周玉梅+祖從從+周建峰
摘 要:真核翻譯起始因子4A (eIF4A)蛋白屬于DEAD-box RNA解旋酶家族,具有RNA依賴的ATP酶活性和ATP依賴的RNA解旋酶活性。脊椎動(dòng)物中已經(jīng)鑒定出三種eIF4A:eIF4A1、eIF4A2和eIF4A3。除參與翻譯起始,eIF4A家族成員在胚胎發(fā)育等多種生命過(guò)程中也發(fā)揮著重要的作用。雖然三種eIF4A在序列上高度相似,但它們的作用不盡相同。eIF4A成員作用的獨(dú)特性和多樣化通常由相互作用的結(jié)合蛋白來(lái)調(diào)節(jié)。本文將eIF4A家族成員的最新研究進(jìn)展,特別是eIF4A成員各自獨(dú)特的作用作一綜述。
關(guān)鍵詞:eIF4A;翻譯起始;DEAD-box解旋酶;胚胎發(fā)育
中圖分類號(hào):S18:Q753 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)號(hào):A 文章編號(hào):1001-4942(2014)11-0143-05
真核翻譯起始因子4A (eIF4A)屬于DEAD-box RNA解旋酶家族,最先被發(fā)現(xiàn)為翻譯必需因子,后來(lái)發(fā)現(xiàn)是eIF4F翻譯起始復(fù)合體的一個(gè)組分,在eIF4F復(fù)合體中發(fā)揮RNA解旋酶活性。哺乳動(dòng)物中存在三種eIF4A:eIF4A1、eIF4A2和eIF4A3。小鼠存在eIF4Al和eIF4A2,兔子只存在一種eIF4A,爪蟾中發(fā)現(xiàn)了全部三種eIF4A,釀酒酵母中發(fā)現(xiàn)了由Tif1和Tif2編碼產(chǎn)生的同一種eIF4A,果蠅中發(fā)現(xiàn)了eIF4A1和eIF4A3。另外,在擬南芥、小麥等生物中也發(fā)現(xiàn)了相應(yīng)的同源基因[1]。
eIF4A家族成員在序列上高度同源。人類eIF4A1和eIF4A2屬于胞質(zhì)蛋白,同源性高達(dá)90%,eIF4A3主要定位在核內(nèi),與eIF4A1的相似度稍低,約為60%。雖然eIF4A3序列與eIF4A1和eIF4A2相似,但功能卻與eIF4A1和eIF4A2截然不同。eIF4A3與eIF4G的結(jié)合很弱,體外不能替代eIF4A1的解旋酶活性,其解旋酶活性也不能被eIF4B和eIF4H激活[1]。相反,eIF4A3與MAGOH-Y14的親和力很高,三者結(jié)合后與MLN51(轉(zhuǎn)移性淋巴結(jié)51)一起組成外顯子連接復(fù)合體(exon junction complex, EJC)[2]。由于eIF4A1和eIF4A2在序列與結(jié)構(gòu)上高度相似,并且體外試驗(yàn)證明兩者在eIF4F復(fù)合體內(nèi)可以自由交換[3],因此長(zhǎng)久以來(lái)兩者的功能被認(rèn)為是不可區(qū)分的,但是最近的研究表明兩者的功能并不完全相同。有關(guān)eIF4A的綜述國(guó)內(nèi)尚未見報(bào)道,本文將從eIF4A的結(jié)構(gòu)、蛋白調(diào)節(jié)以及生物學(xué)功能特別是各成員之間不同的作用等方面作一綜述。
1 eIF4A蛋白的結(jié)構(gòu)
eIF4A是DEAD-box蛋白家族的典型成員,是最小的DEAD-box蛋白,含有兩個(gè)RecA樣結(jié)構(gòu)域和一個(gè)靈活的中間轉(zhuǎn)軸區(qū)域,中間區(qū)域的靈活性保證eIF4A在打開和關(guān)閉兩種構(gòu)象間轉(zhuǎn)換[4]。所有的DEAD-box家族蛋白都包含9個(gè)保守的基序:Q、Ⅰ、Ⅰa、Ⅰb、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅵ(圖1)[5]。eIF4A的基序Ⅰa、Ⅰb、Ⅳ、Ⅴ參與RNA的結(jié)合,基序Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ主要參與RNA依賴的ATP酶活性,基序Ⅵ對(duì)于RNA結(jié)合和ATP水解都是必需的[6]。酵母eIF4A的晶體結(jié)構(gòu)已經(jīng)被解析[7]??茖W(xué)家們最近也已經(jīng)獲得了eIF4A家族成員與不同的蛋白分子結(jié)合形成的復(fù)合物結(jié)構(gòu):eIF4A-PDCD4(程序性細(xì)胞死亡因子4)、eIF4A-eIF4G、eIF4A-eIF4G-eIF4H和eIF4A3-MLN51-MAGOH(magonashi同系物)-Y14 [6]。
eIF4A存在打開和關(guān)閉兩種構(gòu)象,ATP的結(jié)合與水解導(dǎo)致eIF4A在這兩種構(gòu)象間轉(zhuǎn)換[4]。ATP結(jié)合到eIF4A-eIF4G復(fù)合物上,導(dǎo)致eIF4A關(guān)閉,eIF4A關(guān)閉觸發(fā)ATP水解,ATP水解后eIF4A又恢復(fù)開放構(gòu)象,導(dǎo)致它與RNA的親和力降低,與另一ATP分子的結(jié)合將再次觸發(fā)關(guān)閉的構(gòu)象。這種構(gòu)象間的轉(zhuǎn)換過(guò)程會(huì)一直持續(xù)到mRNA 5′UTR的二級(jí)結(jié)構(gòu)打開[6]。需要指出的是,在DEAD-box RNA解旋酶打開mRNA二級(jí)結(jié)構(gòu)的過(guò)程中是否需要ATP水解還有爭(zhēng)議。
2 eIF4A蛋白的調(diào)節(jié)
在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中,絕大多數(shù)的eIF4A以自由形式存在,其余的eIF4A與帽結(jié)合蛋白eIF4E、腳手架蛋白eIF4G一起組成eIF4F復(fù)合體。盡管單獨(dú)存在時(shí),eIF4A的三個(gè)成員都可以在一定程度上解開dsRNA,但是它們的解旋酶活性很低。當(dāng)eIF4A以eIF4F復(fù)合體的形式存在時(shí),其RNA解旋酶活性能夠被翻譯起始因子eIF4B、eIF4H、eIF4E、eIF4G激活[5]。例如,當(dāng)與eIF4G和eIF4B綁定時(shí),RNA解旋酶和ATP酶的活性增加超過(guò)100倍[8]。eIF4A解旋酶活性的調(diào)節(jié)可能是為了保證解旋酶活性只有在eIF4A招募到特定的mRNA上之后才能被激活,有效防止沒(méi)有被結(jié)合伴侶靶定的RNA的二級(jí)結(jié)構(gòu)被打開[6]。基于無(wú)配體狀態(tài)下eIF4A的結(jié)構(gòu)特點(diǎn),研究者們提出了一種理論:相互作用因子可能通過(guò)促進(jìn)eIF4A關(guān)閉構(gòu)象的形成與穩(wěn)定來(lái)激活eIF4A的活性[7]。
除翻譯起始因子外,腫瘤抑制蛋白PDCD4可以通過(guò)其C末端的兩個(gè)MA3結(jié)構(gòu)域與兩分子eIF4A結(jié)合,阻止eIF4A與eIF4G結(jié)合,抑制eIF4A的活性和帽依賴性的翻譯起始[9]。Patemine A是一種具有抗增殖和促凋亡活性的小分子,它可以通過(guò)其內(nèi)部結(jié)構(gòu)域連接區(qū)與eIF4A結(jié)合,增強(qiáng)eIF4A的ATP酶活性,同時(shí)抑制eIF4A與eIF4G結(jié)合[10]。此外,15d-PGJ2(15-脫氧-8 12,14-前列腺素 J2)也可以抑制eIF4A的活性[11]。
3 eIF4A的生物學(xué)功能
3.1 eIF4A1與eIF4A2結(jié)構(gòu)類似但功能不同
脊椎動(dòng)物eIF4A1和eIF4A2的序列與結(jié)構(gòu)高度相似,長(zhǎng)久以來(lái)兩者的功能被認(rèn)為是不可區(qū)分的。但是,隨著研究的深入,越來(lái)越多的證據(jù)表明兩者的作用不盡相同。在小鼠中兩者的表達(dá)部位不同,eIF4A1在所有組織中表達(dá),eIF4A2主要在具有低增殖活性的器官中表達(dá)。不同細(xì)胞狀態(tài)下,兩者的表達(dá)不同,eIF4A1在生長(zhǎng)活躍的細(xì)胞中高表達(dá),而eIF4A2在生長(zhǎng)停滯的細(xì)胞中高表達(dá)[6]。感染口蹄疫病毒的哺乳動(dòng)物細(xì)胞中eIF4A1會(huì)被切割,而eIF4A2不被切割[12]。甲基鳥苷帽子類似物的瓊脂糖珠下拉試驗(yàn)中,eIF4A1比eIF4A2更多的被拉下來(lái),這表明eIF4A1可能更優(yōu)先結(jié)合到eIF4F復(fù)合體內(nèi)[13]。與siRNA干擾eIF4A1不同,siRNA干擾eIF4A2不會(huì)減少甲硫氨酸進(jìn)入以及改變多核蛋白體圖譜中總體mRNA的分布。雖然eIF4A1敲降會(huì)引起eIF4A2大幅增加,甚至超過(guò)敲降前eIF4A1和eIF4A2的摩爾總和,但是eIF4A2的這種上調(diào)并不能彌補(bǔ)eIF4A1敲降引起的甲硫氨酸進(jìn)入的減少,也不會(huì)改變多核蛋白體的圖譜[13]。敲降eIF4A1抑制細(xì)胞生長(zhǎng),然而敲降eIF4A2不會(huì)有這種影響[13]。以上證據(jù)表明,在體內(nèi)eIF4A1和eIF4A2的作用不是重疊的。endprint
最近研究發(fā)現(xiàn),內(nèi)源的eIF4A1和eIF4A2具有不同的結(jié)合蛋白[14]。eIF4A2與CCR4-NOT復(fù)合體的一個(gè)成員—cNOT7結(jié)合后在miRNA的調(diào)節(jié)中發(fā)揮重要作用。缺失eIF4A2能夠減弱miRNA介導(dǎo)的翻譯抑制,并且這種減弱效應(yīng)不能被eIF4A1營(yíng)救,表明miRNA抑制不是由eIF4A的總量減少引起的[14]。所有這些證據(jù)都說(shuō)明eIF4A1和eIF4A2的作用不盡相同。
3.2 eIF4A3作用獨(dú)特
雖然eIF4A3序列與eIF4A1和eIF4A2相似,但功能卻與eIF4A1和eIF4A2截然不同。在細(xì)胞核內(nèi),eIF4A3與MAGOH-Y14結(jié)合后,與MLN51一起組成EJC復(fù)合體[2]。在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中EJC與剪接一起形成,在剪接連接點(diǎn)上游20~24個(gè)核苷酸處與新產(chǎn)生的mRNA緊密結(jié)合。緊密結(jié)合在mRNA上的EJC在各種后剪接事件,如mRNA出核、亞細(xì)胞定位、質(zhì)量監(jiān)測(cè)以及翻譯等過(guò)程中發(fā)揮重要作用[2,15]。eIF4A3作為EJC的一個(gè)核心組分,可以直接與RNA結(jié)合。eIF4A3與MAGOH-Y14結(jié)合后抑制ATP水解,將eIF4A3鎖定在一個(gè)關(guān)閉的構(gòu)象,使得eIF4A3與單鏈RNA緊緊結(jié)合在一起。將MAGOH-Y14從eIF4A3上解離下來(lái)后,ATP迅速水解,eIF4A3恢復(fù)開放構(gòu)象,釋放RNA[16]。eIF4A3作為EJC的核心組分發(fā)揮作用的方式打破了DEAD-box RNA解旋酶的作用取決于其ATP酶和解旋酶活性的共識(shí)。事實(shí)上,正是因?yàn)閑IF4A3的解旋酶活性很低,使得它能夠作為RNA分子夾,參與EJC在mRNA上的定位[6]。除發(fā)揮EJC介導(dǎo)的各種生命過(guò)程外,研究者們還發(fā)現(xiàn)eIF4A3在哺乳動(dòng)物硒蛋白合成、脊椎動(dòng)物胚胎發(fā)育中發(fā)揮重要的作用。
3.2.1 eIF4A3在NMD中的作用 任何錯(cuò)誤剪接、移碼、插入等遺傳失誤都可能引入含有提前終止密碼子(premature termination codons, PTC)的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,如不及時(shí)清除將導(dǎo)致翻譯提前終止,產(chǎn)生無(wú)功能甚至有毒害性的截短蛋白(truncated proteins)。真核生物能夠通過(guò)無(wú)義介導(dǎo)的mRNA降解(nonsense-mediated mRNA decay, NMD)將含有PTC的異常轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物快速清除,防止截短蛋白的產(chǎn)生,是一種重要的mRNA監(jiān)視機(jī)制[17]。
NMD的啟動(dòng)與多種調(diào)控元件有關(guān)。Ferraiuolo等研究發(fā)現(xiàn),siRNA干擾eIF4A3會(huì)抑制NMD,但是干擾eIF4A1和eIF4A2不會(huì)抑制NMD;并且eIF4A3與mRNA的結(jié)合是剪接依賴性的[18],揭示eIF4A3參與NMD途徑,并且不能被eIF4A1和eIF4A2替代。Shibuya等進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),eIF4A3能夠與EJC的另外兩個(gè)核心蛋白Y14和MAGOH相互作用,共同調(diào)節(jié)NMD途徑[19]。Gehring等研究發(fā)現(xiàn),eIF4A3、Y14、MAGOH以UPF2非依賴的方式激活NMD途徑[20]。刪除eIF4A3的N端嚴(yán)重削弱了NMD活性,而僅保留N端區(qū)域的eIF4A3突變體沒(méi)有NMD活性,說(shuō)明eIF4A3的N端區(qū)域?qū)τ贜MD途徑的激活是必要但不充分的。這是因?yàn)镹末端對(duì)于eIF4A3與Y14-MAGOH異源二聚體的結(jié)合是必需的,刪除N端破壞了eIF4A3與Y14-MAGOH的結(jié)合。而且,eIF4A3與Y14-MAGOH、BTZ同時(shí)結(jié)合能夠穩(wěn)定eIF4A3與BTZ的相互作用,刪除eIF4A3的N端區(qū)域?qū)е耬IF4A3-Y14-MAGOH-UPF3b-BTZ復(fù)合物無(wú)法形成,進(jìn)而抑制NMD活性[20]。
3.2.2 eIF4A3在硒蛋白合成調(diào)節(jié)中的作用 硒是一種對(duì)于人和動(dòng)物體非常重要的微量元素,主要以硒蛋白的形式發(fā)揮作用。硒蛋白的合成需要mRNA 3′UTR區(qū)域的硒代半胱氨酸插入序列(selenocysteine insertion sequence, SECIS)的幫助。硒蛋白的SECIS分為兩類:Ⅰ型SECIS和Ⅱ型SECIS。Ⅰ型SECIS含有相對(duì)大的頂端環(huán),Ⅱ型SECIS含一個(gè)小的頂端突起。GPx1、MsrB1、Dio1、SelN屬于Ⅰ型SECIS,GPX4、SelW、SelT、TrxR1屬于Ⅱ型SECIS。哺乳動(dòng)物硒蛋白的合成受硒含量的調(diào)控,硒缺乏時(shí),必需硒蛋白的合成不受影響,而非必需硒蛋白的合成減少[21]。
Budiman等研究發(fā)現(xiàn),eIF4A3參與哺乳動(dòng)物硒蛋白的調(diào)節(jié),在缺硒條件下,eIF4A3能夠與非必需硒蛋白的SEICS結(jié)合,造成空間位阻,阻礙SECIS與SECIS結(jié)合蛋白-2(SBP2)的結(jié)合,從而阻止蛋白翻譯[22]。在缺硒細(xì)胞( -SE)中用siRNA干擾eIF4A3可以使GPx1的蛋白表達(dá)量增加,在富硒細(xì)胞( +SE)中過(guò)表達(dá)eIF4A3可以使GPx1的蛋白表達(dá)量減少,兩種情況下GPx1 mRNA水平不受影響,說(shuō)明調(diào)節(jié)發(fā)生在轉(zhuǎn)錄后水平[22]。作為EJC的核心組分與mRNA結(jié)合時(shí),eIF4A3是非序列依賴性的。與之相反,eIF4A3在硒蛋白的合成調(diào)節(jié)中是SEICS選擇性的,能夠與非必需硒蛋白(GPx1、MsrB1、Dio1、SelN)的SECIS結(jié)合,但是不能與持家硒蛋白(GPX4、SelW、SelT、TrxR1)的SECIS結(jié)合[22,23]。SECIS的內(nèi)部莖環(huán)結(jié)構(gòu)對(duì)于eIF4A3與SECIS的結(jié)合是必需的,但是單獨(dú)的內(nèi)部莖環(huán)并不能實(shí)現(xiàn)兩者的高親和力,SECIS核心區(qū)對(duì)于兩者的結(jié)合則是非必需的[22],而內(nèi)部莖環(huán)結(jié)構(gòu)和核心區(qū)對(duì)于SBP2與SECIS的結(jié)合都是必需的[24],說(shuō)明缺硒條件下eIF4A3與SBP2競(jìng)爭(zhēng)性的結(jié)合SECIS,兩者的結(jié)合位點(diǎn)有重疊,但是不完全相同。進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn),SECIS的內(nèi)部莖環(huán)、頂端莖環(huán)以及核心區(qū)3′上游尿苷對(duì)于eIF4A3-SECIS復(fù)合體的形成是必需的[23]。動(dòng)力學(xué)研究表明,內(nèi)部莖環(huán)幫助eIF4A3識(shí)別SECIS,頂端莖環(huán)和核心區(qū)的尿苷對(duì)于維持eIF4A3-SECIS復(fù)合體的穩(wěn)定性至關(guān)重要[23]。基于以上試驗(yàn),研究者們提出了一個(gè)兩點(diǎn)結(jié)合模型:與其他DEAD-box蛋白家庭成員類似,eIF4A3由兩端的兩個(gè)結(jié)構(gòu)域和中間的連接子構(gòu)成啞鈴形,兩端的兩個(gè)結(jié)構(gòu)域分別與SECIS的內(nèi)部莖環(huán)和頂端莖環(huán)結(jié)合[23]。endprint
3.2.3 eIF4A3在脊椎動(dòng)物發(fā)育中的作用 脊椎動(dòng)物的胚胎發(fā)育是一個(gè)極其復(fù)雜的生物學(xué)過(guò)程。eIF4A3作為多蛋白復(fù)合體EJC的組分,參與了很多RNA水平上的調(diào)節(jié)過(guò)程[25]。Haremaki等研究發(fā)現(xiàn),EJC對(duì)于脊椎動(dòng)物早期胚胎發(fā)生是必不可少的,敲降eIF4A3會(huì)導(dǎo)致非洲爪蟾全身癱瘓,伴隨感覺(jué)神經(jīng)元、色素細(xì)胞和心臟發(fā)育缺陷;敲降EJC其他核心組分也會(huì)出現(xiàn)相似的表型,表明EJC在早期胚胎發(fā)育中至關(guān)重要[26]。早期的研究發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)eIF4A3會(huì)激活BMP信號(hào)通路[28],但是敲降eIF4A3并未出現(xiàn)與BMP信號(hào)削弱相關(guān)的表型,暗示eIF4A3可能只在其表達(dá)區(qū)域調(diào)節(jié)BMP信號(hào),這些區(qū)域包括神經(jīng)板/神經(jīng)管邊界[26]。癱瘓可以由一系列原因引起,其中包括骨骼肌和/或者神經(jīng)發(fā)育缺陷。敲降eIF4A3表現(xiàn)出感覺(jué)神經(jīng)元缺陷,這可能是胚胎無(wú)法對(duì)觸摸刺激作出響應(yīng)的基礎(chǔ),但不太可能導(dǎo)致胚胎全身癱瘓[26]。對(duì)敲降eIF4A3導(dǎo)致非洲爪蟾全身癱瘓機(jī)制的進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),eIF4A3可以通過(guò)調(diào)節(jié)Ryr的正確剪接來(lái)調(diào)節(jié)肌肉細(xì)胞的收縮[27]。鈣離子誘導(dǎo)的肌漿網(wǎng)中鈣離子的釋放對(duì)于肌肉細(xì)胞的收縮十分重要,鈣離子釋放受阻會(huì)減弱對(duì)電刺激的反應(yīng)。Ryr1是肌肉細(xì)胞中鈣離子釋放的重要調(diào)節(jié)因子,Ryr1作用受損會(huì)嚴(yán)重影響鈣離子的釋放。敲降eIF4A3會(huì)導(dǎo)致Ryr錯(cuò)誤剪接,使Ryr無(wú)法發(fā)揮正常功能,影響鈣離子從肌漿網(wǎng)中釋放,導(dǎo)致肌肉纖維發(fā)育缺陷,在一定程度上導(dǎo)致了全身癱瘓[27]。敲降eIF4A3會(huì)抑制胚胎色素生成以及心臟受損[26],但是敲降Ryr不會(huì)影響色素生成或者造成心臟缺陷,表明eIF4A3對(duì)胚胎發(fā)育的調(diào)節(jié)不僅僅是通過(guò)Ryr來(lái)實(shí)現(xiàn)的,可能還有多種蛋白或者信號(hào)通路參與其中[27]。
4 前景與展望
eIF4A在翻譯起始和胚胎發(fā)育等多種生命過(guò)程中發(fā)揮復(fù)雜而又重要的功能,雖然前人的研究使我們對(duì)eIF4A有了一定的認(rèn)識(shí),但是仍有很多問(wèn)題需要解決:①eIF4A的解旋酶活性很大程度上取決于它們的結(jié)合蛋白,與eIF4F復(fù)合物結(jié)合能夠激活翻譯起始,而與CCRT-NOT復(fù)合物結(jié)合能夠抑制翻譯。在生物體內(nèi)這兩種作用如何巧妙協(xié)調(diào),以及在低等生物中eIF4A是否發(fā)揮雙重作用需要進(jìn)一步研究。②癌細(xì)胞中的翻譯起始經(jīng)常失控,在轉(zhuǎn)化細(xì)胞和癌細(xì)胞中,包括eIF4A1在內(nèi)的很多翻譯起始因子的基因表達(dá)水平發(fā)生改變[29],提示我們eIF4A1可能參與了腫瘤和癌癥的發(fā)生,是抗癌治療的潛在靶點(diǎn)。③研究eIF4A1和eIF4A2的不同功能是最近eIF4A研究的一個(gè)焦點(diǎn)??紤]到它們高達(dá)90%的相似度,闡述這兩種蛋白被招募到不同蛋白復(fù)合物上的分子機(jī)制很關(guān)鍵。④最近研究發(fā)現(xiàn),CWC22通過(guò)其MIF4G結(jié)構(gòu)域與eIF4A3直接結(jié)合,參與剪接依賴性的EJC組裝[30],這個(gè)新發(fā)現(xiàn)為EJC附著與前體mRNA剪接之間的緊密耦合提供了一種新的理論,其具體分子機(jī)制還不清楚。⑤前人的研究發(fā)現(xiàn)eIF4A參與Dpp/BMP信號(hào)通路的調(diào)控[31],并且eIF4A3對(duì)于爪蟾的發(fā)育十分重要,研究eIF4A在脊椎動(dòng)物發(fā)育中的分子機(jī)制對(duì)于全面揭示eIF4A的生物學(xué)功能意義重大。
參 考 文 獻(xiàn):
[1] Hernández G, Vazquez-Pianzola P. Functional diversity of the eukaryotic translation initiation factors belonging to eIF4 families [J]. Mech. Dev., 2005, 122(7/8):865-876.
[2] Chan C C, Dostie J, Diem M D, et al. eIF4A3 is a novel component of the exon junction complex [J]. RNA, 2004, 10(2):200-209.
[3] Yoder-Hill J, Pause A, Sonenberg N, et al. The p46 subunit of eukaryotic initiation factor (eIF)-4F exchanges with eIF-4A [J]. J. Biol. Chem., 1993, 268(8):5566-5573.
[4] Marintchev A, Edmonds K A, Marintcheva B, et al. Topology and regulation of the human eIF4A/4G/4H helicase complex in translation initiation [J]. Cell, 2009, 136(3):447-460.
[5] Andreou A Z, Klostermeier D. The DEAD-box helicase eIF4A: paradigm or the odd one out? [J]. RNA Biol., 2013, 10(1):19-32.
[6] Lu W T, Wilczynska A, Smith E, et al. The diverse roles of the eIF4A family: you are the company you keep [J]. Biochem. Soc. Trans., 2014, 42(1):166-172.
[7] Caruthers J M, Johnson E R, McKay D B. Crystal structure of yeast initiation factor 4A, a DEAD-box RNA helicase [J]. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A., 2000, 97(24):13080-13085.endprint
[8] Nielsen K H, Behrens M A, He Y, et al. Synergistic activation of eIF4A by eIF4B and eIF4G [J]. Nucleic. Acids Res., 2011, 39(7):2678-2689.
[9] Suzuki C, Garces R G, Edmonds K A, et al. PDCD4 inhibits translation initiation by binding to eIF4A using both its MA3 domains [J]. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 2008, 105(9):3274-3279.
[10] Low W K, Dang Y, Schneider-Poetsch T, et al. Inhibition of eukaryotic translation initiation by the marine natural product pateamine A [J]. Mol. Cell, 2005, 20(5):709-722.
[11] Kim W J, Kim J H, Jang S K. Anti-inflammatory lipid mediator 15d-PGJ2 inhibits translation through inactivation of eIF4A [J]. EMBO J., 2007, 26(24):5020-5032.
[12] Li W, Ross-Smith N, Proud C G, et al. Cleavage of translation initiation factor 4AI (eIF4AI) but not eIF4AII by foot-and-mouth disease virus 3C protease: identification of the eIF4AI cleavage site [J]. FEBS Lett., 2001, 507(1):1-5.
[13] Galicia-Vázquez G, Cencic R, Robert F, et al. A cellular response linking eIF4AI activity to eIF4AII transcription [J]. RNA, 2012, 18(7):1373-1384.
[14] Meijer H A, Kong Y W, Lu W T, et al. Translational repression and eIF4A2 activity are critical for microRNA-mediated gene regulation [J]. Science, 2013, 340(6128):82-85.
[15] Le Hir H, Gatfield D, Izaurralde E, et al. The exon-exon junction complex provides a binding platform for factors involved in mRNA export and nonsense-mediated mRNA decay [J]. EMBO J., 2001, 20(17):4987-4997.
[16] Bono F, Ebert J, Lorentzen E, et al. The crystal structure of the exon junction complex reveals how it maintains a stable grip on mRNA [J]. Cell, 2006, 126(4):713-725.
[17] Brogna S, Wen J. Nonsense-mediated mRNA decay (NMD) mechanisms [J]. Nat. Struct. Mol. Biol., 2009, 16(2):107-113.
[18] Ferraiuolo M A, Lee C S, Ler L W, et al. A nuclear translation-like factor eIF4AIII is recruited to the mRNA during splicing and functions in nonsense-mediated decay [J].Proc. Natl. Acad. Sci. U S A., 2004,101(12):4118-4123.
[19] Shibuya T, Tange T , Sonenberg N, et al. eIF4AIII binds spliced mRNA in the exon junction complex and is essential for nonsense-mediated decay [J]. Nat. Struct. Mol. Biol., 2004, 11(4):346-351.
[20] Gehring N H, Kunz J B, Neu-Yilik G, et al. Exon-junction complex components specify distinct routes of nonsense-mediated mRNA decay with differential cofactor requirements [J]. Mol. Cell, 2005, 20(1):65-75.
[21] Lei X G, Evenson J K, Thompson K M, et al. Glutathione peroxidase and phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase are differentially regulated in rats by dietary selenium [J]. J. Nutr., 1995,125(6):1438-1446.endprint
[22] Budiman M E, Bubenik J L, Miniard A C, et al. Eukaryotic initiation factor 4a3 is a selenium-regulated RNA-binding protein that selectively inhibits selenocysteine incorporation [J]. Mol. Cell, 2009, 35(4):479-489.
[23] Budiman M E, Bubenik J L, Driscoll D M. Identification of a signature motif for the eIF4A3-SECIS interaction [J]. Nucleic. Acids Res., 2011, 39(17):7730-7739.
[24] Fletcher J E, Copeland P R, Driscoll D M, et al. The selenocysteine incorporation machinery: interactions between the SECIS RNA and the SECIS-binding protein SBP2 [J].RNA, 2001, 7(10):1442-1453.
[25] Tange T , Nott A, Moore M J. The ever-increasing complexities of the exon junction complex [J].Curr. Opin. Cell Biol., 2004, 16(3):279-284.
[26] Haremaki T, Sridharan J, Dvora S, et al. Regulation of vertebrate embryogenesis by the exon junction complex core component EIF4A3 [J]. Dev. Dyn., 2010, 239(7):1977-1987.
[27] Haremaki T, Weinstein D C. EIF4A3 is required for accurate splicing of the Xenopus laevis ryanodine receptor pre-mRNA [J]. Dev Biol., 2012, 372(1):103-110.
[28] Weinstein D C, Honoré E, Hemmati-Brivanlou A. Epidermal induction and inhibition of neural fate by translation initiation factor 4AIII [J]. Development, 1997, 124(21):4235-4242.
[29] Lindqvist L, Pelletier J. Inhibitors of translation initiation as cancer therapeutics [J]. Future Med. Chem., 2009, 1(9):1709-1722.
[30] Steckelberg A L, Boehm V, Gromadzka A M, et al. CWC22 connects pre-mRNA splicing and exon junction complex assembly [J]. Cell Rep., 2012, 2(3):454-461.
[31] Li J, Li W X. A novel function of Drosophila eIF4A as a negative regulator of Dpp/BMP signalling that mediates SMAD degradation [J]. Nat. Cell Biol., 2006, 8(12):1407-1414. 山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué) 2014,46(11):148~152endprint
[22] Budiman M E, Bubenik J L, Miniard A C, et al. Eukaryotic initiation factor 4a3 is a selenium-regulated RNA-binding protein that selectively inhibits selenocysteine incorporation [J]. Mol. Cell, 2009, 35(4):479-489.
[23] Budiman M E, Bubenik J L, Driscoll D M. Identification of a signature motif for the eIF4A3-SECIS interaction [J]. Nucleic. Acids Res., 2011, 39(17):7730-7739.
[24] Fletcher J E, Copeland P R, Driscoll D M, et al. The selenocysteine incorporation machinery: interactions between the SECIS RNA and the SECIS-binding protein SBP2 [J].RNA, 2001, 7(10):1442-1453.
[25] Tange T , Nott A, Moore M J. The ever-increasing complexities of the exon junction complex [J].Curr. Opin. Cell Biol., 2004, 16(3):279-284.
[26] Haremaki T, Sridharan J, Dvora S, et al. Regulation of vertebrate embryogenesis by the exon junction complex core component EIF4A3 [J]. Dev. Dyn., 2010, 239(7):1977-1987.
[27] Haremaki T, Weinstein D C. EIF4A3 is required for accurate splicing of the Xenopus laevis ryanodine receptor pre-mRNA [J]. Dev Biol., 2012, 372(1):103-110.
[28] Weinstein D C, Honoré E, Hemmati-Brivanlou A. Epidermal induction and inhibition of neural fate by translation initiation factor 4AIII [J]. Development, 1997, 124(21):4235-4242.
[29] Lindqvist L, Pelletier J. Inhibitors of translation initiation as cancer therapeutics [J]. Future Med. Chem., 2009, 1(9):1709-1722.
[30] Steckelberg A L, Boehm V, Gromadzka A M, et al. CWC22 connects pre-mRNA splicing and exon junction complex assembly [J]. Cell Rep., 2012, 2(3):454-461.
[31] Li J, Li W X. A novel function of Drosophila eIF4A as a negative regulator of Dpp/BMP signalling that mediates SMAD degradation [J]. Nat. Cell Biol., 2006, 8(12):1407-1414. 山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué) 2014,46(11):148~152endprint
[22] Budiman M E, Bubenik J L, Miniard A C, et al. Eukaryotic initiation factor 4a3 is a selenium-regulated RNA-binding protein that selectively inhibits selenocysteine incorporation [J]. Mol. Cell, 2009, 35(4):479-489.
[23] Budiman M E, Bubenik J L, Driscoll D M. Identification of a signature motif for the eIF4A3-SECIS interaction [J]. Nucleic. Acids Res., 2011, 39(17):7730-7739.
[24] Fletcher J E, Copeland P R, Driscoll D M, et al. The selenocysteine incorporation machinery: interactions between the SECIS RNA and the SECIS-binding protein SBP2 [J].RNA, 2001, 7(10):1442-1453.
[25] Tange T , Nott A, Moore M J. The ever-increasing complexities of the exon junction complex [J].Curr. Opin. Cell Biol., 2004, 16(3):279-284.
[26] Haremaki T, Sridharan J, Dvora S, et al. Regulation of vertebrate embryogenesis by the exon junction complex core component EIF4A3 [J]. Dev. Dyn., 2010, 239(7):1977-1987.
[27] Haremaki T, Weinstein D C. EIF4A3 is required for accurate splicing of the Xenopus laevis ryanodine receptor pre-mRNA [J]. Dev Biol., 2012, 372(1):103-110.
[28] Weinstein D C, Honoré E, Hemmati-Brivanlou A. Epidermal induction and inhibition of neural fate by translation initiation factor 4AIII [J]. Development, 1997, 124(21):4235-4242.
[29] Lindqvist L, Pelletier J. Inhibitors of translation initiation as cancer therapeutics [J]. Future Med. Chem., 2009, 1(9):1709-1722.
[30] Steckelberg A L, Boehm V, Gromadzka A M, et al. CWC22 connects pre-mRNA splicing and exon junction complex assembly [J]. Cell Rep., 2012, 2(3):454-461.
[31] Li J, Li W X. A novel function of Drosophila eIF4A as a negative regulator of Dpp/BMP signalling that mediates SMAD degradation [J]. Nat. Cell Biol., 2006, 8(12):1407-1414. 山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué) 2014,46(11):148~152endprint