王成愛

摘要:核小體定位是參與真核生物基因表達(dá)調(diào)控的一種重要的表觀遺傳因素,深刻影響基因轉(zhuǎn)錄?DNA復(fù)制與修復(fù)等生物學(xué)過(guò)程?對(duì)于在許多基因位點(diǎn),比如轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)(TSS)?轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)(TFBS)等處的核小體定位已有不少報(bào)道?主要介紹了核小體的定位特性,綜述了轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)處核小體的定位特征,分別從序列依賴性因素和DNA甲基化?組蛋白變體及修飾?染色質(zhì)重塑?可變剪接等表觀遺傳因素較為詳細(xì)地概括了轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位的研究進(jìn)展?

關(guān)鍵詞:表觀遺傳;序列依賴性;轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)(TSS);核小體定位

中圖分類號(hào):Q344+.1文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A文章編號(hào):0439-8114(2014)10-2233-05

Advances on Nucleosome Mapping Around TSS

WANG Cheng-ai

(School of Mathematics,Physics and Biological Engineering,Inner Mongolia University of Science and Technology,Baotou 014010,Inner Mongolia,China)

Abstract: Nucleosome mapping,an important epigenetic factor participating in regulating eukaryotic gene expression, deeply affects lots of biological processes,including gene transcription,DNA replication,DNA repair and so forth. The nucleosome mapping around TSS and TFBS has been reported properties of nucleosome mapping were introduced in this paper. Features in nucleosome mapping around TSS were summarized. Advances on nucleosome mapping around TSS from both the DNA sequence-dependent factor and some epigenetic factors including DNA methylation, variants and modification of histone,chromation remodeling,alternative splicing were reviewed.

Key words:epigenetic; DNA sequence-dependent; TSS; nucleosome mapping

核小體是真核生物中染色質(zhì)的基本組成單位,而核小體定位是目前生命科學(xué),特別是表觀遺傳學(xué)研究領(lǐng)域的一個(gè)熱點(diǎn)問(wèn)題?核小體是由核心DNA約147 bp,纏繞在組蛋白八聚體周圍約1.65圈而成,串聯(lián)并進(jìn)一步折疊成為染色質(zhì)纖維[1]?研究發(fā)現(xiàn),真核生物基因組DNA有3/4以上被核小體所占據(jù)?可以這樣說(shuō),核小體定位是指核小體在基因組上的位置,通過(guò)控制蛋白結(jié)合位點(diǎn)等因素參與基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控過(guò)程?一些順式作用元件比如Poly A序列?GC含量和序列模體等,是影響低等真核生物中核小體定位的主要因素,而高等生物核小體多數(shù)服從統(tǒng)計(jì)定位[2]?核小體定位受到DNA序列因素的影響,但很多研究表明表觀遺傳因素對(duì)核小體定位同樣起著重要的作用?很多研究報(bào)道轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)(TSS)序列外顯子處核小體占據(jù)率高于內(nèi)含子,DNA轉(zhuǎn)錄位點(diǎn)基因間區(qū)?啟動(dòng)子?5′NFR等處核小體分布較少?鑒于此,有研究認(rèn)為AA/TT/TA是核小體定位密碼[3],鄰近核小體?染色質(zhì)高級(jí)結(jié)構(gòu)也影響核小體定位?一些表觀遺傳因素引起的DNA結(jié)構(gòu)多樣性,也同樣影響核小體定位[4]?然而,多種因素導(dǎo)致的基因功能位點(diǎn)附近核小體的有無(wú)或者位置的不同均會(huì)影響基因表達(dá)調(diào)控?

1轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位研究概況

核小體定位是一種重要的表觀遺傳因素,影響基因表達(dá)調(diào)控;而對(duì)于轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)附近的核小體定位特征研究的也比較多?目前,研究人員做了關(guān)于人類以及酵母基因組的數(shù)據(jù)分析,發(fā)現(xiàn)核小體定位有重要的偏好性序列特征,TSS處核小體定位參與基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié),也與一些非組蛋白因子的影響有關(guān)?Li等[5]通過(guò)研究小鼠肝臟的核小體定位圖譜,發(fā)現(xiàn)DNA上核小體的定位能夠調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄水平?

1.1轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位的特征

TSS附近核小體定位具有重要的序列特征?Arya等[6]報(bào)道了缺乏和含有TATA盒的兩種啟動(dòng)子核小體定位不同?后者位于離TSS上游25~125 bp處,核小體缺失區(qū)域不明顯,這種啟動(dòng)子可能被核小體完全占據(jù),或者促進(jìn)TSS下游核小體占據(jù)?TSS和一些轉(zhuǎn)錄激活結(jié)合位點(diǎn)常被覆蓋?酵母核小體缺失區(qū)域(NDR)兩側(cè)有2個(gè)強(qiáng)烈定位的核小體,+1核小體邊緣通?？邕^(guò)TSS,可能參與調(diào)控轉(zhuǎn)錄的進(jìn)行?據(jù)統(tǒng)計(jì),TSS上游基因間區(qū)核小體占據(jù)水平高于下游?

TSS處核小體定位參與基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)過(guò)程?劉宏德等[7]利用彎曲度譜法發(fā)現(xiàn),核小體在編碼基因區(qū)域和miRNA基因啟動(dòng)子區(qū)域定位有差異?在TSS上游-200~-400 bp和-400~-600 bp處以及TSS下游約200 bp處核小體定位信號(hào)較強(qiáng),在上游0~ -400 bp內(nèi)存在核小體缺失區(qū)域,在這里轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)分布較多,這可能與轉(zhuǎn)錄起始有關(guān),有利于基因的轉(zhuǎn)錄,總之,除了序列因素,包括轉(zhuǎn)錄因子或者重塑酶,轉(zhuǎn)錄中的RNA聚合酶,核小體“統(tǒng)計(jì)定位”[8],Bdf1?SWR1復(fù)合物[9],和復(fù)制?轉(zhuǎn)錄等一些生物學(xué)過(guò)程與核小體定位也有密切關(guān)系?其中,DNA偏好性序列的生物物理性質(zhì)對(duì)核小體定位起主要作用?

1.2轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位與基因表達(dá)調(diào)控

基因轉(zhuǎn)錄水平與核小體缺乏程度有關(guān)[10]?不僅如此,Ercan等[11]發(fā)現(xiàn)酵母基因組核小體密度與基因的轉(zhuǎn)錄效率之間呈負(fù)相關(guān),轉(zhuǎn)錄因子與核小體相互作用能夠取代核小體,而核小體又會(huì)占據(jù)轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)?在TSS附近,核小體稀疏區(qū)域促成轉(zhuǎn)錄因子與靶位點(diǎn)結(jié)合而發(fā)揮作用?然而,并非某一種因素單獨(dú)影響TSS附近核小體定位,受到多種因素的共同作用?可以通過(guò)染色質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變,暴露出轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn),影響基因的轉(zhuǎn)錄機(jī)制?劉輝等[12]分析了人類CD4+T 細(xì)胞甲基化組蛋白ChIP-seq數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)甲基化修飾之后的核小體大多分布在基因啟動(dòng)子處?TFBS區(qū)域?有意思的是,核小體定位還能夠影響TSS處核苷酸多態(tài)性位點(diǎn)(SNPs)的分布,從而影響轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合[12-14],在TSS下游,核小體的規(guī)則分布與多態(tài)性位點(diǎn)的周期性具有一致性[14],SNPs多位于核心DNA的兩端,而插入?插入刪除等多態(tài)性位點(diǎn)核小體缺乏?Deniz等[15]統(tǒng)計(jì)分析了酵母的核小體定位數(shù)據(jù)集,發(fā)現(xiàn)核小體在啟動(dòng)子區(qū)域內(nèi)呈現(xiàn)周期性分布,周期性強(qiáng)度與基因轉(zhuǎn)錄水平呈負(fù)相關(guān),與前面論述的觀點(diǎn)保持一致?可能是組蛋白占據(jù)TFBS,通過(guò)負(fù)調(diào)控抑制基因轉(zhuǎn)錄?

2轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位與序列依賴性因素

研究一致認(rèn)為,DNA序列依賴性是轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位的主要因素,不同序列對(duì)組蛋白核心親和力不同[16],當(dāng)然這主要發(fā)生在低等真核生物中?然而,Gaffney等[17]通過(guò)研究人類12號(hào)染色體上的400多個(gè)核小體的排列,發(fā)現(xiàn)在大量連續(xù)重復(fù)序列中核小體定位在一些偏好性序列區(qū)域,核小體在核心DNA和連接DNA的偏好性也可通過(guò)k-mer頻次法進(jìn)行統(tǒng)計(jì)[18,19]?而這種偏好性在一定程度上依賴于A+T和G+C含量?G/C二核苷酸在體外偏向于形成核小體,而非體內(nèi)[20]?李慧敏等[21]分析了調(diào)控酵母核糖體蛋白基因的主要轉(zhuǎn)錄因子在啟動(dòng)子序列中的結(jié)合位點(diǎn),發(fā)現(xiàn)A+T含量在TSS附近較高,這樣便于DNA的解鏈和進(jìn)行基因轉(zhuǎn)錄,A+T含量在內(nèi)含子中也較高,常見的調(diào)控元件都富含堿基C和G?充分地說(shuō)明了核小體定位序列的特征?

DNA序列有差異,核小體定位水平不同,引起基因表達(dá)調(diào)控不同?TSS附近大多數(shù)TF位點(diǎn)距離很近,甚至部分重疊,與核小體存在競(jìng)爭(zhēng),也在一定程度上表明轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)附近核小體分布較少?啟動(dòng)子區(qū)域含有許多順式作用元件,比如內(nèi)含子一定程度上引起轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制的差異[21];某些基因的TSS定位并預(yù)測(cè),比如從GC偏好性等出發(fā)[22],有助于基因調(diào)控機(jī)制的探索?然而,Dai等[23]認(rèn)為核小體定位受基因組DNA序列和各種蛋白因子的共同作用?

3轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位與表觀遺傳因素

既然核小體定位對(duì)于基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控?DNA復(fù)制等過(guò)程如此重要,因此,本研究較詳細(xì)地總結(jié)了影響核小體定位的各種因素,除了序列因素,其他影響基因組上TSS處核小體位置的表觀遺傳因素,比如轉(zhuǎn)錄因子?DNA甲基化?組蛋白變體及修飾?染色質(zhì)重塑?可變剪接等因素也在一定程度上影響核小體的動(dòng)態(tài)定位[24],這幾種表觀遺傳因素與TSS處核小體的形成和定位有著密切關(guān)系,已成為目前表觀遺傳學(xué)領(lǐng)域研究較為熱點(diǎn)的問(wèn)題?

3.1TSS核小體定位與DNA甲基化

DNA甲基化是一種重要的表觀遺傳因素,與TSS附近核小體定位呈現(xiàn)特殊關(guān)系?研究人員通過(guò)研究人類CD4+T細(xì)胞TFBS和TSS周圍核小體的分布情況,發(fā)現(xiàn)核小體動(dòng)態(tài)地在定位?缺失之間改變?TSS上下游200 bp內(nèi)核小體定位,與DNA甲基化基本上呈正相關(guān),在TFBS處呈互補(bǔ)模式?DNA甲基化越高,越有利于核小體定位?而且核小體核心DNA比連接DNA更易被甲基化,DNA甲基化位點(diǎn)與核小體定位也具有一致周期性?除此之外,DNA甲基化會(huì)受組蛋白甲基化調(diào)節(jié)[25-27]?關(guān)于核小體DNA甲基化,大部分研究并不認(rèn)為DNA甲基化直接導(dǎo)致基因轉(zhuǎn)錄沉默發(fā)生[27],這可能與核小體定位機(jī)制有關(guān),DNA甲基化同組蛋白甲基化共同調(diào)控基因表達(dá),兩者之間關(guān)系密切?比如組蛋白修飾H3K9甲基化能夠促進(jìn)DNA甲基化的進(jìn)程[28,29]?Chodavarapu等[30]發(fā)現(xiàn)核小體和DNA甲基轉(zhuǎn)移酶關(guān)系保守,DNA甲基化酶傾向于修飾纏繞在組蛋白上的DNA,在外顯子中核小體高度富集,多定位于內(nèi)含子與外顯子交界處?DNA甲基化在外顯子的普遍存在,除了用于界定外顯子外,同時(shí)還與外顯子處核小體的偏好性存在保持一致?

3.2TSS核小體定位與組蛋白變體?修飾

H2A.Z?H3.3是組蛋白H2A的保守變體?兩者通常在TSS附近參與形成核小體[31],對(duì)H2A.Z報(bào)道居多?Bargaje等[32]報(bào)道H2A.Z缺失會(huì)改變釀酒酵母基因組轉(zhuǎn)錄水平,核小體定位在沉默基因和高表達(dá)基因中不同,前者核小體覆蓋TSS定位,而后者核小體則被取代?位于TSS兩側(cè)的-1核小體和+1核小體的H2A.Z與基因表達(dá)的動(dòng)態(tài)改變有關(guān)?組蛋白變體能夠影響核小體的穩(wěn)定性和足跡變化,這也說(shuō)明了染色體構(gòu)型受組蛋白變體等的影響?核小體的去組裝和重新組裝需要組蛋白分子伴侶的介導(dǎo)[33],以及能影響激活轉(zhuǎn)錄所用關(guān)鍵因子的參與?Tolstorukov等[34]認(rèn)為人類含H2A.Z核小體偏好性地保護(hù)一段核心DNA序列免受微球菌核酸酶降解,這同樣說(shuō)明H2A.Z可能會(huì)參與核小體和染色質(zhì)結(jié)構(gòu)的調(diào)整過(guò)程?

然而,組蛋白變體的修飾也可影響核小體定位,進(jìn)而影響基因轉(zhuǎn)錄活性調(diào)控?在酵母H2A.Z的N末端多處乙酰化位點(diǎn)的突變,可能通過(guò)影響核小體結(jié)構(gòu),導(dǎo)致染色體傳遞受阻等?有ChIP分析顯示,H2A.Z中K14的乙?；揎梼H出現(xiàn)在轉(zhuǎn)錄活躍基因的啟動(dòng)子上,在靜息基因啟動(dòng)子區(qū)域幾乎沒有?H2A.Z的部分生物學(xué)功能是由H2A.Z和染色質(zhì)復(fù)合物SWR1-C協(xié)同完成[35],染色質(zhì)重塑復(fù)合物能夠影響H2A.Z的作用,兩者共同影響H2A.Z突變體細(xì)胞表型?

H2A.Z在基因轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)附近富含,與常染色質(zhì)標(biāo)記H3K4me3和H3K9ac的富含相一致,H2A.Z也與基因調(diào)控元件有關(guān)[36,37]?Zhang等[38]發(fā)現(xiàn)核小體可能存在于一些重要的功能區(qū)域,一些有活性的組蛋白變體H2A.Z在TSS上游占據(jù)較多,在下游不斷減少?組蛋白修飾能夠控制順式調(diào)節(jié)元件中的染色質(zhì)結(jié)構(gòu)?還有觀點(diǎn)認(rèn)為,TSS附近H2A.Z是核因子Y(NF-Y)依賴性的,而且許多生物學(xué)過(guò)程中組蛋白乙酰化受核因子Y影響,可以用于甲基化與乙?；霓D(zhuǎn)換?組蛋白變體募集等[39]?在癌細(xì)胞中存在乙?；疕2A.Z,H2A.Z水平則減少?TSS處H2A.Z乙?；c抑癌基因沉默水平增加保持一致,與DNA甲基化呈負(fù)相關(guān)[40]?因此,組蛋白翻譯后修飾對(duì)于轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)處核小體定位水平以及基因的轉(zhuǎn)錄至關(guān)重要?

3.3TSS核小體定位與染色質(zhì)重塑

染色質(zhì)結(jié)構(gòu)及重塑復(fù)合物也與其他因素相互作用,共同影響核小體定位?在不同啟動(dòng)子區(qū)域,染色質(zhì)結(jié)構(gòu)一般會(huì)存在差別?許多研究認(rèn)為蛋白質(zhì)復(fù)合物?染色質(zhì)重塑因子ISWI家族成員[41]通過(guò)與ATPases作用,來(lái)迫使核小體在DNA上滑動(dòng)或者交換,還有觀點(diǎn)認(rèn)為,是DNA在核小體表面的扭曲度增加導(dǎo)致核小體的滑動(dòng)[42,43]?Varga-Weisz[44]認(rèn)為依賴ATP的染色質(zhì)重塑因子驅(qū)使核小體離開轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn),阻止核小體進(jìn)一步的結(jié)合?染色質(zhì)重塑因子可能和轉(zhuǎn)錄因子發(fā)生作用,影響基因的表達(dá)水平[45]?不僅如此,滑動(dòng)的核小體趨向于靠近啟動(dòng)子區(qū)域,反映了轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)處核小體的動(dòng)態(tài)定位?啟動(dòng)子處核小體定位模型與轉(zhuǎn)錄依賴特性具有重要聯(lián)系,轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)前后存在核小體去穩(wěn)定性現(xiàn)象[46,47]?

轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)核小體定位受染色質(zhì)重塑結(jié)構(gòu)的影響,然而染色質(zhì)的結(jié)構(gòu)和功能受DNA修飾和組蛋白修飾的影響[48]?Zlatanova等[49]認(rèn)為染色質(zhì)結(jié)構(gòu)是高度動(dòng)態(tài)的,生物大分子的裝配需要消耗ATP水解能來(lái)調(diào)節(jié)染色質(zhì)結(jié)構(gòu)?染色質(zhì)纖維拓?fù)錁咏Y(jié)構(gòu)?RNA聚合酶都能造成轉(zhuǎn)錄延伸中核小體結(jié)構(gòu)高度不穩(wěn)定,使聚合酶跨越核小體障礙,有利于轉(zhuǎn)錄的進(jìn)行?

3.4TSS核小體定位與RNA剪接

RNA剪接事件與核小體定位也有一定關(guān)系?陳偉等[50]從人類基因組轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上下游選取探針序列,根據(jù)目的序列堿基特征,用多樣性增量二次判別方法(IDQD)構(gòu)建模型,探討了在人類基因組剪接位點(diǎn)(GT/AG)鄰近序列中的核小體分布,發(fā)現(xiàn)外顯子處DNA序列喜歡形成核小體,核小體較多,轉(zhuǎn)錄的RNA具有較強(qiáng)剛性,而剪接位點(diǎn)及其鄰近的內(nèi)含子處則相反?研究認(rèn)為,DNA序列的核小體定位或者核小體缺失狀態(tài)與RNA的剛性/柔性具有統(tǒng)計(jì)相關(guān)性[50]?Ringrose[51]也發(fā)現(xiàn)核小體定位和外顯子—內(nèi)含子邊界顯著相關(guān),研究也發(fā)現(xiàn)特定組蛋白修飾能夠調(diào)解選擇性剪接?為了更好地預(yù)測(cè)TSS處核小體定位,有研究用支持向量機(jī)(SVM)等方法結(jié)合TSS數(shù)據(jù)庫(kù)預(yù)測(cè)啟動(dòng)子的位置[52]?另有研究發(fā)現(xiàn),存在大量因子影響核小體在DNA上的精確定位?基因組序列中周期性的AA∶TT能夠維持核小體的穩(wěn)定性?TA二聚體常存在小溝,CG常存在大溝位置[53],可變剪接與核小體定位偏好性也有關(guān)系?針對(duì)剪接事件發(fā)生的重要性,有課題組也開展了可變剪接的相關(guān)研究工作?

3.5TSS核小體定位與RNA聚合酶II ?CpG島

RNA聚合酶是影響TSS處核小體定位反式因子中的重要因子?RNA聚合酶影響核小體結(jié)構(gòu),核小體又會(huì)成為RNA聚合酶在DNA移動(dòng)的轉(zhuǎn)錄屏障,RNA聚合酶為擺脫這一障礙,就需要逐出或者滑動(dòng)核小體[54],這種現(xiàn)象在啟動(dòng)子和編碼區(qū)抵抗了核小體定位的熱動(dòng)力學(xué)偏好性?有研究認(rèn)為,當(dāng)啟動(dòng)子TSS附近有核小體富集時(shí),為激活轉(zhuǎn)錄RNA聚合酶Ⅱ提前進(jìn)入TSS周圍?然而,在核小體分布較少的TSS處,染色質(zhì)結(jié)構(gòu)開放能夠加速結(jié)合調(diào)節(jié)蛋白,進(jìn)而可以募集RNA聚合酶用以轉(zhuǎn)錄[54]?RNA聚合酶Ⅱ含量在外顯子中比在內(nèi)含子多,核小體定位能夠調(diào)節(jié)RNA聚合酶Ⅱ的持續(xù)合成?

不僅如此,已有研究發(fā)現(xiàn),另一種因素CpG島偏好性地出現(xiàn)在基因的TSS處,特別是在管家基因中?在轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)周圍核苷酸的周期性存在于含有CpG島的區(qū)域,在人類和黑猩猩相同基因組區(qū)域的序列也發(fā)現(xiàn)了同樣的現(xiàn)象?在TSS附近的SNP分布呈現(xiàn)周期性也與CpG島有關(guān)[55,56]?在一些植物和真菌基因中的GC偏好性特征影響轉(zhuǎn)錄,這可能是由轉(zhuǎn)錄起始過(guò)程中基因突變或者有偏好性的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)造成的[57]?Blackledge等[58]發(fā)現(xiàn)CpG島可以直接提供去甲基化酶,去除甲基化現(xiàn)象,CpG島與核小體定位有著重要的關(guān)系,但有待深入研究?

4結(jié)語(yǔ)

本文從轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)出發(fā),較為詳細(xì)地概述了國(guó)內(nèi)外核小體定位領(lǐng)域的最新研究進(jìn)展,概括了核小體定位的多種影響因素,主要從序列依賴性和表觀遺傳因素兩方面進(jìn)行了歸納和綜述,旨在把握現(xiàn)象并發(fā)現(xiàn)規(guī)律?綜合大量研究發(fā)現(xiàn),TSS周圍核小體定位特征具有一定的規(guī)律性,受DNA序列和表觀遺傳因素的共同作用,轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)處核小體定位較少,除了序列特征造成的影響外,DNA甲基化的分布?組蛋白變體及組蛋白修飾?染色質(zhì)重塑?可變剪接?RNA聚合酶Ⅱ等因素密切相關(guān),從而調(diào)控基因表達(dá)水平?對(duì)其深入研究具有重要的生物學(xué)意義,對(duì)于部分疾病的預(yù)防和治療具有重要價(jià)值?對(duì)TSS核小體定位的各種特性進(jìn)行精確的分析,能夠?yàn)橄嚓P(guān)研究領(lǐng)域提供參考?目前對(duì)于這方面的研究大多是基于理論預(yù)測(cè)或者模型計(jì)算結(jié)果,而針對(duì)具體的基因功能位點(diǎn)核小體定位特性的試驗(yàn)研究比較少,還需要理論設(shè)計(jì)與試驗(yàn)驗(yàn)證相結(jié)合,使得目前核小體定位的理論得到進(jìn)一步完善?

參考文獻(xiàn):

[1] 蔡祿,趙秀娟.核小體定位研究進(jìn)展[J].生物物理學(xué)報(bào),2009,25(6):384-395.

[2] SCHONES D E,CUI K,CUDDAPAH S,et al.Dynamic regulation of nucleosome positioning in the human genome[J].Cell,2008,132(5):887-898.

[3] SEGAL E,FONDUFE-MITTENDORF Y,CHEN L,et al.A genomic code for nucleosome positioning[J].Nature,2006,442: 772-778.

[4] GAN Y,GUAN J,ZHOU S,et al.Structural features based genome- wide characterization and prediction of nucleosome organization[J].BMC Bioinformatics,2012,13(1):49.

[5] LI Z,SCHUG J,TUTEJA G,et al.The nucleosome map of the mammalian liver[J].Nature Structural & Molecular Biology,2011,18(6):742-746.

[6] ARYA G,MAITRA A,GRIGORYEV S A.A structural perspective on the where, how, why, and what of nucleosome positioning[J]. Journal of Biomolecular Structure & Dynamics,2010, 27(6):803-820.

[7] 劉宏德,張德金,謝建明,等.miRNA基因和編碼基因啟動(dòng)子區(qū)核小體定位分析[J].科學(xué)通報(bào),2010,55(14):1335-1340.

[8] KORBER P.Active nucleosome positioning beyond intrinsic biophysics is revealed by in vitro reconstitution[J].Biochemical Society Transactions,2012,40(2):377-382.

[9] KOERBER R T,RHEE H S,JIANG C,et al.Interaction of transcriptional regulators with specific nucleosomes across the Saccharomyces genome[J].Molecular Cell,2009,35(6):889-902.

[10] LEIMGRUBER E,SEGUIN-ESTEVEZ Q,DUNAND-SAUTHIER I,et al.Nucleosome eviction from MHC class II promoters controls positioning of the transcription start site[J].Nucleic Acids Res,2009,37(8):2514-2528.

[11] ERCAN S,CARROZZA M J,WORKMAN J L.Global nucleosome distribution and the regulation of transcription in yeast[J].Genome Biology,2004,5:243.

[12] 劉輝,壯子恒,關(guān)佶紅,等.核小體定位的轉(zhuǎn)錄調(diào)控功能研究進(jìn)展[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2012,39(9):843-852.

[13] BAHAR B,SWEENEY T. Mapping of the transcription start site(TSS) and identification of SNPs in the bovine neuropeptide Y (NPY) gene[J].BMC Genetics,2008,9:91.

[14] 劉宏德,孫嘯.人類基因組核苷酸多態(tài)性位點(diǎn)核小體定位分析[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2011,38(5):427-432.

[15] DENIZ O,FLORES O,BATTISTINI F,et al.Physical properties of naked DNA influence nucleosome positioning and correlate with transcription start and termination sites in yeast[J].BMC Genomics,2011,12:489.

[16] WANG D,ULYANOV N B,ZHURKIN V B.Sequence-dependent Kink-and-Slide deformations of nucleosomal DNA facilitated by histone arginines bound in the minor groove[J].J Biomol Struct Dyn,2010,27(6):843-859.

[17] GAFFNEY D J,MCVICKER G,PAI A A,et al.Controls of nucleosome positioning in the human genome[J].PLOS Genetics,2012,8(11):1-13.

[18] XING Y,ZHAO X,CAI L.Prediction of nucleosome occupancy in Saccharomyces cerevisiae using position-correlation scoring function[J].Genomics,2011,98(5):359-366.

[19] XU F,OLSON W K.DNA architecture,deformability,and nucleosome positioning[J].Journal of Biomolecular Structure & Dynamics,2010,27(6):725-739.

[20] LOCKE G,HABERMAN D,JOHNSON S M,et al.Global remodeling of nucleosome positions in C.elegans[J].BMC Genomics,2013,14:284.

[21] 李慧敏,張靜.酵母核糖體蛋白基因啟動(dòng)子序列的特征[J].生物物理學(xué)報(bào),2008,24(1):57-64.

[22] BHATTACHARYYA M,FEUERBACH L,BHADRA T, et al.MicroRNA transcription start site prediction with multi-objective feature selection[J].Statistical Applications in Genetics and Molecular Biology,2012,11(1):1-25.

[23] DAI Z, DAI X, XIANG Q, et al.Insights into distinct regulatory modes of nucleosome positioning[J].BMC Genomics, 2009,10:602.

[24] HENIKOFF S.Nucleosome destabilization in the epigenetic regulation of gene expression[J].Nat Rev Gen, 2008, 9(1): 15-26.

[25] 劉宏德, 孫嘯.核小體定位模式及其與DNA甲基化位點(diǎn)分布的關(guān)系[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào), 2011, 27(3):248-253.

[26] CHATAGNON A, PERRIAUD L, NAZARET N, et al.Preferential binding of the methyl-CpG binding domain protein 2 at methylated transcriptional start site regions[J].Epigenetics, 2011,6(11):1295-1307.

[27] HAN H,CORTEZ C C,YANG X,et al.DNA methylation directly silences genes with non-CpG island promoters and establishes a nucleosome occupied promoter[J].Hum Mol Genet, 2011,20(22):4299-4310.

[28] IMAI S, KIKUCHI R, KUSUHARA H, et al.DNA methylation and histone modification profiles of mouse organic anion transporting polypeptides[J].Drug Metab Dispos,2013,41(1): 72-78.

[29] LINDAHL ALLEN M, KOCH C M, CLELLAND G K, et al.DNA methylation-histone modification relationships across the desmin locus in human primary cells[J].BMC Molecular Biology,2009,10(51):1471-2199.

[30] CHODAVARAPU R K, FENG S, BERNATAVICHUTE Y V, et al.Relationship between nucleosome positioning and DNA methylation[J].Nature,2010,466(7304):388-392.

[31] VALEN E, SANDELIN A.Genomic and chromatin signals underlying transcription start-site selection[J].Cell,2011,27(11):475-485.

[32] BARGAJE R, ALAM M P, PATOWARY A, et al.Proximity of H2A.Z containing nucleosome to the transcription start site influences gene expression levels in the mammalian liver and brain[J].Nucleic Acids Research,2012,40(18):8965-8978.

[33] 李微微, 郭東林.組蛋白變體及組蛋白分子伴侶的研究進(jìn)展[J].國(guó)際遺傳學(xué)雜志,2009,32(5):17-20.

[34] TOLSTORUKOV M Y, KHARCHENKO P V, GOLDMAN J A, et al.Comparative analysis of H2A.Z nucleosome organization in the human and yeast genomes[J].Genome Research, 2009,19(6):967-977.

[35] 陳慧穎, 張家瑱, 萬(wàn)亞坤.釀酒酵母組蛋白變體Htz1調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄的作用機(jī)制[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào), 2012, 28(2):121-126.

[36] BARSKI A, CUDDAPAH S, CUI K, et al.High-resolution profiling of histone methylations in the human genome[J].Cell,2007,129(4):823-837.

[37] PETTER M, LEE C C, BYRNE T J, et al.Expression of P.falciparum var genes involves exchange of the histone variant H2A.Z at the promoter[J].PLoS Pathogens,2011,7(2):1-14.

[38] ZHANG Y, SHIN H, SONG J S, et al.Identifying positioned nucleosomes with epigenetic marks in human from ChIP-seq[J].BMC Genomics,2008,9:537.

[39] GATTA R, MANTOVANI R.NF-Y affects histone acetylation and H2A.Z deposition in cell cycle promoters[J].Epigenetics, 2011,6(4):526-534.

[40] VALDES -MORA F, SONG J Z, STATHAM A L, et al.Acetylation of H2A.Z is a key epigenetic modification associated with gene deregulation and epigenetic remodeling in cancer[J].Genome Research, 2012,22(2):307-321.

[41] SEEBER A, HAUER M, GASSER S M.Nucleosome remodelers in double-strand break repair[J].Genetics & Development, 2013,23(2):174-184.

[42] HARGREAVES D C, CRABTREE G R.ATP-dependent chromatin remodeling: genetics, genomics and mechanisms[J].Cell Resource, 2011,21(3):396-420.

[43] BOWMAN G D.Mechanisms of ATP-dependent nucleosome sliding[J].Curr Opin Struct Biol,2010,20(1):73-81.

[44] VARGA-WEISZ P D.Insights into how chromatin remodeling factors find their target in the nucleus[J].Chromatin and Gene Expression,2011,107(46):19611-19612.

[45] NOWAK S J,BAYLIES M K.Akirin: a context-dependent link between transcription and chromatin remodeling[J].BioArchitecture,2012,2(6):209-213.

[46] FAZZIO T G,TSUKIYAMA T.Chromatin remodeling in Vivo: Evidence for a nucleosome sliding mechanism[J].Molecular Cell,2003,12(5):1333-1340.

[47] FENG J,DAI X,XIANG Q,et al.New insights into two distinct nucleosome distributions: comparison of cross-platform positioning datasets in the yeast genome[J].BMC Genomics,2010,11:33.

[48] SMOLLE M,WORKMAN J L.Transcription-associated histone modifications and cryptic transcription[J].Biochim Biophys Acta,2013,1829(1):84-97.

[49] ZLATANOVA J,VICTOR J M.How are nucleosomes disrupted during transcription elongation[J]. HFSP Journal,2009,3(6):373-378.

[50] 陳偉,羅遼復(fù),張利絨,等.核小體定位與RNA剪接[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2009,36(8):1035-1040.

[51] RINGROSE L. How do RNA sequence,DNA sequence,and chromatin properties regulate splicing[J].Biology Reports,2010,2:74.

[52] SATO M.Promoter analysis with wavelets and support vector machines[J].Procedia Computer Science,2012,12:432-437.

[53] CUI F,ZHURKIN V B.Structure-based analysis of DNA sequence patterns guiding nucleosome positioning in vitro[J].Journal of Biomolecular Structure & Dynamics,2010,27(6):821-841.

[54] JANSEN A,VERSTREPEN K J.Nucleosome positioning in Saccharomy cescerevisiae[J].Microbiology And Molecular Biology Reviews,2011,75(2):301-320.

[55] ERCAN S,CARROZZA M J,WORKMAN J L.Global nucleosome distribution and the regulation of transcription in yeast[J].Genome Biology,2004,5(10):243.

[56] HIGASA K,HAYASHI K.Periodicity of SNP distribution around transcription start sites[J].BMC Genomics,2006,7:66.

[57] FUJIMORI S,WASHIO T,TOMITA M.GC-compositional strand bias around transcription start sites in plants and fungi[J].BMC Genomics,2005,6:26.

[58] BLACKLEDGE N P,ZHOU J C,TOLSTORUKOV M Y,et al.CpG islands recruit a histone H3 lysine 36 demethylase[J].Molecular Cell,2010,38(2):179-190.