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      微波輔助萃取人參總皂苷與單體皂苷含量分析

      2015-12-10 06:00:35郭雙雙楊利民張一鳴
      食品科學 2015年2期
      關鍵詞:總皂苷皂苷人參

      郭雙雙,楊利民,張一鳴,楊 莉,韓 梅

      (吉林農業(yè)大學中藥材學院,吉林 長春 130118)

      微波輔助萃取人參總皂苷與單體皂苷含量分析

      郭雙雙,楊利民*,張一鳴,楊 莉,韓 梅

      (吉林農業(yè)大學中藥材學院,吉林 長春 130118)

      通過單因素試驗和正交試驗對微波輔助萃取人參皂苷的工藝條件進行優(yōu)化,采用分光光度法和高效液相色譜法對萃取物中的人參總皂苷及8 種單體皂苷進行測定,考察不同提取條件下所得人參皂苷產率和組成的差異。結果表明:1)以總皂苷為提取目標時,最佳提取條件為萃取功率600 W、萃取溫度45 ℃、萃取時間5 min、料液比1∶20,萃取3 次;2)以8 種單體皂苷為提取目標時,最佳提取條件為萃取功率300 W、萃取溫度35 ℃、萃取時間15 min、料液比1∶25,萃取3 次(提取率為0.98%);3)在最佳提取條件下,以體積分數80%甲醇為提取溶劑時,總皂苷提取率為6.02%,而單體皂苷提取率之和為0.43%;以水飽和正丁醇為提取溶劑時8 種單體皂苷提取率達到0.71%。綜上所述,人參質量評價和工藝優(yōu)化結果與提取方法、提取條件、評價指標密切相關。

      組成分析;質量評價;單體皂苷;正交試驗;高效液相色譜法

      人參(Panax ginseng C.A. Mey)為五加科多年生宿生植物,是傳統(tǒng)的名貴藥材。2012年衛(wèi)生部批準人參(人工種植)為新資源食品,為人參在食品中應用給予科學的支持與肯定[1]。人參中所含化學成分包括人參皂苷、糖類、氨基酸、維生素、蛋白質、多肽、有機酸、脂溶性成分以及微量元素等[2]。現(xiàn)代醫(yī)學證明,人參皂苷是人參中最為重要的一類生理活性物質,具有調節(jié)中樞神經系統(tǒng)、改善心血管及造血系統(tǒng)、調節(jié)內分泌系統(tǒng)、提高免疫力、抗疲勞作用以及抗癌等作用,目前,人參中已發(fā)現(xiàn)單體皂苷40多種[3],其含量約占人參干質量的4%[4],而人參主根中總皂苷含量約占干質量的2.0%~7.0%。

      人參總皂苷和單體皂苷的生理活性研究一直都是活躍的研究領域,不同的人參皂苷都有其獨特的生理功能,甚至某些人參單體成分藥理作用截然相反[3],如人參總皂苷是否具有溶血活性常因所用原料、提取方法及提取條件不同導致結論完全相反。這些成分在制劑中差別較大,勢必會影響療效,因此,發(fā)展標準化的人參標準提取物是有必要的[5]。單體皂苷作用不同,單體化合物制劑也是一個發(fā)展趨勢。

      人參皂苷的傳統(tǒng)提取方法有煎煮法、浸漬法、滲濾法、回流法、連續(xù)回流提取法、索氏提取法等[6]。近年來,一些新的提取技術不斷應用于人參及人參皂苷提取的研究中,如超聲提取法、超臨界流體提取法、微波輔助提取法等[7-11]。微波輔助提取法是將微波技術與傳統(tǒng)的溶劑提取法結合后形成的一種提取方法,具有萃取時間短、萃取效率高及重復性好等優(yōu)點,已被廣泛應用于人參植物中人參皂苷的提取,但仍存在萃取溫度、萃取時間、提取料液比等方面的問題,限制了微波輔助提取技術的實際應用。

      針對上述問題,本實驗對人參皂苷的微波輔助提取工藝進行研究,在單因素試驗的基礎上,采用正交試驗法對微波輔助提取工藝條件進行優(yōu)化。現(xiàn)已有多種分析方法被用于人參植物原料、提取物以及人參產品中人參皂苷定性和定量分析[12-17],本實驗分別利用分光光度法和高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)法測定人參中總皂苷含量和人參中8 種主要皂苷單體Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rd、Rf、Rb3,研究同一提取方法不同提取條件總皂苷與單體皂苷之間差異程度,為安全、高效、簡捷地提取目標單體人參皂苷提供參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      生曬參(主根)吉林省集安地區(qū)人工種植5 a人參;人參單體皂苷對照品Rg1、Re、Rf、Rb1、Rb2、Rb3、Rc、Rd及人參總皂苷對照品Re(純度≥98%) 中國食品藥品檢定研究院;甲醇、乙腈(均為色譜純) 美國Fisher Scientifi c公司;甲醇(萃取劑)等其他試劑均為分析純。

      1.2 儀器與設備

      1100高效液相色譜儀 美國安捷倫公司;MARS5微波萃取儀 美國CEM公司;6202高速粉碎機 原鑫田欣鎮(zhèn)企業(yè)有限公司;AUY220電子天平、UV-1700紫外分光光度計 日本島津公司;DL-820E智能超聲波清洗器 上海之信儀器有限公司;RE-52A旋轉蒸發(fā)器上海亞榮生化儀器廠;SHZ-95A循環(huán)水真空泵 鞏義市予華儀器有限責任公司;HH-6數顯恒溫水浴鍋 常州澳華儀器有限公司。

      1.3 方法

      1.3.1 微波萃取人參皂苷單因素考察

      將過篩后(40 目)的人參主根粉末,放入乙醚中浸泡3 h(1∶20(g/mL)),除去脂溶性雜質后過濾,將粉末60 ℃烘干備用。稱取1 g人參粉末放入萃取罐,按照設定的條件進行提取、過濾、減壓濃縮,濃縮液定容至25 mL備用。

      通過控制單一變量的方法,分別對不同萃取時間、萃取溫度、萃取功率、萃取次數、萃取溶劑和料液比進行考察。微波提取條件為料液比1∶30(g/mL)、萃取時間15 min、萃取溫度50 ℃、萃取功率600 W、萃取次數3 次,以人參總皂苷提取率為考察指標,考察各個因素對結果的影響。單因素梯度分別設置為萃取溶劑(水、體積分數70%乙醇、體積分數80%甲醇、水飽和正丁醇);萃取次數(1、2、3、4 次);萃取溫度(35、40、45、50、60 ℃);萃取時間(3、5、10、15、20 min);料液比(1∶10、1∶15、1∶20、1∶30、1∶35)。

      1.3.2 微波萃取條件的優(yōu)化

      為全面考察微波萃取中各因素的影響,在單因素試驗的基礎上設計正交試驗。稱取人參原料1 g,以體積分數80%甲醇為萃取劑,提取3 次。以萃取溫度、萃取時間、萃取功率和料液比為考察因素,以人參總皂苷的提取率為考察指標,采用L9(34)正交試驗進行優(yōu)化,確定微波萃取人參皂苷的最佳工藝條件,試驗的各因素水平見表1。

      表 1 正交試驗因素水平表Table 1 Factors and levels for orthogonal array design

      1.3.3 分光光度法測定人參總皂苷

      利用香草醛-硫酸比色法[18]測定人參總皂苷。

      1.3.4 人參皂苷單體的HPLC測定

      1.3.4.1 色譜條件

      表 2 梯度洗脫表Table 2 Mobile phase composition for gradient elution

      Agilent ZORBAX-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱;流動相乙腈(A)-水(B)梯度洗脫;洗脫條件見表2;流速1.0 mL/min;檢測波長203 nm;柱溫25 ℃;進樣量20 μL。

      1.3.4.2 對照品溶液的制備

      精密稱取8 種單體人參皂苷對照品適量,加甲醇制成每毫升含Rg1、Re、Rf、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd分別為0.25、0.25、0.2、0.25、0.2、0.2、0.125、0.2 mg的對照品混合溶液,過0.45 μm微孔濾膜,備用。

      1.3.4.3 線性關系的考察

      精密吸取對照品溶液3、6、9、12、15、18 μL按1.3.4.1節(jié)色譜條件分別進樣,以所測得物質平均峰面積為縱坐標(y),對照品溶液質量濃度為橫坐標(x),繪制標準曲線,建立回歸方程,見表3。

      表 3 人參單體皂苷的回歸方程Table 3 Regression equations with correlation coeffi cients of 8 ginsenoside monomers

      1.3.4.4 樣品的測定

      將1.3.1節(jié)所定容的25 mL提取物,過0.22 μm的濾膜,按照1.3.4.1節(jié)色譜條件進樣,記錄色譜峰面積,利用標準曲線計算上述8 種人參皂苷單體的提取率(提取率即提取物中皂苷質量占樣品總質量的百分數)采用SPSS軟件對所得數據進行統(tǒng)計分析。

      1.4 數據分析

      每組實驗在相同的條件下平行3 次,以降低實驗操作過程所產生的誤差,數據均以±s表示,利用SPSS 17.0方差分析對組間和組內差異進行比較,P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。

      2 結果與分析

      2.1 微波輔助萃取人參皂苷單因素試驗結果

      2.1.1 不同萃取溶劑的影響

      由圖1可以看出,以體積分數80%甲醇作萃取劑時,人參皂苷提取率最高,體積分數70%乙醇提取率僅次于甲醇,且與其他萃取劑之間存在顯著差異(P<0.05),水為提取劑時人參皂苷提取率最低。

      圖 1 萃取溶劑對人參皂苷提取率的影響Fig.1 Effect of extraction solvents on the yield of ginsenosides

      2.1.2 單因素試驗結果

      圖 2 微波輔助提取單因素試驗結果Fig.2 Single factor experimental results of microwave-assisted extraction

      由圖2可知,微波輔助提取人參總皂苷各個單因素的最佳水平分別為萃取次數為3 次、料液比1∶30、萃取溫度40 ℃、萃取時間5 min。

      2.2 正交試驗結果

      按照表4進行正交試驗,對不同因素水平的試驗結果進行極差分析,結果如表5所示。根據表4中的R值,可以看出各因素對微波輔助萃取人參皂苷提取率的影響程度依次為B>D>C>A,即萃取功率的影響最大,其次分別為料液比、萃取溫度、萃取時間。由表5的方差分析結果可知,萃取時間、萃取溫度、料液比和萃取功率均對人參皂苷提取率的影響達到極顯著水平(P<0.01),說明影響人參皂苷提取率的4 個因素變化都很敏感。

      表 4 L9(34)正交試驗結果與極差分析Table 4 Results of L9(34) orthogonal array design and range analysis

      表 5 正交試驗方差分析結果Table 5 Analysis of variance of the orthogonal array design

      根據極差分析結果,確定微波輔助萃取人參皂苷的最佳理論條件為萃取功率600 W、萃取溫度45 ℃、萃取時間5 min、料液比1∶20,以體積分數80%甲醇為萃取劑萃取3 次。在最佳理論條件下進行驗證實驗,總皂苷提取率為6.02%。

      2.3 微波輔助萃取人參皂苷HPLC組成分析

      2.3.1 最佳理論條件下組成分析

      分別對Rg1、Re、Rf、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 8 種人參單體皂苷進行測定,含量依次為0.263%、0.096%、0.052%、0.144%、0.050%、0.039%、0.000%、0.013%。按照含量從大到小排序為:Rg1>Rb1>Re>Rf>Rc>Rb2>Rd>Rb3。這8 種皂苷是人參中含量較豐富的幾種皂苷,常作為評價人參質量和鑒定人參標準。其中Rg1提取率最高,其次是Rb1和Re,文獻中報道人參皂苷Rg1具有促進中樞神經興奮、抗疲勞、改善記憶、促進DNA和RNA合成等作用;人參皂苷Rbl對提高記憶具有促進作用,還具有促進神經遞質釋放、增強第2信使活性等作用;而人參皂苷Re具有抑制中樞神經、促進刺激腎皮質荷爾蒙分泌作用。這與樊紅秀等[19]超臨界萃取人參皂苷及HPLC分析Rb1的提取率較高相關,其次為Rg1和Re結果基本一致。

      2.3.2 不同提取劑組成分析

      表 6 不同提取劑微波萃取人參皂苷組成分析Table 6 Effect of different extraction solvents on ginsenoside composition

      由表6可知,用不同提取劑萃取所得8 種單體皂苷含量按大小排序。利用SPSS分析可知8 種單體皂苷含量之間存在顯著差異。以水飽和正丁醇作提取劑時,除Re外其他7 種單體皂苷提取率均最高,并且8 種皂苷總和仍然最高。水和體積分數70%乙醇做萃取劑時僅Rg1、Rb3、Rd 3 種皂苷存在顯著差異,其他5 種皂苷含量一樣。當以體積分數80%甲醇為萃取劑時,8 種單體皂苷的提取率均處于最低水平,且Rb3、Rd未被檢測到。與2.1.1節(jié)結果不符,說明雖然體積分數80%甲醇作為提取劑總皂苷提取率高,但是這8 種常見皂苷含量較低,可能是微波輔助提取過程中皂苷被分解成次級皂苷。人參中含量較高的人參皂苷有Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2和Rd等,一些在人參中含量極低的人參皂苷被稱為次級人參皂苷或稀有人參皂苷。研究結果表明,一些次級人參皂苷具有很強的藥理活性,如人參皂苷Rg3具有抑制腫瘤細胞的增殖、抗腫瘤細胞浸潤和轉移等作用,人參皂苷Rh1也具有抗癌的功效等。王玉堂等[20-21]分別對人參皂苷Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2和Rd標準品進行高壓微波降解,從而確定人參提取液中各次級人參皂苷的來源。壓力600 kPa、時間10 min條件下6 種人參單體皂苷均完全降解,主要產物為一些中低極性產物。

      2.3.3 不同因素水平間的組成分析

      由表7可知,正交試驗9 個水平萃取所得8 種單體皂苷含量按大小排序,與表6結果基本一致。但同1 種人參單體皂苷在不同提取條件下存在顯著差異。由此可知8 種常見人參單體皂苷在人參主根中含量存在顯著差異,且當改變提取條件時,對同一種人參單體皂苷的提取率存在顯著影響,但對8 種人參皂苷提取率排序無顯著影響。

      分別以8 種單體皂苷提取率之和、三醇型提取率、二醇型提取率、總皂苷提取率為指標,分別進行極差分析,所得結果如表8所示。

      表 7 L9(34)正交試驗HPLC結果Table 7 Results of L9(34) orthogonal array design

      表 8 正交試驗以不同指標進行極差分析結果Table 8 Results of range analysis for different indexes

      由表8可知,選擇不同指標時,所得的結果存在很大差異。說明當提取條件發(fā)生改變時,各單體皂苷含量會發(fā)生很大變化。目前中國藥典中以人參皂苷Rg1和Re的含量作為評判標準[22],但很多生產企業(yè)由于技術力量及檢測設備等存在缺陷,仍有大部分地區(qū)以總皂苷含量作為質控的主要指標,其中的差異應予以重視。有必要研究以不同皂苷含量為指標,并且人參質量評價結果與選擇的結果密切相關[23],研究同種提取方法相同條件下,對所得結果進行分析,建立合理統(tǒng)一的質量評價標準,不僅可以規(guī)范人參質量評價指標,而且可以獲得更多的目標成分。

      3 結 論

      皂苷類物質是人參中主要的活性物質,根據皂苷元的結構,人參皂苷可分為二醇型、三醇型和齊墩果酸型,每種類型中又包括多種單體皂苷。目前研究顯示,人參總皂苷含量、不同類型人參皂苷含量或單體人參皂苷含量均可作為人參品質評價的指標[24]。根據本研究結果顯示,以總皂苷為指標時,微波輔助提取最佳條件為萃取功率600 W、萃取溫度45 ℃、萃取時間5 min、料液比1∶20,以體積分數80%甲醇為萃取劑萃取3 次,以8 種單體皂苷提取率之和為指標時,微波輔助最佳提取最佳條件為萃取功率300 W、萃取溫度35 ℃、萃取時間15 min、料液比1∶25,以體積分數80%甲醇為萃取劑萃取3 次。通過對8 種單體皂苷研究發(fā)現(xiàn),不同提取條件下8 種單體皂苷的大小順序基本無變化,說明這8 種單體皂苷在人參主根中含量差別很大。另外,當以總皂苷為指標時,以體積分數80%甲醇作萃取劑最好與張晶等[25]研究不同,甲醇提取提取率最高只是在實驗室得到的理論值,但在實際的生產中還是要考慮采用乙醇。而以8 種單體皂苷提取率之和為指標時,以水飽和正丁醇為萃取劑最好,體積分數80%甲醇提取率最次。體積分數70%乙醇對總皂苷和單體皂苷的提取效果都比較穩(wěn)定,在食品或藥品原料制備中,選擇萃取溶劑不僅要考慮到提取率的高低,還要考慮到食品安全性方面的問題,同時說明同一種提取方法不同提取條件,人參皂苷的提取率及組成具有較大差異。這與張艷榮等[26]研究基本一致,從而可知提取方法的不同與提取條件的不同都對人參皂苷的提取率及組成具有較大差異。

      本研究僅對微波輔助提取條件對人參皂苷含量的影響進行研究,為更加細致的建立人參品質評價系統(tǒng)及深度研究開發(fā)不同單體皂苷還需進一步對不同提取方法及不同提取條件進行比較分析。

      [1] 衛(wèi)生部. 衛(wèi)生部公告2012年第17號: 關于批準人參(人工種植)為新資源食品的公告[S].

      [2] 張萍, 王金東, 肖新月, 等. 人參化學成分分析方法的研究進展[J].中草藥, 2004, 35(10): 1429-1433.

      [3] 竇德強, 靳玲, 陳英杰. 人參的化學成分及藥理活性的研究進展與展望[J]. 沈陽藥科大學學報, 1999, 16(2): 151-156.

      [4] SHI Wei, WANG Yutang, LI Juan, et al. Investigation of ginsenosides in different parts and ages of Panax ginseng[J]. Food Chemistry, 2007, 102(3): 664-668.

      [5] 王玉堂. 人參中人參皂苷的提取、分離和測定[D]. 長春: 吉林大學, 2008.

      [6] 馮育林, 謝平, 孫葉兵, 等. 中藥提取工藝應用進展[J]. 中藥材, 2002, 25(12): 908-911.

      [7] ZHANG Shouqin, CHEN Ruizhan, WU Hua, et al. Ginsenoside extraction from Panax quinquefolium L. (American ginseng) root by using ultrahigh pressure[J]. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2006, 41(1): 57-63.

      [8] GAFNER S, BERGERON C, MCCOLLOM M M, et al. Evaluation of the efficiency of three different solvent systems to extract triterpenesaponins from roots of Panax quinquefolius using highperformance liquid chromatography[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2004, 52(6): 1546-1550.

      [9] KIM S J, MURTHY H N, HAHN E J, et al. Parameters affecting the extraction of ginsenosides from the adventitious roots of ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer)[J]. Separation and Purifi cation Technology, 2007, 56(3): 401-406.

      [10] 陳軍輝. 西洋參皂苷的HPLC測定及不同提取方法比較[J]. 天然產物研究與開發(fā), 2006, 18(1): 120-125.

      [11] WOOD J A, BERNARDS M A, WAN W K, et al. Extraction of ginsenosides from North American ginseng using modified supercritical carbon dioxide[J]. The Journal of Supercritical Fluids, 2006, 39(1): 40-47.

      [12] FUZZATI N, GABETTA B, JAGAKER K, et al. Liquid chromatography-electrospray mass spectrometric identification of ginsenosides in Panax ginseng roots[J]. Journal of Chromatography A, 1999, 854(1/2): 69-79.

      [13] FUZZATI N. Analysis methods of ginsenosides[J]. Journal of Chromatography B, 2004, 812(1): 119-133.

      [14] CORTHOUT J, NAESSENS T, APERS S, et al. Quantitative determination of ginsenosides from Panax ginseng roots and ginseng preparations by thin layer chromatography-densitometry[J]. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 1999, 21(1): 187-192.

      [15] 桂雙英, 周亞球. 比色法測定人參中人參總皂苷的含量[J]. 安徽中醫(yī)學院學報, 2003, 22(4): 51-55.

      [16] CORBIT R M, FERREIRA J F S, EBBS S D, et al. Simplified extraction of ginsenosides from american ginseng (Panax quinquefolius L.) forhigh-performance liquid chromatography-ultraviolet analysis[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2005, 53(26): 9867-9873.

      [17] PARK M K, PARK J H, HAN S B, et al. High-performance liquid chromatographic analysis of ginseng saponins using evaporative light scattering detection[J]. Journal of Chromatography A, 1996, 736: 77-81.

      [18] 曲正義, 趙景輝, 劉宏群, 等. 比色法測定保鮮人參中人參總皂苷的含量[J]. 人參研究, 2012(1): 13-14.

      [19] 樊紅秀, 劉婷婷, 劉鴻鋮, 等. 超臨界萃取人參皂苷及HPLC分析[J].食品科學, 2013, 34(20): 121-126.

      [20] 王玉堂, 李緒文, 金海燕, 等. 人參中人參皂苷的直接高壓微波輔助降解[J]. 高等學?;瘜W學報, 2007, 28(12): 2264-2269.

      [21] WANG Yutang, YOU Jingyang, YU Yong, et al. Analysis of ginsenosides in Panax ginseng in high pressure microwave-assisted extraction[J]. Food Chemistry, 2008, 110(1): 161-167.

      [22] 國家藥典委員會. 中華人民共和國藥典: 一部[M]. 北京: 化學工業(yè)出版社, 2010: 7.

      [23] 王曉郁, 林紅梅, 楊莉, 等. 吉林省幾個主要產區(qū)人參藥材品質評價[J].吉林農業(yè)大學學報, 2013, 35(5): 673-678.

      [24] 張崇喜, 鄭蘭友, 李向高, 等. 規(guī)范化栽培的吉林人參質量評價研究[J].吉林農業(yè)大學學報, 2003, 25(4): 404-406.

      [25] 張晶, 陳全成, 弓曉杰, 等. 不同提取方法對西洋參皂苷提取率的影響[J]. 吉林農業(yè)大學學報, 2003, 25(1): 71-73.

      [26] 張艷榮, 張帥, 樊紅秀, 等. 提取方法對吉林種植人參提取物皂苷含量及組成的影響[J]. 食品科學, 2013, 34(12): 16-21.

      Determination of Contents of Total Saponins and Monomer Saponins in Panax ginseng by Microwave-Assisted Extractiion Method

      GUO Shuangshuang, YANG Limin*, ZHANG Yiming, YANG Li, HAN Mei
      (College of Chinese Medicinal Materials, Jilin Agricultural University, Changchun 130118, China)

      Single factor and orthogonal array designs were applied to optimize the conditions for microwave-assisted extraction of ginsenosides, and the determination of eight main monomer saponins and total saponins in Panax ginseng extracts was performed by high performance liquid chromatography and spectrophotometry to investigate the influence of different extraction conditions on the ginsenoside contents and composition in Panax ginseng extracts. The results showed that 1) the optimum extraction conditions for total saponins were determined as follows: microwave power, 600 W; extraction temperature, 45 ℃; extraction time, 5 min; the ratio of material to solvent, 1:20; and extraction number, 3; 2) the optimum extraction conditions for saponin monomers (leading to an extraction yield of 0.98%) were 300 W, 35 ℃, 15 min, a material-to-solvent of 1∶25, and three extraction cycles; 3) under the optimum conditions, with 80% aqueous methanol as the extraction solvent, the yield of total saponins was 6.02%, while the total yield of eight ginsenoside monomers was 0.43% compared to 0.71% with water-saturated butanol as the extraction solvent. In summary, ginseng quality evaluation and process optimization results were infl uenced by different extraction methods, extraction conditions and evaluation indexes.

      composition analysis; quality evaluation; monomer saponin; orthogonal array design; high performance liquid chromatography (HPLC)

      TS201.4

      A

      1002-6630(2015)02-0001-06

      10.7506/spkx1002-6630-201502001

      2014-06-11

      國家自然科學基金面上項目(31270371);“十二五”國家科技支撐計劃項目(2011BAI03B01-02);吉林省科技成果轉化項目(20125068)

      郭雙雙(1991—),男,碩士研究生,研究方向為中藥材質量評價。E-mail:1530811226@qq.com

      *通信作者:楊利民(1963—),男,教授,博士,研究方向為中藥資源生態(tài)與藥材質量調控。E-mail:ylmh777@126.com

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