• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      豬繁殖與呼吸綜合征(PRRS)的檢測(cè)技術(shù)

      2017-04-19 15:55:08陳曉輝薛梅朱俊平
      湖北畜牧獸醫(yī) 2016年12期

      陳曉輝+薛梅+朱俊平

      摘要:豬繁殖與呼吸綜合征(PRRS)是一種嚴(yán)重危害養(yǎng)豬業(yè)的傳染病,常與其他病原混合感染,臨床診斷非常困難,要確診需要進(jìn)行實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)。而及時(shí)診斷是防控PRRS的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。從抗體的檢測(cè)和病原的檢測(cè)兩個(gè)方面對(duì)PRRS的檢測(cè)技術(shù)進(jìn)行了簡(jiǎn)要綜述,旨在為診斷PRRS提供指導(dǎo)。

      關(guān)鍵詞:豬繁殖與呼吸綜合征;抗體檢測(cè);病原檢測(cè)

      中圖分類號(hào):S858.28 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼: 文章編號(hào):1007-273X(2016)12-0009-02

      豬繁殖與呼吸綜合征(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome, PRRS)是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome virus,PRRSV)引起的一種嚴(yán)重危害養(yǎng)豬業(yè)的傳染病。以妊娠母豬流產(chǎn)、死產(chǎn)、弱胎、木乃伊胎等繁殖障礙及各年齡階段豬的呼吸道癥狀為特征[1-3]。該病毒具有抗原變異性、嗜巨噬細(xì)胞性、持續(xù)感染性及抗體依賴增強(qiáng)性作用,臨床上常與其他病原混合感染使臨床表現(xiàn)形式復(fù)雜化[4-5]。要確診需要進(jìn)行實(shí)驗(yàn)室檢測(cè),實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法很多,每種方法在檢測(cè)的特異性、敏感性、成本等方面存在差異。因此,建立有效且適合基層使用的PRRS檢測(cè)方法是防控PRRS的重要環(huán)節(jié),本文就PRRS檢測(cè)方法進(jìn)行了綜述,供參考。

      1 抗體的檢測(cè)

      免疫熒光抗體(IFA)試驗(yàn)、免疫過氧化酶單層細(xì)胞試驗(yàn)(IPMA)、血清中和(SVN)試驗(yàn)及酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)等都可用于檢測(cè)PRRSV的特異性抗體,通過檢測(cè)抗體水平可以對(duì)豬個(gè)體或整個(gè)豬群的PRRSV感染狀況或疫苗免疫效果給予一定的評(píng)價(jià)。

      1.1 PRRSV抗體檢出時(shí)間及維持時(shí)間

      當(dāng)豬感染PRRSV 7~14 d后,機(jī)體首先產(chǎn)生IgG抗體,機(jī)體產(chǎn)生的抗體隨著時(shí)間的積累呈增加的趨勢(shì),當(dāng)抗體達(dá)到峰值后在體內(nèi)維持一段時(shí)間,然后抗體水平逐漸下降,不同檢測(cè)方法檢測(cè)出的抗體出現(xiàn)峰值時(shí)間、峰值維持時(shí)間以及抗體在體內(nèi)存留時(shí)間均不一致。在試驗(yàn)感染條件下,通過IgG-IFA、IPMA、ELISA、SVN方法可分別在感染后5~9、9~11、9~13、9~28 d內(nèi)檢測(cè)到抗體。PRRSV特異性IgM抗體在接種后5 d可以檢測(cè)到,并可持續(xù)21~28 d。不同的方法檢測(cè)出的抗體峰值時(shí)間各不相同:IFA 30~50 d、IPMA 35~50 d、ELISA 30~50 d、SVN 60~90 d,隨后抗體滴度逐漸下降。感染PRRSV后用各種方法檢測(cè)的抗體消失時(shí)間為: IFA 4~5個(gè)月、ELISA 4~10個(gè)月以上、IPMA 11~12個(gè)月、SVN12個(gè)月[6-8]。疫苗免疫后各種方法的檢測(cè)結(jié)果與上述時(shí)間段基本一致。

      1.2 酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)

      ELISA適于大規(guī)模檢測(cè),方便、易行,操作過程及結(jié)果判斷能夠標(biāo)準(zhǔn)化,且具有高度的特異性和敏感性,以間接ELISA和阻斷ELISA常見[6-8]。利用ELISA檢測(cè)血清中PRRSV抗體出現(xiàn)的時(shí)間與用IPMA和IFA檢測(cè)抗體出現(xiàn)時(shí)間基本相同,但是血清中PRRSV抗體持續(xù)時(shí)間明顯長(zhǎng)于IPMA和IFA所檢測(cè)出的抗體維持時(shí)間,檢出時(shí)間長(zhǎng)達(dá)1年左右。

      ELISA診斷抗原有2種,一種是從細(xì)胞培養(yǎng)物中純化的全病毒抗原,另一種是重組的PRRSV核衣殼蛋白。無論是用全病毒還是用基因表達(dá)產(chǎn)物作為診斷抗原建立的ELISA,均具有較強(qiáng)的背景反應(yīng)。IDEXX公司生產(chǎn)的PRRSV抗體ELISA檢測(cè)試劑盒在全球范圍內(nèi)推廣使用,曾被認(rèn)為是PRRSV抗體檢測(cè)的金標(biāo)準(zhǔn)。但不久通過對(duì)照試驗(yàn)對(duì)該試劑盒檢測(cè)效果進(jìn)行評(píng)價(jià),發(fā)現(xiàn)IDEXX試劑盒存在假陽性結(jié)果,PRRSV全病毒抗原間接ELISA與IDEXX HerdChek ELISA試劑盒相比,前者特異性僅為26.6%,敏感性也僅為48.8%。如果該方法應(yīng)用于實(shí)際生產(chǎn)中,將會(huì)對(duì)PRRS的凈化以及后備種豬的篩選帶來嚴(yán)重后果。因此,在ELISA試劑盒研制上還需要廣大從事ELISA試劑盒研制的人員做出更大的努力來彌補(bǔ)現(xiàn)有試劑盒的不足之處,進(jìn)一步完善中國(guó)ELISA診斷試劑盒標(biāo)準(zhǔn)[8-10]。

      1.3 免疫過氧化酶單層細(xì)胞試驗(yàn)(IPMA)

      IPMA是廣泛用于該病診斷的一種方法,其敏感性和特異性都較好,可用于PRRSV的血清抗體檢測(cè)、病毒鑒定及抗原檢測(cè)。自1991年建立至今,仍是歐洲和美洲國(guó)家廣泛使用的血清學(xué)診斷方法。利用IPMA和商品化的PRRSV ELISA試劑盒檢測(cè)抗體,并進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)利用同源性抗原檢測(cè)抗體,IPMA比ELISA試劑盒檢測(cè)出抗體的時(shí)間提前2~3 d,特別是對(duì)母源抗體的靈敏度更高,然而ELISA卻能在不損失特異性的基礎(chǔ)上提高敏感性,所以相比之下,ELISA更適合用來診斷PRRSV。由于IPMA結(jié)果判定具有一定主觀性,不能自動(dòng)顯示,同時(shí)費(fèi)時(shí),檢測(cè)費(fèi)用高,不適合大規(guī)模檢測(cè),因此在實(shí)際生產(chǎn)中未得到廣泛應(yīng)用[9,10]。

      1.4 免疫熒光抗體(IFA)試驗(yàn)

      IFA法在美國(guó)被廣泛利用,該法需進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)、熒光鏡檢,結(jié)果借助肉眼來觀察,因?qū)嶒?yàn)室操作方法的不同、技術(shù)人員的不同和非特異性熒光等原因產(chǎn)生較大的主觀性。對(duì)IFA和ELISA方法進(jìn)行比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn)二者具有很高的符合率,不符合的原因可能是血清抗體的水平太低。ELISA可以檢測(cè)抗體滴度比較低的血清,而用IFA則檢測(cè)不到,由此造成假陰性結(jié)果。

      利用間接熒光抗體試驗(yàn)對(duì)試驗(yàn)感染PRRSV的豬的抗體進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明,在感染病毒后9~14 d,首先檢測(cè)出IgG抗體,高滴度的IgG抗體可以維持7周;感染病毒后35 d再次接種PRRSV,體內(nèi)IgG抗體滴度不發(fā)生變化,病毒血癥仍可檢測(cè)到。在接種5~28 d可以檢測(cè)到IgM抗體,35 d后再次接種病毒其抗體在短時(shí)間內(nèi)增加。利用熒光抗體試驗(yàn)在不同時(shí)間對(duì)IgM抗體水平進(jìn)行檢測(cè),在短時(shí)間內(nèi)有助于鑒別是否感染PRRSV。因此,在實(shí)際生產(chǎn)過程中要盡可能避免假陰性結(jié)果的出現(xiàn),在條件允許情況下結(jié)合其他檢測(cè)結(jié)果得出結(jié)論[9-11]。

      血清中和試驗(yàn)與IFA和ELISA相比,其敏感性低,原因可能是由于PRRSV特異的中和抗體出現(xiàn)比較晚,要在感染后30~60 d才能檢測(cè)到。對(duì)于急性感染的敏感性更差,與其他檢測(cè)方法的結(jié)果符合率低,達(dá)不到早期診斷的目的。因此,該方法不適合應(yīng)用于實(shí)際生產(chǎn)中,僅限于實(shí)驗(yàn)室診斷[10-12]。

      血清學(xué)呈陽性的結(jié)果并不能確定PRRSV是否能引起臨床發(fā)病,也不能區(qū)別是感染野毒還是疫苗毒,也不能說明動(dòng)物機(jī)體是否為病毒的攜帶者,僅能說明曾經(jīng)感染過PRRSV。對(duì)于血清學(xué)陰性可能是未感染PRRSV或感染但還未產(chǎn)生抗體,或以前感染過但現(xiàn)在血清轉(zhuǎn)陰,或是檢測(cè)方法的敏感性不夠或操作誤差。因此,現(xiàn)有的血清學(xué)方法不適合監(jiān)測(cè)整個(gè)豬群的群體情況,其僅能對(duì)單個(gè)個(gè)體作出初步診斷,要作出更準(zhǔn)確的診斷,還應(yīng)與免疫狀況或病毒分離或抗原的檢測(cè)相結(jié)合,才能達(dá)到對(duì)PRRS診斷、疫情凈化的目的[10-12]。

      2 病原的檢測(cè)

      病原的檢測(cè)主要包括免疫學(xué)檢測(cè)以及生物學(xué)檢測(cè),其中免疫學(xué)檢測(cè)包括免疫熒光染色法、免疫過氧化物酶染色法以及免疫膠體金技術(shù)等,而生物學(xué)檢測(cè)主要進(jìn)行病毒的分離;核酸的檢測(cè)主要利用分子生物學(xué)技術(shù)對(duì)病毒特定的基因組進(jìn)行檢測(cè)。由于免疫學(xué)檢測(cè)存在較大的弊端,下面僅對(duì)生物學(xué)檢測(cè)以及核酸檢測(cè)技術(shù)作一簡(jiǎn)單的概述。

      2.1 生物學(xué)檢測(cè)—病毒的分離

      用于PRRSV分離的細(xì)胞有原代豬肺巨噬細(xì)胞(PAM)、傳代細(xì)胞系CL2621和Marc145。其中PAM最常用,因?yàn)閭鞔?xì)胞系對(duì)該病毒易感性差,故不能完全代替PAM,而且由于不是每批巨噬細(xì)胞對(duì)病毒的易感性都相同,所以在用PAM進(jìn)行分離病毒前,還要進(jìn)行批次試驗(yàn),只有當(dāng)特定滴度的標(biāo)準(zhǔn)病毒在新的巨噬細(xì)胞中生長(zhǎng)良好時(shí),方可使用,該方法是診斷PRRSV感染的經(jīng)典方法,多用于急性病例的確診和新疫區(qū)的確定,但是也存在不足之處,如費(fèi)用較高、勞動(dòng)強(qiáng)度較大,耗時(shí)多,且有可能污染其他病毒等,因此該方法不利于大規(guī)模豬場(chǎng)疫病的檢測(cè)[10-12]。

      2.2 核酸檢測(cè)(反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng))

      核酸檢測(cè)(反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng))反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Reverse transcription polymer-ase chain reaction, RT-PCR)廣泛應(yīng)用于PRRSV的鑒定及臨床診斷,并在方法上不斷改進(jìn)和提高,擴(kuò)增的目的片段也主要是針對(duì)PRRSV的核衣殼蛋白基因,主要的原因是PRRSV基因組中ORF7編碼的核衣殼蛋白(N蛋白)中包括所有毒株都保守的共同表位和區(qū)別于歐洲型的特異性決定簇。RT-PCR比病毒分離更省時(shí)、省力,敏感性和特異性更強(qiáng)。用于RT-PCR檢測(cè)的樣品包括血清、精液及肺臟、脾臟等組織[13-15]。

      利用RT-PCR對(duì)試驗(yàn)感染豬進(jìn)行抗原和抗體檢測(cè),并與病毒分離和ELISA抗體檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行了比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn)該方法可以在感染24 h后檢測(cè)到病毒的核酸,但不能分離到病毒,而抗體只能在感染后第9d檢測(cè)到,由此可見RT-PCR的靈敏度明顯高于病毒分離和ELISA,有利于早期診斷[13-15]。

      PCR方法可以區(qū)分歐洲株與美洲株,但其臨床應(yīng)用意義并不大。國(guó)外應(yīng)用PCR診斷PRRSV已取得很大進(jìn)展,許多學(xué)者根據(jù)PRRSV不同的ORF序列,設(shè)計(jì)了不同引物,建立了檢測(cè)PRRSV核酸的RT-PCR方法。隨著RT-PCR技術(shù)的發(fā)展,也陸續(xù)出現(xiàn)了熒光標(biāo)記的RT-PCR方法,如采用TaqManTMRT-PCR或分子信標(biāo)RT-PCR方法檢測(cè)臨床樣品,這些方法比常規(guī)RT-PCR方法的特異性更強(qiáng),敏感性更高,但需要更高的成本。應(yīng)特別注意的是,因其敏感性特別高,易引起假陽性,因此在檢測(cè)時(shí)應(yīng)盡可能避免RNA的污染。RT-PCR方法在PRRS的診斷及監(jiān)測(cè)中發(fā)揮很大作用,在ELISA檢測(cè)為陽性的基礎(chǔ)上,再用高敏感性的RT-PCR進(jìn)行確診,這不僅可以降低費(fèi)用,而且可拓寬RT-PCR的應(yīng)用前景,如后備種豬的篩選,持續(xù)性感染豬的診斷及豬群的凈化等[13-15]。

      參考文獻(xiàn):

      [1] 陳溥言.家畜傳染病學(xué)[M].第五版.北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,2006.

      [2] WENSVOORT G,TERPST RA C,POL J M. Mystery swine disease in the Netherlands: the isolation of Lelystad virus[J].Vet Q,1991,13(3):121-130.

      [3] 蔡寶樣.豬繁殖與呼吸綜合征病毒最新研究進(jìn)展[J].中國(guó)畜禽傳染病,1998(8):18-20.

      [4] 吳加強(qiáng),姜 平.豬繁殖與呼吸綜合征[J].畜牧與獸醫(yī),1999 (S1):42-46.

      [5] 楊漢春.我國(guó)豬繁殖與呼吸綜合征的流行現(xiàn)狀與控制對(duì)策動(dòng)態(tài)[J].當(dāng)代畜禽養(yǎng)殖業(yè),2003(4):43-46.

      [6] 孟令偉,孫穎杰.豬藍(lán)耳病的幾種血清學(xué)診斷方法[J].中國(guó)動(dòng)物檢疫,1995(2):14-15.

      [7] 楊小燕,李曉華,沈紹新.豬繁殖與呼吸綜合征的血清學(xué)調(diào)查[J].中國(guó)獸醫(yī)雜志,2001(4):17-18.

      [8] 溫振標(biāo),湯瑞珍.豬繁殖與呼吸綜合征血清學(xué)調(diào)查報(bào)告[J].廣西畜牧獸醫(yī),1999,15(5):28-29.

      [9] 陸文俊,黃 夏,趙國(guó)明,等.廣西豬繁殖與呼吸綜合征血清學(xué)調(diào)查[J].中國(guó)動(dòng)物檢疫,2002(3):29-30.

      [10] (美)B.E.斯特勞,(加)S.D.阿萊爾,(美)W.L.蒙加林,等.豬病學(xué)[M].第八版.趙明德,張仲秋,沈建忠,譯.北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社,2003.

      [11] KRISTENSEN C S,BOTNER A,TAKAI H,et al. Experilnental airborne transmission of PRRS virus[J].Vet Microbiol,2004,99:197-202.

      [12] 陳繼明.重大動(dòng)物疫病監(jiān)測(cè)指南[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社,2008.

      [13] 童光志,周艷君,郝曉芳,等.高致病性豬繁殖與呼吸綜合征病毒的分離鑒定及其分子流行病學(xué)分析[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2007,29(5):323-327.

      [14] 涂宜強(qiáng),楊增歧,徐 輝.RT-PCR檢測(cè)豬繁殖障礙與呼吸道綜合征病毒方法的建立與應(yīng)用[J].中國(guó)畜牧獸醫(yī),2005,32(6):52-53.

      [15] 婁高明,杜偉賢,謝明權(quán),等.豬繁殖與呼吸綜合征RT-PCR診斷方法的建立[J].中國(guó)獸醫(yī)學(xué)報(bào),2000,20(2):141-144.

      渝中区| 湘阴县| 景东| 礼泉县| 武邑县| 伊川县| 岳西县| 安康市| 乾安县| 凉城县| 绵阳市| 铅山县| 民乐县| 琼海市| 靖江市| 含山县| 恩平市| 盐津县| 巫溪县| 确山县| 开远市| 成武县| 油尖旺区| 秦皇岛市| 尼勒克县| 固原市| 嘉兴市| 吕梁市| 隆尧县| 宣城市| 建水县| 寿阳县| 怀安县| 永昌县| 湘潭市| 济南市| 呈贡县| 桂平市| 安福县| 西畴县| 朔州市|