吳亮亮 錢志娟 謝正軍 張瑩瑩 彭池方
摘要 通過(guò)對(duì)銀/鉑納米簇(Ag/Pt NCs)的表面修飾調(diào)控其催化活性,建立了一種高靈敏的比色法檢測(cè)Cu2+。巰基丙酸能夠抑制Ag/Pt NCs的催化活性,而巰基丙酸與Cu2+作用后,將導(dǎo)致上述抑制作用減弱。2基于上述原理,通過(guò)測(cè)量Ag/Pt NCs 催化TMBH2O2反應(yīng)產(chǎn)生的顯色信號(hào),可以實(shí)現(xiàn)Cu2+的比色檢測(cè)。本方法檢測(cè)Cu2+的線性范圍為10~100 nmol/L,檢出限(3σ)為5.0 nmol/L。將本方法應(yīng)用于實(shí)際水樣中Cu2+的檢測(cè),結(jié)果表明,本方法具有操作簡(jiǎn)單、成本低、靈敏度高、特異性好等優(yōu)點(diǎn)。
關(guān)鍵詞 銀鉑納米簇; 比色檢測(cè); 巰基丙酸; 銅離子
1引 言
銅作為人體必須的微量元素,在人體生命活動(dòng)及器官運(yùn)行中發(fā)揮重要作用[1]。但是過(guò)量的銅會(huì)對(duì)人體產(chǎn)生潛在的毒性,也會(huì)對(duì)環(huán)境造成嚴(yán)重污染[2]。Cu2+在人體內(nèi)過(guò)度累積可能會(huì)參與活性氧物質(zhì)的生成,從而導(dǎo)致神經(jīng)退行性疾病的發(fā)生; 同時(shí),癌癥、糖尿病、心血管疾病及動(dòng)脈硬化、肝硬化肝腹水等也與Cu2+有關(guān)[3]。目前,常用的Cu2+檢測(cè)方法包括原子發(fā)射光譜法(AES)[4]、原子吸收光譜法(AAS)[5]、電感耦合等離子質(zhì)譜法(ICPMS)[6]及電化學(xué)分析法[7]。這些方法雖然靈敏度高,特異性好,但都存在不同的缺點(diǎn),如耗時(shí)較長(zhǎng)、儀器昂貴、需要專業(yè)操作人員、不便攜帶等,不利于實(shí)際應(yīng)用。 因此,開(kāi)發(fā)簡(jiǎn)單方便、成本低、靈敏度高、特異性好的Cu2+檢測(cè)方法具有重要的應(yīng)用價(jià)值。
近年來(lái),基于納米材料的比色傳感方法的發(fā)展為研究者開(kāi)發(fā)重金屬離子的檢測(cè)方法提供了新思路。相對(duì)于電化學(xué)方法[8]及熒光技術(shù)[9,10]而言,基于紫外光譜檢測(cè)及裸眼可見(jiàn)的比色方法更加簡(jiǎn)單易行,受到研究者青睞。 Deng等 \[11]利用經(jīng)過(guò)熱處理的裸金納米顆粒, 建立了一種快速檢測(cè)Cu2+的比色檢測(cè)方法; Hua等[12]利用化學(xué)反應(yīng)誘導(dǎo)金納米粒子聚集, 建立了一種比色檢測(cè)水中Cu2+的方法。上述方法主要是通過(guò)調(diào)控納米顆粒表面電荷, 誘導(dǎo)納米粒子表面等離子共振吸收峰的變化實(shí)現(xiàn)檢測(cè),具有簡(jiǎn)單易行的優(yōu)點(diǎn),但由于許多樣品基質(zhì)中含有高濃度的離子,可能帶來(lái)應(yīng)用上的干擾。
研究表明,一些金屬納米粒子,如Fe3O4NPs\, PtNCs\, Co3O4NPs等,具有類似天然酶的活性,被稱為“納米模擬酶”[13]。通過(guò)修飾這些納米模擬酶的表面組分,可調(diào)控其催化活性[14]。利用這一特性,研究者構(gòu)建了一些靈敏的比色方法,檢測(cè)物包括重金屬[15,16]、三聚氰胺[17]及L半胱氨酸[18]。在這些模擬酶中,鉑雜化納米材料憑借其較高的催化活性, 已被廣泛應(yīng)用于生物傳感器。如Lin等[18]通過(guò)將鉑納米材料與氧化石墨烯結(jié)合, 實(shí)現(xiàn)了對(duì)半胱氨酸的快速檢測(cè); Gao等[19]利用Au@PtNHs實(shí)現(xiàn)了擴(kuò)增比色免疫分析。Zheng等[20]發(fā)現(xiàn)銀鉑雜合納米簇(Ag/Pt NCs)相對(duì)于單一組份納米簇而言,具有更高的催化活性。本課題組也利用Ag/Pt NCs的高催化活性,基于半胱氨酸和Hg2+對(duì)其催化活性的抑制作用,構(gòu)建了高靈敏的比色檢測(cè)方法[21,22]。
有文獻(xiàn)報(bào)道,含巰基化合物如L半胱氨酸,能夠通過(guò)巰基與鉑納米顆粒表面結(jié)合,形成〖JG(Pt〖ZJYS〖JG)鍵,抑制鉑納米模擬酶的催化活性[23,24]。另外,Cu2+可以催化巰基化合物的氧化形成二硫鍵[25]。基于上述兩種作用,本研究利用巰基丙酸(MPA)抑制DNA銀鉑納米簇(Ag/Pt NCs)的催化活性; 同時(shí)利用Cu2+與MPA反應(yīng),調(diào)控MPA對(duì)Ag/Pt NCs催化活性的抑制作用,實(shí)現(xiàn)了Cu2+的比色檢測(cè)。本方法具有操作簡(jiǎn)單、成本低、特異性強(qiáng)、靈敏度高等優(yōu)點(diǎn)。
〖HS1*5/62實(shí)驗(yàn)部分
2.1儀器與試劑
Multiskan MK3 酶標(biāo)儀(美國(guó) Thermo 公司); QL901 漩渦混勻器(江蘇海門其林醫(yī)用儀器廠); VS100C恒溫混勻儀(無(wú)錫沃信儀器有限公司); UV2802pcs紫外分光光度計(jì)(優(yōu)尼柯公司); JEOL2100透射電鏡(日本電子株式會(huì)式); EMXplus10/12電子自旋共振波譜儀(德國(guó)布魯克科技有限公司)。
AgNO3(美國(guó)Sigma公司,純度99%); 四氯鉑酸鉀(瑪雅試劑); 巰基丙酸(MPA)、四甲基聯(lián)苯胺(TMB)、NaBH4(阿拉丁試劑); ssDNA(生工生物工程上海股份有限公司); 金屬離子溶液(Hg2+, Mn2+, Sr2+, Zn2+, Fe3+, Co2+, Cr2+, Ag+, Ni2+, Cd2+, Al3+, Ba2+和Pb2+均為1 μg/mL,國(guó)家有色金屬及電子材料分析測(cè)試中心); 實(shí)驗(yàn)用水為Millipore超純水(18.2 MΩ cm); 其余試劑均為分析純。
2.2Ag/Pt NCs的合成
參照文獻(xiàn)\[21\]的方法合成Ag/Pt NCs,利用氧化還原法合成平均粒徑為4 nm的Ag/Pt NCs:將50 μL 150 μmol/L AgNO3溶液及120 μL 125 μmol/L K2PtCL4溶液與300 μL 2 μmol/L ssDNA溶液(以10 mmol/L, pH 7.4的磷酸鹽緩沖液稀釋)振蕩混勻,4℃避光反應(yīng)30 min后,加40 μL 5 mmol/L NaBH4 溶液(冰水稀釋),快速混勻,然后置于恒溫振蕩器上, 37℃,1500 r/min孵育3 h, 得到平均粒徑為4 nm的2 μmol/L Ag/Pt NCs溶液,于4℃ 避光保存,一個(gè)月內(nèi)活性不會(huì)發(fā)生明顯變化。
2.3Cu2+ 的檢測(cè)
用10 mmol/L Tris緩沖鹽(pH 6.0), 稀釋巰基丙酸溶液至20 μmol/L。將10 μL MPA溶液和90 μL系列濃度的Cu2+溶液(0~200 nmol/L) 依次加入到微孔板中,充分混合,于室溫孵育20 min; 將制備的Ag/Pt NCs溶液稀釋4倍,取10 μL 加入上述混合溶液中,充分混合,于室溫孵育15 min; 最終向孵育好的混合溶液中依次加入30 μL檸檬酸緩沖溶液(0.01 mol/L,pH 4.0)、40 μL TMB溶液(3 mmol/L)、20 μL H2O2溶液(1 mol/L),振蕩混合均勻,反應(yīng)15 min, 測(cè)定652 nm處的吸光值,以吸光值對(duì)Cu2+的濃度繪制校正曲線。
2.4樣品加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)
采集本實(shí)驗(yàn)室的自來(lái)水、湖水及河水作為樣品, 樣品分別經(jīng)0.22 μm微孔濾膜過(guò)濾。參照2.3節(jié)的方法測(cè)量, 并與石墨爐原子吸收光度法(GFAAS)測(cè)定結(jié)果比較。
3結(jié)果與討論
3.1Ag/Pt NCs的表征
3.1.1透射電鏡(TEM)和X射線電子能譜(EDX)表征透射電鏡圖如圖1所示, Ag/Pt NCs的粒徑約為5 nm(圖1A); 向Ag/Pt NCs溶液中加入MPA后,Ag/Pt NCs呈現(xiàn)一定程度的聚集(圖1B); 加入Cu2+和MPA的混合液時(shí), Ag/Pt NCs并沒(méi)有明顯變化(圖1C)。以上結(jié)果表明,Cu2+與MPA發(fā)生了反應(yīng),導(dǎo)致MPA對(duì)Ag/Pt NCs的結(jié)合作用減弱。由EDX譜圖(圖2)也可以發(fā)現(xiàn),當(dāng)向Ag/Pt NCs溶液中加入MPA后,Ag/Pt NCs表面出現(xiàn)S元素,說(shuō)明MPA結(jié)合在Ag/Pt NCs表面。
3.1.2吸收光譜分析由吸收光譜(圖3)可見(jiàn),Ag/Pt NCs能催化TMBH2O2氧化還原反應(yīng),在652 nm處產(chǎn)生較強(qiáng)的吸收峰(曲線a),這說(shuō)明Ag/Pt NCs具有過(guò)氧化物酶活性。然而,當(dāng)與MPA孵育后,Ag/Pt NCs催化TMBH2O2時(shí)的吸收峰強(qiáng)度顯著下降(曲線c)。當(dāng)與MPA和Cu2+的混合液孵育后,上述催化反應(yīng)的吸收峰的強(qiáng)度顯著回升(曲線b)。上述結(jié)果說(shuō)明,MPA作用于Ag/Pt NCs, 使其酶活性降低,而Cu2+與MPA發(fā)生了反應(yīng),降低了MPA對(duì)Ag/Pt NCs的模擬酶活性的抑制。
3.1.3電子順磁共振(EPR)表征電子順磁共振分析表明(圖4),DMPO能夠捕獲H2O2經(jīng)紫外燈照射產(chǎn)生的·〖KG-3OH,形成DMPO·〖KG-3OH,產(chǎn)生較強(qiáng)的EPR信號(hào)(曲線b)。Ag/Pt NCs與DMPO競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合·〖KG-3OH[16],導(dǎo)致DMPO·〖KG-3OH的信號(hào)變?nèi)酰ㄇ€c)。當(dāng)Ag/Pt NCs與MPA作用后,再與DMPO競(jìng)爭(zhēng)·〖KG-3OH時(shí), EPR信
而MPA與Cu2+反應(yīng)后,再與Ag/Pt NCs孵育,將使得結(jié)合在Ag/Pt NCs表面的MPA減少,從而減弱了上述抑制作用,因此, EPR圖譜上顯現(xiàn)出較弱的DMPO·〖KG-3OH信號(hào)(曲線e)。
3.2Ag/Pt NCs比色檢測(cè)Cu2+反應(yīng)條件的影響
3.2.1緩沖溶液的pH值和鹽濃度的影響考察緩沖液pH值分別為3.0, 4.0, 5.0, 6.0, 7.0, 8.0和9.0時(shí)對(duì)Cu2+的分析響應(yīng)的影響。 結(jié)果表明(圖5),當(dāng)緩沖溶液的pH=6.0時(shí),100 nmol/L Cu2+產(chǎn)生的吸光度差比值((A0-A)/A0)最大,因此,后續(xù)實(shí)驗(yàn)選用pH=6.0的緩沖溶液。
將濃度分別為1.0, 5.0, 10, 50和100 mmol/L的Tris緩沖溶液用于上述反應(yīng)對(duì)Cu2+的響應(yīng)分析。 結(jié)果表明,當(dāng)緩沖溶液濃度低于10 mmol/L時(shí), Cu2+產(chǎn)生的吸光度差比值變化較大,高于10 mmol/L時(shí), 吸光度差比值明顯下降。故選擇10 mmol/L Tris緩沖溶液用于Cu2+檢測(cè)。
3.2.2MPA濃度的影響考察濃度分別為1.0, 5.0, 10, 20和50 μmol/L的MPA溶液對(duì)Cu2+的響應(yīng)2的影響。結(jié)果表明,當(dāng)MPA溶液的濃度為20 μmol/L時(shí),100 nmol/L Cu2+產(chǎn)生吸光度差比值明顯高于其它濃度。故選用20 μmol/L MPA用于Cu2+檢測(cè)。
3.2.3孵育時(shí)間的影響將100 nmol/L Cu2+與MPA分別孵育10, 20, 30, 40, 50和60 min。結(jié)果表明,當(dāng)100 nmol/L Cu2+與MPA孵育10 min時(shí),即可產(chǎn)生較高的吸光度差比值。孵育時(shí)間延長(zhǎng)到20 min時(shí),
所得吸光度差比值僅略有升高。孵育30~60 min,所得吸光度差比值緩慢下降。故選擇將Cu2+與MPA孵育10 min用于Cu2+檢測(cè)。
3.3Cu2+檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)曲線
在上述優(yōu)化反應(yīng)條件下,應(yīng)用Ag/Pt NCs檢測(cè)Cu2+,以Cu2+
濃度作為橫坐標(biāo),以吸光值作為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。如圖6所示,Cu2+濃度在10~100 nmol/L范圍內(nèi)與吸光值呈良好的線性關(guān)系(R2=0.997), 方法的檢出限為5.0 nmol/L (3σ)。 與其它納米比色檢測(cè)方法相比,本方法在靈敏度和特異性方面具有優(yōu)勢(shì)(及表1)。
3.4特異性分析
選擇常見(jiàn)金屬離子Hg2+, Mn2+, Sr2+, Zn2+, Fe3+, Co2+, Cr2+, Ag+, Ni2+, Cd2+, Al3+, Ba2+和Pb2+, 考察本方法檢測(cè)Cu2+的特異性。
上述金屬離子的濃度均為10 μmol/L時(shí),對(duì)本方法檢測(cè)Cu2+(100 nmol/L)的影響如圖7所示,高濃度的其它金屬離子(10 μmol/L)與低濃度的Cu2+(100 nmol/L)相比,響應(yīng)顯著更低。因此,將Ag/Pt NCs模擬酶應(yīng)用于Cu2+比色檢測(cè)具有良好的特異性。
3.5樣品加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)
取實(shí)驗(yàn)室自來(lái)水、蠡湖湖水(無(wú)錫)及河水(校內(nèi)),分別經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾,采用上述比色方法檢測(cè)(平行3次),結(jié)果表明,上述樣品中Cu2+濃度分別為(29.6±1.1) nmol/L,(48.5±1.6) nmol/L和(76.4±3.7) nmol/L。同時(shí),采用石墨爐原子吸收光度法(GFAAS)檢測(cè)上述樣品(n=3),其中Cu2+的濃度分別為(30.6±0.5) nmol/L,(47.0±0.6) nmol/L和(78.5 ±2.2) nmol/L。本方法與GFAAS測(cè)試結(jié)果的偏差小于5%。
上述結(jié)果表明,本方法檢測(cè)Cu2+具有操作簡(jiǎn)單、靈敏度高、特異性好、成本低等優(yōu)點(diǎn),有望應(yīng)用于環(huán)境和食品等領(lǐng)域中的Cu2+的檢測(cè)。
References
1Wang S S, Wang X K, Zhang Z Y, Chen L X. Colloid Surf. A, 2015, 468: 333-338
2Zhang M, Ye B C. Analyst, 2011, 136(24): 5139-5142
3Valko M, Jomova K, Rhodes C J, Kuc〖KG-2ˇa K, Musílek K. Arch. Toxicol., 2016, 90(1): 1-37
4Amberger M A, Barth P, Frster O, Broekaert J A C. Microchim. Acta, 2011, 172(3): 261-267
5Qing Z, Mao Z, Qing T, He X, Zou Z, He D. Anal. Chem., 2014, 86(22): 11263-11268
6Djedjibegovic J, Larssen T, Skrbo A, Marjanovic〖KG-2ˇ A, Sober M. Food Chem., 2012, 131(2): 469-476
7Kopylovich M N, Mahmudov K T, Pombeiro A J L. J. Hazard. Mater., 2011, 186(23): 1154-1162
8Qiu S, Gao S, Zhu X, Lin Z, Qiu B, Chen G. Analyst, 2011, 136(8): 1580-1585
9Qiao Y, Zheng X. Analyst, 2015, 140(24): 8186-8193
10WANG JiaJia, LIAN Man, XIONG Jie, LI ZaiJun. Chinese J. Anal. Chem., 2016, 44(3): 367-376
王佳佳, 連 曼, 熊 杰, 李在均. 分析化學(xué), 2016, 44(3): 367-376
11Deng H H, Li G W, Liu A L, Chen W, Lin X H, Xia X H. Microchim. Acta, 2014, 181(9): 911-916
12Hua C, Zhang W H, De Almeida S R M, Ciampi S, Gloria D, Liu G. Analyst, 2012, 137(1): 82-86
13Sener G, Uzun L, Denizli A. Anal. Chem., 2014, 86(1): 514-520
14Lien C W, Chen Y C, Chang H T, Huang C C. Nanoscale, 2013, 5(17): 8227-8234
15Long Y J, Li Y F, Liu Y, Zheng J J, Tang J, Huang C Z. Chem. Commun., 2011, 47(43): 11939-11941
16Lien C W, Tseng Y T, Huang C C, Chang H T. Anal. Chem., 2014, 86(4): 2065-2072
17Ni P, Dai H, Wang Y, Sun Y, Shi Y, Hu J, Li Z. Biosens. Bioelectron., 2014, 60: 286-291
18Lin X Q, Deng H H, Wu G W, Peng H P, Liu A L, Lin X H. Analyst, 2015, 140(15): 5251-5256
19Gao Z, Xu M, Lu M, Chen G, Tang D. Biosens. Bioelectron., 2015, 70: 194-201
20Zheng C, Zheng A X, Liu B, Zhang X L, He Y, Li J, Yang H H, Chen G N. Chem. Commun., 2014, 50(86): 13103-13106
21Wu L L, Wang L Y, Xie Z J, Xue F, Peng C F. RSC Adv., 2016, 6(79): 75384-75389
22Wu L L, Wang L Y, Xie Z J, Pan N, Peng C F. Sens. Actuator B, 2016, 235: 110-116
23Bernardi F, Traverse A, Olivi L, Alves MCM, Morais J. J. Phys. Chem. C, 2011, 115(25): 12243-12249
24Fei S, Chen J, Yao S, Deng G, He D, Kuang Y. Anal. Biochem., 2005, 339(1): 29-35
25Pecci L, Montefoschi G, Musci G, Cavallini D. Amino Acids, 1997, 13(3): 355-367
26Tharmaraj V, Yang J. Analyst, 2014, 139(23): 6304-6309
27Liu R, Chen Z, Wang S, Qu C, Chen L, Wang Z. Talanta, 2013, 112: 37-42
28Yuan X, Chen Y. Analyst, 2012, 137(19): 4516-4523
29Mehta V N, Kumar M A, Kailasa S K. Indust. Engineer. Chem. Res., 2013, 52(12): 4414-4420
30Ma Y R, Niu H Y, Zhang X L, Cai Y Q. Chem. Commun., 2011, 47(47): 12643-12645
31Shen Q, Li W, Tang S, Hu Y, Nie Z, Huang Y, Yao S. Biosens. Bioelectron., 2013, 41: 663-668
AbstractA sensitive colorimetric method for the detection of copper ions (Cu2+) was developed based on the surface modification of silver/platinum nanoclusters (Ag/Pt NCs) and regulation of peroxidaselike activity. It was found that 3mercaptopropionic acid (MPA) could inhibit the catalytic ability of Ag/Pt NCs; however, it lost the inhibition toward catalytic ability of Ag/Pt NCs after oxidized by oxygen through the catalysis of Cu2+. On the basis of this, a colorimetric method was developed for the detection of Cu2+ through measuring the colorimetric signal variation of the TMBH2O2 reaction. This method exhibited high sensitivity and selectivity toward Cu2+ over a panel of other metal ions. The linear range was 10-100 nmol/L and the detection limit was 5.0 nmol/L (3σ). The above method was also applied to detect real water samples and spiked samples, and the results demonstrated that this method was simple with low cost.
KeywordsSilver/platinum nanoclusters; Colorimetric detection; 3Mercaptopropionic acid; Copper ions
(Received 21 September 2016; accepted 21 November 2016)
This work was supported by the National Natural Science Foundation of China (No.31371767) and the Key Projects in the National Science & Technology Pillar Program during the Twelfth Fiveyear Plan Period (No.2015BAD17B02).