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      魚類病原菌三聯(lián)體檢測試紙的制作與應用

      2016-03-30 07:21:26劉亦娟孫金生2包海巖張勤臧莉徐曉麗
      飼料工業(yè) 2016年4期

      ■劉亦娟孫金生,2包海巖張 勤臧 莉徐曉麗

      (1.天津師范大學生命科學學院,天津300387;2.天津市水生動物疫病預防控制中心,天津300221;3.天津市水產(chǎn)技術推廣站,天津300221)

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      魚類病原菌三聯(lián)體檢測試紙的制作與應用

      ■劉亦娟1孫金生1,2包海巖3張勤3臧莉3徐曉麗3

      (1.天津師范大學生命科學學院,天津300387;2.天津市水生動物疫病預防控制中心,天津300221;3.天津市水產(chǎn)技術推廣站,天津300221)

      摘要:試驗分別制作柱狀黃桿菌、嗜水氣單胞菌、海豚鏈球菌3種病原菌的膠體金免疫層析試紙條,將其組裝成三聯(lián)體卡條,用于3種常見魚類病原菌的平行檢測。結(jié)果表明,所制作的三聯(lián)體檢測試紙具有較好的特異性,與其它魚類病原菌無交叉反應,對柱狀黃桿菌的檢測靈敏度為3×106cfu/ml,對嗜水氣單胞菌和海豚鏈球菌的檢測靈敏度均為3×105cfu/ml。將三聯(lián)體檢測試紙用于生產(chǎn)上魚類病原菌的現(xiàn)場檢測,與實驗室檢測結(jié)果的符合率在87.7%以上。操作簡便快速,一次制樣可同時檢測3種病原菌,5~ 10 min即可得到檢測結(jié)果,提高了檢測效率,適合基層生產(chǎn)推廣應用及大量樣本的快速篩查。

      關鍵詞:柱狀黃桿菌;嗜水氣單胞菌;海豚鏈球菌;免疫層析試紙條;三聯(lián)體檢測試紙

      細菌性疾病是魚類養(yǎng)殖過程中的最常見也是危害最大的一類疾病,病原菌種類較多,危害嚴重,如由柱狀黃桿菌(Flavobacteriumcolumnare)引起的細菌性爛鰓病、由嗜水氣單胞菌(A. hydrophila)引起的細菌性敗血癥以及由鏈球菌引起的鏈球菌病,一旦發(fā)生,可在短期內(nèi)造成很高的水生動物死亡率,給養(yǎng)殖業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟損失。對于魚類細菌病的防治,使用抗生素仍是目前生產(chǎn)中使用的主要手段,但治療效果并不理想,不僅提高了養(yǎng)殖成本,還帶來一系列的負面影響。因此應對魚類細菌病,日常消毒、早期預防以及有效的檢測診斷、對癥施治尤為重要。對細菌病的檢測診斷,實驗室多采用細菌分離鑒定法及PCR法來對病原菌做準確的鑒定,并通過藥敏分析篩選敏感藥物指導生產(chǎn),針對性較好,但耗時長,需要專業(yè)的實驗室及操作人員。養(yǎng)殖生產(chǎn)中則主要依靠技術人員的經(jīng)驗,具體病原菌并不十分確切,用藥存在盲目性,且多數(shù)細菌性疾病為多種病原菌混合感染導致,不同細菌對藥物的敏感性不同,所使用的藥物與治療方法也不盡相同。養(yǎng)殖生產(chǎn)中亟需一種適用于養(yǎng)殖現(xiàn)場的魚類細菌性病原菌的快速、準確、簡便的檢測技術,以及早確定病原菌,采取有效措施控制病害發(fā)生,為養(yǎng)殖生產(chǎn)提供技術支撐。

      膠體金免疫層析試紙是20世紀末發(fā)展起來的一種新型的體外診斷技術產(chǎn)品,具簡便快速、靈敏準確等優(yōu)點,不需要專業(yè)儀器設備,操作簡單,適用于現(xiàn)場檢測。目前,膠體金免疫層析試紙在醫(yī)學及畜牧疾病檢測領域已有較多的應用,如檢測乙肝病毒、豬鏈球菌Ⅱ型、金黃色葡萄球菌、H5、H9亞型禽流感病毒、犬弓形蟲等的試紙條[1-4]。在水產(chǎn)病原菌生物檢測領域,已分別建立了用于檢測溶藻弧菌、遲緩愛德華氏菌、豚鼠氣單胞菌、創(chuàng)傷弧菌、對蝦白斑病病毒[5-9]等的免疫層析試紙條,均針對于某一種病原菌進行檢測。本研究制作了柱狀黃桿菌、嗜水氣單胞菌、海豚鏈球菌的免疫層析試紙條,并將其組裝成三聯(lián)檢測試紙,用于3種魚類病原菌的同時檢測,提高了檢測效率,適用于大量樣本的現(xiàn)場篩查,也為水產(chǎn)動物疾病的系統(tǒng)診斷提供參考。

      1 材料

      1.1儀器與試劑

      18~20 nm膠體金溶液、硝酸纖維素膜(NC膜)、玻璃纖維、吸水紙、PVC板均購自上海杰一生物技術有限公司;羊抗兔IgG購自北京康為世紀公司;牛血清白蛋白(BSA)、Tween-20、蔗糖購自生工生物工程股份有限公司;單維往復劃膜儀購自上海金標公司,細菌比濁儀購自法國梅里埃公司,離心機購自Sigma公司。

      1.2菌株來源

      海豚鏈球菌(Streptococcusiniae)、柱狀黃桿菌、美人魚發(fā)光桿菌(Photobacteriumdamselae)、魚腸道弧菌(Vibrio ichthyoenteri)、鰤魚諾卡氏菌(Nocardia serio?lae)、無乳鏈球菌(S. agalactiae)、鰻利斯頓氏菌(Lis?tonella anguillarum)、遲緩愛德華氏菌(Edwardsiella starda)、哈維氏弧菌(V.harveyi)由本實驗室分離并保存,類志賀鄰單胞菌(Plesiomonasshigelloides)、弗尼斯弧菌(V.furnissii)、維氏氣單胞(A.veronii)、嗜水氣單胞菌由天津市水生動物疫病預防控制中心提供。

      2試驗方法

      2.1細菌抗體的制備

      取海豚鏈球菌、柱狀黃桿菌、嗜水氣單胞菌分別免疫新西蘭白兔,得到兔抗海豚鏈球菌、兔抗柱狀黃桿菌、兔抗嗜水氣單胞菌3種抗血清,采用Protein A親和層析法純化所得到的抗血清,間接ELISA方法測定抗體效價,-80℃保存。

      2.2金標抗體的制作

      2.2.1最適標記pH值的確定

      用0.01 mol/l K2CO3將膠體金溶液調(diào)至6.0~10.0不同的pH值梯度。取不同pH值的膠體金溶液各1 ml,分別加入抗海豚鏈球菌抗體(抗柱狀黃桿菌抗體或抗嗜水氣單胞菌抗體)10 μg,振蕩混勻后靜置30 min,加入100 μl 10%的NaCl溶液混勻靜置4 h,觀察每管顏色變化,以顏色保持不變的pH點作為最佳標記pH值。

      2.2.2最適標記蛋白量的確定

      用0.01 mol/l K2CO3將膠體金溶液調(diào)至最適pH值,取6支EP管,每管各加入膠體金溶液1.0 ml,每管分別再加入1、5、10、15、20、25 μg的抗海豚鏈球菌抗體(抗柱狀黃桿菌抗體或抗嗜水氣單胞抗體)使其形成不同濃度梯度,混勻后靜置30 min,加入100 μl 10%的NaCl溶液混勻靜置4 h,觀察每管顏色變化,將顏色變化最小一組的抗體標記濃度作為最佳標記濃度,工作濃度則選擇最佳標記濃度高一個級別的濃度。

      2.2.3金標抗體的制備與純化

      將膠體金溶液調(diào)至最適標記pH值,加入最適標記濃度的待標記抗體,混勻后靜置;加入5%的BSA使其加入后終濃度為1%,混勻,將初步制得的金標抗體溶液4 000 r/min離心20 min,棄沉淀,上清液于13 500 r/min、4℃離心30 min棄上清,沉淀用金標抗體洗滌液(含1% BSA的PBS)洗滌2次后,用金標抗體保存液(含1% BSA,2%蔗糖,0.1% Tween-20的PBS)重懸保存于4℃。

      2.3膠體金墊的制備

      將純化后的金標抗體均勻噴涂在玻璃纖維膜上,37℃干燥后保存?zhèn)溆谩?/p>

      2.4 NC膜檢測層的制備

      用pH值7.4的0.01 mol/l PBS分別將羊抗兔IgG的濃度稀釋為1、2 mg/ml,將細菌抗體分別稀釋為3、2.5、2、1.5、1、0.5 mg/ml。然后設置膠體金三維噴點平臺參數(shù),在NC膜上分別噴涂1、2 mg/ml的羊抗兔IgG作為質(zhì)控線(C線),在此基礎上分別噴涂6個不同濃度的抗海豚鏈球菌抗體(柱狀黃桿菌多克隆抗體或嗜水氣單胞菌抗體)作為檢測線(T線),形成12個不同的組合。將包被有抗體的NC膜室溫干燥后完全浸潤到1% BSA(由0.01 mol/ml PBS配制)中封閉1 h,取出洗滌3次,干燥后,組裝成試紙條。以純培養(yǎng)的海豚鏈球菌菌液(柱狀黃桿菌或嗜水氣單胞菌)測試,觀察質(zhì)控線和檢測線的顯色情況,確定質(zhì)控線和檢測線處包被抗體的最適濃度。

      2.5試紙條的組裝

      將已包被抗體的NC膜檢測層依次與吸水紙、膠體金墊、玻璃纖維固定于不干膠底板上組裝,用裁條機將其裁切成4 mm寬的試紙條,切好的試紙條與干燥劑一起放入鋁箔袋中密封保存于4℃。

      2.6 3種試紙條靈敏度的測定

      分別調(diào)整純培養(yǎng)的3種細菌菌液濃度為3×108~ 3×102cfu/ml,PBS作為陰性對照,取相應的試紙條進行檢測,觀察顯色結(jié)果;再將檢測后的試紙條的NC膜檢測層剪下,用0.05 mol/l的檸檬酸鹽緩沖液(pH值3.8)洗滌平衡5 min后,放入銀染液中,避光20 min,觀察銀染結(jié)果,以肉眼能夠觀察到的檢測線出現(xiàn)條帶的最低可測試量作為試紙條的靈敏度。

      2.7 3種試紙條特異性的測定

      取1.2節(jié)中所提到的細菌均調(diào)整細菌菌液濃度至3×108cfu/ml,以PBS作為陰性對照,測試3種試紙條的特異性。

      2.8三聯(lián)體卡條的組裝及應用

      將制作好的3種檢測試紙裁成6 mm×3 mm的大小封入三聯(lián)卡槽中,即成魚類病原菌三聯(lián)現(xiàn)場檢測試紙。使用時取待檢病魚病灶處組織(體表潰爛處、肝、腎、腹水等,5 mg)加0.5 ml PBS研磨,靜置取上清液作為待檢液,分別取0.1 ml待檢液加入魚類病原菌三聯(lián)現(xiàn)場檢測試紙的三個加樣孔中,靜置,10 min內(nèi)觀察結(jié)果。若某一結(jié)果觀察窗的T線和C線均出現(xiàn)紅線,顯示對應的菌的檢測結(jié)果為陽性;僅C線出現(xiàn)紅線顯示結(jié)果為陰性;僅T線出現(xiàn)紅線而C線未出現(xiàn)紅線或者二者均不出現(xiàn)紅線顯示試紙條無效。若2個及以上的細菌檢測結(jié)果為陽性,顯示結(jié)果為多種菌的混合感染。

      三聯(lián)體卡條檢測結(jié)果的驗證:嗜水氣單胞菌的檢測結(jié)果采用RS培養(yǎng)基進行細菌分離培養(yǎng)、PCR擴增嗜水氣單胞菌絲氨酸蛋白酶(AHP)基因[10]、結(jié)合病魚癥狀進行驗證;海豚鏈球菌的檢測結(jié)果采用細菌分離培養(yǎng)、PCR擴增該菌16S rRNA的保守區(qū)域[11]、結(jié)合病魚癥狀進行驗證;柱狀黃桿菌的檢測結(jié)果采取選擇性培養(yǎng)基進行細菌分離(含1% Tobramycin的shieh培養(yǎng)基分離)結(jié)合病魚癥狀、顯微鏡鏡檢進行驗證。

      3 結(jié)果

      3.1金標抗體的最適標記條件

      3.1.1最佳標記

      pH值以抗海豚鏈球菌抗體的膠體金標記結(jié)果為例(見圖1)。加入等量的抗體,1號管內(nèi)的顏色變藍,2~5號管的pH值保持均一紅色。因此,選擇海豚鏈球菌金標抗體的最適標記pH值為7.0。同樣方法得出,嗜水氣單胞菌金標抗體的最適標記pH值為7.0,柱狀黃桿菌金標抗體的最適標記pH值為8.0(見表1)。

      圖1海豚鏈球菌金標抗體標記最適pH值

      3.1.2最佳標記蛋白量

      調(diào)整膠體金的pH值為7.0,加入不等量的抗體(結(jié)果見圖2)。1號和2號管均變藍,說明蛋白的加入量過少;3~6管內(nèi)的顏色保持不變,選擇顏色保持不變的抗體標記量為最佳標記量,工作濃度選擇比最佳標記濃度高一個級別的濃度點,因此選擇10 μg/ml作為海豚鏈球菌金標抗體的最佳標記量。同樣方法得出,嗜水氣單胞菌金標抗體的最佳標記量為15 μg/ml,柱狀黃桿菌金標抗體的最佳標記量為15 μg/ml(見表1)。

      圖2海豚鏈球菌金標抗體最佳抗體標記量

      3.2檢測線和質(zhì)控線最適包被濃度

      NC膜檢測層上檢測線和質(zhì)控線處抗體的包被濃度直接影響檢測結(jié)果。以海豚鏈球菌免疫層析試紙條為例,試驗結(jié)果顯示,在NC膜檢測層的檢測線處包被濃度為1.5 mg/ml或2 mg/ml的抗海豚鏈球菌抗體,檢測線顯色結(jié)果較好,低于1.5 mg/ml檢測線顯色變淺,質(zhì)控線濃度為1 mg/ml或2 mg/ml顯色效果無明顯變化(見表2)。因此,最終選擇檢測線上包被1.5 mg/ml的抗海豚鏈球菌抗體,質(zhì)控線上包被1 mg/ml的羊抗兔IgG。同樣方法測得嗜水氣單胞菌和柱狀黃桿菌試紙條檢測線和質(zhì)控線處所包被的相應抗體的最適包被濃度(見表3)。

      表1膠體金標記的最適條件

      表2檢測線和質(zhì)控線最適包被濃度

      表3檢測線和質(zhì)控線最適包被濃度(mg/ml)

      3.3 3種試紙條的靈敏度分析

      以最適標記條件制作金標抗體及膠體金墊,以最適濃度抗體包被制作NC膜檢測層,組裝成試紙條,采用10倍比稀釋的對應菌液測試所制作試紙條的靈敏度,以試紙條所能檢測菌液的最低限度作為該試紙條的靈敏度,結(jié)果顯示嗜水氣單胞菌和海豚鏈球菌試紙條的檢測靈敏度均為3×105cfu/ml,經(jīng)銀染放大檢測信號后靈敏度為3×104cfu/ml;柱狀黃桿菌的靈敏度稍低,為3×106cfu/ml,經(jīng)銀染放大檢測信號后靈敏度為3×105cfu/ml。

      3.4 3種試紙條的特異性分析

      以1.2中所列細菌檢測3種試紙條的特異性,結(jié)果顯示柱狀黃桿菌試紙條僅對柱狀黃桿菌菌液的檢測結(jié)果為陽性,對另外12種菌液的檢測結(jié)果為陰性;嗜水氣單胞菌試紙條僅對嗜水氣單胞菌的檢測結(jié)果為陽性,對另外12種菌液的檢測結(jié)果為陰性;海豚鏈球菌試紙條僅對海豚鏈球菌的檢測結(jié)果為陽性,對另外12種菌液的檢測結(jié)果為陰性;所制備的3種試紙條具有良好的特異性。

      3.5三聯(lián)體卡條的應用

      挑選瀕死且癥狀明顯的魚進行疾病診察,疑為細菌病的病魚,取肝臟、脾臟、腹水、腎臟組織或其它病變部位,研磨后取上清采用三聯(lián)體卡條進行檢測。試驗共收集疑為細菌病的病魚122例,其中檢出嗜水氣單胞菌陽性樣品41個,實驗室確診陽性樣品50個,符合率為92.6%,海豚鏈球菌陽性樣品20個,實驗室確診陽性樣品32個,符合率為90.2%,柱狀黃桿菌陽性樣品16個,實驗室確診陽性樣品31個,符合率為87.7%。以上結(jié)果證實,制備的試紙條具有較高的準確性。部分檢測結(jié)果如圖3所示。

      4 討論

      近年來,水產(chǎn)養(yǎng)殖動物的各種暴發(fā)性病害時有發(fā)生,危害也日益嚴重,每年由病害所致的直接經(jīng)濟損失至少為數(shù)百億元以上。細菌性疾病是其中危害最為廣泛的一類疾病,病原種類繁多,傳播擴散快,發(fā)病情況復雜,多為多種病原混合感染,病原菌環(huán)境適應能力強,對抗菌素易產(chǎn)生耐藥性,病害一旦發(fā)生,很難控制?,F(xiàn)有檢測技術試劑盒產(chǎn)品多針對于一種病原進行檢測,效率較低,實驗室檢測可系統(tǒng)全面反映疾病發(fā)生的整體狀況,但耗時長、成本高。李永芹[12]制備了6種病原菌的檢測芯片,可用于海豚鏈球菌、鰻利斯頓氏菌、熒光假單胞菌、海分枝桿菌、遲緩愛德華氏菌、殺鮭氣單胞菌的現(xiàn)場平行檢測,提高了檢測效率,整個檢測過程仍需3 h以上。本研究分別制作了3種常見水產(chǎn)病原菌的試紙條,并將其組裝成三聯(lián)體卡條,僅需5~10 min便可同時檢測3種病原菌,應用起來更加方便,尤其適用于基層推廣及大量樣本的快速篩查,為養(yǎng)殖魚類疾病的現(xiàn)場快速診斷提供技術支持。

      注:①1、2、3分別為柱狀黃桿菌試紙條、海豚鏈球菌試紙條、嗜水氣單胞菌試紙條;②a為待檢樣品中含海豚鏈球菌,b為待檢樣品中含柱狀黃桿菌,c為待檢樣品中同時含海豚鏈球菌和柱狀黃桿菌。圖3部分樣品檢測結(jié)果

      本研究所制備的3種魚類病原菌三聯(lián)體卡條,對海豚鏈球菌、嗜水氣單胞菌的檢測靈敏度均為3× 105cfu/ml,經(jīng)銀染放大檢測信號后,檢測靈敏度可達3×104cfu/ml,對柱狀黃桿菌的檢測靈敏度為3× 106cfu/ml,銀染后可達3×105cfu/ml,與已報道的溶藻弧菌、遲緩愛德華氏菌、豚鼠氣單胞菌、哈維氏弧菌、創(chuàng)傷弧菌檢測試紙條的靈敏度相當,均在105~106cfu/ml。生產(chǎn)上一般認為,病原菌數(shù)量超過104cfu/ml可能導致魚類發(fā)病。但水產(chǎn)病原菌多為條件致病菌,病原菌數(shù)量并非致病的決定性因素,病害發(fā)生是宿主、病原、環(huán)境三方面綜合作用的結(jié)果。因此,本研究所制作的三聯(lián)體卡條檢測結(jié)果對生產(chǎn)上疾病的預防仍具有一定的參考意義。

      在細菌檢測應用中,采用全菌抗原制備的單克隆抗體容易出現(xiàn)漏檢情況,尤其是對于抗原結(jié)構(gòu)復雜的細菌來說,單克隆抗體并不占優(yōu)勢,并且單克隆抗體制備技術要求較高,制備周期長從而會增加試紙條的研發(fā)成本。本次所制作的試紙條采用的均為細菌全菌免疫制作的多抗,試驗結(jié)果證實,所制作的試紙條具有較好的特異性和靈敏度,在實際應用中檢測結(jié)果與實驗室檢測相比,符合率在87.7%以上,在一定程度上證明了采用多克隆抗體制備試紙條的可行性。

      參考文獻

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      (編輯:沈桂宇,guiyush@126.com)

      Development and application of triplet-immunochromatographic strip for simultaneous detection of three aquatic pathogens

      Liu Yijuan, Sun Jinsheng, Bao Haiyan, Zhang Qin, Zang Li, Xu Xiaoli

      Abstract:Immunochromatographic strips for detection of Streptococcus iniae, Flavobacterium colum?nareand Aeromonashydrophilawere developmented respectively and integrated as triplet-immunochro?matographic strip. The triplet-immunochromatographic strip was applied in simultaneous detection of three aquatic pathogens. Results showed that the triplet-immunochromatographic strip had no cross-re?action with other 12 kinds of aquatic pathogens and the sensitivities were both 3×105cfu/ml to S.iniae, A.hydrophila, 3×106cfu/ml to F.columnare. This method was applied in samples of diseased fish and concordance of the triplet-immunochromatographic strip with methods for detection of pathogens in the lab were above 87.7%. The operation was rapid, simple and 3 kinds of pathogens can be detected in 5~ 10 min simultaneously and the detection efficiency was improved. The triplet-immunochromatographic strip could be used in aquaculture on-spot and rapid screening of a large number of samples.

      Key words:Flavobacteriumcolumnare;Aeromonas hydrophila;Streptococcus iniae;immunochromato?graphic strip;triplet-immunochromatographic strip

      基金項目:天津市科技支撐計劃項目[12ZCZDNC00900]

      收稿日期:2015-10-03

      通訊作者:徐曉麗,博士。

      作者簡介:劉亦娟,碩士,研究方向為魚類病害防治。

      中圖分類號:S941

      文獻標識碼:A

      文章編號:1001-991X(2016)04-0056-05

      doi:10.13302/j.cnki.fi.2016.04.014

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