的平均日增重要顯著高于對照組（P＜0.05）。這表明日糧中添加一定水平的Arg后有效的提高了斷奶仔豬的生長性能，且添加1.5%水平Arg的效果最好，而E組仔豬的ADFI和ADG有增加的趨勢，F(xiàn)/G也有降低的趨勢，但是差異均不顯著（P＞0.05）。結(jié)果表明精氨酸對斷奶仔豬生產(chǎn)性能的改善作用呈現(xiàn)出正拋物線的趨勢，隨著添加劑量的升高，表現(xiàn)出先增加后降低的特點。

2.2 精氨酸對斷奶仔豬血液生化指標的影響

表3顯示了不同劑量精氨酸對斷奶仔豬血液生化指標的影響。雖然對照組和試驗組各指標之間均不存在顯著差異，但可以明顯看到，精氨酸的添加在一定程度上提高了斷奶仔豬血清中總蛋白、白蛋白、堿性磷酸酶和谷丙轉(zhuǎn)氨酶含量；并在一定程度上降低了仔豬血清中低密度脂蛋白、乳酸脫氫酶、谷草轉(zhuǎn)氨酶含量。說明精氨酸的添加能在一定程度上影響斷奶仔豬的血液生化指標。

2.3 精氨酸對斷奶仔豬血清激素的影響

表4顯示了精氨酸對斷奶仔豬血清激素水平的影響。C、D2組斷奶仔豬血清中的三碘甲狀腺原氨酸、皮質(zhì)醇的含量均顯著低于對照組（P＜0.05），而胰高血糖素的含量、四碘甲狀腺原氨酸、胰島素的濃度高于對照組，差異不顯著（P＞0.05）。

3 討論

3.1 精氨酸對斷奶仔豬生長性能的影響

精氨酸可以使斷奶仔豬的生長性能得到有效改善。在斷奶仔豬日糧中添加0.3%水平的精氨酸能使斷奶仔豬的日增重、飼料轉(zhuǎn)化率及肌肉中精氨酸的濃度均較對照組顯著提高；在7日齡仔豬代乳品中分別添加0.2%和0.4%水平的精氨酸，仔豬的平均日增重能分別增加28%和66%，而體重能分別增加15%和32%。在本研究中，不同劑量的精氨酸均在一定程度上提高了斷奶仔豬的生長性能，且以1.5%添加水平的效果最好。精氨酸能促進生長激素的釋放，進而提高生長激素對促生長激素釋放激素的敏感度，這可能是精氨酸提高斷奶仔豬生長性能的潛在機理。給7～21日齡仔豬飼糧中添加0.4%水平的精氨酸，其血清中胰島素和生長激素水平能顯著增加24%～27%，這表明精氨酸是通過提高生長激素水平來提高動物的生長性能的，但具體機制還有待于進一步研究。但在本論文中，雖然沒有觀察到胰島素的大量釋放，但精氨酸組胰島素、胰高血糖素的含量高于對照組（P＞0.05），可能是由于血液樣品采集不及時造成的。

3.2 精氨酸對斷奶仔豬血液生化指標的影響

球蛋白、白蛋白含量及谷草轉(zhuǎn)氨酶、谷丙轉(zhuǎn)氨酶活性是反應(yīng)動物是否處于應(yīng)激狀態(tài)的重要指標。在應(yīng)激狀態(tài)下，動物機體血清中白蛋白和球蛋白含量會呈現(xiàn)下降的趨勢，而谷丙轉(zhuǎn)氨酶和谷草轉(zhuǎn)氨酶含量則會出現(xiàn)升高的趨勢。在脂多糖刺激下，添加0.5%和1%水平的精氨酸能有效提高仔豬血清中總蛋白和白蛋白的含量，進而緩解LPS對斷奶仔豬的刺激。在本研究中，試驗組豬血清中的白蛋白和總蛋白含量均較對照組有所提高，說明精氨酸能夠有效提高仔豬的免疫力，緩解斷奶應(yīng)激。另外，精氨酸還由于其在尿素循環(huán)中的特殊位置，可以降低血氨濃度，減少機體細胞損傷，進而提高動物機體的免疫能力。

3.3 精氨酸對斷奶仔豬血清激素水平的影響

皮質(zhì)醇是由下丘腦—垂體—腎上腺軸分泌，是負反饋調(diào)節(jié)免疫反應(yīng)的重要成分，可防止免疫反應(yīng)過強造成對機體的損害，其水平的變化是應(yīng)激反應(yīng)的重要標志。過高的皮質(zhì)醇可以抑制生長激素、甲狀腺激素、胰島素的分泌，從而降低生物有機體的基礎(chǔ)代謝，阻礙動物生長。精氨酸可以降低血液中皮質(zhì)醇的濃度，促進生長激素、胰島素的釋放，提高生長激素對促生長激素釋放素的敏感度，有效的緩解斷奶應(yīng)激，從而提高斷奶單位的生長性能。在本研究中，添加精氨酸的試驗組與對照組相比，皮質(zhì)醇的濃度顯著較低，而甲狀腺激素、胰島素、胰高血糖素也有一定程度的升高，說明精氨酸可以通過調(diào)節(jié)仔豬血清中激素的水平來有效緩解仔豬斷奶應(yīng)激。

4 結(jié)論

通過在基礎(chǔ)中添加精氨酸，可以提高斷奶仔豬的生長性能和飼料的利用率；有效抑制皮質(zhì)醇的釋放，刺激胰島素和胰高血糖素以及甲狀腺激素的釋放，從而有效地緩解斷奶應(yīng)激。在本研究中，1.5%水平Arg的添加效果最好。

[1]Adeola O,King D E.Development changes in morphometry of the small intestine and jejunal sucrose activity during the first nine weeks of poetnatal growth in pigs[J]. Journal of Animal Science, 2006, 84: 112-118.

[2]Roth E. Immune and cell modulation by amino acids[J].Clinical Nutrition, 2007, 26: 535-544.

[3]Wu G Y, Bazer F W, Davis T A, et al. Arginine metabolism and nutrition in growth,health and disease[J].Amino Acids,2009, 37: 153-168.

[4]印遇龍.豬氨基酸營養(yǎng)與代謝[M].北京：科學出版社,2008.

[5]Visek W J. Arginine needs, physiological states and usual diets[J]. Nutrients, 1986, 116: 36-46.

[6]Flynn N E, Meininger C J, Haynes T E. The metabolic basis of arginine nutrition and pharmacotherapy[J].Biomedicine & Pharmacotherapy, 2002, 56: 427-438.

[7]Southern L L, Baker D H. Arginine requirement of the young pig[J]. Animal Science Journal, 1983, 57: 402-412.

[8]Kim S W, McPherson R L, Wu G. Dietary arginine supplementation enhances the growth of milk-fed young pigs[J]. Journal of Nutrition, 2004, 134: 625-630.

[9]Wu G, Knabe D A, Kim S W. Arginine nutrition in neonatal pigs[J]. Nutrients, 2004, 134: 2783S-2390S.

[10]Mateo R D, Wu G, Bazer F W, et al. Dietary L-arginine supplementation enhances the reproductive performance of gilts[J]. Journal of Nutrition, 2007, 137: 652-656.

[11]Laspiur J P, Farm C, Kerr B J, et al. Hormonal response to dietary L-arginine supplementation in heat-stressed sows[J]. Canadian Journal of Animal Science, 2006, 86:373-381.

[12]Mateo R D, Wu G, Moon H K, et al. Effects of dietary arginine supplementation during gestation and lactation on the performance of lactating primiparous sows and nursing piglets[J]. Journal of Animal Science, 2008, 86: 827-835.