• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      刺芹側(cè)耳原生質(zhì)體的再生及多糖含量差異

      2016-07-23 15:46:21李艷麗金周雨李玉
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年5期

      李艷麗++金周雨++李玉

      摘要:采用溶壁酶進(jìn)行刺芹側(cè)耳菌絲原生質(zhì)體的制備,研究培養(yǎng)基、滲透壓穩(wěn)定劑和稀釋劑PPRL對(duì)原生質(zhì)體再生率的影響,以從中篩選原生質(zhì)體再生的最佳培養(yǎng)條件。對(duì)再生菌絲進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng),提取原生質(zhì)體再生菌株菌絲體胞內(nèi)多糖(IPS)、發(fā)酵液胞外多糖(EPS),并進(jìn)行含量測(cè)定。結(jié)果表明:最佳再生培養(yǎng)基為PPR,滲透壓穩(wěn)定劑、稀釋劑均為0.6 mol/L甘露醇;此時(shí)原生質(zhì)體經(jīng)過(guò)14 d左右的培養(yǎng)可再生出白色菌落,再生率為0.76%;原生質(zhì)體再生菌絲IPS、EPS含量差異明顯,多株高于親本菌株。研究結(jié)果為刺芹側(cè)耳高產(chǎn)多糖菌株的選育奠定了前期基礎(chǔ)。

      關(guān)鍵詞:刺芹側(cè)耳;多糖含量;原生質(zhì)體;再生率

      中圖分類號(hào): S646.1+41.03文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號(hào):1002-1302(2016)05-0255-03

      eryngii)別稱杏鮑菇,是一種珍稀美味食用菌[1],它不但營(yíng)養(yǎng)豐富[2],而且具有保健功能[3-5]。近年的研究表明,刺芹側(cè)耳富含有藥理活性的多糖,展現(xiàn)了較強(qiáng)的抗氧化作用[6]、抗腫瘤活性[7-8]以及降脂活性[9]。因此可知,刺芹側(cè)耳及其多糖已經(jīng)逐漸成為人們研究的熱點(diǎn)。

      原生質(zhì)體是一種具有生物全能性的細(xì)胞,在食用菌的遺傳育種領(lǐng)域具有重要應(yīng)用[10-12]。本研究探索再生條件對(duì)刺芹側(cè)耳原生質(zhì)體再生率的影響,旨在篩選出再生率最高的培養(yǎng)條件;同時(shí)對(duì)原生質(zhì)體再生菌株菌絲體胞內(nèi)多糖(IPS)、發(fā)酵液胞外多糖(EPS)進(jìn)行提取,并測(cè)定其含量,以期為刺芹側(cè)耳高產(chǎn)多糖菌株的選育奠定前期基礎(chǔ)。

      1材料與方法

      1.1材料

      供試菌株為刺芹側(cè)耳菌株HB3,購(gòu)自吉林省高新技術(shù)園區(qū)。溶壁酶購(gòu)自廣東省微生物研究所。

      培養(yǎng)基及其配方如下。PDR:200 g馬鈴薯、2 g葡萄糖、20 g瓊脂粉、0.6 mol/L甘露醇,用蒸餾水補(bǔ)足至1 000 mL。

      POR:在PDR中添加3 g KH2PO4、1.5 g MgSO4、10 mg維生素B1。PPR:在POR中添加2 g蛋白胨、2 g酵母膏。CMR:20 g葡萄糖、2 g蛋白胨、2 g酵母膏、0.46 g KH2PO4、1.0 g K2HPO4、0.5 g MgSO4、20 g瓊脂粉、0.6 mol/L甘露醇,用蒸餾水補(bǔ)足至1 000 mL。PMR:10 g麥芽糖、4 g葡萄糖、4 g酵母膏、1.0 g KH2PO4、1.0 g MgSO4、10 g可溶性淀粉、20 g瓊脂粉、0.6 mol/L甘露醇,用蒸餾水補(bǔ)足至1 000 mL。YPR:30 g玉米粉、20 g葡萄糖、1.0 g蛋白胨、1.0 g KH2PO4、0.5 g MgSO4、20 g瓊脂粉、0.6 mol/L甘露醇,用蒸餾水補(bǔ)足至 1 000 mL。

      以上培養(yǎng)基于121 ℃高壓滅菌20 min,備用。

      1.2試驗(yàn)方法

      1.2.1原生質(zhì)體的制備采用相應(yīng)文獻(xiàn)的方法[13]。

      1.2.2原生質(zhì)體的再生將原生質(zhì)體懸液用0.6 mol/L甘露醇適當(dāng)稀釋,取100 μL涂布于再生培養(yǎng)基中,置于25 ℃恒溫培養(yǎng)箱中避光培養(yǎng),同時(shí)用蒸餾水稀釋原生質(zhì)體懸液作為空白對(duì)照。再生率計(jì)算公式:

      再生率=再生培養(yǎng)基中菌落數(shù)/涂布的原生質(zhì)體數(shù)×100%。

      1.2.3培養(yǎng)基種類對(duì)再生率的影響用“1.1”節(jié)中培養(yǎng)基進(jìn)行原生質(zhì)體再生,考察其對(duì)再生率的影響。

      1.2.4滲透壓穩(wěn)定劑對(duì)再生率的影響以甘露醇、蔗糖、MgSO4、NaCl作為滲透壓穩(wěn)定劑,分別考察其在濃度為0.4、0.6、0.8 mol/L時(shí)對(duì)再生率的影響。

      1.2.5PPRL對(duì)再生率的影響PPRL為PPR的液體培養(yǎng)基,考察其對(duì)原生質(zhì)體再生率的影響。

      1.2.6再生菌株多糖的發(fā)酵培養(yǎng)、提取及含量的測(cè)定隨機(jī)篩選原生質(zhì)體再生菌株10株(編號(hào)為SH1至SH10),先經(jīng)PPA(無(wú)0.6 mol/L甘露醇的PPR)活化培養(yǎng),然后用直徑 1 cm 打孔器取出2塊菌絲,接種在CMA(無(wú)0.6 mol/L甘露醇的CMR液體培養(yǎng)基)中,于25 ℃、160 r/min培養(yǎng)5~6 d,轉(zhuǎn)接至CMA加富培養(yǎng)基(CMA中添加20 g玉米浸汁)中,于25 ℃、160 r/min培養(yǎng)9 d,真空抽濾菌絲,冷凍干燥。采用相應(yīng)文獻(xiàn)方法提取IPS、EPS[14],采用苯酚硫酸法測(cè)定含量[15]。

      2結(jié)果與分析

      2.1原生質(zhì)體的制備及再生

      由圖1可見(jiàn):鏡檢下原生質(zhì)體呈現(xiàn)球狀,無(wú)殘余菌絲片段,說(shuō)明采用本試驗(yàn)方法可獲得純凈的刺芹側(cè)耳原生質(zhì)體,且產(chǎn)量較高,達(dá)到6.34×107個(gè)/mL。經(jīng)過(guò)12~14 d的培養(yǎng),原生質(zhì)體可以萌發(fā)出幼眼可見(jiàn)的白色菌落,空白對(duì)照則無(wú)再生菌落生長(zhǎng),進(jìn)一步說(shuō)明原生質(zhì)體純化較好。經(jīng)過(guò)一段時(shí)間的培養(yǎng),可見(jiàn)菌落形態(tài)各異,或濃密,或稀疏,且大小不等。有的菌落形態(tài)較特殊,中心、外周突起,形成1個(gè)環(huán)狀凹陷(圖1-Ⅱ中箭頭指示);有的菌落間會(huì)產(chǎn)生拮抗(圖1-Ⅲ中箭頭指示)。這些現(xiàn)象表明,再生菌落之間遺傳性狀差異明顯。

      2.2培養(yǎng)基種類對(duì)再生率的影響

      培養(yǎng)基種類對(duì)再生率的影響如圖2所示:PPR培養(yǎng)基再生率最高,為0.76%;其次是PMR、YPR、CMR,再生率與PPR相差不明顯;再次是POR、PDR,它們的再生率明顯偏低,PDR的再生率僅為0.32%。

      此外,原生質(zhì)體在不同培養(yǎng)基中再生成菌落時(shí)間并不一致。在YPR中約12 d,而在其他培養(yǎng)基中約14 d,可見(jiàn)再生培養(yǎng)基成分對(duì)原生質(zhì)體再生率有較大影響。綜上可知,PPR、PMR、YPR、CMR均有利于原生質(zhì)體的再生,可作為再生培養(yǎng)基使用,本試驗(yàn)選取PPR作為最終再生培養(yǎng)基。

      2.3滲透壓穩(wěn)定劑對(duì)再生率的影響

      由圖3可知:甘露醇、蔗糖作為滲透壓穩(wěn)定劑的再生率明顯高于無(wú)機(jī)滲透壓穩(wěn)定劑MgSO4、NaCl,且再生率與滲透壓穩(wěn)定劑的濃度明顯相關(guān),當(dāng)濃度為0.6 mol/L時(shí)(除0.8 mol/L蔗糖),原生質(zhì)體的再生率最高,其次是0.8 mol/L,濃度為0.4 mol/L 時(shí)再生率最低。0.6 mol/L的甘露醇再生率達(dá)到0.76%,0.4 mol/L NaCl 再生率僅為0.25%。綜上可知,0.6 mol/L 甘露醇、0.6~0.8 mol/L蔗糖均有助于刺芹側(cè)耳原生質(zhì)體的再生,可作為滲透壓穩(wěn)定劑使用,因此本試驗(yàn)選取0.6 mol/L甘露醇作為最終的滲透壓穩(wěn)定劑。

      2.4PPRL對(duì)再生率的影響

      由圖4可知:PPRL作為稀釋劑,再生率明顯低于0.6 mol/L 甘露醇,僅為0.46%,說(shuō)明0.6 mol/L甘露醇更有利于原生質(zhì)體的再生。

      2.5多糖含量的測(cè)定結(jié)果

      由表1可知:原生質(zhì)體再生菌株與親本菌株的IPS、EPS含量差異均較大,有4株再生菌株IPS含量高于親本菌株HB3,分別為SH3、SH4、SH5、SH7,其中SH7最高,為(127.8±3.2)mg/g,比親本菌株高34.8%;有6株再生菌株EPS含量高于親本菌株,分別為SH1、SH2、SH4、SH6、SH8、SH9,其中SH9的EPS含量最高,為(324.4±8.3)mg/L,比親本菌株高42.1%。其他幾株菌株的IPS、EPS含量或接近或低于親本菌株。

      3討論與結(jié)論

      原生質(zhì)體酶解后需要過(guò)濾純化除去殘余的菌絲片段,以減少對(duì)原生質(zhì)體后續(xù)操作的影響。本研究通過(guò)溶壁酶制備系統(tǒng)較好地實(shí)現(xiàn)了原生質(zhì)體的純化。原生質(zhì)體再生受到多種因素的影響[16-18],但有關(guān)刺芹側(cè)耳原生質(zhì)體最佳再生條件的研究鮮有報(bào)道。

      本研究設(shè)計(jì)了不同的培養(yǎng)基、滲透壓穩(wěn)定劑及稀釋劑,以期篩選最佳再生條件。結(jié)果顯示:PPR培養(yǎng)基為最佳再生培養(yǎng)基,再生率是PDR的2.37倍。筆者認(rèn)為,與PDR相比,PPR含有蛋白胨、酵母膏等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),它們更有利于原生質(zhì)體再生為菌絲。0.6 mol/L甘露醇作為最佳滲透壓穩(wěn)定劑,再生率比0.4 mol/L NaCl高2.04倍。一般認(rèn)為,有機(jī)滲透壓穩(wěn)定劑比無(wú)機(jī)滲透壓穩(wěn)定劑更有利于食用菌原生質(zhì)體的再生[16-17],本試驗(yàn)結(jié)果與其一致。有報(bào)道稱,真菌細(xì)胞壁成分主要為葡萄糖、幾丁質(zhì)[19];筆者認(rèn)為,甘露醇、蔗糖等糖醇類有機(jī)滲透壓穩(wěn)定劑更有利于轉(zhuǎn)化為真菌的細(xì)胞壁物質(zhì),這是再生率高的主要原因。

      再生菌株、親本菌株IPS、EPS含量測(cè)定結(jié)果表明,經(jīng)原生質(zhì)體再生的菌絲多糖含量與親株相比差異明顯,有幾株多糖含量分別高于親株,暗示其遺傳物質(zhì)可能發(fā)生了變異,這點(diǎn)通過(guò)再生菌絲的形態(tài)和菌絲間拮抗也可以得到初步證實(shí)。通過(guò)原生質(zhì)體再生篩選刺芹側(cè)耳高產(chǎn)多糖菌株鮮有報(bào)道,因此這些菌株的獲得具有一定的理論和實(shí)際參考價(jià)值。

      參考文獻(xiàn):

      [1]郭美英. 珍稀食用菌杏鮑菇生物學(xué)特性的研究[J]. 福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),1998,13(3):45-50.

      [2]Reis F S,Barros L,Martins A,et al. Chemical composition and nutritional value of the most widely appreciated cultivated mushrooms:an inter-species comparative study[J]. Food and Chemical Toxicology,2012,50(2):191-197.

      [3]Mori K,Kobayashi C,Tomita T,et al. Antiatherosclerotic effect of the edible mushrooms Pleurotus eryngii (Eringi),Grifola frondosa (Maitake),and Hypsizygus marmoreus (Bunashimeji) in apolipoprotein E-deficient mice[J]. Nutrition Research,2008,28(5):335-342.

      [4]Cha W S,Park S S,Kim S J,et al. Biochemical and enzymatic properties of a fibrinolytic enzyme from Pleurotus eryngii cultivated under solid-state conditions using corn cob[J]. Bioresource Technology,2010,101(16):6475-6481.

      [5]Han E H,Hwang Y P,Kim H G,et al. Inhibitory effect of Pleurotus eryngii extracts on the activities of allergic mediators in antigen-stimulated mast cells[J]. Food and Chemical Toxicology,2011,49(6):1416-1425.

      [6]Liu X,Zhou B,Lin R,et al. Extraction and antioxidant activities of intracellular polysaccharide from Pleurotus sp. mycelium[J]. International Journal of Biological Macromolecules,2010,47(2):116-119.

      [7]Shenbhagaraman R,Jagadish L K,Premalatha K,et al. Optimization of extracellular glucan production from Pleurotus eryngii and its impact on angiogenesis[J]. International Journal of Biological Macromolecules,2012,50(4):957-964.

      [8]Jing X Y,Mao D B,Geng L J,et al. Medium optimization,molecular characterization,and bioactivity of exopolysaccharides from Pleurotus eryngii[J]. Archives of Microbiology,2013,195(10/11):749-757.

      [9]Chen J J,Yong Y Y,Xia X,et al. The excreted polysaccharide of Pleurotus eryngii inhibits the foam-cell formation via down-regulation of CD36[J]. Carbohydrate Polymers,2014,112(21):16-23.

      [10]Kuo C Y,Huang C T. A reliable transformation method and heterologous expression of beta-glucuronidase in Lentinula edodes[J]. Journal of Microbiological Methods,2008,72(2):111-115.

      [11]Zhang J J,Shi L,Chen H,et al. An efficient Agrobacterium-mediated transformation method for the edible mushroom Hypsizygus marmoreus[J]. Microbiological Research,2014,169(9/10):741-748.

      [12]Sun S J,Li X J,Ruan L Y,et al. A novel breeding strategy for new strains of Hypsizygus marmoreus and Grifola frondosa based on ligninolytic enzymes[J]. World Journal of Microbiology & Biotechnology,2014,30(7):2005-2013.

      [13]李艷麗,金周雨,李玉. 刺芹側(cè)耳原生質(zhì)體酶解條件的優(yōu)化[J]. 食品科學(xué),2010,31(10):155-158.

      [14]Shih I L,Pan K,Hsieh C Y. Influence of nutritional components and oxygen supply on the mycelial growth and bioactive metabolites production in submerged culture of Antrodia cinnamomea[J]. Process Biochemistry,2006,41(5):1129-1135.

      [15]Dubois M,Gilles K A,Hamilton J K,et al. Colorimetric method for determination of sugars and related substances[J]. Analytical Chemistry,1956,28(3):350-356.

      [16]Yan P S,Jiang J H,Cui W S. Characterization of protoplasts prepared from the edible fugus,Stropharia rugoso-annulata[J]. World Journal of Microbiology & Biotechnology,2004,20(2):173-177.

      [17]韓華麗,郭成金. 黃傘原生質(zhì)體制備與再生條件研究[J]. 天津師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2008,28(4):9-12.

      [18]陳鵬,郭成金. 金針菇原生質(zhì)體制備和再生探究[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,42(9):200-204.

      [19]邱景蕓,廖漢泉,吳月嫦. 一種溶高等擔(dān)子菌細(xì)胞壁酶的制備[J]. 遺傳,1982,4(4):13-14,24.韓霜. 鈣和硼對(duì)菊花品種金陵豐收花粉萌發(fā)及花粉管生長(zhǎng)的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(5):258-261.

      罗田县| 松滋市| 阜康市| 兴安县| 平南县| 潼关县| 从化市| 浮梁县| 公安县| 迁西县| 土默特左旗| 开原市| 广安市| 涟水县| 郁南县| 宜川县| 大同县| 黄龙县| 集贤县| 孟连| 巨野县| 抚顺市| 内乡县| 夏河县| 三穗县| 什邡市| 科尔| 华亭县| 嘉定区| 阿合奇县| 安义县| 金沙县| 日喀则市| 泽州县| 伽师县| 潼南县| 库伦旗| 通海县| 湖北省| 东山县| 邓州市|