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      豬MBF1基因的多態(tài)性及與生產(chǎn)性狀的關(guān)聯(lián)分析

      2017-03-17 00:40:43武華玉程碧軍喬木劉貴生吳俊靜
      湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年23期
      關(guān)鍵詞:多態(tài)性

      武華玉+程碧軍+喬木+劉貴生+吳俊靜+李良華+彭先文+梅書棋

      摘要:分離克隆了豬MBF1基因第4外顯子的序列,測(cè)序發(fā)現(xiàn)在18 bp處存在T/C突變,引起TaqI酶切多態(tài)。利用PCR-RFLP方法對(duì)國(guó)內(nèi)外4個(gè)豬種MBF1基因第4外顯子的多態(tài)性進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),在國(guó)外豬種中等位基因T的的頻率占優(yōu)勢(shì);在中國(guó)豬種中C等位基因的頻率占優(yōu)勢(shì);在437頭大梅F2代資源家系中進(jìn)行性狀關(guān)聯(lián)分析發(fā)現(xiàn)該多態(tài)與瘦肉率、板油重、肩部背膘厚、眼肌高、眼肌寬、眼肌面積顯著相關(guān)(P<0.05)。

      關(guān)鍵詞:豬MBF1基因;PCR-PFLP;多態(tài)性;性狀關(guān)聯(lián)分析

      中圖分類號(hào):S828.8+9 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2016)23-6192-03

      DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2016.23.048

      Abstract: Cloning and Sequencing of the 4th exon of porcine MBF1 gene indicated that a T18C substitution which can be detected by restriction endonuclease TaqI. This polymorphism was analyzed with PCR-RFLP among four foreign and Chinese pig breeds. Analysis result showed that allele T was predominant in foreign pig breeds;however allele C was predominant in Chinese pig breeds. Statistical analysis in 437 Large White×Meishan F2 progeny pigs showed that the TaqI polymorphism was associated with lean meat percentage,leaf fat weigh,shoulder fat thickness,loin eye height,loin eye width,loin eye area,significantly(P<0.05).

      Key words: porcine MBF1 gene; PCR-RFLP; polymorphism; association analysis

      多蛋白橋梁因子(Multiprotein bridging factor 1, MBF1)是一種核受體輔激活因子,它通過(guò)橋連通用轉(zhuǎn)錄因子TBP增強(qiáng)特異性轉(zhuǎn)錄因子的DNA結(jié)合活性,增強(qiáng)結(jié)合的靶基因的啟動(dòng)子活性,介導(dǎo)靶基因的轉(zhuǎn)錄激活,調(diào)節(jié)生物體的各種生命活動(dòng)[1-3]。MBF1是一個(gè)高度保守的調(diào)節(jié)內(nèi)皮細(xì)胞分化、中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育、脂類和組氨酸新陳代謝的轉(zhuǎn)錄輔激活蛋白[4,5],同時(shí)可以調(diào)節(jié)類固醇激素的生成[6]。MBF1還可以增強(qiáng)一些與脂類代謝相關(guān)的核受體轉(zhuǎn)錄激活,調(diào)節(jié)脂質(zhì)的動(dòng)態(tài)代謝平衡[4]。

      1 材料與方法

      1.1 動(dòng)物和組織樣品

      基因克隆及SNP篩選的樣品:大白豬(湖北省農(nóng)科院畜牧獸醫(yī)研究所原種豬場(chǎng))、梅山豬(英山縣綠源養(yǎng)豬專業(yè)合作社)二月齡肌肉組織提取RNA。

      用于基因頻率分析的樣品:大白豬(湖北省農(nóng)科院畜牧獸醫(yī)研究所原種豬場(chǎng))、長(zhǎng)白豬(華中農(nóng)業(yè)大學(xué)試驗(yàn)豬場(chǎng))、梅山豬(英山縣綠源養(yǎng)豬專業(yè)合作社)、通城豬(通城縣種豬場(chǎng))共143頭,前腔靜脈采血,提取DNA。

      用于性狀關(guān)聯(lián)分析的樣品:大白豬和梅山豬雜交產(chǎn)生的F2代群體(華中農(nóng)業(yè)大學(xué)試驗(yàn)豬場(chǎng))437頭,分別提取個(gè)體DNA并做好性狀記錄。

      DNA的提?。翰捎脗鹘y(tǒng)的苯酚/氯仿提取法。

      RNA的提?。喊凑誌nvitrogen公司的TRIzol試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行提取。

      1.2 引物及主要試劑

      根據(jù)大白豬MBF1基因序列,設(shè)計(jì)豬的第4外顯子的特異引物Primer pair,引物序列如下:

      Forward primer:GAACAAACAGCACTCAATCAC

      Reverse primer:TTCAGGAGCATGTGCCTA

      引物由上海生工生物技術(shù)有限公司合成,去離子水溶解,-20 ℃保存。pMD-18T vector system、DH5α購(gòu)自TaKaRa公司(大連);Gel Extraction Kit購(gòu)自上海生工生物技術(shù)有限公司。

      1.3 PCR擴(kuò)增與克隆、測(cè)序

      PCR擴(kuò)增體積為25 μL,體系中各組分的濃度為50 ng模板DNA、1×PCRmix、0.5 mmol/L PCR primers,PCR的運(yùn)行程序如下:預(yù)變性94 ℃ 4 min; 94 ℃ 45 s,61 ℃ 45 s,72 ℃50 s,35個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。

      PCR產(chǎn)物用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè);將目的帶用Gel Extraction Kit試劑盒純化回收,回收后的PCR產(chǎn)物片段與pMD-18T vector system連接并轉(zhuǎn)化DH5α,克隆子送北京奧科生物技術(shù)有限公司測(cè)序。

      1.4 PCR-RFLP分析

      選用TaqI對(duì)PCR 產(chǎn)物進(jìn)行消化,酶切反應(yīng)總體系為10 μL,其中PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物5 μL,限制性內(nèi)切酶0.5 μL(10 U/μL),10×Buffer 1 μL,ddH2O 3.5 μL,65 ℃恒溫反應(yīng)4 h,后經(jīng)1.5%的瓊脂糖凝膠電泳分析。

      1.5 統(tǒng)計(jì)分析

      用Qiao等[7]介紹的單標(biāo)記回歸統(tǒng)計(jì)模型,使用SAS統(tǒng)計(jì)軟件(SAS Institute Inc,Version 8.0)的GLM程序進(jìn)行單標(biāo)記方差分析,同時(shí)用REG程序計(jì)算基因的顯性效應(yīng)和加性效應(yīng),并進(jìn)行顯著性檢驗(yàn)。加性效應(yīng)用-1,0和1分別代表TT、TC和CC基因型,顯性效應(yīng)用1,-1和1分別代表TT、TC和CC基因型。所采用模型為:Yijk=μ+Si+Yj+Gk+bijkXijk+eijk,其中Yijk為性狀表型值,μ為群體均值,Si為性別效應(yīng),Yj 是年份效應(yīng),Gk為基因型效應(yīng),bijk為屠宰體重的回歸系數(shù),Xijk是協(xié)變量屠宰體重,eijk為殘差效應(yīng)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物

      Primer pair分別在大白豬、梅山中擴(kuò)增,取擴(kuò)增產(chǎn)物5 μL在1%的瓊脂糖上電泳,其大小為760 bp,與GenBank上公布的豬MBF1基因的序列大小相一致(圖1)。PCR產(chǎn)物測(cè)序,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在第4外顯子18 bp處有1個(gè)T-C突變(圖2),引起TaqI酶切(T,CGA)多態(tài)。

      2.2 擴(kuò)增產(chǎn)物的PCR-RFLP分析

      該位點(diǎn)經(jīng)限制性內(nèi)切酶TaqI酶切分析發(fā)現(xiàn):當(dāng)?shù)?外顯子18 bp處的堿基為C時(shí)TaqI酶切該位點(diǎn),記為CC型(354 bp+325 bp+81 bp),當(dāng)該位點(diǎn)堿基都為T時(shí)TaqI不識(shí)別該位點(diǎn),記為TT型(679 bp+81 bp),當(dāng)C和T都存在時(shí)記為CT型(679 bp+354 bp+325 bp+81 bp)。豬MBF1基因的PCR- TaqI-RFLP的酶切分型結(jié)果如圖3。

      2.3 豬MBF1基因TaqI位點(diǎn)在不同豬種中的基因頻率和基因型頻率

      在中外4個(gè)品種豬中檢測(cè)MBF1基因第4外顯子PCR-TaqI-RFLP多態(tài)性基因頻率分布,檢測(cè)結(jié)果如表1所示。在國(guó)外豬種中等位基因T的的頻率占優(yōu)勢(shì),大白、長(zhǎng)白豬T等位基因的頻率分別為0.81和0.86;而在中國(guó)豬種中C等位基因的頻率占優(yōu)勢(shì),在梅山和通城豬中C等位基因的頻率分別為0.94和0.71。

      2.4 豬MBF1基因TaqI位點(diǎn)基因型與生產(chǎn)性狀的關(guān)聯(lián)分析

      應(yīng)用SAS軟件運(yùn)行GLM和REG程序,進(jìn)行豬MBF1基因PCR-TaqI-RFLP不同基因型與豬生產(chǎn)性狀的關(guān)聯(lián)分析和遺傳效應(yīng)估計(jì),基因型檢測(cè)結(jié)果表明:在所檢測(cè)的437頭大白×梅山F2代個(gè)體中,TT基因型134頭,CT基因型204頭,CC基因型99頭。不同基因型與生產(chǎn)性狀間的統(tǒng)計(jì)結(jié)果見(jiàn)表2。

      統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示,MBF1基因第4外顯子PCR-TaqI-RFLP多態(tài)性與瘦肉率、板油重、肩部背膘厚、眼肌高、眼肌寬、眼肌面積顯著相關(guān)(P<0.05);眼肌高、眼肌面積加性效應(yīng)顯著(P<0.05),瘦肉率、肩部背膘厚加性效應(yīng)極顯著(P<0.01)。板油重、眼肌寬顯性效應(yīng)顯著(P<0.05)。TT基因型有較高的瘦肉率、眼肌高、眼肌寬和眼肌面積。

      3 討論

      本研究中,TT基因型有較高的瘦肉率、眼肌高、眼肌寬和眼肌面積;瘦肉豬品種大白豬、長(zhǎng)白豬群體中T基因頻率占優(yōu)勢(shì),在中國(guó)本地品種梅山豬、通城豬中C等位基因占優(yōu)勢(shì),說(shuō)明T基因可能具有提高瘦肉率,降低背膘厚的效應(yīng);而C基因可能具有促進(jìn)脂肪沉積降低瘦肉率的效應(yīng)。

      瘦肉率、肩部背膘厚、眼肌面積、眼肌高加性效應(yīng)顯著,加性效應(yīng)是可以遺傳的,因此可以采用分子標(biāo)記輔助選擇和常規(guī)選擇項(xiàng)結(jié)合的方法對(duì)豬屠宰率、背膘厚、眼肌面積等性狀進(jìn)行固定。顯性效應(yīng)主要基因互作的結(jié)果,顯性效應(yīng)性狀可通過(guò)雜交獲得較好選擇效果[8]。

      MBF1是調(diào)節(jié)脂類和組氨酸等代謝的轉(zhuǎn)錄激活蛋白,可以調(diào)節(jié)類固醇激素的生成,調(diào)控脂肪代謝動(dòng)態(tài)平衡[4-6],為MBF1基因作為調(diào)節(jié)脂肪沉積性狀的候選基因提供了生理功能依據(jù)。本研究證實(shí)了MBF1基因第4外顯子T/C突變與瘦肉率、背膘厚等脂肪沉積相關(guān)性狀存在顯著的相關(guān)性,為該因作為調(diào)節(jié)脂肪沉積性狀的候選基因提供了統(tǒng)計(jì)學(xué)依據(jù),綜上所述,MBF1基因可以作為豬脂肪沉積性狀的候選基因。

      參考文獻(xiàn):

      [1] TAKEMARU K,LI F Q,UEDA H,et al.Multiprotein bridging factor 1(MBF1) is an evolutionarily conserved transcriptional coactivator that connects regulatory factor and TATA element-binding protein[J].Proc Natl Acad Sci,1997,94:7251-7256.

      [2] TAKEMARU K,HARASHIMA S,UEDA H,et al.Yeast coactivator MBF1 mediates GCN4-dependent transcriptional activation [J].Mol Cell Bio,1998,18:4971-4976.

      [3] OZAKI J,TAKEMARU K,IKEGAMI T,et al.Identification of the core domain and the secondary structure of the transcriptional coactivator MBF1[J].Genes Cells,1999,4:415-424.

      [4] BRENDEL C,GELMAN L,AUWERX J. Multiprotein bridging factor 1(MBF1) is coactivator for nuclear receptors that regulate lipid metabolism[J].Mol Endocrinol,2002,16:1367-1377.

      [5] LIU Q X,JINDRA M,UEDA H,et al.Drosophila MBF1 is coactivator for tracheae defective and contributes to the formation of tracheal and nervous system[J].Development,2003,130: 729-728.

      [6] KABE Y,GOTO M,SHIMA D,et al. The role of human MBF1 as a transcriptional coactivator[J].J Bio Chem,1999,274:34196-34202.

      [7] QIAO M,WU H Y,LI F,et al.Molecular characterization,expression profile and association analysis with carcass traits of porcine LCAT gene[J].Molecular Biology Reports,2010,37(5):2227-2234.

      [8] 武華玉,喬 木,黃京書.豬USF1基因的多態(tài)性及與生產(chǎn)性狀的關(guān)聯(lián)分析[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,53(24):6064-6067.

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