摘要:二十碳五烯酸(eicosapentaenoic acid,EPA)對緩解心律不齊、高血壓等疾病具有重要作用,對調(diào)節(jié)情緒、治療風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎及哮喘也具有積極意義。通過優(yōu)化氮源和碳源、添加生長因子等途徑提高菱形藻HE06的EPA產(chǎn)率。經(jīng)優(yōu)化得到硝酸鈉、氯化銨、尿素、維生素B1、維生素B12、生物素、葡萄糖、甘油、碳酸氫鈉的最佳質(zhì)量濃度分別為 75 mg/L、5 mg/L、30 mg/L、1.5 mg/L、6 μg/L、10 μg/L、1.2 g/L、2.4 g/L、1.2 g/L。在最佳優(yōu)化條件下,EPA產(chǎn)率由最初的31.2 μg/L提升至504.8 μg/L,提高了15倍;生物量產(chǎn)率由19.5 mg/L提高至32.4 mg/L,提高了66.2%。
關(guān)鍵詞:菱形藻;培養(yǎng)條件;二十碳五烯酸(EPA)
中圖分類號: S917文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號:1002-1302(2016)06-0317-04
收稿日期:2015-05-05
基金項(xiàng)目:國家自然科學(xué)基金(編號:30960215);廣西自然科學(xué)基金(編號:桂科青0728019)。
作者簡介:劉紅全(1975—),男,黑龍江肇東人,博士,副教授,主要從事生物技術(shù)研究。E-mail:lhongquan@163.com。二十碳五烯酸(EPA)對高血壓、動脈粥樣硬化、血栓等心血管疾病的預(yù)防和治療具有重大意義。在20世紀(jì)80年代前,EPA主要從魚油中提取,由于其含量低、成分復(fù)雜等原因,致使EPA價格昂貴,難以滿足人們?nèi)找嬖鲩L的需求。隨著微藻產(chǎn)EPA研究的深入,EPA的價格越來越低。微藻EPA含量高、生產(chǎn)條件低、提取工藝簡單,已成為生產(chǎn)EPA極具潛力的原料來源。雖然野生型的微藻EPA含量高,但也不足以工業(yè)化生產(chǎn),因此須對微藻進(jìn)行生產(chǎn)條件優(yōu)化。采用正交設(shè)計方法優(yōu)化氮源、維生素、植物激素、碳源用量,從培養(yǎng)基優(yōu)化方面提高菱形藻HE06的EPA產(chǎn)率。
1材料與方法
1.1儀器與藻種
LDZX-50 KB型立式壓力蒸汽滅菌鍋(上海申安醫(yī)療器械廠),超凈工作臺(蘇凈集團(tuán)安泰公司),CFM-5002型熒光倒置顯微鏡(上海安捷倫公司),LRH-250-GSII型人工氣候箱(廣東省醫(yī)療器械廠),Scientz-10N型冷凍干燥機(jī),GC20-14B型氣相色譜。
藻種HE06由筆者所在實(shí)驗(yàn)室分離自廣西壯族自治區(qū)欽州市茅尾海自治區(qū)級紅樹林保護(hù)區(qū),經(jīng)鑒定為菱形藻屬。該藻培養(yǎng)于f/2培養(yǎng)基中,人工氣候箱的培養(yǎng)條件為光照度 4 000 lx、暗光比12 h/12 h、溫度(24±1)℃、濕度40%。
1.2生長條件優(yōu)化
于500 mL錐形瓶內(nèi)裝入180 mL液體培養(yǎng)基,按照10%的接種量在超凈臺中接種對數(shù)期藻種。
1.2.1氮源優(yōu)化分別以f/2原培養(yǎng)基中氮源物質(zhì)的量為中間點(diǎn),向左右延伸2個質(zhì)量濃度,分別設(shè)置硝酸鈉單因素優(yōu)化質(zhì)量濃度。分別設(shè)置硝酸鈉的質(zhì)量濃度為55、65、75、85、95 mg/L;分別設(shè)置氯化銨的質(zhì)量濃度為35、41、47、53、60 mg/L;分別將尿素的質(zhì)量濃度調(diào)整為10、20、30、40、50 mg/L。氮源的正交試驗(yàn)選用最佳硝酸鈉、氯化銨、尿素單因素優(yōu)化值及其左右鄰值進(jìn)行4因素3水平正交試驗(yàn)優(yōu)化。
1.2.2維生素優(yōu)化維生素的質(zhì)量濃度參照f/2培養(yǎng)基的質(zhì)量濃度進(jìn)行設(shè)置。生物素的質(zhì)量濃度分別為0.5、1.0、20、4.0、8.0 μg/L;維生素B1的質(zhì)量濃度分別為0.05、0.10、020、0.40、0.80 mg/L;維生素B12的質(zhì)量濃度分別為025、050、1.00、2.00、4.00 μg/L。維生素的正交試驗(yàn)選用最佳生物素、維生素B1、維生素B12單因素優(yōu)化值及其左右鄰值進(jìn)行4因素3水平正交試驗(yàn)優(yōu)化。
1.2.3植物激素優(yōu)化IAA的質(zhì)量濃度分別為0.5、1.0、20、4.0、8.0 mg/L;6-BA、赤霉素的質(zhì)量濃度分別為0.2、04、0.6、0.8、1.0 mg/L。植物激素的正交試驗(yàn)選用最佳IAA、6-BA、赤霉素單因素優(yōu)化值及其左右鄰值進(jìn)行4因素3水平正交試驗(yàn)優(yōu)化。
1.2.4碳源優(yōu)化葡萄糖的質(zhì)量濃度分別為0.3、0.6、0.9、1.2、1.5 g/L;甘油的質(zhì)量濃度分別為0.3、0.9、1.8、2.7、3.6 g/L;碳酸氫鈉的質(zhì)量濃度分別為0.3、0.9、1.8、2.7、3.6 g/L。碳源的正交試驗(yàn)選用最佳葡萄糖、甘油、碳酸氫鈉單因素優(yōu)化值及其左右鄰值進(jìn)行4因素3水平正交試驗(yàn)優(yōu)化。
1.3生長速率的測定
將所有培養(yǎng)體系置于人工氣候箱中,于2 d時開始測定培養(yǎng)體系的D680 nm,此后每天在規(guī)定時間測定1次D680 nm。當(dāng)培養(yǎng)體系的D680 nm在3次測定內(nèi)無變化時,將 100 mL 藻液倒入250 mL離心瓶中,于6 000 r/min離心 10 min 收集藻液,將沉淀轉(zhuǎn)移至10 mL帶螺旋蓋的離心管中,用去離子水洗滌離心2次并冷凍干燥。干燥后的藻粉直接保存于-20 ℃冰箱中。微藻的比生長速率μ按照如下公式[1]進(jìn)行計算:
μ=ln(Nt/N0)/(Tt-T0)。
式中:Nt為穩(wěn)定期懸浮藻液在680 nm處的吸光度;N0為接種后2 d懸浮藻液的D680 nm;Tt為進(jìn)入穩(wěn)定期的時間(d);T0為接種后2 d的時間(d)。
1.4不飽和脂肪酸的提取及測定
脂肪酸的提取及甲酯化方法參照文獻(xiàn)[2]。將50 mg干燥粉置于帶螺旋蓋的離心管中,加入混合溶液(三氯甲烷 ∶ 甲醇 ∶ 水=2 ∶ 1 ∶ 0.8)并充入N2 1 min,以80 W超聲20 min后于 75 ℃ 水浴15 min,冷卻后以4 000 r/min離心10 min,取三氯甲烷層;重復(fù)以上步驟2次,合并三氯甲烷層,加入等體積混合溶液(甲醇 ∶ 氫氧化鈉=2 ∶ 1)并充入N2 1 min,以 80 W 超聲 20 min 后于75 ℃水浴15 min,冷卻后以4 000 r/min離心 10 min,取上清并加入500 μL正己烷萃取30 min。
對Liang等的EPA氣相色譜測定升溫程序[3]稍作改進(jìn),初溫72 ℃保持1 min,以30 ℃/min升溫至150 ℃并保持 1 min,再以5 ℃/min升溫至250 ℃并保持5 min。進(jìn)樣口、檢測器的溫度均為280 ℃。載氣為高純度氮?dú)?,流速?30 mL/min,進(jìn)樣量為1 μL。
2結(jié)果與分析
2.1生長速率
由圖1、表1可知,在正交優(yōu)化的4組試驗(yàn)中,進(jìn)入穩(wěn)定期的時間均延后。其中,氮源、維生素、植物激素試驗(yàn)組進(jìn)入穩(wěn)定期的時間延后至10 d;而碳源試驗(yàn)組進(jìn)入穩(wěn)定期的時間延后最長,達(dá)到15 d。所有試驗(yàn)組的D680 nm均有所提高,激素正交優(yōu)化組的D680 nm與前一優(yōu)化組(維生素組)相比有所下降,表明植物激素正交試驗(yàn)對菱形藻HE06具有抑制作用,而氮源、維生素試驗(yàn)組基本無變化。維生素試驗(yàn)組進(jìn)入對數(shù)期較快,氮源試驗(yàn)組適應(yīng)期較長。比生長速率測定結(jié)果顯示,氮源與維生素培養(yǎng)優(yōu)化中的比生長速率最高,而碳源組與對照組相比基本無變化。
2.2優(yōu)化結(jié)果
單因素優(yōu)化結(jié)果(表2)顯示,單獨(dú)添加氯化銨、尿素均能提高菱形藻HE06的EPA含量,EPA含量分別達(dá)到0.234%、0.219%,與硝酸鈉作為氮源相比分別增加了45.3%、360%。但在單因素優(yōu)化中,其生物量產(chǎn)率均有所下降,而在隨后多種氮源正交優(yōu)化中,與未優(yōu)化對照組相比,生物量產(chǎn)率增加了19.0%,EPA產(chǎn)率增加了 161.5%(圖2-b)。可見,硝酸鈉、尿素、氯化銨的正交優(yōu)化更有利于菱形藻EPA的積累。在使用質(zhì)量濃度方面,三者在正交優(yōu)化的使用質(zhì)量濃度均有所回落,其中氯化銨的變動最大,變?yōu)? mg/L,尿素下降了 10 mg/L,硝酸鈉回到f/2的使用質(zhì)量濃度。
表2、圖2-e表明,菱形藻經(jīng)過維生素正交優(yōu)化后,生物量產(chǎn)率提升22.4%,EPA產(chǎn)率提升206.0%,與氮源正交優(yōu)化結(jié)果類似,均能有效提高EPA產(chǎn)率,且對生物量的影響不大。在使用質(zhì)量濃度方面,維生素B1、B12、生物素的使用質(zhì)量濃度分別上升了0.9、2.0、4.0倍,與氮源優(yōu)化結(jié)果相反。在僅有維生素B1、維生素B12、生物素的培養(yǎng)基中生物量產(chǎn)率低下,分別為6.5、8.9、15.9 mg/L。
在植物激素正交優(yōu)化中,不僅生物量產(chǎn)率沒有得到提升,EPA產(chǎn)率也有所下降(圖2-c),表明對菱形藻HE06而言,IAA、6-BA、赤霉素的正交并不適于其生物量、EPA產(chǎn)物的積累。在單因素優(yōu)化中,僅加入IAA對生物量產(chǎn)率具有促進(jìn)作用,而6-BA、赤霉素均表現(xiàn)出抑制作用。
碳源正交試驗(yàn)中,在使用質(zhì)量濃度方面,除碳酸氫鈉不變以外,葡萄糖、甘油的使用質(zhì)量濃度均有所上升。生物量產(chǎn)率由維生素試驗(yàn)組的28.4 mg/L上升至32.6 mg/L,僅提高了14.8%。氣相色譜測定結(jié)果(圖2)顯示,在21.9 min左右出現(xiàn)1個較大的峰值,表明EPA產(chǎn)率得到極大提高,達(dá)到 503.9 μg/L,與維生素試驗(yàn)組相比提高了101.8%。4個試驗(yàn)組中氮源、維生素、植物激素、碳源的添加對菱形藻HE06的總脂組分影響均不大,EPA含量主要隨總脂含量的升高而升高。
3結(jié)論與討論
經(jīng)優(yōu)化得到硝酸鈉、氯化銨、尿素、維生素B1、維生素B12、生物素、葡萄糖、甘油、碳酸氫鈉的最佳質(zhì)量濃度分別為75 mg/L、5 mg/L、30 mg/L、1.5 mg/L、6 μg/L、10 μg/L、1.2 g/L、2.4 g/L、1.2 g/L。在該條件下,EPA產(chǎn)率為 504.8 μg/L,提高了15倍;生物量產(chǎn)率為32.4 mg/L,提高了66.2%。本研究同時添加3種氮源,不僅促進(jìn)了菱形藻HE06生物量的增加,也促進(jìn)了微藻EPA產(chǎn)量的積累。氨存在于所有細(xì)胞器中,微藻對氨態(tài)氮的吸收不僅受到環(huán)境中氨濃度的影響,還受到環(huán)境pH值、光照條件、自身對氮源的需求、環(huán)境中硝酸鹽濃度的影響[4]。微藻對氨的持續(xù)吸收使環(huán)境中的pH值下降,pH值持續(xù)下降導(dǎo)致微藻更傾向于吸收硝酸鹽,從而使環(huán)境中的pH值上升。環(huán)境中質(zhì)子濃度的升高對藻細(xì)胞具有毒性作用,這種作用可在一定程度上促進(jìn)產(chǎn)物的積累,而高濃度的質(zhì)子能夠破壞膜系統(tǒng)從而導(dǎo)致細(xì)胞死亡[5];因此,在單因素優(yōu)化中,最佳氨濃度下菱形藻HE06的生物量產(chǎn)率不高,而EPA含量卻有所增加。銨離子的存在還會抑制微藻對環(huán)境中硝酸鹽的吸收,因此氮源正交優(yōu)化中微藻對氮源的吸收下降[6],使用氨態(tài)氮作為氮源時必須使培養(yǎng)基中的pH值條件保持穩(wěn)定[7-8]。本研究中菱形藻HE06氨的單因素優(yōu)化在三角錐形瓶中進(jìn)行,沒有持續(xù)控制培養(yǎng)基的pH值,因此生物量產(chǎn)率較低。微藻對硝酸鹽的同化吸收過程須消耗大量的能量和質(zhì)子,使pH值上升,與氨的同化作用相反[9]。微藻對尿素的同化作用主要依靠脲酶或尿素氨基水解酶催化完成,這2種酶在微藻細(xì)胞內(nèi)的活性均不高;因此,在尿素單因素培養(yǎng)中,菱形藻HE06的生物量產(chǎn)率也較低[10]。在三者的正交試驗(yàn)中,微藻先后對氨、氮的吸收維持了培養(yǎng)基的pH值平衡,而培養(yǎng)基中不斷變化的pH值刺激了微藻總脂的積累,從而促進(jìn)EPA的積累。
目前,維生素在微藻內(nèi)的合成代謝過程尚不明確,研究表明,其更多作為乙酰輔酶A羧化酶、丙酮酸脫氫酶、α-酮戊二酸脫氫酶等酶的輔因子參與微藻的新陳代謝。單因素及正交結(jié)果表明,當(dāng)培養(yǎng)基中缺乏某種維生素時,會對微藻的生物量產(chǎn)率產(chǎn)生較大影響;當(dāng)培養(yǎng)基中存在維生素時,其濃度對生物量的影響并不顯著。維生素正交對菱形藻HE06的EPA產(chǎn)率影響較顯著,表明向培養(yǎng)基中加入多種維生素能夠促進(jìn)某些微藻生物量及產(chǎn)物的積累[11]。
植物激素主要作為促生長因子促進(jìn)微藻生長或產(chǎn)物的積累,而維生素作為生長因子維持微藻的基本生長需求。在菱形藻HE06的培養(yǎng)過程中,培養(yǎng)基中缺乏維生素時表現(xiàn)為微藻生長緩慢、生物量產(chǎn)率低下;而缺乏植物激素并不影響微藻的基本生長需求,反而當(dāng)加入植物激素時影響微藻的生長,具有促進(jìn)或抑制作用。
在亞心形扁藻(P. Subcordiformis)細(xì)胞內(nèi),當(dāng)使用葡萄糖進(jìn)行兼養(yǎng)時,細(xì)胞能夠通過糖酵解同化葡萄糖,光合作用也在同步進(jìn)行,只是光合作用的強(qiáng)度明顯變?nèi)鮗12]。對菱形藻HE06的單因素優(yōu)化和正交試驗(yàn)均表明,這2種藻能夠在有機(jī)碳源下兼養(yǎng)。在菱形藻HE06優(yōu)化試驗(yàn)中,生物量產(chǎn)率過低歸根于葡萄糖轉(zhuǎn)化效率過低,這與藻種本身的特性[13]及光照度有關(guān),過低的光照度[輻射強(qiáng)度低于22 μmol/(m2·s)]導(dǎo)致己糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白活性過低,從而降低了葡萄糖通過細(xì)胞膜的效率[14-15]。在兼養(yǎng)過程中并不是碳源濃度越高、光照度越強(qiáng)越好;過量的碳酸氫鈉會使碳酸根與碳酸氫根的離子平衡被破壞,從而形成沉淀;葡萄糖濃度及光照度的增加會抑制某些微藻的生長,同時影響總脂含量[16]。對菱形藻HE06而言,當(dāng)葡萄糖濃度大于0.9時,其生物量并不隨葡萄糖濃度的增加而增加[17]。對于某些種類的微藻,高濃度葡萄糖可在相當(dāng)長一段時期內(nèi)阻礙微藻細(xì)胞生長,此時微藻進(jìn)行分批或連續(xù)培養(yǎng)更有優(yōu)勢[15,18]。微藻能夠以甘油作為僅有碳源,供給能量促進(jìn)微藻的生長,但當(dāng)甘油作為唯一氮源時微藻的光合作用會受到甘油的抑制,從而影響微藻生長[19]。在菱形藻HE06的培養(yǎng)中,碳源加入后其進(jìn)入穩(wěn)定期均延長至15 d,這與葡萄糖濃度或甘油的加入有關(guān)[20]。在混合碳源的優(yōu)化下,均能較好促進(jìn)生物量生長及EPA的積累,比單獨(dú)添加效果更明顯。可見,通過異養(yǎng)獲得EPA產(chǎn)物時,采用多種碳源正交更有利于EPA產(chǎn)物積累,促進(jìn)碳源的利用并節(jié)省培養(yǎng)成本。
影響微藻生長及產(chǎn)物積累的因素多種多樣,對微藻生長發(fā)育的阻礙或促進(jìn)也有所差異。氮源、維生素、碳源對微藻的生物量及產(chǎn)物積累具有明顯作用,對已知藻種進(jìn)行氮源、維生素、碳源的正交優(yōu)化更有利于微藻的生長及產(chǎn)物積累。
參考文獻(xiàn):
[1]Devgoswami C R,Kalita M C,Talukdar J,et al. Studies on the growth behavior of Chlorella,Haematococcus and Scenedesmus sp. in culture media with different concentrations of sodium bicarbonate and carbon dioxide gas[J]. African Journal of Biotechnology,2011,10(61):13128-13138.
[2]Zhukova N V,Aizdaicher N A. Fatty acid composition of 15 species of marine microalgae[J]. Phytochemistry,1995,39(2):351-356.
[3]Liang Y,Beardall J,Heraud P. Effects of nitrogen source and UV radiation on the growth,chlorophyll fluorescence and fatty acid composition of Phaeodactylum tricornutum and Chaetoceros muelleri(Bacillariophyceae)[J]. Journal of Photochemistry and Photobiology B-Biology,2006,82(3):161-172.
[4]Hildebrand M. Cloning and functional characterization of ammonium transporters from the marine diatom Cylindrotheca fusiformis(Bacillariophyceae)[J]. Journal of Phycology,2005,41(1):105-113.
[5]Peuke A D,Tischner R. Nitrate uptake and reduction of aseptically cultivated spruce seedlings,Picea abies (L.) Karst[J]. Journal of Experimental Botany,1991,42(239):723-728.
[6]Wen Z Y,Chen F. Optimization of nitrogen sources for heterotrophic production of eicosapentaenoic acid by the diatom Nitzschia laevis[J]. Enzyme and Microbial Technology,2001,29(6/7):341-347.
[7]Lee K,Lee C G. Nitrogen removal from wastewaters by microalgae without consuming organic carbon sources[J]. Journal of Microbiology and Biotechnology,2002,12(6):979-985.
[8]Crawford N M K,Leustek T,et al. Nitrogen and sulfur[J]. Biochemistry and Molecular Biology of Plants,2000:786-849.
[9]Kaplan D,Richmond A E,Dubinsky Z,et al. Algal nutrition[J]. Handbook of Microalgal Mass Culture,1986:147-198.
[10]Saudo W S A,Gobler C J,Okbamichael M,et al. Regulation of phytoplankton dynamics by vitamin B12[J]. Geophysical Research Letters,2006,33(4).
[11]Marquez F J,Sasaki K,Kakizono T,et al. Growth characteristics of Spirulina platensis in mixotrophic and heterotrophic conditions[J]. Journal of Fermentation and Bioengineering,1993,76(5):408-410.
[12]Perez G O,Escalante F M,De-Bashan L E,et al. Heterotrophic cultures of microalgae:metabolism and potential products[J]. Water Research,2011,45(1):11-36.
[13]Xie J L,Zhang Y X,Li Y,et al. Mixotrophic cultivation of Platymonas subcordiformis[J]. Journal of Applied Phycology,2001,13(4):343-347.
[14]Sauer N. Hexose-transport-deficient mutants of Chlorella vulgaris[J]. Planta,1986,168(1):139-144.
[15]Cheirsilp B,Torpee S. Enhanced growth and lipid production of microalgae under mixotrophic culture condition:effect of light intensity,glucose concentration and fed-batch cultivation[J]. Bioresource Technology,2012,110(2):510-516.
[16]Biomass L Y. Lipid productivities of Chlorella Vulgaris under autotrophic,heterotrophic and mixotrophic growth conditions[J]. Biotechnology Letters,2009,31(7):1043-1049.
[17]Day J G,Tsavalos A J. An investigation of the heterotrophic culture of the green alga Tetraselmis[J]. Journal of Applied Phycology,1996,8(1):73-77.
[18]Tan C K,Johns M R. Fatty acid production by heterotrophic Chlorella saccharophila[J]. Hydrobiologia,1991,215(1):13-19.
[19]Ogawa T,Aiba S. Bioenergetic analysis of mixotrophic geowth in Chlorella vulgaris and Scenedesmus acutus[J]. Biotechnology and Bioengineering,1981,23(5):1121-1132.
[20]Aubert S,Gout E,Bligny R,et al. Multiple effects of glycerol on plant cell metabolism. Phosphorus-31 nuclear magnetic resonance studies[J]. The Journal of Biological Chemistry,1994,269(34):21420-21427.