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      水稻BRI1啟動子克隆與表達載體構(gòu)建

      2016-05-14 17:56:29田翠霞魏強李憲彬
      山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年8期
      關(guān)鍵詞:水稻

      田翠霞 魏強 李憲彬

      摘要:為探究擬南芥和水稻BRI1基因差異表達的原因,本研究克隆了OsBRI1啟動子,并將其構(gòu)建在植物表達載體pCambia2300-GUS上,為進一步轉(zhuǎn)化擬南芥或其他植物并研究其表達模式奠定了基礎(chǔ)。

      關(guān)鍵詞:水稻;油菜素內(nèi)酯;OsBRI1

      中圖分類號:S511+Q78文獻標(biāo)識號:A文章編號:1001-4942(2016)08-0001-05

      AbstractIn order to explore the reasons for expression difference of BRI1 in rice and Arabidopsis thaliana, we cloned the OsBRI1 promoter and connected it on the plant expression vector pCambia2300-GUS. These results laid foundations for further transformation into Arabidopsis or other plants and study on its expression patterns.

      KeywordsRice; Brassinosteroids; OsBRI1

      植物激素(plant hormone)是植物體內(nèi)產(chǎn)生的一類在很低濃度時即可對植物的生長發(fā)育、代謝、環(huán)境應(yīng)答等生理過程產(chǎn)生重要調(diào)控作用的代謝產(chǎn)物,在植物生長過程中扮演著極其重要的角色。植物中最早發(fā)現(xiàn)的一類甾醇類激素是蕓苔甾內(nèi)酯(brassinolide, BL)[1]。到目前為止,已發(fā)現(xiàn)60多種具BL結(jié)構(gòu)的類似物,廣泛存在于植物的不同組織和器官中,由于它們的功能與BL相似,統(tǒng)稱為油菜素甾醇類物質(zhì)(brassinosteroid, BR)[2-4],BL是油菜素甾醇類成員中生物活性最強的一種分子。隨著BR結(jié)構(gòu)鑒定和人工合成BR的出現(xiàn),科學(xué)家們進行了大量的生理學(xué)研究,不僅確定了BR在多種植物中的促生長作用,還揭示了BR的多種其它功能,包括種子萌發(fā)、氣孔形成、維管分化、株型、開花、雄性可育性和抑制衰老等[5]。外施具生物活性的BR能增強植物對各種脅迫的抗性,包括生物和非生物脅迫[6-8]。自20世紀(jì)80年代起,BR已被廣泛用于增加農(nóng)作物和蔬菜的產(chǎn)量。在水稻中,BR影響許多農(nóng)藝性狀如糧食產(chǎn)量、株高、葉角、籽粒大小和分蘗數(shù)等[9,10]。

      BR的感知和信號傳遞過程需要眾多基因參與,首先通過一個定位于細胞膜上的富含亮氨酸重復(fù)序列(leucine-rich repeats, LRRs)的跨膜類受體蛋白激酶BRI1 (brassinosteroid insensitive 1) 感知傳遞信號[11,12],然后才能激活一系列的信號級聯(lián)傳遞[13,14]。利用AtBRI1啟動子在野生型擬南芥中驅(qū)動GUS表達,顯示AtBRI1在根、莖、葉柄及葉中廣泛表達[15]。采用RT-PCR技術(shù),檢測水稻各組織器官中OsBRI1的表達模式,其主要在芽中表達,在根部表達不明顯[16]。本文構(gòu)建了OsBRI1啟動子(pOsBRI1)的表達載體,為利用pOsBRI1在野生型擬南芥中驅(qū)動GUS報告基因的表達,在同一水平觀察水稻和擬南芥BRI1的表達位置及表達量的差異,以及揭示OsBRI1基因的表達特征奠定基礎(chǔ)。

      1材料與方法

      1.1材料與試劑

      1.1.1試驗材料水稻日本晴基因組DNA。

      1.1.2菌株和載體大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞、pCambia2300-GUS載體質(zhì)粒由陜西師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院進化發(fā)育實驗室保存??寺≥d體pMD19-Simple購自寶生物工程(大連)有限公司。

      1.1.3酶、試劑盒及其他耗材LA Taq酶、Sal Ⅰ、BamHⅠ、T4 DNA Ligase、6×DNA Loading Buffer、DNA Marker、dNTP Mixture 購自寶生物工程(大連)有限公司;KOD FX(附有dNTPs,KOD Buffer) 購自KOD公司;NheⅠ、RNA溶解酶溶液購于NEB公司;EasyPure Quick Gel Extraction Kit、EasyPure Plasmid MiniPrep Kit購自O(shè)miga;其他藥品試劑均為進口或國產(chǎn)分析純。

      1.1.4引物和測序PCR引物合成及DNA測序工作由南京金斯瑞生物工程股份有限公司完成。

      1.2試驗方法

      1.2.1引物設(shè)計根據(jù)TAIR (The Arabidopsis Information Resource)網(wǎng)站上AtBRI1的基因序列,在網(wǎng)站Phytozm中查找水稻日本晴BRI1基因,定義起始密碼子ATG上游2 000 bp為啟動子序列。根據(jù)表達載體pCambia2300-GUS插入位點的酶切位點設(shè)計PCR引物,pOsBRI1-F: 5′-GCGTCGACCCCAATGCATGGATAGTTTAGGTTG3′ (下劃線為限制性內(nèi)切酶SalⅠ的酶切位點),pOsBRI1-R: 5′-CGGGATCCGAAGTGATGAGGAGGAGATGGAGAGAG-3′ (下劃線為限制性內(nèi)切酶BamHⅠ的酶切位點)。

      1.2.2啟動子克隆以水稻日本晴基因組DNA為模板,用設(shè)計的引物進行PCR擴增。PCR反應(yīng)體系50 μL:2×PCR Buffer for KOD FX 25 μL,2 mmol/L dNTPs 10 μL,10 pmol/μL上下游引物各1.5 μL,Template DNA 1 μL,1.0 U/μL KOD FX 1 μL,最后加ddH2O將反應(yīng)體系調(diào)至50 μL。PCR反應(yīng)程序: 95℃預(yù)變性5 min;98℃變性15 s, 58℃退火30 s, 68℃延伸2 min 20 s,循環(huán)25次;68℃延伸10 min,16℃恒溫保存。PCR產(chǎn)物經(jīng)0.8%的瓊脂糖凝膠電泳分離,用凝膠成像系統(tǒng)檢測并記錄結(jié)果。將PCR回收產(chǎn)物加A,純化,與載體pMD19-Simple連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞,挑選陽性克隆抽提質(zhì)粒進行酶切檢測,將檢測的陽性質(zhì)粒送去測序。

      1.2.3表達載體構(gòu)建將測序正確的質(zhì)粒及pCambia2300-GUS載體質(zhì)粒進行SalⅠ、BamHⅠ雙酶切。酶切體系為:pOsBRI1質(zhì)粒5 μL,SalⅠ、BamHⅠ各0.5 μL,1.5×T Buffer 2 μL加ddH2O平衡反應(yīng)體系終體積到20 μL;同時在另一小EP管中加入pCambia2300-GUS載體質(zhì)粒5 μL,SalⅠ、BamHⅠ各0.5 μL,1.5×T Buffer 2 μL加ddH2O平衡反應(yīng)體系終體積到20 μL。將以上兩個酶切體系同時置于37℃保溫箱中反應(yīng)3 h。酶切結(jié)束后用2%的瓊脂糖凝膠電泳純化反應(yīng)產(chǎn)物,并回收目的片段及載體片段。用T4連接酶將目的片段連接到pCambia2300-GUS載體上。連接體系10 μL:pCambia2300-GUS載體1.5 μL、目的片段7 μL、T4 DNA連接酶0.5 μL、10×T4 DNA ligase Buffer 1 μL,16℃反應(yīng)12 h。載體構(gòu)建示意圖見圖1。將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞中,挑選陽性抗性菌落進行PCR檢測,將陽性菌落擴大培養(yǎng),提質(zhì)粒,進行雙酶切再檢測。

      2結(jié)果與分析

      2.1OsBRI1啟動子的克隆

      以水稻日本晴基因組DNA為模板,用pOsBRI1-F和pOsBRI1-R為引物,進行PCR擴增。電泳檢測結(jié)果(圖2)顯示,擴增出2 000 bp左右的條帶,與預(yù)期目的片段大小相符。

      將回收的PCR產(chǎn)物加尾純化后連接到pMD19-Simple 載體上,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞,挑選白色單菌落,使用菌落PCR方法進行初步篩選,將菌落PCR檢測得到的陽性菌抽提質(zhì)粒,進行雙酶切(SalⅠ和BamHⅠ、NheⅠ和BamHⅠ)及單酶切(NheⅠ)檢測,由圖3可知,酶切片段與預(yù)期相符,說明目的片段已連接到載體上。將檢測陽性的質(zhì)粒進行測序,測序結(jié)果與Phytozm網(wǎng)站提供的水稻日本晴序列對比結(jié)果見圖4,說明基因未發(fā)生突變。

      2.2表達載體構(gòu)建

      將OsBRI1啟動子經(jīng)酶切連接到pCambiaM:DNA Marker;1:SalⅠ與BamHⅠ雙酶切片段;2:NheⅠ單酶切片段;3:NheⅠ和BamHⅠ雙酶切片段;SalⅠ與BamHⅠ雙酶切片段分別長2 065、2 692 bp;NheⅠ單酶切片段長4 757 bp;NheⅠ和BamHⅠ雙酶切片段分別長1 224、3 533 bp。

      2300-GUS表達載體上,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,對陽性菌抽提質(zhì)粒進行雙酶切(SalⅠ和BamHⅠ)鑒定(圖5),結(jié)果顯示pOsBRI1成功連接到pCambia2300-GUS表達載體上。

      3討論與結(jié)論

      BR是一種廣泛存在于植物中的類固醇激素,通過位于細胞膜上的跨膜類受體蛋白激酶BRI1感知和傳遞信號。已有的研究表明,擬南芥BRI1在整個植株內(nèi)廣泛表達,但水稻BRI1在根部表達不明顯。BRI1在水稻和擬南芥中的表達差異是基因本身造成的還是由于啟動子區(qū)的差異所致,為了探究其原因,我們對十字花科和禾本科BRI1基因序列進行比對,發(fā)現(xiàn)BRI1的編碼序列保守,但其啟動子區(qū)存在多樣性,由此推測,啟動子區(qū)的多態(tài)性可能導(dǎo)致BRI1蛋白在水稻和擬南芥中的表達差異。因此,我們根據(jù)已經(jīng)公布的水稻日本晴基因序列,結(jié)合表達載體pCambia2300-GUS上的酶切位點,設(shè)計引物克隆得到OsBRI1啟動子,并成功連接到pCambia2300-GUS載體上。該研究為進一步研究十字花科與禾本科BRI1表達差異奠定了基礎(chǔ),以期為深入探究水稻的BR信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制做出貢獻。

      參考文獻:

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