• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      混合培養(yǎng)基模式培養(yǎng)雜交瘤細胞表達單克隆抗體

      2016-12-23 00:38:45黃亞杰朱光凱趙永強劉道軍
      生物學雜志 2016年6期
      關(guān)鍵詞:雜交瘤細胞培養(yǎng)反應(yīng)器

      黃亞杰,朱光凱,劉 珊,趙永強,謝 波,劉道軍

      (1.汕頭大學 醫(yī)學院,汕頭 515041;2.中國科學院過程工程研究所 生化工程國家重點實驗室,北京 100190)

      ?

      混合培養(yǎng)基模式培養(yǎng)雜交瘤細胞表達單克隆抗體

      黃亞杰1,2,朱光凱2,劉 珊2,趙永強2,謝 波2,劉道軍1

      (1.汕頭大學 醫(yī)學院,汕頭 515041;2.中國科學院過程工程研究所 生化工程國家重點實驗室,北京 100190)

      采用混合培養(yǎng)基模式將雜交瘤細胞進行減血清懸浮馴化培養(yǎng),通過優(yōu)化提高單克隆抗體的表達量,并進行抗體的分離純化。在雜交瘤細胞懸浮培養(yǎng)優(yōu)化過程中,最終確定的血清濃度為2%胎牛血清,培養(yǎng)基配比為RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1),接種密度為3×105cells/mL,采用批次補料流加培養(yǎng),每2 d流加1次,每次流加量為初始體積的3%,抗體的表達量從原始的84 mg/L提高到168 mg/L。將其進一步在5 L攪拌式生物反應(yīng)器中進行培養(yǎng),離心后上清經(jīng)protein A親和層析純化,確定抗體的產(chǎn)量為240 mg/L。

      雜交瘤細胞培養(yǎng);單克隆抗體;懸浮馴化;親和層析

      單克隆抗體具有特異性強、成分均一可控等優(yōu)勢,廣泛應(yīng)用于疾病治療、醫(yī)學診斷、生物免疫檢測和蛋白純化等領(lǐng)域[1-3]。雖然雜交瘤細胞表達的單抗鼠源性限制了鼠單抗藥物的縱深發(fā)展,但作為分析診斷等用途仍占有相當大的市場,且其作為表面抗原的研究,蛋白的親和純化,組織相容性檢測和放射免疫測定等方面的應(yīng)用有著廣闊的前景[4-5]。

      隨著動物細胞培養(yǎng)規(guī)模的擴大和單抗需求的增長,雜交瘤細胞的培養(yǎng)工藝和方法得到了不斷地改進[6-7],包括培養(yǎng)基的優(yōu)化[8-9],培養(yǎng)工藝的設(shè)計[10-11],純化方法的選擇等[12-13]。但是雜交瘤細胞的體外培養(yǎng)表達量仍普遍較低[14]。而且雜交瘤細胞的培養(yǎng)常用基礎(chǔ)培養(yǎng)基加入高濃度(10%~20%)的血清[15-16],這樣不但增加了雜交瘤細胞培養(yǎng)的成本,而且血清的存在提高了引入內(nèi)毒素的風險,同時給下游的分離純化帶來很大困難[17]。雜交瘤細胞的無血清懸浮培養(yǎng)需要加入血清替代物,對細胞生長和抗體表達影響并不顯著[18-20]。雖然對培養(yǎng)基成分進行優(yōu)化可以改善雜交瘤細胞的生長和提高抗體表達量,但培養(yǎng)基一般由60~80種成分組成,繁瑣的優(yōu)化設(shè)計實驗對雜交瘤細胞生長密度和表達量的提高空間有限[21-22]。

      本研究在對雜交瘤細胞進行減血清懸浮馴化培養(yǎng)的同時,嘗試采用了幾種培養(yǎng)基混合培養(yǎng)的模式,對雜交瘤細胞培養(yǎng)和制備工藝進行了優(yōu)化,以期提高雜交瘤細胞培養(yǎng)的密度和抗體產(chǎn)量。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      雜交瘤細胞(北京三元基因工程有限公司提供);RPMI1640(Gibco,RPMI1640TMbasic);SFM4CHO(HyClone,SFM4CHOTM);OptiCHO(Gibco,OptiCHOTM);Protein A(GE Healthcare,MabSelect SuReTM);FD004(中國科學院過程工程研究所生化工程國家重點實驗室研制);Tris、Tris-HCl、NaCl、乙酸均為西隴化工股份有限公司,分析純試劑;胎牛血清(天津康源生物技術(shù)有限公司);其他均為市售分析純試劑。

      1.2 實驗儀器

      5 L細胞反應(yīng)器(Applikon Biotechnology,5 L ez-control);二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermo Scientific,HERA CELL 240i);細胞計數(shù)儀(Invitrogen,CountessTMautomated cell counter);倒置顯微鏡(OPTEC,BDS200);低溫高速離心機(Thermo Scientific,SORVALL Biofuge Stratos);常溫低速離心機(上海安亭科學儀器廠,DL4000B);Protein Purify System (PPS,中國科學院過程工程研究所生化工程國家重點實驗室);層析柱(上海華美實驗儀器廠,BOMEXTM3.5×30 cm);酶標儀(Thermo Scientific,VARIOSKAN FLASH 3001)

      1.3 實驗方法

      1.3.1 雜交瘤細胞減血清懸浮馴化培養(yǎng)

      將細胞復(fù)蘇后接種于T75方瓶中(3×105cells/mL的接種密度,培養(yǎng)液為含10%胎牛血清的RPMI1640,37℃,5%CO2飽和濕度的培養(yǎng)箱培養(yǎng))。每2 d傳代(細胞長滿90%以上,胰酶消化細胞),細胞穩(wěn)定后,減血清為8%,逐次培養(yǎng)和遞減血清濃度至4%。此時從T75方瓶中取出生長期的細胞,1200 r/min離心4 min,棄去上清,分別培養(yǎng)于添加含有4 mmol/L Gln,4%胎牛血清的新鮮培養(yǎng)基RPM1640、SFM4CHO、OptiCHO、RPM1640:SFM4CHO(1:1)、RPM1640:OptiCHO(1:1) 、RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(3:4:3)、RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO (4.5:4.5:1)。以40 mL培養(yǎng)體積,3×105cells/mL的接種密度接種于125 mL搖瓶中,放置于5% CO2飽和濕度的培養(yǎng)搖床中,37℃,125 r/min轉(zhuǎn)速培養(yǎng)。每隔2 d換液傳代,細胞穩(wěn)定后,減血清為2%。

      1.3.2 雜交瘤細胞培養(yǎng)工藝的研究

      1)細胞接種密度考察。

      采用不同接種密度考察其對雜交瘤細胞生長及抗體表達的影響。將不同密度0.3×106、0.5×106、0.8×106和1×106cells/mL細胞接種于125 mL的搖瓶中(基礎(chǔ)培養(yǎng)基為4 mmol/L Gln,2% FBS的RPMI1640:SFM4CHO(1:1)40 mL,125 r/min轉(zhuǎn)速,37℃,5% CO2飽和濕度的培養(yǎng)搖床培養(yǎng))。流加培養(yǎng)基FD004,每次流加液體積為初始體積的5%,流加2次,分別于第3天,第6天流加。每天檢測細胞密度和活率,培養(yǎng)結(jié)束留樣測定抗體含量。

      2)細胞培養(yǎng)過程中混合培養(yǎng)基的配比。

      通過不同培養(yǎng)基的配比篩選,考察不同培養(yǎng)基對雜交瘤細胞生長與抗體表達的影響。將雜交瘤細胞以0.3×106cells/mL的接種密度接種于125 mL搖瓶中(125 r/min轉(zhuǎn)速,37oC,5% CO2飽和濕度的培養(yǎng)搖床培養(yǎng))。流加培養(yǎng)基FD004,每次流加液體積為初始體積的5%,流加2次,分別于第3天,第6天流加?;A(chǔ)培養(yǎng)基分別為含4 mmol/L Gln,2%FBS的RPM1640、SFM4CHO、OptiCHO、RPM1640:SFM4CHO(1:1)、RPM1640:OptiCHO(1:1) 、RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(3:4:3)、RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO (4.5:4.5:1)各40 mL。每天檢測細胞密度和活率,培養(yǎng)結(jié)束留樣測定抗體含量。

      3)細胞培養(yǎng)過程中流加量與流加時間的確定。

      雜交瘤細胞以40 mL含4 mmol/L Gln,2%FBS的RPMI1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,0.3×106cells/mL的接種密度接種于125 mL搖瓶中(125 r/min轉(zhuǎn)速,37℃,5% CO2飽和濕度的培養(yǎng)搖床培養(yǎng))。以FD004為流加液,采用表1中3種流加方案。每天檢測細胞密度和活率,培養(yǎng)結(jié)束留樣測定抗體含量。

      表1 細胞培養(yǎng)流加方案

      4)雜交瘤細胞培養(yǎng)反應(yīng)器工藝的探索。

      1.3.3 細胞培養(yǎng)上清液親和層析純化工藝的確定

      1)洗脫pH值的篩選。

      將凍存上清液在37℃水浴中解凍,加入2 mol/L NaCl;采用的柱子填料為Mab Select Sure (GE healthcare),體積為200 mL,平衡液(2 mol/L NaCl,25 mmol/L Tris(Tris 0.73 g/L;Tris-HCl 2.98 g/L),pH 7.7)平衡2個柱體積(CV 50 mL),流速6 mL/min;上樣500 mL,流速5 mL/min;平衡液作為淋洗液,淋洗2個柱體積,流速6 mL/min;洗脫液(不同pH 3.0、3.5、4.0的醋酸溶液),收集洗脫峰;用1 mol/L Tris中和目的蛋白濃縮液至pH 6.0;平衡液作為沖洗液,沖洗2個柱體積,流速6 mL/min;純水沖洗2個柱體積,流速6 mL/min,20%乙醇沖洗2個柱體積,4℃保存。

      表2 反應(yīng)器工藝參數(shù)

      2)平衡緩沖液中鹽濃度的考察。

      在篩選出的pH值條件下考察含1 mol/L和2 mol/L NaCl上清液和平衡液對純化效果的影響。純化步驟同上。

      1.3.4 檢測方法

      1)細胞計數(shù)。

      取10 μL細胞樣品,加入10 μL 0.4%臺盼藍染液染色,吹打混勻,用移液槍吸取10 μL,打入一次性細胞計數(shù)板中,在細胞計數(shù)儀中計細胞密度與活率。

      2)抗體濃度檢測。

      樣品上清中的抗體濃度采用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測定。首先將抗原吸附在96孔板上,然后添加抗體標準品和待測樣品分別與抗原結(jié)合,最后添加熒光標記的二抗,通過顯色劑顯色,用酶標儀D450 nm做出標準曲線,通過計算得出上清中的抗體濃度。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 雜交瘤細胞減血清懸浮馴化培養(yǎng)

      雜交瘤細胞是非貼壁依賴性細胞,在有細胞貼壁因子存在的條件下,可以貼在方瓶瓶壁之上,但細胞胞體呈圓球形,故雜交瘤細胞在有血清存在下會貼壁生長,因為血清中含有貼壁因子,隨著血清濃度的降低,在4%血清時開始出現(xiàn)懸浮細胞。隨著血清濃度減至2%以下時,細胞的生長狀態(tài)變差。細胞的最大密度降低,維持周期變短。故最終考慮保留血清濃度在2%。細胞穩(wěn)定傳代后,細胞清亮透明,形狀規(guī)整,基本無死細胞的存在。

      2.2 雜交瘤細胞培養(yǎng)工藝的研究

      2.2.1 細胞接種密度的考察

      以0.3×106、0.5×106、0.8×106和1×106cells/mL 4種不同的接種密度接種細胞于125 mL搖瓶培養(yǎng)8 d。圖1為不同接種密度下細胞的生長情況,結(jié)果可知,以0.3×106cells/mL、0.8×106cells/mL獲得的最高活細胞密度達到2.0×106cells/mL高于其他兩種接種密度的獲得的最高活細胞密度;以0.3×106cells/mL接種的細胞在第6天達到最高活細胞密度,細胞活率第7天維持在70%,以0.8×106cells/mL接種的細胞在第3天達到最高活細胞密度,細胞活率在第6天下降至60%。圖2總結(jié)了不同接種密度下活細胞密度對時間的累積積分值(IVCC)和最終獲得的抗體含量值,4種不同接種密度下以0.3×106cells/mL、0.8×106cells/mL的IVCC值最高為11.7×106/mL·d和11.95×106/mL·d,而以0.3×106cells/mL接種的細胞最終獲得抗體含量最高為78.83 mg/L,而其他3種情況抗體產(chǎn)量相當。

      圖1 不同接種密度的細胞生長曲線

      Note: Solid line-VCD; Short dot line-Viability

      2.2.2 細胞培養(yǎng)過程中混合培養(yǎng)基的配比選擇

      圖3為不同培養(yǎng)基條件下細胞的生長情況,對比1(RPM1640)、2(SFM4CHO)、3(OptiCHO)、4(RPM1640+SFM4CHO)、5(RPM1640+OptiCHO)、6[RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(3:4:3)]、7[RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)]等7種基礎(chǔ)培養(yǎng)基,單一培養(yǎng)基(除OptiCHO培養(yǎng)基外)與混合培養(yǎng)基相比,混合培養(yǎng)基可以達到更高的細胞生長密度;細胞生長周期維持更長時間。其中混合培養(yǎng)基RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)的最高活細胞密度為3.4×106cells/mL。雖然單一OptiCHO培養(yǎng)基的最高活細胞密度與RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)混合培養(yǎng)基相當,但其活細胞密度對時間的累積積分值(IVCC)和最終獲得的抗體表達量相對于混合培養(yǎng)基較低(圖4),OptiCHO培養(yǎng)基的IVCC值和抗體表達量分別為15.42×106/mL·d和114.31 mg/L,而RPM1640+OptiCHO、RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(3:4:3)、RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)等混合培養(yǎng)基的抗體表達量相當,依次為127.21 mg/L、124.57 mg/L和127.78 mg/L,綜合考慮單一OptiCHO培養(yǎng)基的成本較高,因此選擇RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)混合培養(yǎng)基更為經(jīng)濟、合理。

      圖2 不同接種密度條件下活細胞密度對時間的積分和抗體表達量

      Note: Solid line-IVCC; Bar graph-Titer

      圖3 不同培養(yǎng)基的細胞生長曲線

      Note: Solid line-VCD; Short dot line-Viability;1:RPM1640;2:SFM4CHO;3:OptiCHO;4:RPM1640:SFM4CHO(1:1);5:RPM1640:OptiCHO(1:1);6:RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(3:4:3);7:RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)

      2.2.3 批次補料流加培養(yǎng)工藝的優(yōu)化

      批次補料流加培養(yǎng)是動物細胞培養(yǎng)中通常采用的培養(yǎng)工藝,采用的流加液流加量、流加次數(shù)和時間是流加工藝中的重要參數(shù)。為了確立雜交瘤細胞較優(yōu)的流加時間和流加量,考察了3種流加方案下,雜交瘤細胞的生長和抗體表達量情況。

      從圖5的細胞生長曲線可知,3種流加方案細胞達到的最高活細胞密度依次是4.1×106、3.7×106和3.5×106cells/mL。但方案1細胞活率維持較高水平時間較短,可能是較少的補料量導致雜交瘤細胞的營養(yǎng)不足以維持細胞生長。圖6所示為3種方案下細胞的IVCC值和最終獲得的抗體表達量。3種流加方案的表達量依次為122.62、168.21和145.77 mg/L。方案2可以得到比其他兩種方案更高的抗體表達量。所以最終選擇方案2作為雜交瘤細胞的批次補料流加培養(yǎng)模式。

      圖4 不同培養(yǎng)基時活細胞密度對時間的積分和抗體表達量

      Note: Solid line-IVCC; Bar graph-Titer;1:RPM1640;2:SFM4CHO;3:OptiCHO;4:RPM1640:SFM4CHO(1:1);5:RPM1640:OptiCHO(1:1);6:RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(3:4:3);7:RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)

      圖5 不同流加時間的細胞生長曲線

      Note: Solid line-VCD; Short dot line-Viability

      2.2.4 雜交瘤細胞培養(yǎng)反應(yīng)器工藝的確定

      根據(jù)雜交瘤細胞培養(yǎng)前期搖瓶實驗結(jié)果進行了5L反應(yīng)器工藝研究,以確定穩(wěn)定的雜交瘤細胞培養(yǎng)工藝。通過前期搖瓶實驗結(jié)果確定反應(yīng)器上罐的接種密度為0.3×106cells/mL,培養(yǎng)基為含2%血清的RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1),流加方案為2、4、6隔天流加,每次流加量為總體積的3%。由于反應(yīng)器中能更好地控制細胞培養(yǎng)的溶氧、溫度和pH值,5L反應(yīng)器中細胞最高活細胞密度可達到5.1×106cells/mL,明顯高于搖瓶實驗結(jié)果,培養(yǎng)第9天細胞活率大于70%(圖7),IVCC值和最終抗體表達量分別為30.07×106/mL·d,240mg/L(圖8),反應(yīng)器培養(yǎng)過程中乳酸和銨根離子的含量維持在很低水平。

      圖6 不同流加方案時活細胞密度對時間的積分和抗體表達量

      Note: Solid line-IVCC; Bar graph-Titer

      圖7 5L細胞培養(yǎng)反應(yīng)器中細胞生長曲線

      圖8 細胞培養(yǎng)反應(yīng)器中活細胞密度對時間的積分和抗體表達量

      2.2.5 抗體親和層析純化工藝的確定

      鹽濃度和洗脫pH值是影響抗體親和純化的兩個重要參數(shù)。其中,在低鹽濃度下雜交瘤抗體與Protein A的結(jié)合活性較低,故考察含有1、2 mol/L NaCl上清液和平衡液條件下對純化效果的影響。同時考察了不同pH值的洗脫液(pH 3.0、3.5、4.0)對最終洗脫效果的影響。在含2 mol/L NaCl的上清和平衡緩沖液時,在洗脫液pH 3.0、3.5時洗出的蛋白出現(xiàn)渾濁,離心之后,經(jīng)紫外吸收法測得細胞上清抗體濃度分別為97 mg/L,128 mg/L,而pH 4.0的洗脫液洗脫后測得的抗體濃度為224 mg/L(上樣細胞上清抗體濃度為240 mg/L)。洗脫液在pH 4.0,抗體回收率明顯高于pH 3.0和3.5,因此選擇洗脫液pH 4.0。

      在篩選出的pH值條件下考察含1 mol/L NaCl的上清和平衡液對抗體純化的影響。最后洗出的細胞上清抗體濃度為188 mg/L。含1 mol/L NaCl上清和平衡液比含2 mol/L NaCl上清和平衡液損失更多的抗體蛋白,故最終選擇洗脫液pH 4.0,2 mol/L NaCl上清和平衡液作為雜交瘤細胞單克隆抗體的親和層析條件。

      3 討論與結(jié)論

      影響雜交瘤細胞表達抗體的因素很多,其中培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件是其中的兩個主要因素。雖然通過對培養(yǎng)基組成成分進行綜合改進的方法[14]可以有效地提高雜交瘤細胞的生長和抗體表達量,但此方法繁瑣,工作量大,而本研究中通過培養(yǎng)基混合的方式不但提高了雜交瘤細胞的生長和抗體表達量,而且方法簡單,經(jīng)濟、易于實現(xiàn)。雖然雜交瘤細胞無血清培養(yǎng)可以減少一定成本,但在提高細胞生長和抗體產(chǎn)量方面空間有限,而且改變細胞的生長代謝狀況[23],本研究中通過減血清培養(yǎng)不但提高了雜交瘤細胞的最高生長密度和抗體表達量,而且生物反應(yīng)器中細胞代謝產(chǎn)生的乳酸和銨離子很低,這對于延長雜交瘤細胞的培養(yǎng)周期十分重要。同時,優(yōu)化抗體純化的洗脫緩沖液鹽濃度和pH值[24],這對于雜交瘤細胞生產(chǎn)單克隆抗體都會提供很好的借鑒和幫助。

      綜上所述,本研究以雜交瘤細胞作為單克隆抗體表達細胞,通過培養(yǎng)基篩選、優(yōu)化細胞培養(yǎng)和分離純化工藝,提高抗體表達量,得出如下結(jié)論:

      1)確定了雜交瘤細胞培養(yǎng)的接種密度為0.3×106cells/mL,采用的混合培養(yǎng)基為含2%血清的RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1)的培養(yǎng)基。

      2)采用的流加培養(yǎng)工藝為細胞培養(yǎng)的第2、4、6天流加,每次3%(初始體積)的流加量可以得到較高的細胞表達量。

      3)經(jīng)過搖瓶培養(yǎng)優(yōu)化,最高細胞培養(yǎng)密度從2.2×106cells/mL提高到4.1×106cells/mL,抗體的表達量從84 mg/L提高到168 mg/L。

      4)5 L生物反應(yīng)器的實驗結(jié)果顯示,細胞最終抗體濃度可達到240 mg/mL,較搖瓶產(chǎn)量有所提高。

      5)采用的親和分離純化工藝為洗脫液pH 4.0,上清和平衡液中加入2 mol/L NaCl。

      [1]KOHLER G,MILSTEIN C.Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity.1975 [J].Biotechnology,1992,24:524-526.

      [2]DICKSON A J.Enhancement of production of protein biopharmaceuticals by mammalian cell cultures: the metabolomics perspective [J].Curr Opin Biotechnol,2014,30: 73-79.

      [3]WALSH G.Biopharmaceutical benchmarks 2014 [J].Nat Biotechnol,2014,32(10): 992-1000.

      [4]AVERBUCH S,GREEN G,NOVOTNY J.The challenges of drug-diagnostic (Rx-Dx) co-development: a biopharmaceutical perspective [J].Ann Oncol,2012,23: 6-7.

      [5]GLUKHOVA X A,PRUSAKOVA O V,TRIZNA J A,et al.Updates on the production of therapeutic antibodies using human hybridoma technique [J].Curr Pharm Des,2016,22(7): 870-878.

      [6]ZALAI D,GOLABGIR A,WECHSELBERGER P,et al.Advanced development strategies for biopharmaceutical cell culture processes [J].Curr Pharm Biotechno,2015,16(11): 983-1001.

      [7]謝 波,李欒峰,杜春玲,等.利用新型一次性激流灌注式生物反應(yīng)器培養(yǎng)動物細胞 [J].過程工程學報,2011,11(6): 1050-1054.

      [8]ZHANG L,SHEN H,ZHANG Y X.Fed-batch culture of hybridoma cells in serum-free medium using an optimized feeding strategy [J].J Chem Technol Biotechnol,2004,79(2): 171-181.

      [9]HENCSEY Z,FIZIL A,INZELT-KOV CS M,et al.Effect of medium composition on hybridoma growth and antibody production [J].Acta Microbiol Immunol Hung,1996,43(4): 359-370.

      [10]DEWASME L,FERNANDES S,AMRIBT Z,et al.State estimation and predictive control of fed-batch cultures of hybridoma cells [J].J Process Contr,2015,30: 50-57.

      [11]CASABLANCAS A,GAMEZ X,LECINA M,et al.Comparison of control strategies for fed-batch culture of hybridoma cells based on on-line monitoring of oxygen uptake rate,optical cell density and glucose concentration [J].J Chem Technol Biot,2013,88(9): 1680-1689.

      [12]JIANG Y,LI F,ZHA D,et al.Purification process development of a recombinant monoclonal antibody expressed in glycoengineered pichia pastoris [J].Protein Expres Purif,2011,76(1): 7-14.

      [13]VOGEL J H,NGUYEN H,GIOVANNINI R,et al.A new large‐scale manufacturing platform for complex biopharmaceuticals [J].Biotechnol Bioeng,2012,109(12): 3049-3058.

      [14]SEN S,Roychoudhury P K.Development of optimal medium for production of commercially important monoclonal antibody 520C9 by hybridoma cell [J].Cytotechnology,2013,65 (2): 233-252.

      [15]SEN S,ROYCHOUDHURY P K.Step-up/step-down perfusion approach for increased mab 520C9 production by a hybridoma cell line [J].Biotechnol Lett,2013,35(2): 153-163.

      [16]KAMTHAN S,GOMES J,ROYCHOUDHURY P K.Production of monoclonal antibodies for breast cancer by HB8696 hybridoma cells using novel perfusion system [J].Enzyme Microb Tech,2014,64: 44-51.

      [17]EVEN M S,SANDUSKY C B,BAMARD N D.Serum-free hybridoma culture ethical,scientific and safety considerations [J].Trends Biotechnol,2006,24(3): 105-108.

      [18]RADFORD K,NILOPERBOWO W,REID S,et al.Weaning of three hybridoma cell lines to serum free low protein medium[J].Cytotechnology,1991,6(1): 65-78.

      [19]林福玉,陳昭烈,劉 紅,等.大規(guī)模動物細胞培養(yǎng)的問題及對策 [J].生物技術(shù)通報,1999(1): 32-35.

      [20]GONG X,LI D,LI X,et al.Fed-batch culture optimization of a growth-associated hybridoma cell line in chemically defined protein-free media[J].Cytotechnology,2006,52(1): 25-38.

      [21]HEINRICH C,BECKMANN T F,KLAUSING S,et al.Introducing a new chemically defined medium and feed for hybridoma cell lines[J].BMC Proceedings,2013,7(s6): 82-83.

      [22]BARNES D,SATO G.Serum-free cell culture: a unifying approach [J].Cell,1980,22(3): 649-655.

      [23]SHIBUYA K,HAGA R,NAMBA M.A serum substitute for fed-batch culture of hybridoma cells[J].Cytotechnology,2008,57: 187-197.

      [24]FAHRNER R L,KNUDSEN H L.BASEY,BASEY C D,et al.Industrial purification of pharmaceutical antibodies: development,operation,and validation of chromatography processes[J].Biotechnol Genet Eng Rev,2001,18: 301-327.

      Monoclonal antibodies production by hybridoma cellculture based on mixed medium model

      HUANG Ya-jie1,2,ZHU Guang-kai2,LIU Shan2,ZHAO Yong-qiang2,XIE Bo2,LIUDao-jun1

      (1.Medical College,Shantou University,Shantou 515041; 2.National Key Laboratory of BiochemicalEngineering,Institute of Process Engineering,Chinese Academy of Science,Beijing 100190,China )

      In this study,hybridoma cell was adapted to the mixed medium containing less fetal bovine serum through suspension domestication,and the antibody concentration increased largely.The components of mixed medium were RPM1640:SFM4CHO:OptiCHO(4.5:4.5:1) with 2% FBS and the fed-batch fermentation process was carried out,in which the initial inoculation concentration was 3×105cells/mL,and 3% (initial volume) chemical-defined feed medium was added every other day during cultivation.The antibody concentration increased to 168 mg/L from 84 mg/L.The hybridoma cells were further cultured in a 5 L stirred-bioreactor,and the products were purified by protein A affinity chromatography and the purified antibody concentration was 240 mg/L.

      hybridoma cell culture; monoclonal antibody; suspension domestication; affinity chromatography

      2016-02-26;

      2016-03-10

      收稿日期:國家863課題資助(2012AA02A406)

      黃亞杰,碩士,研究方向生物制藥,E-mail: 1848836411@qq.com

      謝 波,博士,研究方向生物制藥,E-mail: bxie@ipe.ac.cn;劉道軍,研究員,研究方向生物醫(yī)用高分子材料,E-mail: liudj@stu.edu.cn

      10.3969/j.issn.2095-1736.2016.06.104

      R392

      B

      2095-1736(2016)06-0104-06

      猜你喜歡
      雜交瘤細胞培養(yǎng)反應(yīng)器
      聚丙烯環(huán)管反應(yīng)器升密操作與控制
      云南化工(2021年11期)2022-01-12 06:06:36
      酶解大豆蛋白的制備工藝研究及其在細胞培養(yǎng)中的應(yīng)用研究
      EGSB反應(yīng)器處理阿維菌素廢水
      上旋流厭氧反應(yīng)器在造紙廢水處理中的應(yīng)用
      伏馬菌素B1單克隆抗體的制備及免疫學檢測方法初步應(yīng)用
      3種陰離子交換色譜固定相捕獲細胞培養(yǎng)上清液中紅細胞生成素的效果比較
      色譜(2015年6期)2015-12-26 01:57:32
      費托合成微反應(yīng)器研究進展
      化工進展(2015年6期)2015-11-13 00:27:28
      雜交瘤細胞培養(yǎng)及其注意事項
      采用PCR和細胞培養(yǎng)方法比較流感樣病例不同標本的流感病毒檢出觀察
      DC十CIK細胞培養(yǎng)中常見污染及預(yù)防
      武隆县| 修武县| 咸阳市| 顺昌县| 长白| 崇左市| 嘉义县| 扬中市| 玛沁县| 永康市| 东兰县| 根河市| 永新县| 云阳县| 达日县| 准格尔旗| 济阳县| 历史| 宝应县| 黑水县| 英吉沙县| 昌图县| 南通市| 云和县| 唐河县| 威海市| 石狮市| 安仁县| 安顺市| 犍为县| 清远市| 常德市| 福建省| 房产| 雷波县| 海淀区| 板桥市| 长宁县| 花垣县| 北安市| 勃利县|