李軍營(yíng), 繆立新, 李 飛, 馬二登, 晉 艷
(1.云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,云南昆明 650021; 2.云南省煙草公司昆明市公司宜良分公司;3.中國(guó)科學(xué)院昆明植物研究所生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)中心,云南昆明 650201)
煙草葉片發(fā)育過(guò)程中FⅠ蛋白含量變化及與光合作用的關(guān)系
李軍營(yíng)1, 繆立新2, 李 飛3, 馬二登1, 晉 艷1
(1.云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,云南昆明 650021; 2.云南省煙草公司昆明市公司宜良分公司;3.中國(guó)科學(xué)院昆明植物研究所生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)中心,云南昆明 650201)
通過(guò)對(duì)2個(gè)煙草品種云煙87、云煙85 FⅠ蛋白含量及其與幾種光合參數(shù)[葉綠素含量、光合速率和核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶/加氧酶(簡(jiǎn)稱Rubisco)活性]的相關(guān)性分析,研究煙草葉片發(fā)育過(guò)程中FⅠ蛋白含量變化特點(diǎn)及其與光合同化能力的關(guān)系。結(jié)果表明:在葉片發(fā)育過(guò)程中,F(xiàn)Ⅰ蛋白含量、葉綠素含量、光合速率和Rubisco活性均是先升高后降低,且各參數(shù)之間均顯著相關(guān),云煙85的FⅠ蛋白含量高于云煙87,但是光合速率卻低于云煙87。由研究結(jié)果可知,F(xiàn)Ⅰ蛋白含量與Rubisco活性共同限制著光合速率,進(jìn)而影響煙草葉片的生長(zhǎng)發(fā)育。
煙草;葉片;葉綠素含量;光合速率;FⅠ蛋白含量;Rubisco活性;相關(guān)性分析;葉片生長(zhǎng)發(fā)育
煙草(NicotianatabacumL.)是一種多年生草本植物,它具有悠久的種植歷史,生長(zhǎng)在世界各地的多個(gè)地域。隨著植物葉蛋白研究的不斷深入,煙草不再局限于商業(yè)生產(chǎn)香煙和相關(guān)的煙草產(chǎn)品。煙草蛋白是一種極具利用潛力和發(fā)展前景的植物蛋白資源,深入研究開發(fā)這種資源對(duì)于提高煙草的綜合利用價(jià)值、穩(wěn)定煙草種植和增加煙農(nóng)收入具有較大意義[1]。
煙草蛋白質(zhì)含量高、營(yíng)養(yǎng)均衡,在目前所有研究的植物蛋白中居首位,在白肋煙中的蛋白含量高達(dá)20.48%[2]。煙草蛋白可分為可溶性蛋白質(zhì)、不可溶性蛋白質(zhì),可溶性蛋白質(zhì)中約有一半是葉綠體蛋白質(zhì),即FⅠ蛋白(fraction Ⅰ protein),在其酶功能相關(guān)研究中又稱為核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶/加氧酶(簡(jiǎn)稱Rubisco);另一半是其他可溶性蛋白質(zhì)的復(fù)合物,即FⅡ蛋白(fraction Ⅱ protein)。FⅠ蛋白是決定C3植物光合碳代謝方向和效率的關(guān)鍵酶,許多研究結(jié)果表明,F(xiàn)Ⅰ蛋白含量和Rubisco活性、光合速率顯著相關(guān)[3-7],人為提高Rubisco活性,光合速率隨之升高[8-9]。在葉片衰老過(guò)程中,Rubisco被快速降解,光合速率急劇下降,Rubisco含量及活性的下降被認(rèn)為是葉片衰老過(guò)程中光碳失衡的主要原因[10-11],同時(shí),Rubisco的降解產(chǎn)物被運(yùn)往種子、果實(shí)等其他再生長(zhǎng)部位被重新利用。因此可見,Rubisco降解與光合作用以及氮源的經(jīng)濟(jì)利用密切相關(guān)[12-14]。
1.1 試驗(yàn)材料
試驗(yàn)材料為云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院選育的煙草品種云煙87、云煙85。試驗(yàn)地點(diǎn)位于云南省玉溪市紅塔區(qū)趙桅村,采用漂浮育苗方式培育煙苗,于2015年4月24日進(jìn)行移栽(行株距:120 cm×50 cm),田間管理按常規(guī)方法。以自下而上第11張葉片為試驗(yàn)對(duì)象,在葉片完全展開達(dá)到生理成熟時(shí),每隔7 d采集1次樣品,同時(shí)測(cè)定相關(guān)指標(biāo)。
1.2 葉綠素含量測(cè)定
避開葉脈,稱取0.05 g葉片,蒸餾水洗凈,吸干水分,剪成2 mm左右的碎塊,加入10 mL乙醇 ∶丙酮 ∶H2O體積比為9 ∶9 ∶2的葉綠素抽提液,4 ℃下避光抽提16 h;15 000 r/min、4 ℃離心15 min;使用紫外-可見分光光度計(jì)測(cè)量波長(zhǎng)645、663 nm下的吸光度;重復(fù)3次。參照Arnon的計(jì)算公式[15]加以修正計(jì)算葉綠素含量:
總?cè)~綠素含量=(8.04D663 nm+20.29D645 nm)×V/m×1 000。
式中:V為提取液體積,mL;m為煙葉質(zhì)量,g。
1.3 光合速率的測(cè)定
采用GFS-3000便攜式光合作用測(cè)定系統(tǒng),于晴天 9:00—11:00分別測(cè)定7、14、21、28、35、42、49、56、63、70 d葉片的凈光合速率。測(cè)定葉片面積為8 cm2,測(cè)定光照度為 1 000 μmol/(m2·s),溫度為(25±2)℃,CO2濃度為 400 μmol/mol,相對(duì)濕度為50%,重復(fù)3次以上。各個(gè)品種在各個(gè)時(shí)期選取5張長(zhǎng)勢(shì)一致的葉片測(cè)定,取平均值。
1.4 FⅠ蛋白的提取及含量測(cè)定
取200 g大田種植的煙草葉片,用蒸餾水洗凈后擦去多余的水分。加入預(yù)冷的200 mL樣品提取液[50 mmol/L pH值8.0的Tris-HCI,1 mmol/L EDTA,10 mmol/L MgCl2,10 mmol/L NaHCO3,10 mmol/Lβ-琉基乙醇,1%聚乙烯吡咯烷酮(簡(jiǎn)稱PVP)]和少量石英砂,研磨成勻漿,用4層紗布過(guò)濾。調(diào)節(jié)濾液的pH值到7.4,將濾液攪拌的同時(shí)快速加熱到50 ℃,并維持10 min,然后將懸浮液在冰浴中迅速冷卻至 4 ℃。在4 ℃、12 000 r/min離心20 min。上清液用(NH4)2SO4鹽析,離心收集35%~55%飽和度的沉淀物,再用柱平衡緩沖液(50 mmol/L pH值8.0的Tris-HCl,1 mmol/L EDTA,10 mmol/L MgCl2,5 mmol/Lβ-琉基乙醇)溶解,Sephadex G-25柱用柱平衡緩沖液平衡,溶液經(jīng) Sephadex G-25柱脫鹽,用柱平衡緩沖液洗脫,收集蛋白質(zhì),將收集蛋白質(zhì)再上二乙氨乙基(簡(jiǎn)稱DEAE)纖維素陰離子交換柱,用三氯乙酸檢測(cè)蛋白質(zhì),收集流出的蛋白部分。向收集的蛋白部分中加入等體積0.025 mol/L Tris-HCl,pH值7.4,含0.2 mmol/L EDTA的緩沖液。將DEAE-纖維素柱的蛋白流出液裝入透析袋中,用0.025 mol/L Tris-HCl、pH值7.4(內(nèi)含 0.2 mmol/L EDTA)的緩沖液透析1~2 d可出現(xiàn)結(jié)晶。
1.5 Rubisco羧化活性的測(cè)定
Rubisco羧化活性按照Wang等的方法[16]測(cè)定。酶粗提時(shí),將0.3 g葉片于液氮中搗碎,加入1 mL酶提取液(50 mmol/L Tris-HCl,pH值7.5,含0.5 mmol/L EDTA、50 mmol/L MgCl2、10 mmol/L NaHCO3)后在冰浴上研磨,4 ℃離心(20 000g)15 min后取上清備用。測(cè)定酶活性時(shí),1 mL反應(yīng)體系含5 mmol/L 4-羥乙基哌嗪乙磺酸-NaOH(簡(jiǎn)稱HEPES-NaOH)(pH值8.0)、2 mmol/L MgCl2、1 mmol/L NaHCO3、0.1 mmol/L EDTA、0.25 mmol/L二硫蘇糖醇、1 U 3-磷酸甘油酸激酶、1 U磷酸肌酸激酶、1 U甘油醛-3-磷酸脫氫酶、0.5 mmol/L ATP、0.015 mmol/L NADH、0.5 mmol/L 磷酸肌酸、0.06 mmol/L 1,5-二磷酸核酮糖和100 μL酶提取液。通過(guò)檢測(cè)NADP在2 min內(nèi)的D340 nm減少值,同時(shí)結(jié)合酶粗提液的蛋白質(zhì)測(cè)定結(jié)果計(jì)算出酶活性。
1.6 蛋白質(zhì)含量的測(cè)定
參照Bradford的方法[17]測(cè)定酶粗提液中的蛋白質(zhì)含量。
2.1 煙草葉片發(fā)育過(guò)程中的葉綠素含量動(dòng)態(tài)分析
由圖1可見,在7~70 d的煙草生長(zhǎng)發(fā)育期內(nèi),葉綠素含量均是先升高后降低,在28 d時(shí)達(dá)到最高值,與葉片的生長(zhǎng)趨勢(shì)一致,葉片也是在28 d左右完全展開;葉綠素含量在 28~35 d 基本維持穩(wěn)定,35 d后,葉綠素含量逐漸降低,49 d后,隨著葉片的衰老,葉綠素含量明顯降低。2個(gè)煙草品種的葉綠素含量在生長(zhǎng)初期和末期基本一致,但是在發(fā)育過(guò)程中有較大差異,云煙87的葉綠素含量在葉片發(fā)育中期階段明顯高于云煙85。
2.2 煙草葉片發(fā)育過(guò)程中的光合速率動(dòng)態(tài)分析
由圖2可見,在葉片發(fā)育的開始階段,隨著煙草葉片的不斷生長(zhǎng),光合速率明顯提高;當(dāng)葉片生長(zhǎng)到一定大小,光合速率達(dá)到最大值,并能夠維持一段時(shí)間;當(dāng)葉片生長(zhǎng)發(fā)育到一定程度后,開始從形態(tài)、生理2個(gè)方面逐漸衰老,光合速率逐漸下降??傮w看出,2個(gè)煙草品種光合速率差異較小,且變化趨勢(shì)較一致。
2.3 煙草葉片發(fā)育過(guò)程中的Rubisco羧化活性動(dòng)態(tài)變化
由圖3可以看出,2個(gè)煙草品種的Rubisco羧化活性都是先升高后降低,在檢測(cè)初期和末期都是云煙87的 Rubisco羧化活性較高,但是在葉片的旺盛發(fā)育階段,云煙85的Rubisco羧化活性高于云煙87。總體可以看出,2個(gè)煙草品種的 Rubisco 羧化活性都是在28 d達(dá)到最大值,之后隨著葉片的衰老逐漸降低。
2.4 煙草葉片發(fā)育過(guò)程中的FⅠ葉蛋白含量的動(dòng)態(tài)變化
FⅠ蛋白約占葉綠體蛋白質(zhì)的50%,這是因?yàn)镽ubisco羧化活性較低,為了彌補(bǔ)低效的缺陷,植物必須產(chǎn)生大量的Rubisco,但是并不是植物體內(nèi)的所有Rubisco都具有活性,必須處于激活狀態(tài)的Rubisco才具有活性。圖4表明,2個(gè)品種FⅠ蛋白含量均是先升高,后來(lái)隨著葉片的衰老,F(xiàn)Ⅰ蛋白含量逐漸降低,F(xiàn)Ⅰ蛋白降解,尤其是它在衰老過(guò)程中的降解一直受到許多研究者的關(guān)注,它的一些體外降解產(chǎn)物己經(jīng)被許多研究者發(fā)現(xiàn)。圖4還表明,只有在葉片發(fā)育的初期,云煙87的FⅠ蛋白含量高于云煙85,21 d后云煙85的FⅠ蛋白含量均高于云煙87。
2.5 FⅠ蛋白含量與葉綠素含量、凈光合速率和Rubisco羧化活性的相關(guān)性分析
對(duì)2個(gè)煙草品種在葉片整個(gè)生長(zhǎng)發(fā)育階段的4個(gè)參數(shù)(FⅠ蛋白含量、葉綠素含量、凈光合速率和Rubisco羧化活性)進(jìn)行相關(guān)性分析,兩兩相關(guān)性分析結(jié)果顯示,相關(guān)性均達(dá)到0.9以上。如表1所示,葉片葉綠素含量與光合速率呈極顯著正相關(guān)(ravg=0.946),隨著葉片葉綠素含量減少,葉片的光合能力也逐漸減弱,最終導(dǎo)致Rubisco羧化活性和FⅠ蛋白含量下降,葉片光合速率與Rubisco羧化活性表現(xiàn)出極顯著的相關(guān)性(ravg=0.974),葉片光合速率與FⅠ蛋白含量呈極顯著正相關(guān)(ravg=0.963),Rubisco羧化活性和葉片F(xiàn)Ⅰ蛋白含量表現(xiàn)為極顯著相關(guān)(ravg=0.987),葉綠素含量與FⅠ蛋白含量呈極顯著正相關(guān)(ravg=0.958),這是因?yàn)镽ubisco存在于植物的葉綠體中,葉綠素含量與Rubisco羧化活性呈極顯著相關(guān)(ravg=0.971)??梢?個(gè)品種的6個(gè)指標(biāo)相關(guān)性都達(dá)到了顯著水平,但是品種之間的各參數(shù)有差異。
表1 FⅠ蛋白、葉綠素含量、光合速率和Rubisco羧化活性
注:**表示極顯著相關(guān)。
Rubisco廣泛存在于能夠進(jìn)行光合作用的植物、藍(lán)藻等生物中,是光合碳同化的關(guān)鍵酶和限速酶,是植物細(xì)胞中最豐富的蛋白質(zhì),也是自然界最豐富的蛋白質(zhì)。本研究表明:煙草葉片的葉綠素含量與光合速率、葉綠素含量與FⅠ蛋白含量、葉綠素含量與Rubisco羧化活性、光合速率與FⅠ蛋白含量、光合速率與Rubisco羧化活性、FⅠ蛋白含量與Rubisco活性均呈顯著線性關(guān)系,這與前人研究的結(jié)果一致[18-20]。2個(gè)煙草品種的4個(gè)參數(shù)都存在著一定的差異,云煙87的Rubisco羧化活性均高于云煙85,但是FⅠ蛋白含量低于云煙85。大量研究表明,Rubisco活性直接決定植物的光合速率,處于活性狀態(tài)的Rubisco是影響植物光合速率的關(guān)鍵因素,Rubisco的含量在一定程度上體現(xiàn)了處于活性狀態(tài)的Rubisco,但是并不完全一致,這是因?yàn)樵谥参矬w內(nèi)Rubisco含量較高的情況下,多余的Rubisco可能以貯藏蛋白形式存在,在酶量充足的情況下對(duì)光合速率起主要抑制作用的還在于Rubisco的活化程度,這可能與近年來(lái)發(fā)現(xiàn)的在植物體內(nèi)對(duì)Rubisco活性起調(diào)節(jié)作用的Rubisco活化酶有關(guān)[21-23],Martine z-Barajas等曾在玉米中發(fā)現(xiàn)Rubisco活化酶通過(guò)調(diào)節(jié)Rubisco活性從而調(diào)節(jié)光合速率,玉米低產(chǎn)量正是由于Rubisco活化酶含量低所致[8],至于在煙草中是否存在同樣的機(jī)制還需要進(jìn)一步的研究。
植物葉蛋白被認(rèn)為是未來(lái)解決人類蛋白需求的最好來(lái)源,F(xiàn)Ⅰ蛋白是地球上最豐富的蛋白質(zhì)[24],作為一種可以大量獲取的蛋白質(zhì),其結(jié)晶產(chǎn)物不含碳水化合物、脂類化合物和無(wú)機(jī)鹽分,完全由氨基酸組成,有極高的純度[25]。植物葉蛋白的必需氨基酸的組成符合聯(lián)合國(guó)糧食及農(nóng)業(yè)組織(簡(jiǎn)稱FAO)、世界衛(wèi)生組織(簡(jiǎn)稱WHO)的要求,是一種營(yíng)養(yǎng)平衡的蛋白質(zhì),其蛋白質(zhì)利用率優(yōu)于酪蛋白[26],特別是煙草葉蛋白,是當(dāng)前唯一能夠通過(guò)結(jié)晶提取的植物葉蛋白,煙葉中的蛋白質(zhì)對(duì)卷煙的品質(zhì)幾乎沒有什么貢獻(xiàn),相反,它是卷煙中多種對(duì)人們有害成分的前體,如喹啉是FⅠ蛋白的主要氧化產(chǎn)品。此外,一些氨基酸如谷氨酸、色氨酸和賴氨酸在高溫燃燒時(shí),同樣會(huì)產(chǎn)生一些對(duì)人體不利的誘變因子[27]。根據(jù)煙葉均質(zhì)化調(diào)制理論[28-29],在煙葉調(diào)制之前提取出煙葉中的可溶蛋白,可降低煙葉中的蛋白質(zhì)含量,有利于生產(chǎn)較安全的卷煙產(chǎn)品,同時(shí)也可大量獲得高營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)的FⅠ蛋白。
[1]劉旭強(qiáng),李 軍,劉維娟,等. 煙草蛋白質(zhì)的利用及提取的研究進(jìn)展[J]. 化工科技,2014,22(6):67-70.
[2]Vansuyt G,Souche G,Straczek A,et al. Flux of protons released by wild type and ferritin over-expressor tobacoo plants:effect of phosphorus and iron nutrition[J]. Plant Physiology and Biochemistry,2003,41(1):27-33.
[3]Makino A,Mae T,Ohira K. Enzymic properties of ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase purified from rice leaves[J]. Plant Physiol,1985,79(1):57-61.
[4]Wang D,Lu Q,Li X F,et al. Relationship between Rubisco activase isoform levels and photosynthetic rate in different leaf positions of rice plant[J]. Photosynthetica,2009,47(4):621-629.
[5]Cai B,Zhang A H,Yang Z P,et al. Characterization of photosystem Ⅱ photochemistry in transgenic tobacco plants with lowered Rubisco activase content[J]. Journal of Plant Physiology,2010,167(17):1457-1465.
[6]柯 學(xué),李軍營(yíng),徐超華,等. 不同光質(zhì)對(duì)煙草葉片組織結(jié)構(gòu)及Rubisco羧化酶活性和rbc、rac基因表達(dá)的影響[J]. 植物生理學(xué)報(bào),2012,48(3):251-259.
[7]Perdomo J A,Cavanagh A P,Kubien D S,et al. Temperature dependence of in vitro Rubisco kinetics in species ofFlaveriawith different photosynthetic mechanisms[J]. Photosynthesis Research,2015,124(1):67-75.
[8]Martinez-Barajas E,Molina-Galan J,Sanchea de Jimenez E. Regulation of Rubisco activity during grain-fill in maize:possible role of Rubisco activase[J]. Journal of Agricultural Science,1997,128(2):155-161.
[9]畢煥改,董緒兵,王美玲,等. 鈣和水楊酸對(duì)亞適溫弱光下黃瓜幼苗光合酶活性和基因表達(dá)的影響[J]. 園藝學(xué)報(bào),2015,42(1):56-64.
[10]魏道智,戴新賓,許曉明,等. 植物葉片衰老機(jī)理的幾種假說(shuō)[J]. 廣西植物,1998,18(1):89-96.
[11]吳 蔚,陳 曉,張 鵬,等. 小麥葉片中1種降解Rubisco大亞基的蛋白酶鑒定[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2015,38(1):63-69.
[12]Cavanagh A P,Kubien D S. Can phenotypic plasticity in Rubisco performance contribute to photosynthetic acclimation?[J]. Photosynthesis Research,2014,119(1/2):203-214.
[13]Li P Z,Zhao L,Xu X M,et al. Analysis of the promoter region of theRuBisCOgene ofArthrospira(Spirulina) platensis[J]. Journal of Applied Phycology,2014,26(1):199-207.
[14]Pinto T S,Malcata F X,Arrabaca J D,et al. Rubisco mutants ofChlamydomonasreinhardtiienhance photosynthetic hydrogen production[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2013,97(12):5635-5643.
[15]Arnon D I. Copper enzymes in isolated chloroplasts:polyphenol oxidase inBetavulgaris[J]. Plant Physiol,1949(24):1-15.
[16]Wang H,Gu M,Cui J X,et al. Effects of light quality on CO2assimilation,chlorophyll-fluorescence quenching,expression of Calvin cycle genes and carbohydrate accumulation inCucumissativus[J]. Journal of Photochemistry and Photobiology B-Biology,2009,96(1):30-37.
[17]Bradford M M. A rapid and sensitive method for the quantization of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding[J]. Anal Biochem,1976,72:248-254.
[18]Fukayama H,Uchida N,Azuma T,et al. Relationships between photosynthetic activity and the amount s of Rubisco activase and Rubisco in rice leaves from emergence through senescence[J]. Japanese Journal of Crop Science,1996,65(2):296-302.
[19]Galmés J,Aranjuelo I,Medrano H,et al. Variation in rubisco content and activity under variable climatic factors[J]. Photosynthesis Research,2013,117(1/2/3):73-90.
[20]Galmés J,Perdomo J A,F(xiàn)lexas J,et al. Photosynthetic characterization of Rubisco transplantomic lines reveals alterations on photochemistry and mesophyll conductance[J]. Photosynthesis Research,2013,115(2/3):153-166.
[21]Portis A R Jr,Portis A R. The regulation of Rubisco activase[J]. Journal of Experimental Botany,1995,46:1285-1291.
[22]翁曉燕,蔣德安,毛偉華. Rubisco活化酶及其對(duì)Rubisco的調(diào)節(jié)作用[J]. 植物生理學(xué)通訊,1998,34(1):69-73.
[23]李 瑩,劉淑欣,彭 鴿,等. 馬尾松種子萌發(fā)與幼苗生長(zhǎng)異養(yǎng)轉(zhuǎn)自養(yǎng)生理過(guò)程研究[J]. 北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2014(6):9-16.
[24]Ellis R J. The most abundant protein in the world[J]. Trends in Biochemical Sciences,1979,4(11):241-224.
[25]Kung S D. Tobacco fraction 1 protein:a unique genetic marker[J]. Science,1976,191(4226):429-434.
[26]Ershoff B H,Wildman S G,Kwanyuen P. Biological evaluation of crystalline fraction-1-protein from tobacco [J]. Experimental Biology Medicine,1978,157(4):626-630.
[27]Sheen S J,Sheen V L. Functional properties of fraction 1 protein from tobacco leaf[J]. J Agric Food Chem,1985,33(1):411-425.
[28]Sakano K,Kung S D,Wildman S G. Change in the solubility of crystalline Fraction I proteins correlated with change in the composition of the small subunit[J]. Plant Cell Physiol,1974,15(4):611-617.
10.15889/j.issn.1002-1302.2017.02.023
2016-04-06
中國(guó)煙草總公司云南省公司科技計(jì)劃(編號(hào):2015YN06)。
李軍營(yíng)(1978—),男,河北河間人,博士,副研究員,主要從事煙草栽培研究。E-mail:ljy1250@163.com。
晉 艷,碩士,副研究員,主要從事煙草栽培研究。E-mail:jinyan1968@163.com。
Q945.11;S572.01
A
1002-1302(2017)02-0086-04
李軍營(yíng),繆立新,李 飛,等. 煙草葉片發(fā)育過(guò)程中FⅠ蛋白含量變化及與光合作用的關(guān)系[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(2):86-89.