趙 坤,呂孝敏,胡訓(xùn)霞,張 萍,史春陽(yáng),王喜慶,葛才林,王澤港(揚(yáng)州大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,江蘇揚(yáng)州225009)
根系分泌物是植物與外界信息、物質(zhì)、能量交流和交換的重要載體物質(zhì)。早在18、19世紀(jì),Plenk等就發(fā)現(xiàn)根系分泌物具有促進(jìn)生長(zhǎng)和抑制鄰近植株的作用。到20世紀(jì)50年代,研究者發(fā)現(xiàn)了根系分泌物與固氮菌之間的互利關(guān)系。在20世紀(jì)70~90年代,根系分泌物的研究進(jìn)入一個(gè)新的時(shí)期。根系分泌物在植物營(yíng)養(yǎng)、農(nóng)業(yè)生產(chǎn)與環(huán)境等領(lǐng)域得到廣泛應(yīng)用,而且根系分泌物與根際微生物間相生、相克關(guān)系就成為當(dāng)時(shí)一個(gè)重要的研究方向[1]。時(shí)至今日,國(guó)內(nèi)外學(xué)者在微生物學(xué)、土壤學(xué)等相關(guān)學(xué)科的不斷發(fā)展和研究技術(shù)不斷改進(jìn)的基礎(chǔ)上,逐步了解和完善不同植物根系分泌物的種類、分泌機(jī)制、根系分泌物的檢測(cè)方法,并且在根系分泌物與根際微生態(tài)環(huán)境之間相互作用等方面的研究都取得很大的進(jìn)步。目前,一般把復(fù)雜的根系分泌物分為三類:一是具有較強(qiáng)的黏性、吸附性和潤(rùn)濕作用的大分子的有機(jī)分泌物,如多糖、多聚半乳糖醛酸及少量蛋白質(zhì)、胞外酶;二是具有絡(luò)合、鰲合能力的小分子的可溶性有機(jī)物,主要有可溶性糖、氨基酸、有機(jī)酸、酚類等,它們可以為根際微生物提供重要的碳源;三是其他有機(jī)分泌物,主要是維生素、生長(zhǎng)素、膽堿、煙酸[2-4]。最初對(duì)根系分泌物的研究主要局限在小分子物質(zhì)一類,具有代表性的是張福鎖等對(duì)麥根酸植物鐵載體的研究。另外,研究發(fā)現(xiàn),植物在高濃度的金屬脅迫下能夠形成植物螯合肽(Phytochelatins,PCs)。PCs既可以在根際環(huán)境存在,又可以在植物體內(nèi)存在。PCs主要起到對(duì)過(guò)量金屬的解毒和維持微量金屬元素體內(nèi)平衡的作用。然而,PCs是否由相關(guān)的基因控制還有待于進(jìn)一步的研究[5]。根系分泌蛋白作為根系分泌物的重要成分近年來(lái)逐漸成為研究熱點(diǎn)。分泌蛋白參與植物相關(guān)的根系胞外信號(hào)途徑、形態(tài)發(fā)生、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞分化等多種生物過(guò)程,并且根系分泌蛋白還對(duì)土壤養(yǎng)分有化學(xué)活化作用、修飾土壤且提高植物的抗逆能力。同時(shí),根系分泌的酶類蛋白是對(duì)土壤酶的一個(gè)補(bǔ)充,并且影響根系蛋白分泌的因素除與植物種類及其生理特性有關(guān)外,還與外界環(huán)境密切相關(guān)。這其中主要包括養(yǎng)分脅迫、根際微生物等。Doloressa等[6]根據(jù)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)信號(hào)肽在蛋白質(zhì)合成中的作用,把嗜熱細(xì)菌來(lái)源的木聚糖酶、水母的綠色熒光蛋白和人胎盤(pán)分泌的堿性磷酸酶(SEAP)3種重組蛋白定位到質(zhì)外體中,通過(guò)根分泌和葉分泌途徑獲得表達(dá),從而建立2種新的重組蛋白表達(dá)系統(tǒng)——植物根分泌和葉分泌,簡(jiǎn)化分離和純化程序,為利用轉(zhuǎn)基因植物大規(guī)模生產(chǎn)重組蛋白提供潛在的途徑,同時(shí)表明根分泌途徑與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)分泌途徑具有相似性。但是,根系分泌蛋白較少,而且多數(shù)分泌蛋白是酶類蛋白,富集、分離、鑒定工作繁雜、效率低;同時(shí),植物分泌蛋白水平處于動(dòng)態(tài)變化中,往往導(dǎo)致分泌蛋白質(zhì)組學(xué)的試驗(yàn)結(jié)果重復(fù)性差,目前對(duì)植物根系分泌蛋白的研究相對(duì)集中在脅迫條件下根系對(duì)逆境環(huán)境應(yīng)答方面的研究[7-9]。
在植物生長(zhǎng)、發(fā)育過(guò)程中,細(xì)胞之間必須進(jìn)行信息傳遞以保證基本的生命活動(dòng)。其中,蛋白質(zhì)分泌就是細(xì)胞間進(jìn)行信息傳遞的重要方式之一。
蛋白質(zhì)分泌包括2條基本的途徑。一是經(jīng)典分泌途徑。在這一途徑中,蛋白質(zhì)N端具信號(hào)肽序列,且依賴于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(ER)和高爾基體(Golgi apparatus),即ER-Golgi途徑。二是非經(jīng)典的分泌途徑。分泌蛋白不含N端信號(hào)肽序列,其分泌過(guò)程不依賴于ER-Golgi。非經(jīng)典分泌又包括至少4種不同的分泌方式(圖1)[10]。
1.1 經(jīng)典分泌途徑 在經(jīng)典分泌途徑中,ER參與初生蛋白的合成、折疊、組裝、轉(zhuǎn)運(yùn)與分泌[11]。蛋白質(zhì)的合成都是從細(xì)胞質(zhì)中游離核糖體上開(kāi)始的。經(jīng)典的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)-高爾基體蛋白質(zhì)在其N端具有信號(hào)肽序列。當(dāng)合成的信號(hào)肽序列被信號(hào)識(shí)別顆粒(SRP)識(shí)別結(jié)合后,肽鏈延伸終止,此后SRP與受體結(jié)合,SRP脫離信號(hào)肽,蛋白質(zhì)合成重新開(kāi)始,與此同時(shí)信號(hào)肽引導(dǎo)新肽鏈進(jìn)入內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔,而信號(hào)肽序列則在信號(hào)肽酶的作用下被切除,肽鏈延伸到終止。進(jìn)入內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔的多肽鏈還要經(jīng)過(guò)各種修飾加工,如糖基化(Glycosylation)、羥基化(Hydroxylation)、?;?Acylation)和二硫鍵(Disulfide bond)的形成等。糖基化伴隨著多肽鏈的合成同時(shí)進(jìn)行,是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中最常見(jiàn)的多肽鏈加工方式。在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔中加在多肽鏈上的寡糖鏈,還要在高爾基體中進(jìn)行一系列復(fù)雜的加工才能成為有活性的分泌蛋白。在合成過(guò)程中,多肽鏈在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔中要進(jìn)行折疊。不能正確折疊的多肽鏈一般不能進(jìn)入高爾基體,而在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔中很快地被降解[12]。
1.2 非經(jīng)典蛋白質(zhì)分泌途徑 近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),在真核細(xì)胞中存在著一類無(wú)信號(hào)肽的分泌蛋白。這些在細(xì)胞外有明確功能的蛋白質(zhì)且不含有信號(hào)肽的分泌蛋白不依賴于ERGolgi途徑,而是通過(guò)其他途徑進(jìn)行分泌。這類分泌途徑被稱為非經(jīng)典分泌途徑[10]。它們的分泌不需要ER-Golgi的參與,因此ER-Golgi分泌途徑的抑制劑布雷菲爾德菌素A(BFA)和莫能菌素不能抑制非經(jīng)典蛋白的分泌。蛋白的非經(jīng)典分泌是有選擇性的,不是細(xì)胞內(nèi)容物被動(dòng)釋放的結(jié)果,而且不伴隨著其他諸如LDH等細(xì)胞死亡標(biāo)志物的出現(xiàn)[13]。因此,這一類蛋白被稱為非經(jīng)典分泌蛋白。
非經(jīng)典蛋白質(zhì)分泌途徑作為另一種廣泛存在的蛋白質(zhì)分泌方式,在胞外信號(hào)途徑、形態(tài)發(fā)生、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞分化等多種生物過(guò)程中發(fā)揮著重要作用,是“內(nèi)質(zhì)網(wǎng)-高爾基”途徑有效的補(bǔ)充和替代。以下是真核細(xì)胞非經(jīng)典分泌蛋白的特點(diǎn):①蛋白質(zhì)的相對(duì)分子量為12~45 kDa,沒(méi)有有功能的信號(hào)肽,通常由胞質(zhì)內(nèi)游離核糖體合成;②這些蛋白質(zhì)多為單體,有不參與形成二硫鍵的半胱氨酸殘基,它們不需要經(jīng)過(guò)ER-Golgi的翻譯后修飾;③ER-Golgi的蛋白分泌途徑的抑制劑布雷菲爾德菌素A不能抑制非經(jīng)典蛋白分泌途徑[14];④非經(jīng)典分泌途徑被證明依賴于能量和溫度,并且在多種條件下被抑制或激活,是可調(diào)控的[15-16];⑤非經(jīng)典蛋白分泌過(guò)程被 NK-κB 依賴的信號(hào)傳導(dǎo)途徑[17]、細(xì)胞分化[18]和轉(zhuǎn)錄后修飾(如磷酸化)等所調(diào)控[19]。
盡管非經(jīng)典分泌蛋白有許多共同的特征,但不同的分泌蛋白也有其各自的分泌機(jī)制,主要分為組成型和調(diào)節(jié)型分泌。目前已有4種非經(jīng)典蛋白分泌途徑被廣泛報(bào)道,分別是①經(jīng)多囊體(MVBs)分泌;②經(jīng)液泡與細(xì)胞膜融合的分泌;③不依賴于高爾基體的胞質(zhì)蛋白分泌,如甘露醇脫氫酶(MTD)和潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶(HYG?);④經(jīng)雙層膜細(xì)胞器EXPO 的分泌[10]。
1.2.1 MVBs介導(dǎo)的蛋白分泌途徑。MVBs介導(dǎo)的蛋白分泌在動(dòng)物中研究報(bào)道較多。近年來(lái),越來(lái)越多的研究表明植物中同樣存在MVBs介導(dǎo)的蛋白分泌過(guò)程[20]。MVBs在植物細(xì)胞中也被稱作液泡前體(Prevacuolar compartments,PVCs)或晚期胞內(nèi)體(Late endosomes,LEs)。在植物受真菌等病原體感染時(shí),往往會(huì)誘導(dǎo)植物體啟動(dòng)MVBs介導(dǎo)的蛋白分泌。這種由MVBs分子機(jī)器介導(dǎo)的非經(jīng)典蛋白分泌在植物體內(nèi)獨(dú)具特色。病程相關(guān)的貨物蛋白通過(guò)該途徑轉(zhuǎn)運(yùn)至胞外病原感染的乳突部位[21-23]。關(guān)于MVBs的來(lái)源,既有源于質(zhì)膜的轉(zhuǎn)內(nèi)吞作用,又有重新生物合成的[22-24]。Scheuring等[25]以擬南芥為材料的研究表明,植物中的MVBs起源于TGN/EE。在這一形成過(guò)程中,需要內(nèi)吞體分選轉(zhuǎn)運(yùn)復(fù)合體(Endosomal sorting complex required for transport,ESCRT)的參與且形成管腔內(nèi)空泡,也需要膜聯(lián)蛋白(Annexin)以完成MVBs作為運(yùn)輸載體向液泡的釋放。ESCRT系統(tǒng)是真核細(xì)胞中完成胞內(nèi)體(Endosome)膜內(nèi)陷以形成多囊泡體(multi-vesicular body,MVB)的分子機(jī)器。ESCRT系統(tǒng)包括ESCRT-0、ESCRT-Ⅰ、ESCRT-Ⅱ、ESCRT-Ⅲ和 Vps4-Vta1 共 5 個(gè)蛋白 - 蛋白復(fù)合物。晶體學(xué)研究已經(jīng)解析了大部分復(fù)合物的結(jié)構(gòu)。它促使膜內(nèi)陷的分子機(jī)理一般認(rèn)為分3步:首先是ESCRT-Ⅰ和-Ⅱ在內(nèi)體膜上結(jié)合,并且促使內(nèi)體膜內(nèi)陷形成初始芽體;然后,ESCRT-Ⅲ在芽體頸部聚合,并且導(dǎo)致芽體的剪切,從而將內(nèi)腔囊泡(Intralumenal vesicles,ILVs)釋放到內(nèi)體腔,形成MVB;最后,Vps4/Vta1復(fù)合物以水解ATP提供能量將聚合的ESCRT-Ⅲ解聚以循環(huán)利用,完成更多的出芽過(guò)程[26]。Nielsen等[27]用大麥白粉菌感染擬南芥時(shí)發(fā)現(xiàn),僅有3種SNAREs(Soluble N-ethylmaleimide-sensitive factor adaptor protein receptors)分泌蛋白在侵染部位積累,分別是PENETRATION1(PEN1,也就是擬南芥中的AtSYP121)、ROR2(required for mlo-sjpecified resistanse 2,是大麥中PEN1的同系物)和AtSNAP33(即擬南芥中的soluble N-ethylmaleimide-sensitive factor adaptor protein 33)。只有特殊類型的MVBs參與病原菌侵染的應(yīng)激響應(yīng)過(guò)程。
MVBs除參與病原應(yīng)激響應(yīng)外,還參與在正常生長(zhǎng)條件下蛋白的非經(jīng)典途徑分泌。在動(dòng)物細(xì)胞中,外泌體(Endosomes)是來(lái)自于MVBs和PM融合后的管腔囊泡[28]。不同研究者利用超速離心技術(shù)[29]、免疫熒光標(biāo)記技術(shù)[30-31]、免疫電子顯微鏡技術(shù)[32]在不同植物的胞外空間(Extracellular space,ECS)也發(fā)現(xiàn)了類似的外泌體囊泡。也有研究發(fā)現(xiàn),在向日葵幼苗的ECS中檢測(cè)到不受BFA影響的LSP-jacalin相關(guān)植物凝集素(Helja)。該凝集素存在于類似外泌體的囊泡中[30]。越來(lái)越多的研究表明,MVBs是植物體內(nèi)介導(dǎo)蛋白非經(jīng)典分泌的重要方式之一。
1.2.2 不依賴于高爾基體的胞質(zhì)蛋白分泌。不依賴于高爾基體的胞質(zhì)蛋白分泌又稱為高爾基體旁路分泌(Golgi-bypass pathway)。在動(dòng)物體內(nèi),ARF-GEF抑制劑BrefildinA(BFA)是一種常被用來(lái)檢測(cè)含信號(hào)肽蛋白是否經(jīng)高爾基體旁路分泌的有效工具。在20多年前,第一次用該方法在植物中檢測(cè)到多個(gè)高爾基體旁路分泌的蛋白,當(dāng)時(shí)發(fā)現(xiàn)在煙草懸浮培養(yǎng)細(xì)胞液中存在多種多肽對(duì)BFA不敏感[33-34]。
迄今為止,在植物中發(fā)現(xiàn)的由高爾基體旁路分泌的蛋白主要有芹菜中的MTD和擬南芥中的HYGR兩個(gè)。一般情況下,MTD是植物和真菌體內(nèi)參與代謝與滲透調(diào)節(jié)的重要的碳水化合物。Cheng等[35]應(yīng)用透射電子顯微鏡法觀察到MTD在病原防御相關(guān)的植物激素水楊酸(SA)的誘導(dǎo)下會(huì)分泌至細(xì)胞外空間。該蛋白不含信號(hào)肽序列,是典型的無(wú)導(dǎo)肽分泌蛋白(LSP)。用高爾基體抑制劑Brefeldin A(BFA)處理,發(fā)現(xiàn)MTD分泌對(duì)BFA不敏感,也就是說(shuō)其分泌不依賴于高爾基體。MTD通過(guò)非經(jīng)典分泌途徑可實(shí)現(xiàn)其多樣性的細(xì)胞功能。在正常條件下MTD參與細(xì)胞內(nèi)的代謝與滲透調(diào)節(jié)功能,而在病原侵染等逆境條件下MTD可通過(guò)非經(jīng)典分泌途徑分泌至細(xì)胞外,并且將病原真菌分泌的甘露醇降解,以防其對(duì)活性氧的猝滅作用。這是因?yàn)榛钚匝鯇?duì)真菌的侵染有重要的抑制作用。HYGR是Zhang等[36]在擬南芥中發(fā)現(xiàn)的第2個(gè)存在于植物中的由高爾基體旁路分泌的無(wú)導(dǎo)肽分泌蛋白。它可以磷酸化和鈍化潮霉素B。利用熒光免疫檢測(cè)技術(shù)和免疫金標(biāo)記技術(shù),發(fā)現(xiàn)擬南芥的突觸結(jié)合蛋白SYT2(Synaptotagmin 2)定位于高爾基體,SYT2與HYGR-GFP共表達(dá),導(dǎo)致轉(zhuǎn)基因擬南芥對(duì)潮霉素B的超敏反應(yīng)。在細(xì)胞內(nèi)和胞外空間均被檢測(cè)到,但其分泌對(duì)BFA處理不敏感,表明其分泌不依賴于高爾基體的介導(dǎo),而是受定位于高爾基體的SYT2的調(diào)控,并且通過(guò)非經(jīng)典途徑分泌,但對(duì)于這一分泌途徑的機(jī)制了解甚少。
1.2.3 液泡與質(zhì)膜融合介導(dǎo)的蛋白分泌途徑。有研究表明,當(dāng)受到病原細(xì)菌侵染時(shí),擬南芥的液泡會(huì)與質(zhì)膜在感染部位融合而將植物防御相關(guān)的液泡酶分泌至質(zhì)膜外,以實(shí)現(xiàn)對(duì)生物脅迫的應(yīng)激反應(yīng)[37]。在該融合過(guò)程中需要蛋白酶體復(fù)合物的催化。研究表明,組成蛋白酶體的3個(gè)組分中任意一個(gè)被沉默,那么液泡與質(zhì)膜的融合就會(huì)被抑制[38],而該融合過(guò)程的抑制劑可以被蛋白酶體復(fù)合物降解,不過(guò)這種抑制劑到目前還未被分離、鑒定出來(lái)[18]。眾所周知,液泡的常規(guī)功能是維持植物細(xì)胞的完整性,即保持細(xì)胞的膨脹壓。因此,液泡與質(zhì)膜融合的存在就必然給人們帶來(lái)很多疑問(wèn),比如,該融合過(guò)程中植物細(xì)胞如何實(shí)現(xiàn)病原防御?如何在液泡與質(zhì)膜融合后保持細(xì)胞的完整性和活力?是否有新的液泡產(chǎn)生?
1.2.4 EXPO介導(dǎo)的蛋白分泌途徑。胞外復(fù)合物(Exocyst comples)最早是在酵母中被分離、鑒定的[39]。后來(lái),在動(dòng)物[40]和植物[41]中相繼被發(fā)現(xiàn),包括其功能也被報(bào)道[42]。在酵母和動(dòng)物細(xì)胞中,胞外復(fù)合物僅有一個(gè)拷貝,而在大多數(shù)植物細(xì)胞中則存在相當(dāng)數(shù)量的旁系同源基因如EXO70s,在擬南芥中估計(jì)有23個(gè)旁系同源基因,而在水稻中可能有47個(gè)之多,但其功能尚未知[43-44]。植物中如此之多的EXO70s,表明不同的胞外復(fù)合物亞基可組合成更多的胞外復(fù)合物。這些胞外復(fù)合物除具有常規(guī)的質(zhì)膜系留作用外,可能還具有其他特定的功能[45-47]。在細(xì)胞水平上,擬南芥中的AtEXO70E2亞基被用作探測(cè)鑒定新的細(xì)胞組分EXPO的有效工具[48]。由于與已知細(xì)胞器或內(nèi)吞途徑標(biāo)記物FM4-64缺乏同源序列,又對(duì)常規(guī)的轉(zhuǎn)運(yùn)抑制劑BFA、wort-mannin或concanamycin A沒(méi)有響應(yīng),EXPO被認(rèn)為不參與經(jīng)典的分泌途徑或內(nèi)吞途徑。但是,AtEXO70E2-GFP和EXPO-GFP在細(xì)胞外被檢測(cè)到,表明EXPO通過(guò)非經(jīng)典途徑分泌。另外,LSP:SAMS2(S-adenosylmethionine synthetase 2)在瞬時(shí)表達(dá)后可共定位于EXPO。這些研究結(jié)果表明,該蛋白是被EXPO逐步扣留并最終分泌到細(xì)胞外。SAMS2(S-adenosylmethionine synthetase 2,S-腺苷甲硫氨酸合成酶2)是目前唯一研究較深入的通過(guò)EXPO途徑分泌的蛋白[48]。這是關(guān)于植物體內(nèi)通過(guò)EXPO介導(dǎo)的非經(jīng)典蛋白分泌的首次報(bào)道。
2.1 根系分泌蛋白的分離 根系分泌蛋白是混雜在根系分泌物中的。要想研究根系分泌蛋白,必須先獲得根系分泌物。目前獲得根系分泌物的方法有很多種,常用的有基質(zhì)培養(yǎng)收集、溶液培養(yǎng)收集、土培收集等方法。根據(jù)不同的試驗(yàn)做出改進(jìn)的方法,有分根收集裝置[49]、自動(dòng)連續(xù)收集系統(tǒng)[50]以及塑料管連接多孔陶土頭減壓原位收集[51]等。在根系分泌物收集之后,進(jìn)一步作分離純化等預(yù)處理才能進(jìn)行有效的定性、定量分析,而常規(guī)的蛋白質(zhì)分離方法如沉淀法、吸附層析、離子交換層析、凝膠過(guò)濾等方法對(duì)蛋白含量低且成分復(fù)雜的根系分泌物,很難獲得其中的分泌蛋白成分。目前,分離蛋白的較有效的方法是分子膜法。在根系分泌物研究中廣泛應(yīng)用的便是分子膜與超速離心分離技術(shù)。不同分子量的分子膜孔徑一般介于0.001~1.000 μm之間。利用分子膜結(jié)合超濾濃縮技術(shù),可將根系分泌物細(xì)菌、雜質(zhì)甚至病毒和蛋白質(zhì)、氨基酸及多肽有效地分離開(kāi)來(lái),在分離出分泌蛋白的同時(shí)防止微生物對(duì)根系分泌物的降解[52]。
2.2 根系分泌蛋白的定性定量分析 根系分泌蛋白是根系分泌物中的一種重要的成分。常見(jiàn)的根系分泌蛋白主要是一些酶類物質(zhì)。根系分泌物中存在大量的酶,如轉(zhuǎn)化酶、磷酸酶、蛋白酶、淀粉酶、RNA酶和DNA酶等。它們對(duì)修飾土壤起一定的作用,如番茄根釋放磷酸酶、玉米根釋放水解酶。植物根系分泌蛋白對(duì)植物正常的生長(zhǎng)發(fā)育有重要的作用。因此,分泌蛋白組的研究是國(guó)內(nèi)外學(xué)者近年來(lái)研究探索的重要領(lǐng)域。這是由于分泌蛋白組不同于組織和細(xì)胞蛋白質(zhì)組,其分泌量低,干擾物多,又受收集、濃縮等過(guò)程的限制[53]。目前,關(guān)于植物根系分泌蛋白的報(bào)道還相對(duì)較少。
根系分泌蛋白主要通過(guò)以下方法來(lái)鑒定。植物蛋白質(zhì)組學(xué)研究中最常用的方法是雙向電泳與質(zhì)譜聯(lián)用[54],但由于該方法要求上樣量大,低豐度蛋白質(zhì)難以檢測(cè),所以不適合分析、鑒定植物根系分泌的量少且干擾物質(zhì)多的分泌蛋白。傳統(tǒng)的Edman降解法測(cè)定的肽序列準(zhǔn)確,雖然測(cè)定肽段序列的速度較慢,花費(fèi)較高,但目前依然是一種可靠的鑒定蛋白質(zhì)的方法。隨著Edman降解法在微量測(cè)序等方面的重大突破,它在蛋白質(zhì)組學(xué)研究中仍發(fā)揮著重要作用[55]。生物質(zhì)譜技術(shù)具有極高的靈敏度和高能量。它是把樣品分子離子化后,根據(jù)不同離子間的質(zhì)荷比(m/z)的差異來(lái)分離且確定相對(duì)分子量,采用生物質(zhì)譜技術(shù)鑒定蛋白質(zhì)主要是根據(jù)蛋白質(zhì)酶解后的肽質(zhì)量指紋圖譜和肽序列信息去搜索蛋白質(zhì)或核酸序列庫(kù)[56]。鳥(niǎo)槍法(Shotgun)則是運(yùn)用生物質(zhì)譜技術(shù),并且集成2種或2種以上色譜分離鑒定技術(shù)實(shí)現(xiàn)對(duì)蛋白質(zhì)混合物的高通量分離鑒定。Shotgun技術(shù)的關(guān)鍵是對(duì)獲得的全蛋白進(jìn)行全酶切,得到多肽混合物,之后對(duì)其進(jìn)行兩維或多維色譜分離在線串聯(lián)質(zhì)譜分析[54],然后通過(guò)蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù)檢索,從而鑒定蛋白質(zhì)。馬瑋等[57]運(yùn)用Shotgun技術(shù)共鑒定得到玉米根系分泌物中的2 848個(gè)蛋白,獲得較完整的玉米根系分泌蛋白圖譜。Shotgun技術(shù)具有更高的靈敏性,更適合對(duì)低豐度蛋白質(zhì)、干擾物多的植物根系分泌蛋白組進(jìn)行鑒定,并且能夠獲得完整、可靠的蛋白質(zhì)組表達(dá)信息。
2.3 生物信息學(xué)對(duì)根系分泌蛋白的預(yù)測(cè)與分析 近年來(lái),隨著計(jì)算機(jī)技術(shù)和互聯(lián)網(wǎng)技術(shù)的快速發(fā)展,各類生物信息學(xué)軟件及各類分子生物信息學(xué)數(shù)據(jù)庫(kù)不斷涌現(xiàn),并且在生命科學(xué)領(lǐng)域中的作用日益廣泛。與測(cè)定蛋白質(zhì)的細(xì)胞定位不同,生物信息學(xué)方法利用多種序列分析程序,根據(jù)蛋白序列的編碼特征,可以實(shí)現(xiàn)蛋白質(zhì)亞細(xì)胞定位的高通量分析。對(duì)于分泌蛋白的生物信息學(xué)鑒定方法,目前常應(yīng)用三類軟件的組合分析,來(lái)預(yù)測(cè)一個(gè)蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞定位及其可能的分泌途徑。目前常用的用于分泌蛋白預(yù)測(cè)的軟件列于表1。蘇源等[68]應(yīng)用信號(hào)肽分析軟件SignalP v3.0、亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)軟件TargetP 1.1、GPI錨定位點(diǎn)預(yù)測(cè)軟件big-PI Predictor和跨膜螺旋分析軟件TMHMM2.0等4個(gè)軟件分析了稻瘟菌12 595個(gè)蛋白序列,發(fā)現(xiàn)有1 134個(gè)為分泌蛋白(約占全部蛋白的9%),其中435個(gè)分泌蛋白有功能注釋,主要是代謝相關(guān)的酶類,其中細(xì)胞壁組分降解相關(guān)的酶有45個(gè),還有相當(dāng)數(shù)量的酶與致病相關(guān)。SUBA3是由澳大利亞西澳大學(xué)(University of Western Austrilia)計(jì)算系統(tǒng)生物學(xué)中心創(chuàng)建、維護(hù)的擬南芥蛋白亞細(xì)胞定位數(shù)據(jù)庫(kù)(SUBA3,SUBcellular location of proteins in Arabidopsis)。該數(shù)據(jù)庫(kù)創(chuàng)建于2007年。亞細(xì)胞定位的信息來(lái)自于通過(guò)實(shí)驗(yàn)測(cè)定的亞細(xì)胞定位數(shù)據(jù)和利用生物信息學(xué)軟件預(yù)測(cè)分析的數(shù)據(jù)。最新版本的數(shù)據(jù)庫(kù)中亞細(xì)胞定位信息涉及22個(gè)預(yù)測(cè)分析程序,分別是Ada-Boost、ATP、BaCelLo、ChloroP 1.1、EpiLoc 、iPSORT、MitoPred、MitoProt、MultiLoc2、Nucleo、PCLR 0.9、Plant-mPLoc 、PProwler 1.2、Predotar v1.03、PredSL 、PTS1、SLPFA、SLP-Local、Sub-Loc、TargetP 1.1、WoLF PSORT 和 YLoc,可見(jiàn)生物信息學(xué)軟件在分泌蛋白預(yù)測(cè)分析中具有越來(lái)越重要的作用[69]。
表1 應(yīng)用于植物分泌蛋白預(yù)測(cè)分析的主要生物信息學(xué)軟件
根系作為植物生長(zhǎng)發(fā)育不可缺少的重要器官,在養(yǎng)分與水分的吸收、土壤生物和非生物逆境(如病蟲(chóng)害、干旱、淹水、養(yǎng)分缺乏、土壤污染、土壤酸化等)適應(yīng)中發(fā)揮重要作用。了解不同生長(zhǎng)條件下根系分泌蛋白的表達(dá),對(duì)合理利用植物資源、提高作物產(chǎn)量與品質(zhì)具有重要生產(chǎn)實(shí)踐意義。近年來(lái),根系研究已成為植物科學(xué)研究領(lǐng)域中一個(gè)重要的研究方向。而了解根系蛋白分泌的調(diào)控作用和機(jī)制,從而將這些知識(shí)更好地運(yùn)用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中,是農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中一個(gè)迫切的任務(wù)。目前科研人員面臨的挑戰(zhàn)在于弄清根系分泌中的運(yùn)輸系統(tǒng)和調(diào)節(jié)機(jī)制,從而有助于我們更好地了解根系分泌的化合物以及它們?cè)诟H中的作用;另外一個(gè)重大挑戰(zhàn)是對(duì)根系分泌的低豐度蛋白的分離與鑒定,并且最終闡明其生物學(xué)功能。根系分泌蛋白為土壤中的微生物提供了氮源和能源物質(zhì)。微生物活動(dòng)所分泌的蛋白同樣對(duì)根系分泌蛋白研究進(jìn)展產(chǎn)生一定的影響。那么,相應(yīng)的無(wú)菌培養(yǎng)系統(tǒng)將會(huì)成為未來(lái)研究的新方向。傳統(tǒng)生態(tài)學(xué)方法與現(xiàn)代生物學(xué)技術(shù)結(jié)合,有助于闡明根系分泌物與根際微生物間的相互作用。
在蛋白組學(xué)日益發(fā)展的今天,它在根系分泌蛋白的分離、鑒定方面發(fā)揮著越來(lái)越重要的作用。比如,早在20世紀(jì)90年代中期,就報(bào)道了在植物中非經(jīng)典分泌蛋白的存在,但只是近年來(lái)隨著蛋白組學(xué)技術(shù)的快速發(fā)展,大量的分泌蛋白才陸續(xù)被報(bào)道,并認(rèn)為有高達(dá)70%的分泌蛋白是通過(guò)非經(jīng)典途徑分泌的,也就是說(shuō),大部分分泌蛋白的胞外轉(zhuǎn)運(yùn)是不依賴于經(jīng)典的ER-Golgi途徑的[20]。因此,發(fā)展高能量的定量蛋白組學(xué)技術(shù)是快速鑒定根系分泌蛋白的重要技術(shù)保證。
僅以試驗(yàn)手段去捕獲生物中重要分泌蛋白且做深入研究的效率是有限的,而通過(guò)生物信息學(xué)的手段高通量地獲悉生物中某一類型的蛋白,在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步篩選以獲得感興趣的蛋白,是一種簡(jiǎn)單、高效的方法。目前,雖然大部分生物信息學(xué)軟件可以預(yù)測(cè)蛋白組中可能的分泌蛋白,但仍存在較高的假陽(yáng)性。如何對(duì)其進(jìn)行準(zhǔn)確鑒定,并從中挑選出有意義的目標(biāo)蛋白并且對(duì)其進(jìn)行功能測(cè)定,是亟待解決的另一問(wèn)題[70-71]。
另外,已知分泌蛋白多為病原微生物與植物受體蛋白起作用的激發(fā)子和其他致病因子。結(jié)合計(jì)算機(jī)技術(shù)和生物信息學(xué)的方法,深入研究分泌蛋白組學(xué),有助于為全面掌握植物與病菌相互作用的分子機(jī)制。同時(shí),對(duì)植物的根系逆境條件下分泌蛋白的抗性機(jī)制研究具有重要的實(shí)踐意義。
[1]殷博.幾種作物根系分泌物對(duì)土壤微生物的影響[D].哈爾濱:黑龍江大學(xué),2009.
[2]涂從,袁呂江,魏世強(qiáng),等.土壤鉀營(yíng)養(yǎng)狀況對(duì)作物根際分泌物的效應(yīng)研究[J].西南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1996,18(3):276-280.
[3]洪常青,聶艷麗.根系分泌物及其在植物營(yíng)養(yǎng)中的作用[J].生態(tài)環(huán)境,2003,12(4):508-511.
[4]郝乾坤.植物根系分泌物及其效應(yīng)[J].楊凌職業(yè)技術(shù)學(xué)院學(xué)報(bào),2004,3(1):53-55.
[5]沈宏,嚴(yán)小龍.根分泌物研究現(xiàn)狀及其在農(nóng)業(yè)與環(huán)境領(lǐng)域的應(yīng)用[J].農(nóng)村生態(tài)環(huán)境,2000,16(3):51-54.
[6]GLEBA D,BORISJUK N V,BORISJUK L G,et al.Use of plant roots for phytoremediation and molecular farming[J].PNAS,1999,96(11):5976-5977.
[7]WEN F,VANETTEN H D,TSAPRAILIS G,et al.Extracellular proteins in pea root tip and border cell exudates[J].Plant Physiol,2007,143(2):773-783.
[8]SHINANO T,YOSHIMURA T,WATANABE T,et al.Effect of phosphorus levels on the protein profiles of secreted protein and root surface protein of rice[J].J Proteome Res,2013,12(11):4748-4756.
[9]ZHANG L,TIAN L H,ZHAO J F,et al.Identification of an apoplastic protein involved in the initial phase of salt stress response in rice root by twodimensional electrophoresis[J].Plant Physiol,2009,149(2):916-928.
[10]DRAKAKAKI G,DANDEKAR A.Protein secretion:How many secretory routes does a plant cell have?[J].Plant Science,2013,203/204:74-78.
[11]GALILI G,SENGUPTA-GOPALAN C,CERIOTTI A.The endoplasmic reticulum of plant cells and its role in protein maturation and biogenesis of oil bodies[J].Plant Mol Biol,1998,38:1-29.
[12]張海婧,劉輝,呂麗艷,等.分泌蛋白質(zhì)組研究進(jìn)展[J].分析化學(xué),2007,35(6):912-918.
[13]GARDELLA S,ANDREI C,F(xiàn)ERRERA D,et al.The nuclear protein HMGB1 is secreted by monocytes via a non-classical,vesicle-mediated secretory pathway[J].EMBO Reports,2002,3(10):995.
[14]ORCI L,TAGAYA M,AMHERDT M,et al.Brefeldin A,a drug that blocks secretion,prevents the assembly of non-clathrin-coated buds on Golgi cisternae[J].Cell,1991,64(6):1183-1195.
[15]CLEVES A E.Protein transports:thenonclassical ins and outs[J].Curr Biol,1997,7(5):318-320.
[16]HUGHERS R C.Secretion of the galectin family of mammalian carbohydrate-binding proteins[J].Biochim Biophys Acta,1999,1473(1):172-185.
[17]WAKISAKA N,MURONO S,YOSHIZAKI T,et al.Epstein-barr virus latent membrane protein 1 induces and causes release of fibroblast growth factor-2[J].Cancer Res,2002,62(21):6337-6344.
[18]LUTOMSKI D,F(xiàn)OUILLIT M,BOURIN P,et al.Externalization and binding of galectin-1 on cell surface of K562 cells upon erythroid differentiation[J].Glycobiology,1997,7(8):1193-1199.
[19]MAIZEL A,TASSETTO M,F(xiàn)ILHOL O,et al.Engrailed homeoprotein secretion is a regulated process[J].Development,2002,129(15):3545-3553.
[20]DING Y,ROBINSON D G,JIANG L.Unconventional protein secretion(UPS)pathways in plants[J].Curr Opin Cell Biol,2014,29:107-115.
[21]AN Q,EHLERS K,KOGEL K H,et al.Multivesicular compartments proliferate in susceptible and resistant MLA12-barley leaves in response to infection by the biotrophic powdery mildew fungus[J].New Phytol,2006,172:563-576.
[22]AN Q,HüCKELHOVEN R,KOGEL K H,et al.Multivesicular bodies participate in a cell wall associated defence response in barley leaves attacked by the pathogenic powdery mildew fungus[J].Cell Microbiol,2006,8:1009-1019.
[23]TSE YC,MO B,HILLMER S,et al.Identification of multivesicular bodies as prevacuolar compartments in Nicotiana tabacum BY-2 cells[J].Plant Cell,2004,16:672-693.
[24]WANG W,WEN Y,BERKEY R,et al.Specific targeting of the Arabidopsis resistance protein RPW8.2 to the interfacial membrane encasing the fungal haustorium renders broad-spectrum resistance to powdery mildew[J].Plant Cell,2009,21:2898-2913.
[25]SCHEURING D,VIOTTI C,KRüGER F,et al.Multivesicular bodies mature from the trans-golgi network/early endosome in Arabidopsis[J].The Plant Cell,2011,23:3463-3481.
[26]黃歡,李萬(wàn)杰,楊冬.ESCRT系統(tǒng):一個(gè)多功能的蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)及膜剪切機(jī)器[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2013,29(2):99-109.
[27]NIELSEN M E,F(xiàn)EECHAN A,BOHLENIUS H,et al.Arabidopsis ARFGTP exchange factor,GNOM,mediates transport required for innate immunity and focal accumulation of syntaxin PEN1[J].PNAS,2012,109:11443-11448.
[28]RAPOSO G,STOORVOGEL W.Extracellular vesicles:exosomes,microvesicles,and friends[J].J Cell Biol,2013,200:373-383.
[29]REGENTE M,CORTI-MONZON G,MALDONADO A M,et al.Vesicular fractions of sunflower apoplastic fluids are associated with potential exosome marker proteins[J].FEBS Lett,2009,583:3363-3366.
[30]PINEDO M,REGENTE M,ELIZALDE M,et al.Extracellular sunflower proteins:evidence on non-classical secretion of a jacalin-related lectin[J].Protein Pept Lett,2012,19:270-276.
[31]PRADO N,ALCHé JDE D,CASADO-VELA J,et al.Nanovesicles are secreted during pollen germination and pollen tube growth:a possible role in fertilization[J].Mol Plant,2014,7:573-577.
[32]SAFAVIAN D,GORING D R.Secretory activity is rapidly induced in stigmatic papillae by compatible pollen,but inhibited for self-incompatible pollen in the Brassicaceae[J].PLOS ONE,2013,8:84286.
[33]IRENE K,STEFAN H,GOTTHARD K.Klaus M:Brefeldin A differentially affects protein secretion from suspension-cultured tobacco cells(Nicotiana tabacum L.)[J].J Plant Physiol,1995,146:71-80.
[34]KUNZE I,KUNZE G,RAMM S,et al.Two polypeptides that are secreted from suspension-cultured tobacco cells in the presence of Brefeldin A have chitin-binding domains[J].J Plant Physiol,1995,147:63-70.
[35]CHENG F,ZAMSKI E,GUO W,et al.Salicylic acid stimulates secretion of the normally symplastic enzyme mannitol dehydrogenase:a possible defense against mannitol-secreting fungal pathogens[J].Planta,2009,230:1093-1103.
[36]ZHANG H,ZHANG L,GAO B,et al.Golgi apparatus-localized synaptotagmin 2 is required for unconventional secretion in Arabidopsis[J].PLoS ONE,2011,6:26477.
[37]HATSUGAI N,IWASAKI S,TAMURA K,et al.A novel membrane fusionmediated plant immunity against bacterial pathogens[J].Genes Dev,2009,23:2496-2506.
[38]HARA-NISHIMURA I,HATSUGAI N.The role of vacuole in plant cell death[J].Cell Death Differ,2011,18:1298-1304.
[39]TERBUSH D R,MAURICE T,ROTH D,et al.The Exocyst is a multiprotein complex required for exocytosis in Saccharomyces cerevisiae[J].EMBO J,1996,15:6483-6494.
[40]HSU S C,TING A E,HAZUKA C D,et al.The mammalian brain rsec6/8 complex[J].Neuron,1996,17:1209-1219.
[41]ELIAS M,DRDOVA E,ZIAK D,et al.The exocyst complex in plants[J].Cell Biol Int,2003,27:199-201.
[42]HEIDER M.Munson M:Exorcising the exocyst complex[J].Traffic,2012,13:898-907.
[43]SYNEK L,SCHLAGER N,ELIAS M,et al.AtEXO70A1,a member of a family of putative exocyst subunits specifically expanded in land plants,is important for polar growth and plant development[J].Plant J,2006,48:54-72.
[44]CVRC-KOVá F,GRUNT M,BEZVODA R,et al.Evolution of the land plant exocyst complexes[J].Front Plant Sci,2012,3:159.
[45]ZARSKY V,KULICH I,F(xiàn)ENDRYCH M,et al.Exocyst complexes multiple functions in plant cells secretory pathways[J].Curr Opin Plant Biol,2013,16:726-733.
[46]FENDRYCH M,SYNEK L,PECENKOVA T,et al.Visualization of the exocyst complex dynamics at the plasma membrane of Arabidopsis thaliana[J].Mol Biol Cell,2013,24:510-520.
[47]HALA M,COLE R,SYNEK L,et al.An exocyst complex functions in plant cell growth in Arabidopsis and tobacco[J].Plant Cell,2008,20:1330-1345.
[48]WANG J,DING Y,WANG J,et al.EXPO,an exocyst-positive organelle distinct from multivesicular endosomes and autophagosomes,mediates cytosol to cell wall exocytosis in Arabidopsis and tobacco cells[J].Plant Cell,2010,22:4009-4030.
[49]PRONIN V A,VORONKOVA F V.The technique for investigation of root exudates of higher plants[J].Fiziologiya-Rastenii,1973,20(1):210-214.
[50]TANG C S,YOUNG C C.Collection and identification of allelopathic compounds from the undisturbed root system of Bigalta limpograss(Hemarthria altissima)[J].Plant Physiol,1982,69(1):155-160.
[51]劉秀芬,馬瑞霞,袁光林,等根際區(qū)他感化學(xué)物質(zhì)的分離、鑒定與生物活性的研究[J].生態(tài)學(xué)報(bào),1996,16(1):1-10.
[52]劉芷宇,李良謨,施衛(wèi)明,等.根際研究法[M].南京:江蘇科學(xué)技術(shù)出版社,1997.
[53]CHEVALLET M,DIEMER H,VAN DORSSEALER A,et al.Toward a better analysis of secreted proteins:the example of the myeloid cells secretome[J].Proteomics,2007,7(11):1757-1770.
[54]BASU U,F(xiàn)RANCIS J L,WHITTAL R M,et a1.Extracellular proteomes of Arabidopsis thaliana and Brassica napus roots:Analysis and comparison by MudPIT and LC-MS/MS[J].Plant Soil,2006,286(1):357-376.
[55]GEVAERT K,VANDEKERCKHOVE J.Protein identification methods in proteomics[J].Electrophoresis,2000,21(6):1145-1154.
[56]李坤朋.不同基因型玉米對(duì)磷脅迫的反應(yīng)及根系蛋白質(zhì)組學(xué)研究[D].濟(jì)南:山東大學(xué),2007:21-24.
[57]馬瑋,HOCHHOLDINGER F,李春儉.用不同蛋白質(zhì)分析方法鑒定玉米分泌蛋白組的比較研究[J].光譜學(xué)與光譜分析,2010,30(10):2762-2766.
[58]HILLER K,GROTE A,SCHEER M,et al.PrediSi:prediction of signal peptides and their cleavage positions[J].Nucleic Acids Res,2004,32:375-379.
[59]PETERSEN T N,BRUNAK S,VON HEIJNE G,et al.SignalP 4.0:discriminating signal peptides from transmembrane regions[J].Nature Methods,2011,8:785-786.
[60]KROGH A,LARSSON,B,VON HEIJNE G,et al.Predicting transmembrane protein topology with a hidden Markov model:Application to complete genomes[J].Journal of Molecular Biology,2001,305(3):567-580.
[61]EMANUELSSON O,BRUNAK S,VON HEIJNE G,et al.Locating proteins in the cell using TargetP,SignalP,and related tools[J].Nature Protocols,2007,2:953-971.
[62]HIROKAWA T,BOON-CHIENG S,MITAKU S.SOSUI:classification and secondary structure prediction system for membrane proteins[J].Bioinformatics,1998,14(4):378-379.
[63]BRIESEMEISTER S,RAHNENF HRER J,KOHLBACHER O.YLoc—an interpretable web server for predicting subcellular localization[J].Nucleic Acids Res,2010,38:497-502.
[64]HORTON P,PARK K J,OBAYASHI T,et al.WoLF PSORT:protein localization predictor[J].Nucleic Acids Res,2007,35:585-587.
[65]PIERLEONI A,MARTELLI P L,F(xiàn)ARISELLI P,et al.BaCelLo:a balanced subcellular localization predictor[J].Bioinformatics,2006,22(14):408-416.
[66]TANG S,LI T,CONG P,et al.PlantLoc:an accurate web serverfor predicting plant protein subcellular localization by substantiality motif[J].Nucleic Acids Res,2013,41:441-447.
[67]LIU L,ZHANG Z,MEI Q,et al.PSI:comprehensive and integrative approach for accurate plant subcellular localization prediction[J].PLoS One,2013,8(10):75826.
[68]蘇源,李成云,趙之偉,等.稻瘟菌基因組規(guī)模分泌蛋白的預(yù)測(cè)分析[J].云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,21(3):271-276,292.
[69]TANZ S K,CASTLEDEN I,HOOPER C M,et al.SUB A3:a database for integrating experimentation and prediction to define the SUB cellular location of proteins in Arabidopsis[J].Nucleic Acids Res,2013,41:1185-1191.
[70]GUERRERA I C,KLEINER O.Application of mass spectrometry in proteomics[J].Bioscience Report,2005,25(1/2):71-93.
[71]KRATCHMAROVA I,KALUME D E,BLAGOEV B,et al.A proteomic approach for identification of secreted proteins during the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes to adipocytes[J].Mol Cell Proteomics,2002,1(3):213-222.