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      重組豬α干擾素的體外活性測定和凍干保護(hù)劑的篩選

      2014-09-18 05:32:58蔡家利尹忠寶朱廣倍任燕斌吳勝昔黃國光
      關(guān)鍵詞:保護(hù)劑凍干甘露醇

      蔡家利,尹忠寶,朱廣倍,任燕斌,吳勝昔,黃國光

      (重慶理工大學(xué)藥學(xué)與生物工程學(xué)院,重慶 400054)

      豬病毒病一直是阻礙養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展的一大因素[1],我國每年因豬的病毒性疾病造成的經(jīng)濟(jì)損失達(dá)數(shù)十億元。對于豬的病毒性傳染病(如豬瘟、口蹄疫、豬繁殖與呼吸綜合征等),目前主要靠疫苗進(jìn)行預(yù)防。隨著對抗病毒藥物的管理愈加嚴(yán)格,動物的病毒性傳染病的治療只有依靠高免血清或病毒干擾制劑,因此,動物病毒病愈加需要更經(jīng)濟(jì)、安全、有效的藥物。干擾素是由機(jī)體細(xì)胞產(chǎn)生的一類高活性多功能糖蛋白,具有廣譜抗病毒、抗腫瘤活性及免疫調(diào)節(jié)等多種功能,其中又以α-干擾素的廣譜抗病毒作用最為顯著。利用基因工程技術(shù)獲得的具有生物學(xué)活性的重組豬α-干擾素對豬病毒感染的防治具有重要的意義[2]。

      筆者所在實(shí)驗(yàn)室在前期研究的基礎(chǔ)上,進(jìn)行了干擾素的可溶性表達(dá)和純化工藝的研究,但需對產(chǎn)品活性高低和冷凍干燥方法進(jìn)行研究。因此,本文旨在對該方法制備的干擾素進(jìn)行體外活性測定和凍干保護(hù)劑的篩選,從而為干擾素注射劑的進(jìn)一步研究奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 菌株、毒株和細(xì)胞

      大腸桿菌BL-21干擾素工程菌株、Marc-145細(xì)胞株均由重慶理工大學(xué)生物制藥實(shí)驗(yàn)室保存,豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)毒株由南京農(nóng)業(yè)大學(xué)饋贈。

      1.1.2 主要試劑及材料

      Ni-NTA Sefinose Resin填料購自生工生物工程有限公司;蛋白Marker和牛血清白蛋白購自鼎國昌盛生物技術(shù)公司;四季青無支原體新生牛血清購自浙江天杭生物科技有限公司;甘露醇為溫州市東升化工試劑廠產(chǎn)品。

      1.1.3 儀器

      LaboGene冷凍干燥機(jī),型號:Coolsafe 110-4;全自動凝膠成像系統(tǒng),型號:Gel Doc EZ,廠家:美國伯樂公司。

      1.1.4 凍干保護(hù)劑的含量

      選擇甘露醇和牛血清白蛋白作為保護(hù)劑,含量分別為1%,3%,5%。

      1.2 樣品制備

      重組豬α干擾素按照本實(shí)驗(yàn)室已建立的誘導(dǎo)表達(dá),采用純化工藝進(jìn)行制備[3]。取保存的干擾素工程菌株,接種到含氨芐青霉素(Amp)100 μg/mL的固體LB平板,分離單菌落。挑取單一菌落接種到50 mL含Amp(100 μg/mL)的液體LB培養(yǎng)基,37℃、200 r/min過夜培養(yǎng)。將菌液按體積比1∶100的比例接種到2 L含Amp(100 μg/mL)的液體LB培養(yǎng)基,37℃、200 r/min培養(yǎng)至 OD600為0.6~0.8時(shí),加入終濃度為0.5 mmol/L的異丙基硫代半乳糖苷(IPTG),20℃、120 r/min誘導(dǎo)10 h。收集菌液,5000 r/min離心收集菌體,稱重,按10 mL/g菌體加入裂解液使其重懸,超聲破菌。破菌液10000 r/min離心收集上清液。用0.45 μm濾膜過濾一次,上樣到已平衡好的Ni-NTA親和層析柱,收集穿透液。用平衡buffer平衡柱子收集平衡液,再用20 mmol/L,200 mmol/L咪唑洗脫,用SDS-PAGE分析純化效果。洗脫液用0.01 mol/L的磷酸鹽緩沖液(PBS)透析,所得即為干擾素原料。

      1.3 PRRSV 的擴(kuò)增

      按常規(guī)方法培養(yǎng)Marc-145細(xì)胞,至細(xì)胞長成單層。棄去細(xì)胞培養(yǎng)中的瓶上清液,用PBS(0.01 mol/L)清洗2次。加入1mL提前融化的毒種,37℃吸附1 h,每15 min搖勻一次。棄去病毒液,加入5 mL含2%小牛血清的DMEM維持液,37℃繼續(xù)培養(yǎng)。每天觀察細(xì)胞病變情況,當(dāng)80%細(xì)胞產(chǎn)生病變時(shí),反復(fù)凍融3~4次,吹散并分裝到無菌Eppendorf離心管中,-80℃保存。

      1.4 PRRSV的細(xì)胞培養(yǎng)半數(shù)感染量 CCID50測定

      將細(xì)胞消化成單個細(xì)胞,加10%完全培養(yǎng)基吹打成細(xì)胞懸液。計(jì)數(shù)并稀釋至每毫升含105個細(xì)胞。以每孔100 μL懸液接種到96孔板,邊緣孔各加100 μL無菌水或PBS。待細(xì)胞長滿孔底,棄去上清,用PBS洗去殘余血清,2號列加入無血清培養(yǎng)基,3~11列分別加入10倍系列稀釋的病毒液。37℃吸附1h,棄去上清,每孔加入100 μL維持液。37℃培養(yǎng)觀察,當(dāng)最高濃度孔細(xì)胞80%以上發(fā)生病變時(shí),讀取每個稀釋度發(fā)生病變的孔數(shù)并做記錄,按Reed-Muench法[4]計(jì)算公式計(jì)算病毒 CCID50。

      1.5 干擾素活性測定[5]

      保存的干擾素用含7%血清的DMEM培養(yǎng)基稀釋至31.84 μg/mL,并做4倍系列稀釋,共7個稀釋度。取病毒液,稀釋至100倍CCID50。96孔板培養(yǎng)細(xì)胞同上。將孔板按以下程序進(jìn)行實(shí)驗(yàn):棄去上清,每孔加梯度稀釋的干擾素100 μL作用18 h,然后洗去殘余血清,每孔加100 μL病毒稀釋液攻毒1 h,換維持液,37℃培養(yǎng)觀察。96孔板布局如下(邊緣孔加無菌水):2號列做空白對照;3號列為干擾素組,不加病毒;4號列為病毒組,不加干擾素;5~11列為實(shí)驗(yàn)組。72 h后讀取每個稀釋度發(fā)生病變的孔數(shù)并做記錄,按Reed-Muench法計(jì)算干擾素活性。

      1.6 凍干保護(hù)劑的篩選

      1.6.1 分裝

      按照配方配制干擾素溶液,在潔凈層流局部100級超凈臺中,用0.22 μm濾膜除菌過濾,分裝在潔凈的青霉素瓶中,每瓶分裝4 mL。

      1.6.2 凍干

      -80℃預(yù)凍3 h,放入已調(diào)試好的凍干機(jī)中進(jìn)行凍干。48 h后取出樣品,-20℃保存。

      1.6.3 凍干成品測定

      ①外觀檢查:應(yīng)為白色疏松體,骨架成型好;② 體外活性測定:凍干成品溶解后,按照1.5節(jié)方案進(jìn)行活性測定。

      2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      2.1 干擾素的制備

      SDS-PAGE電泳膠經(jīng)凝膠成像系統(tǒng)掃描,干擾素條帶位置與前期研究結(jié)果一致(圖1)。干擾素在200 mmol洗脫液中純度可達(dá)到90%以上。通過Bradford法測定,200 mmol洗脫液中蛋白濃度為3.79 mg/mL,干擾素表達(dá)量達(dá)到每升菌液121.28 mg,占菌體總蛋白的30%以上,實(shí)現(xiàn)了干擾素的高效表達(dá)。

      2.2 PRRSV 增殖

      細(xì)胞在接種病毒后發(fā)生皺縮,形成網(wǎng)狀隆起且病變逐漸增多,如圖2所示。

      2.3 PRRSV 的 CCID50的測定

      PRRSV感染Marc-145細(xì)胞的情況(見表1),細(xì)胞對照組均無細(xì)胞病變。計(jì)算得增殖的PRRSV的 CCID50為10-5.5/0.1 mL。利用 Marc -145 細(xì)胞成功獲得了高滴度的PRRSV。

      圖1 干擾素蛋白SDS-PAGE電泳

      圖2 接種病毒后與正常細(xì)胞對比

      表1 PRRSV感染Marc-145細(xì)胞觀察結(jié)果

      2.4 重組豬IFN-α活性測定

      記錄重組豬α干擾素對Marc-145細(xì)胞病變保護(hù)的結(jié)果如表2所示。按Reed-Muench法計(jì)算干擾素的比活性為4.41×105U/mg,細(xì)胞對照組均未發(fā)生病變,病毒對照組均出現(xiàn)病變,達(dá)到了《中華人民共和國獸用生物制品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)》的要求。

      表2 重組豬α干擾素對Marc-145細(xì)胞病變保護(hù)的結(jié)果

      2.5 凍干保護(hù)劑篩選

      2.5.1 外觀檢查

      含1%、3%、5%的甘露醇樣品,表面平整,均勻一致,與空白組沒有明顯區(qū)別;含3%和5%白蛋白的樣品在同樣的條件下出現(xiàn)萎縮;含1%白蛋白的樣品稍微離壁。根據(jù)凍干產(chǎn)品的外觀要求,含3%和5%白蛋白的樣品不再進(jìn)行活性測定。

      2.5.2 體外活性測定

      經(jīng)過活性測定,3種含量的甘露醇保護(hù)率均在90%以上,而3%甘露醇的保護(hù)率最高。1%白蛋白對干擾素的保護(hù)率僅有73.47%,故選擇3%甘露醇作為凍干保護(hù)劑(表3)。

      表3 凍干保護(hù)劑篩選

      3 討論與結(jié)論

      目前干擾素活性測定的規(guī)定方法是采用WISH/VSV系統(tǒng)進(jìn)行細(xì)胞病變抑制法實(shí)驗(yàn),但也有研究采用 Marc-145/PRRSV系統(tǒng)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)[6]。本研究選擇Marc-145/PRRSV系統(tǒng)進(jìn)行活性測定更具有針對性。

      對于凍干保護(hù)劑的選擇,應(yīng)力求成本低、無污染、配方簡單[8]。血清白蛋白是經(jīng)典的凍干保護(hù)劑,雖然血液制品的安全性一直限制著血清白蛋白的應(yīng)用[9],但仍有一些產(chǎn)品使用血清白蛋白作為凍干保護(hù)劑。甘露醇無吸濕性,干燥快,在凍干制品中既可以作為載體又可以作為賦形劑,同時(shí)價(jià)格低廉,生物相容性好。經(jīng)過對比性實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)甘露醇對干擾素凍干保護(hù)效率較高,因此選擇甘露醇作為凍干保護(hù)劑。對于凍干工藝的研究,是下一步研究要解決的問題。

      本研究中,干擾素蛋白為可溶性表達(dá),可以在實(shí)現(xiàn)高效表達(dá)的同時(shí)具有較強(qiáng)的活性,一步純化即可獲得較高純度的產(chǎn)品。經(jīng)保護(hù)率測定,用3%甘露醇作為保護(hù)劑可以有效保護(hù)蛋白活性免受冷凍干燥的影響,對豬α干擾素凍干粉針劑型的進(jìn)一步研究具有很重要的意義。

      [1]Susan L,Brockmeier,Crystal L L.The Presence of Alpha Interferon at the Time of Infection Alters the Innate and Adaptive Immune Responses to Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus[J].Clinical and Vaccine Immunology,2012,19(4):508 -514.

      [2]Robert M F.Antiviral Activity of Interferons[J].Bacteriological Reviews.1977,41(3):543 -567.

      [3]蔡家利,戶國達(dá),孫加燕,等.重組豬IFN-α的構(gòu)建及原核可溶性表達(dá)研究[J].重慶理工大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2013,27(2):23 -27.

      [4]中華人民共和國農(nóng)業(yè)部.中華人民共和國獸用生物制品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)(2001年)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)科技出版社,2001:附錄314 -315.

      [5]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典第三部(2010年)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:附錄 71-72.

      [6]王彥彬,黃艷群,崔保安,等.豬α干擾素在桿狀病毒中表達(dá)及其對PRRSV的抑制作用[J].中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2009,29(12):1522 -1526.

      [7]段博芳,沈艷萍,楊貴樹,等.PRRSV云南株的分離鑒定[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2010,31(4):11 -15.

      [8]董世娟,朱于敏,于瑞嵩,等.重組豬干擾素凍干保護(hù)劑的篩選[J].中國獸藥雜志,2010,44(3):37 -40.

      [9]張代寶,吳志明,趙明軍,等.干擾素制劑凍干技術(shù)研究進(jìn)展[J].中國畜牧獸醫(yī),2012,39(8):57 -60.

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