江 明黃月皎程 純. 南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究室(南通 600);. 南通大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院腫瘤內(nèi)科; . 南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)系
·專家述評(píng)·
微器官培養(yǎng)技術(shù)及其在前列腺癌研究中的應(yīng)用
江 明1黃月皎2程 純3
1. 南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究室(南通 226001);
2. 南通大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院腫瘤內(nèi)科; 3. 南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)系
前列腺癌(prostate cancer, PCa)居西方國家男性中發(fā)生率的首位,也是第二癌癥致死原因[1]。導(dǎo)致前列腺癌致死的主要臨床原因是前列腺癌容易發(fā)生骨轉(zhuǎn)移,骨轉(zhuǎn)移的發(fā)生率占所有前列腺癌患者的80%以上[2, 3]。已有研究表明,前列腺癌骨轉(zhuǎn)移與腫瘤細(xì)胞與微環(huán)境(microenvironment)的相互作用有關(guān),骨組織的微環(huán)境富含細(xì)胞因子、生長(zhǎng)因子、祖細(xì)胞和造血細(xì)胞等,組成了適合前列腺癌細(xì)胞轉(zhuǎn)移的微環(huán)境,促進(jìn)了腫瘤細(xì)胞的黏附、增殖、遷移以及存活[4]。最近5年來的研究已經(jīng)證明,各種基因突變類型的前列腺癌具有一些共同的特征,美國食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)批準(zhǔn)的前列腺癌治療藥物也有了空前的發(fā)展。但是,關(guān)于前列腺癌基因突變的分子機(jī)制尚不明確,其相對(duì)應(yīng)的有效治療反應(yīng)還不清楚。由于前列腺癌永生化細(xì)胞系很有限,尚不能很好地代表臨床疾病的多樣性,導(dǎo)致了體外研究模型的不足。由于前列腺癌組織建系困難,導(dǎo)致目前在現(xiàn)有公共細(xì)胞庫中前列腺癌細(xì)胞系較少[5]。近年來陸續(xù)有關(guān)于前列腺癌體外微器官培養(yǎng)(organoid culture)新技術(shù)的報(bào)道,該突破性技術(shù)可應(yīng)用于各種臨床表型的前列腺癌樣本進(jìn)行腫瘤生物學(xué)特征和其與腫瘤微環(huán)境相互作用等研究以及臨床抗癌藥物篩選,實(shí)現(xiàn)個(gè)體化腫瘤治療[6]。
在過去的30多年中,體外腫瘤模型的研究大多數(shù)是以單層二維腫瘤細(xì)胞培養(yǎng)的方式進(jìn)行[7, 8],很少是在三維模式中生長(zhǎng)和形成組織器官樣結(jié)構(gòu)進(jìn)行研究,其結(jié)果導(dǎo)致了與原發(fā)腫瘤組織存在結(jié)構(gòu)和生物學(xué)特性方面的差異,所以不能夠完全代表原發(fā)腫瘤的特點(diǎn)。微器官培養(yǎng)是在體外將器官和組織碎片擴(kuò)增形成穩(wěn)定的微結(jié)構(gòu)并具有基本功能,而這一過程僅需幾天時(shí)間[9]。在90年代,有報(bào)道關(guān)于一些腫瘤,比如肺和咽喉部腫瘤在體外微器官培養(yǎng)條件的研究[10];近幾年來相繼有報(bào)道小腸、結(jié)直腸、胰腺、胃以及肝臟等組織在體外微器官培養(yǎng)條件的研究[11-14]。Karthaus等優(yōu)化了人正常前列腺組織基底細(xì)胞和腺上皮細(xì)胞的體外微器官培養(yǎng)條件[15];使用上述前列腺組織體外培養(yǎng)的特定條件,Gao等成功地建立了新型前列腺癌細(xì)胞株,保留了7種來自不同疾病發(fā)展階段的人前列腺癌細(xì)胞系詳細(xì)的分子表型,其中也包括循環(huán)腫瘤細(xì)胞(circulating tumor cell, CTC),這些新型細(xì)胞株可用于體內(nèi)外的各種藥物試驗(yàn)[16]。Karthaus等研究發(fā)現(xiàn)一種依賴于R-spondin1的微器官培養(yǎng)方法,能夠使人或鼠的前列腺上皮細(xì)胞在體外長(zhǎng)期增殖,因?yàn)榍傲邢倩准?xì)胞和腺上皮細(xì)胞均包含多潛能干細(xì)胞,在體外與大鼠泌尿生殖竇間充質(zhì)(urogenital sinus mesenchyme, UGM)組織重組(tissue recombination)培養(yǎng)模型中,可使前列腺體組織再生和分化并保留完整的生物學(xué)特征,表明微器官培養(yǎng)技術(shù)在前列腺組織再生和前列腺癌發(fā)生、發(fā)展進(jìn)程分子機(jī)制的研究中具有較好的應(yīng)用價(jià)值[15]。
(一)細(xì)胞來源
應(yīng)用于前列腺癌微器官培養(yǎng)的細(xì)胞來源不局限于已建立的細(xì)胞系,還可以是人和鼠前列腺組織的原代培養(yǎng)細(xì)胞、小鼠移植性前列腺癌細(xì)胞和誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(induced pluripotent stem cells, iPS)等。美國西奈醫(yī)學(xué)中心應(yīng)用人前列腺癌細(xì)胞株LNCaP和其對(duì)應(yīng)的RANK基因敲減LNCaPRANKL和LNCaPNeo亞型細(xì)胞等進(jìn)行研究[4, 17];在Karthaus等成功原代培養(yǎng)人正常前列腺基底細(xì)胞和腺上皮細(xì)胞的基礎(chǔ)上,Gao等運(yùn)用微器官培養(yǎng)技術(shù)培養(yǎng)人類公共細(xì)胞庫中包括循環(huán)腫瘤細(xì)胞在內(nèi)的7株前列腺癌細(xì)胞系,這些細(xì)胞系包含了SPOP基因突變、PTEN基因丟失、TMPRSS2-ERG基因融合以及包含TP53、PIK3R1、FOXA1基因突變和多種染色質(zhì)修飾改變的去勢(shì)治療無效的前列腺癌細(xì)胞系[16]。對(duì)前列腺癌病人組織樣本原代培養(yǎng),一般挑選具有特征性臨床表現(xiàn)和預(yù)后的活檢或手術(shù)新鮮樣本。通過切取原發(fā)和小鼠移植的新鮮腫瘤組織,用含有四乙酸二氨基乙烷(ethylenediaminetetraacetic acid, EDTA)的胰酶消化,然后收集原代細(xì)胞進(jìn)行下一步的微器官培養(yǎng)[18, 19]。在小鼠前列腺微器官培養(yǎng)中,通常應(yīng)用流式細(xì)胞儀將表達(dá)CD49f的基底細(xì)胞和表達(dá)CD24的腺上皮細(xì)胞進(jìn)行分選;而在培養(yǎng)人前列腺組織時(shí),常用CD49f標(biāo)記基底細(xì)胞,用CD26或CD29標(biāo)記腺上皮細(xì)胞來進(jìn)行分選[4, 15]。iPS細(xì)胞具有分化潛能,可以分化形成各種細(xì)胞類型,其微器官結(jié)構(gòu)形成的兩個(gè)關(guān)鍵事件:嚴(yán)格的細(xì)胞挑選和保證細(xì)胞體系的一致性[20]。
(二)培養(yǎng)條件
進(jìn)行小鼠前列腺癌微器官培養(yǎng)時(shí),先將小鼠前列腺上皮組織降解,再混入特定細(xì)胞培養(yǎng)基質(zhì)Matrigel,在其中增加常規(guī)的微器官培養(yǎng)介質(zhì),包含表皮生長(zhǎng)因子(EGF)、Niggin和R-spondin1 (ENR)等[13]。Niggin為BMP抑制劑,在微器官形成的初期能明顯地增加微器官的數(shù)目,并參與微器官的擴(kuò)增;R-spondin1為Wnt信號(hào)通路抑制劑,在前列腺發(fā)育過程中,主要在泌尿生殖竇中表達(dá),與前列腺細(xì)胞的增殖密切相關(guān)[21];還可加入Alk3/4/5的抑制劑A83-01,可抑制TGF-β信號(hào)通路,防止中斷前列腺細(xì)胞的增殖[22, 23];通常還加入二氫睪酮(DHT),雖然不是必要的營養(yǎng)物質(zhì),但能明顯增加微器官形成的效率[15]。根據(jù)Jung等的前期研究結(jié)果,在人前列腺組織微器官培養(yǎng)時(shí)需要在培養(yǎng)基質(zhì)Matrigel中加入各種生長(zhǎng)因子,如成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子2和10 (FGF2,GF10)及前列腺素E2(PGE2), 這些生長(zhǎng)因子已經(jīng)證實(shí)有助于前列腺細(xì)胞系的增殖[24, 25]。在小鼠前列腺微器官培養(yǎng)中可加入的介質(zhì)成分,即ENR、A83-01和DHT等[14];Karthaus等在此基礎(chǔ)上還加入了小腸微器官培養(yǎng)中的必需物質(zhì):尼克酰胺或稱煙酰胺及p38抑制劑SB202190等[15]。
(三)培養(yǎng)結(jié)果
研究發(fā)現(xiàn),前列腺多能干細(xì)胞和腺上皮細(xì)胞形成微器官的能力有明顯的差別,多能干細(xì)胞相對(duì)于腺上皮細(xì)胞具有明顯的高效率[26]。正常野生型小鼠和人體前列腺提取的多能干細(xì)胞,經(jīng)過約一周的培養(yǎng),單一的細(xì)胞可形成實(shí)體細(xì)胞團(tuán)簇,在2~3周之內(nèi),形成顯微鏡下可見的微器官腺體結(jié)構(gòu),經(jīng)免疫組化、免疫熒光等分析顯示,形成的微器官結(jié)構(gòu)由特異性表達(dá)CK5的基底細(xì)胞和表達(dá)CK8的腺上皮細(xì)胞共同組成[15], 它們也分別特征性地表達(dá)其他一些基底細(xì)胞和腺上皮細(xì)胞的免疫標(biāo)記,如p63、PSA、雄激素受體(androgen receptor,AR)等[6, 15]。
(一)基因突變和表達(dá)譜檢測(cè)
由于體外建立前列腺癌細(xì)胞株非常困難,導(dǎo)致缺少具有代表性的前列腺癌細(xì)胞系模型。人類公共細(xì)胞系庫中前列腺癌細(xì)胞系較少,不能代表臨床疾病譜,所以迫切需要建立新的具有臨床表型共性的細(xì)胞系和模型以推動(dòng)這一研究領(lǐng)域的進(jìn)展。正常組織體細(xì)胞的培養(yǎng)在衰老之前僅僅經(jīng)歷數(shù)量有限的生物學(xué)信號(hào)通路,這個(gè)現(xiàn)象被稱之為“海弗利克極限(Hayflick limit)”[27]。使用人工方法永生化細(xì)胞,可以恢復(fù)端粒酶的作用以突破這一限制,并活化p53和RB腫瘤抑制基因等信號(hào)通路[28]。最近,Clevers等發(fā)現(xiàn)在微器官培養(yǎng)體系中,正常人和小鼠的前列腺上皮細(xì)胞能被非永生化地?zé)o限期地培養(yǎng)[15]。這個(gè)體系已經(jīng)被充分用于人轉(zhuǎn)移性前列腺癌的培養(yǎng),并且已經(jīng)成功建立幾個(gè)新的細(xì)胞系,這些細(xì)胞系能更加完整地代表臨床疾病的表型[16]。
研究證實(shí),Lgr5是Wnt通路的競(jìng)爭(zhēng)性拮抗劑R-spondin的受體,在鼠和人的多種成熟器官中作為干細(xì)胞的標(biāo)記,在R-spondin依賴的微器官培養(yǎng)體系中,那些Lgr5標(biāo)記的干細(xì)胞能夠分化并生長(zhǎng)形成上皮樣結(jié)構(gòu),仍然保持與原始器官組織基因表達(dá)的一致性[29]。近期發(fā)表的應(yīng)用Matrigel作為培養(yǎng)基質(zhì)和增加培養(yǎng)介質(zhì)來研究良惡性前列腺微器官培養(yǎng)體系,其技術(shù)的關(guān)鍵突破點(diǎn)是該體系的培養(yǎng)介質(zhì)能使良性和惡性的前列腺細(xì)胞無限地繁殖,而不需要人工轉(zhuǎn)化,保持基因組圖譜沒有漂移,具有較高的建系成功率[15]。已建立的前列腺癌細(xì)胞系表達(dá)疾病特異性的基因突變,如ETS異位、SPOP突變、FOXA1突變和CHD1缺失等,其在該體外微器官培養(yǎng)模型體系中得以擴(kuò)增[16],對(duì)這些細(xì)胞系的持續(xù)培養(yǎng)和收集,可以發(fā)現(xiàn)更多的前列腺癌基因突變。
(二)腫瘤生物學(xué)行為研究
研究表明腫瘤細(xì)胞生物學(xué)行為受到周圍微環(huán)境的強(qiáng)烈影響,尤其是受到支持組織和間質(zhì)(即腫瘤微環(huán)境)的影響。不同類型支持細(xì)胞間復(fù)雜的相互作用影響正常和惡性細(xì)胞的增值、分化和新陳代謝等一系列生物學(xué)行為特性[30]。不同病人的腫瘤細(xì)胞在相同的原代培養(yǎng)條件下,可出現(xiàn)不同的生長(zhǎng)形態(tài)和形態(tài)學(xué)表現(xiàn),具有侵襲性生長(zhǎng)方式的細(xì)胞,通常預(yù)示著該病人不良的預(yù)后[31]。Ranga等報(bào)道了利用上皮來源的腫瘤細(xì)胞在體外三維培養(yǎng),可方便地應(yīng)用于分析腫瘤侵襲、遷移和腫瘤血管生成的生物學(xué)特性[32]。已有三維培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,AR通過細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)的相互作用進(jìn)行調(diào)節(jié);AR與整合素α2之間存在正反饋調(diào)節(jié);前列腺癌細(xì)胞的增殖和存活依賴于p-Akt和p-FAK信號(hào)通路活化[4]。更改腫瘤細(xì)胞Matrigel微器官培養(yǎng)的條件,即改變細(xì)胞外基質(zhì)中的組成部分,可應(yīng)用于研究周圍微環(huán)境的組成成分對(duì)腫瘤生物學(xué)行為的影響[33]。三維微血管培養(yǎng)的研究顯示,幾種血管生成抑制劑,如:激酶抑制劑和單克隆抗體等對(duì)其敏感;建立腫瘤細(xì)胞分泌血管生成素的三維培養(yǎng)模型,可使前列腺癌細(xì)胞在缺乏外源性生長(zhǎng)因子的情況下繼續(xù)生長(zhǎng)[34]。
(三)藥物實(shí)驗(yàn)
研究發(fā)現(xiàn),傳統(tǒng)的用于藥物篩選的二維細(xì)胞培養(yǎng)模式被證明在藥物濃度、體內(nèi)復(fù)雜微環(huán)境的相互作用和實(shí)驗(yàn)結(jié)果的臨床應(yīng)用可靠性等方面存在著許多明顯的缺點(diǎn)[30]。前列腺癌微器官培養(yǎng)技術(shù)可以初步解決這些問題,在一個(gè)富含生物性和相關(guān)物質(zhì)的復(fù)合物的培養(yǎng)系統(tǒng)中,均一地和可擴(kuò)增地培養(yǎng)大量前列腺癌細(xì)胞系,可應(yīng)用于藥物篩選和藥物敏感性等體外藥物相關(guān)實(shí)驗(yàn)。
1. 靶向藥物:傳統(tǒng)應(yīng)用二維細(xì)胞培養(yǎng)體系是由于其相比于體內(nèi)移植瘤模型具有易用性、重復(fù)性、低成本和高效益的優(yōu)勢(shì)。而惡性細(xì)胞與周圍微環(huán)境的相互作用及其氧氣、營養(yǎng)梯度和pH值等的差異,使體外二維細(xì)胞培養(yǎng)體系與腫瘤宿主體內(nèi)的“真實(shí)世界”存在著明顯的對(duì)藥物應(yīng)答敏感性的差異,這些差異對(duì)有效性治療藥物的篩選產(chǎn)生了障礙。微器官培養(yǎng)技術(shù)的成功應(yīng)用,構(gòu)成了包含大量良、惡性前列腺組織微器官培養(yǎng)細(xì)胞信息的“百科全書”,可在體外應(yīng)用于臨床疾病譜藥物的篩選。這本“百科全書”記錄了每一個(gè)微器官培養(yǎng)細(xì)胞詳細(xì)的臨床和分子生物學(xué)特征、疾病的特點(diǎn)、治療的反應(yīng)、突變的位點(diǎn)和基因表達(dá)譜等豐富的基本信息,可建立大數(shù)據(jù)平臺(tái),提供成本和時(shí)間最佳效益的治療方法并應(yīng)用于新藥的研發(fā),預(yù)測(cè)這項(xiàng)技術(shù)能夠提供個(gè)性化治療靶點(diǎn)和靶向藥物合成的新思路[5]。
此外,循環(huán)腫瘤細(xì)胞(CTC)的體外微器官培養(yǎng)技術(shù)開啟了一個(gè)非常令人興奮的新的腫瘤診治策略評(píng)估渠道,簡(jiǎn)單的抽血取代了有技術(shù)性挑戰(zhàn)的轉(zhuǎn)移位置的活檢,避免了病人的痛苦。關(guān)于循環(huán)腫瘤細(xì)胞在轉(zhuǎn)移灶中和在原發(fā)性腫瘤組織中的生物學(xué)特性,仍有爭(zhēng)議,有待進(jìn)一步的研究。最近有研究表明,可間接地培養(yǎng)循環(huán)腫瘤細(xì)胞來進(jìn)行乳腺癌靶向治療的篩選,這預(yù)示著循環(huán)腫瘤細(xì)胞微器官技術(shù)也可用于研究相關(guān)晚期實(shí)體器官的惡性腫瘤[30]。前列腺癌循環(huán)腫瘤細(xì)胞的應(yīng)用也指日可待。
2. 藥物療效:醫(yī)療衛(wèi)生監(jiān)管機(jī)構(gòu)要求在人類臨床治療試驗(yàn)之前必須進(jìn)行動(dòng)物實(shí)驗(yàn),各種各樣的腫瘤模型已經(jīng)應(yīng)用于評(píng)估腫瘤藥物和生物治療等的療效,其包括先天免疫缺陷小鼠腫瘤移植瘤模型和基因工程小鼠模型等,這些模型受費(fèi)用、腫瘤生長(zhǎng)時(shí)間以及有效藥物篩選方式等的明顯限制,并且小鼠的生理學(xué)特性和對(duì)治療的敏感性等也潛在地混淆了對(duì)藥物篩選、效果和毒性的判斷[5]。個(gè)體化腫瘤的基因改變均具備特異性,靶向藥物的目的就是基于個(gè)性化治療的基礎(chǔ)上確定治療目標(biāo)的最大效應(yīng),而大部分抗腫瘤化學(xué)藥物僅選擇性地對(duì)一部分病人有益。如果體外試驗(yàn)?zāi)苡辛Φ刈C明某種藥物對(duì)某一部分特異性人群有益,且能在全部人群中有明顯的統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,該藥物就能夠被批準(zhǔn)應(yīng)用,對(duì)于個(gè)體病人來說,會(huì)避免無效藥物的過度性治療以及有效藥物的缺乏。隨著前列腺癌微器官培養(yǎng)技術(shù)的發(fā)展和優(yōu)化,從活檢標(biāo)本收集足夠的材料,到新一代測(cè)序技術(shù)的普及和提高以及高效的臨床和體外治療試驗(yàn)的進(jìn)行,這些新技術(shù)將是腫瘤診治的重大的科學(xué)進(jìn)步。
然而,目前還不清楚體外微器官培養(yǎng)對(duì)治療的應(yīng)答與其在體內(nèi)應(yīng)答的差異,正在進(jìn)行新建立的癌細(xì)胞系對(duì)治療的應(yīng)答情況的回顧性研究。在微器官培養(yǎng)應(yīng)用于臨床藥物試驗(yàn)之前,還需要大量仔細(xì)的前瞻性驗(yàn)證研究。
與常規(guī)二維細(xì)胞培養(yǎng)相比,應(yīng)用前列腺癌微器官培養(yǎng)技術(shù)培養(yǎng)的癌細(xì)胞,其形態(tài)、組織結(jié)構(gòu)、基因DNA狀態(tài)、表達(dá)譜及基因信號(hào)傳導(dǎo)途徑特性等更符合人體腫瘤的實(shí)際生物學(xué)特性。很多腫瘤治療的藥物常常由于無法在動(dòng)物模型或體外研究中獲得準(zhǔn)確的藥物效應(yīng)和毒性反應(yīng)數(shù)據(jù),而在臨床試驗(yàn)階段即被終止,浪費(fèi)了大量的人力和物力資源。利用先進(jìn)的微器官培養(yǎng)體系進(jìn)行臨床前期藥物的療效和安全性的評(píng)價(jià)和篩選,可大大降低藥物研發(fā)的風(fēng)險(xiǎn)。人前列腺癌微器官培養(yǎng)技術(shù)可應(yīng)用于前列腺癌的發(fā)病機(jī)制、發(fā)生發(fā)展過程和分子機(jī)制以及癌細(xì)胞的生長(zhǎng)、侵襲、轉(zhuǎn)移、與腫瘤微環(huán)境的相互作用等腫瘤生物學(xué)行為的研究;通過結(jié)合新一代基因分析等生物信息學(xué)技術(shù),可篩選合適的靶向藥物或特異性藥物,結(jié)合其對(duì)化療和放療等綜合治療方式的敏感性,以達(dá)到實(shí)現(xiàn)腫瘤個(gè)體化精確治療的目的。
微器官培養(yǎng)是一種新近發(fā)展的應(yīng)用型技術(shù),其用于前列腺癌的臨床和基礎(chǔ)研究還存在不成熟之處。相對(duì)于體內(nèi)包括免疫系統(tǒng)在內(nèi)的實(shí)際繁雜多變的內(nèi)環(huán)境,體外微器官培養(yǎng)還只能模擬靜態(tài)和短暫的體內(nèi)微環(huán)境,尚不能完全取代二維細(xì)胞培養(yǎng)和動(dòng)物模型。但微器官培養(yǎng)技術(shù)作為一種新的研究工具,具有二維細(xì)胞培養(yǎng)和動(dòng)物模型的優(yōu)點(diǎn)和自身的獨(dú)特優(yōu)勢(shì),有望成為腫瘤體外研究的新標(biāo)準(zhǔn),在腫瘤臨床和基礎(chǔ)研究領(lǐng)域中有廣闊的應(yīng)用前景,綜合應(yīng)用可望最終達(dá)到改善前列腺癌患者預(yù)后、降低病死率和延長(zhǎng)終末生存期的目的。
致謝:本研究課題受國家自然科學(xué)基金(NSFC #81372772)、江蘇特聘教授科研基金[蘇教師(2012)34 號(hào)]和江蘇高校優(yōu)勢(shì)學(xué)科建設(shè)工程資助項(xiàng)目等資助
關(guān)鍵詞器官培養(yǎng)技術(shù); 前列腺腫瘤
參 考 文 獻(xiàn)
1 Heidegger I, Skradski V, Steiner E, et al. High risk of under-grading and -staging in prostate cancer patients eligible for active surveillance. PLoS One 2015; 10(2): e0115537
2 Coleman RE. Clinical features of metastatic bone disease and risk of skeletal morbidity. Clin Cancer Res 2006; 12(20 Pt 2): 6243s-6249s
3 Bubendorf L, Schopfer A, Wagner U, et al. Metastatic patterns of prostate cancer: an autopsy study of 1 589 patients. Hum Pathol 2000; 31(5): 578-583
4 Ziaee S, Chung LW. Induction of integrin alpha2 in a highly bone metastatic human prostate cancer cell line: roles of RANKL and AR under three-dimensional suspension culture. Mol Cancer 2014; 13: 208
5 Vela I, Chen Y. Prostate cancer organoids: a potential new tool for testing drug sensitivity. Expert Rev Anticancer Ther 2015; 15(3): 261-2633
6 Chua CW, Shibata M, Lei M, et al. Single luminal epithelial progenitors can generate prostate organoids in culture. Nat Cell Biol 2014; 16(10): 951-961, 1-4
7 Kao JW, Collins JL. A rapid in vitro screening system for the identification and evaluation of anticancer drugs. Cancer Invest 1989; 7(4): 303-311
8 Scheithauer W, Clark GM, Moyer MP, et al. New screening system for selection of anticancer drugs for treatment of human colorectal cancer. Cancer Res 1986; 46(6): 2703-2708
9 Kopf-Maier P, Kolon B. An organoid culture assay (OCA) for determining the drug sensitivity of human tumors. Int J Cancer 1992; 51(1): 99-107
10 Kopf-Maier P, Zimmermann B. Organoid reorganization of human tumors under in vitro conditions. Cell Tissue Res 1991; 264(3): 563-576
11 Barker N, Huch M, Kujala P, et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell 2010; 6(1): 25-36
12 Huch M, Dorrell C, Boj SF, et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature 2013; 494(7436): 247-250
13 Sato T, Vries RG, Snippert HJ, et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature 2009; 459(7244): 262-265
14 Sato T, Stange DE, Ferrante M, et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium. Gastroenterology 2011; 141(5): 1762-1772
15 Karthaus WR, Iaquinta PJ, Drost J, et al. Identifi cation of multipotent luminal progenitor cells in human prostate organoid cultures. Cell 2014; 159(1):163-175
16 Gao D, Vela I, Sboner A, et al. Organoid cultures derived from patients with advanced prostate cancer. Cell 2014; 159(1): 176-187
17 Thalmann GN, Anezinis PE, Chang SM, et al. Androgenindependent cancer progression and bone metastasis in the LNCaP model of human prostate cancer. Cancer Res 1994; 54(10): 2577-2581
18 Xue X, Shah YM: In vitro organoid culture of primary mouse colon tumors. J Vis Exp 2013; (75): e50210
19 Andersson-Rolf A, Fink J, Mustata RC, et al. A video protocol of retroviral infection in primary intestinal organoid culture. J Vis Exp 2014; (90): e51765
20 Lancaster MA, Knoblich JA. Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies. Science 2014; 345(6194): 1247125
21 Francis JC, Thomsen MK, Taketo MM, et al. beta-catenin is required for prostate development and cooperates with Pten loss to drive invasive carcinoma. PLoS Genet 2013; 9(1): e1003180
22 Ding Z, Wu CJ, Chu GC, et al. SMAD4-dependent barrier constrains prostate cancer growth and metastatic progression. Nature 2011; 470(7333): 269-273
23 Qin J, Wu SP, Creighton CJ, et al. COUP-TFII inhibits TGF-beta-induced growth barrier to promote prostate tumorigenesis. Nature 2013, 493(7431):236-240
24 Jung P, Sato T, Merlos-Suarez A, et al. Isolation and in vitro expansion of human colonic stem cells. Nat Med 2011; 17(10): 1225-1227
25 Memarzadeh S, Xin L, Mulholland DJ, et al. Enhanced paracrine FGF10 expression promotes formation of multifocal prostate adenocarcinoma and an increase in epithelial androgen receptor. Cancer Cell 2007; 12(6): 572-585
26 Xin L, Lukacs RU, Lawson DA, et al. Self-renewal and multilineage differentiation in vitro from murine prostate stem cells. Stem Cells 2007; 25(11): 2760-2769
27 Forsyth NR, Evans AP, Shay JW, et al. Developmental differences in the immortalization of lung fi broblasts by telomerase. Aging Cell 2003; 2(5): 235-243
28 Pichugin A, Beaujean N, Vignon X, et al. Ring-like distribution of constitutive heterochromatin in bovine senescent cells. PLoS One 2011; 6(11): e26844
29 Sato T, Clevers H. Growing self-organizing mini-guts from a single intestinal stem cell: mechanism and applications. Science 2013; 340(6137): 1190-1194
30 Kimlin LC, Casagrande G, Virador VM. In vitro threedimensional (3D) models in cancer research: an update. Mol Carcinog 2013; 52(3): 167-182
31 Shamir ER, Ewald AJ. Three-dimensional organotypic culture: experimental models of mammalian biology and disease. Nat Rev Mol Cell Biol 2014; 15(10): 647-664
32 Ranga A, Gjorevski N, Lutolf MP. Drug discovery through stem cell-based organoid models. Adv Drug Deliv Rev 2014; 69-70: 19-28
33 Li X, Nadauld L, Ootani A, et al. Oncogenic transformation of diverse gastrointestinal tissues in primary organoid culture. Nat Med 2014; 20(7): 769-777
34 Seano G, Chiaverina G, Gagliardi PA, et al. Modeling human tumor angiogenesis in a three-dimensional culture system. Blood 2013; 121(21): e129-e137
(2015-01-08收稿)
doi:10.3969/j.issn.1008-0848.2015.02.001
中圖分類號(hào)R 737.25