王 姣,魏好程,何傳波,馬 英,熊何健,*
(1.集美大學食品與生物工程學院,福建 廈門 361021;2.集美大學水產(chǎn)學院,福建 廈門 361021)
鮑內(nèi)臟多糖的抗氧化活性
王 姣1,魏好程1,何傳波1,馬 英2,熊何健1,*
(1.集美大學食品與生物工程學院,福建 廈門 361021;2.集美大學水產(chǎn)學院,福建 廈門 361021)
為研究鮑內(nèi)臟多糖的抗氧化活性,采用體外抗氧化實驗,評價不同化學組成的鮑內(nèi)臟多糖對1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基和?OH的清除作用,并以人體肝細胞LO2建立過氧化氫損傷模型,探討鮑內(nèi)臟多糖在細胞水平的抗氧化能力。結(jié)果表明:鮑內(nèi)臟多糖CAVP、AVP1、AVP2具有良好的清除體外自由基能力。多糖CAVP、AVP1、AVP2清除DPPH自由基的半抑制率濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)分別為1.46、1.74、1.55 mg/mL。其清除?OH的IC50分別為7.14、15.27、8.11 mg/mL。另外,細胞模型法評價結(jié)果顯示,鮑內(nèi)臟多糖CAVP、AVP1、AVP2在質(zhì)量濃度0.5~4.0 mg/mL條件下對肝細胞LO2的H2O2氧化損傷有保護作用,3 種多糖樣品均能顯著提高LO2細胞存活率;CAVP(4.0 mg/mL)、AVP1(0.5 mg/mL)和AVP2(0.5 mg/mL)能極顯著降低氧化損傷時乳酸脫氫酶的釋放;CAVP能極顯著提高LO2細胞內(nèi)谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)(4.0 mg/mL)、過氧化氫酶(catalase,CAT)(0.5 mg/mL)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)(0.5 mg/mL)活力;AVP1質(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時,能極顯著提高LO2細胞內(nèi)GSH-Px、SOD活力,顯著提高CAT活力;AVP2分別在質(zhì)量濃度0.5、4.0 mg/mL 時極顯著提高LO2細胞內(nèi)CAT活力;在質(zhì)量濃度為4.0 mg/mL時,3 種多糖樣品對降低細胞氧化損傷產(chǎn)生的丙二醛(malondialdehyde,MDA)均有顯著作用。因此,鮑內(nèi)臟多糖是一類潛在的抗氧化物,可用于此類功能食品的開發(fā)。
鮑內(nèi)臟;多糖;抗氧化;LO2細胞
引文格式:
王姣, 魏好程, 何傳波, 等. 鮑內(nèi)臟多糖的抗氧化活性[J]. 食品科學, 2017, 38(15): 115-121. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201715019. http://www.spkx.net.cn
WANG Jiao, WEI Haocheng, HE Chuanbo, et al. Antioxidant activity of polysaccharides from abalone viscera[J]. Food Science, 2017, 38(15): 115-121. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201715019. http://www.spkx.net.cn
氧化損傷不僅與多種疾病的發(fā)生有著密切的關(guān)系[1-3],還可誘導(dǎo)機體細胞的壞死與凋亡,是人類衰老的重要原因之一。所以,抗氧化研究對于各種氧化應(yīng)激相關(guān)疾病的預(yù)防與治療以及對人類的抗衰老[4]有著重要的指導(dǎo)和現(xiàn)實意義。
近年來,多糖的生物活性和化學多樣性受到學者關(guān)注。許多從食物中分離得到的多糖類化合物具有清除自由基[5-7]、抑制脂質(zhì)過氧化,抑制亞油酸氧化等抗氧化作用[8-9],在生物體內(nèi)其抗氧化機理大多與直接清除活性氧和提高抗氧化酶的活性有關(guān)[10]。有研究發(fā)現(xiàn),黃芪多糖對H2O2誘導(dǎo)的MRC-5人胚肺成纖維細胞的氧化損傷具有保護作用[11]。Xue Changhu等[12]從海帶中提取出的一種低相對分子質(zhì)量的巖藻聚糖能對抗高脂血癥大鼠體內(nèi)的氧化反應(yīng)。不少研究表明,多糖的抗氧化性可能是抗腫瘤、抗衰老等其他活性的作用機制之一。
鮑屬海洋軟體動物,其體內(nèi)富含蛋白質(zhì)、肝糖、多種氨基酸、維生素、礦物元素[13]及其他生理活性物質(zhì)[14],不僅具有很高的食用價值,還具有很好的保健功效[15],因此,鮑的相關(guān)產(chǎn)品深受消費者喜愛,且鮑的養(yǎng)殖與加工產(chǎn)業(yè)也在逐年擴大。然而,在鮑加工中,為避免外觀和口感受到影響,營養(yǎng)成分豐富的鮑內(nèi)臟常被剝?nèi)?,造成了資源的浪費。鮑內(nèi)臟多糖是通過蛋白酶酶解和超濾技術(shù)從廢棄的、約占鮑質(zhì)量15%~25%的內(nèi)臟[16]中分離提取出來的一類大分子活性物質(zhì),該多糖類化合物結(jié)構(gòu)復(fù)雜但具有多種功能特性。目前已有多個研究表明,鮑內(nèi)臟中多糖類化合物具有清除體外自由基的抗氧化作用[17-19],而其在細胞水平上的抗氧化作用鮮有報道。因此,本實驗同時研究鮑內(nèi)臟多糖在體外和細胞水平的抗氧化作用,建立LO2細胞的H2O2損傷模型,選取1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除率、?OH清除率、乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)、過氧化氫酶(catalase,CAT)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活性和丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量指標,充分探究和驗證不同化學組成的鮑內(nèi)臟多糖的抗氧化活性差異,為開發(fā)抗氧化功能產(chǎn)品提供理論依據(jù)。
1.1 材料與試劑
鮑內(nèi)臟粗多糖(a b a l o n e v i s c e r a l c r u d e polysaccharide,CAVP)由集美大學食品與生物工程學院功能性食品研究實驗室自制。
DPPH、噻唑藍(3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide,MTT) 美國Sigma公司;·OH試劑盒、超氧陰離子自由基試劑盒南京建成生物工程研究所;DMEM高糖基礎(chǔ)培養(yǎng)基、雙抗(青霉素/鏈霉素)、0.25%胰酶 美國Hyclone公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2 儀器與設(shè)備
UV-8000紫外分光光度計 上海元析儀器有限公司;EVOS倒置顯微鏡 美國AMG公司;DW-FL253低溫冰箱中科美菱公司;M200PRO酶標儀 瑞士Tecan公司;Series Ⅱ Water CO2細胞培養(yǎng)箱 美國Thermo公司。
1.3 方法
1.3.1 鮑內(nèi)臟多糖的分離純化流程
CAVP樣品→DEAE Sepharose CL-6B陰離子交換層析→收集0.2、0.6 mol/L NaCl目標洗脫液→透析→旋蒸濃縮→Sephacryl S-300HR柱層析→收集目標洗脫液→冷凍干燥→得到兩個純化組分AVP1、AVP2
1.3.2 鮑內(nèi)臟多糖純化組分性質(zhì)測定
總糖含量的測定:參照GB/T15672—2009《食用菌中總糖含量的測定》,采用苯酚硫酸法[20];蛋白質(zhì)含量的測定:參照GB5009.5—2010《食品中蛋白質(zhì)的測定》,采用微量凱氏定氮法;硫酸根含量的測定:采用明膠比濁法[21];分子質(zhì)量的測定:采用凝膠滲透色譜-激光光散射分析聯(lián)用技術(shù)[22-25]。
1.3.3 鮑內(nèi)臟多糖清除DPPH自由基能力的測定
配制濃度為2×10-4mol/L的DPPH-乙醇溶液,分別取2 mL不同樣品溶液,加入2 mL DPPH溶液,混合均勻,室溫條件下放置30 min后,于517 nm波長處測定吸光度。樣品對DPPH自由基的清除率用公式(1)計算。
式中:A0(對照組)為2 mL樣品溶劑+2 mL DPPH溶液的吸光度;AX(測定組)為2 mL樣品溶液+ 2 mL DPPH溶液的吸光度;AX0(調(diào)零組)為2 mL樣品溶液+2 mL無水乙醇的吸光度。
1.3.4 鮑內(nèi)臟多糖清除?OH能力的測定
采用?OH試劑盒進行測定。按說明依次加樣,混勻后37 ℃條件下反應(yīng)1 min,立即加入2 mL顯色劑終止反應(yīng),混勻室溫條件下靜置20 min,蒸餾水調(diào)零,在550 nm波長處測定其吸光度,因樣品有顏色,需加顏色扣除管,?OH清除率按公式(2)計算。
式中:Ai為樣品對照管在550 nm波長處吸光度;Aj為樣品測定管在550 nm波長處吸光度;A0為調(diào)零組,樣品顏色扣除管在550 nm波長處吸光度。
1.3.5 細胞水平抗氧化實驗
1.3.5.1 鮑內(nèi)臟多糖對LO2細胞生長的影響
取對數(shù)生長期的LO2細胞,稀釋細胞個數(shù)為1×105個/mL,接種于96 孔板,每孔接種100 μL,置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。細胞培養(yǎng)結(jié)束后,棄上清液后分組:空白組不加細胞只加完全培養(yǎng)基培養(yǎng);實驗組為經(jīng)過24 h細胞培養(yǎng)后加入事先用完全培養(yǎng)基配好的不同質(zhì)量濃度的多糖樣品,每個樣品質(zhì)量濃度做6 組平行;正常對照組為用完全培養(yǎng)基代替多糖樣品,3 組繼續(xù)培養(yǎng)24 h,在培養(yǎng)期間用顯微鏡觀察細胞生長狀態(tài),培養(yǎng)結(jié)束后,棄上清液,加入20 μL MTT,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,加入二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)150 μL,振蕩5 min,酶標儀490 nm波長處測OD值。通過公式(3)計算細胞存活率。
1.3.5.2 LO2細胞氧化損傷模型的建立
取對數(shù)生長期細胞,以1×105個/mL細胞接種于96 孔板,每孔接種100 μL,置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。細胞培養(yǎng)結(jié)束棄去培養(yǎng)液,每孔加入100 μL濃度為0.0(空白組)、0.5、1.0、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0 mmol/L的H2O2溶液,H2O2溶液用磷酸鹽緩沖液配制,每個濃度做6 個平行,繼續(xù)培養(yǎng)2、4、6 h,用MTT法測定細胞存活情況,通過公式(3)計算細胞存活率。
1.3.5.3 鮑內(nèi)臟多糖對H2O2誘導(dǎo)LO2細胞損傷的保護作用
取對數(shù)生長期的LO2細胞,稀釋細胞個數(shù)為1×105個/mL,接種于96 孔板,每孔接種100 μL,置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。分組情況:設(shè)置正常對照組、H2O2損傷模型組、實驗組。24 h培養(yǎng)后,棄培養(yǎng)上清液,實驗組中加入多糖培養(yǎng)基,正常對照組和損傷模型組加入完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。將4 mmol/L H2O2溶液加入實驗組與損傷模型組中培養(yǎng)2 h建立氧化損傷。培養(yǎng)結(jié)束用MTT檢測細胞存活情況,通過公式(3)計算細胞存活率。
1.3.5.4 抗氧化指標的測定
選擇對數(shù)生長期的LO2細胞,稀釋細胞個數(shù)至1×106個/mL,接種于6 孔板中,每孔接種1 mL,進行培養(yǎng)。分組情況:設(shè)立正常對照組、H2O2模型組、CAVP組、AVP1組、AVP2組,VC陽性對照組。細胞經(jīng)過多糖和H2O2處理后,收集細胞和培養(yǎng)液進行各指標(蛋白質(zhì)、LDH、GSH-Px、CAT、SOD、MDA水平)的測定。其中LDH活力、MDA含量直接用上清培養(yǎng)液進行測定,其余指標選用細胞測定。細胞的GSH-Px、SOD、CAT活力、MDA含量各指標的計算以細胞蛋白含量為基礎(chǔ),蛋白質(zhì)測定以2,2-聯(lián)喹啉-4,4-二甲酸二鈉(bicinchoninic acid,BCA)法定量。所有上述測定方法均以南京建成生物研究所試劑盒檢測,操作嚴格按照說明書進行。
1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計
2.1 鮑內(nèi)臟多糖純化組分性質(zhì)分析
CAVP通過DEAE Sepharose CL-6B陰離子交換層析和Sephacryl S-300HR葡聚糖凝膠柱層析純化后得到兩種多糖組分AVP1、AVP2。通過對兩種多糖的性質(zhì)進行測定,結(jié)果顯示AVP1的總糖含量和硫酸根含量高于AVP2;兩種多糖均含有少量蛋白質(zhì)。AVP1的分子質(zhì)量小于AVP2(表1)。
表1 鮑內(nèi)臟多糖的性質(zhì)Table 1 Chemical properties of abalone visceral polysaccharides
2.2 鮑內(nèi)臟多糖的DPPH自由基清除能力
多糖能夠提供質(zhì)子給DPPH自由基生成穩(wěn)定的化合物,從而具有DPPH自由基的清除能力,表現(xiàn)為在517 nm波長處的吸收減弱,其褪色程度與自由基清除劑的活性相關(guān)[26]。鮑內(nèi)臟多糖清除DPPH自由基的結(jié)果如圖1所示,3 種多糖樣品對DPPH自由基的清除能力較為接近,當樣品質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時開始表現(xiàn)出具有DPPH自由基的清除活性,且其清除活性隨樣品質(zhì)量濃度的增加而增加,當CAVP、AVP2質(zhì)量濃度為4 mg/mL時,清除率達到80%左右后增長緩慢。比較3 種樣品對DPPH自由基的清除活性發(fā)現(xiàn),CAVP的DPPH自由基的清除率高于AVP1和AVP2,而AVP2又高于AVP1。
圖1 鮑內(nèi)臟多糖對DPPH自由基的清除作用Fig. 1 DPPH radical scavenging capacity of abalone visceral polysaccharides
鮑內(nèi)臟多糖對DPPH自由基的清除作用回歸方程和半抑制率濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)值如表2所示,在相同的反應(yīng)體系中,使DPPH自由基的清除率達到50%(IC50),3 種鮑內(nèi)臟多糖樣品需要1.5 mg/mL左右。
表2 鮑內(nèi)臟多糖清除DPPH自由基的回歸方程和IC50Table 2 Regression equations and IC50for DPPH radical scavenging activity of abalone visceral polysaccharides
2.3 鮑內(nèi)臟多糖的?OH清除能力
?OH是國際學者們公認的毒性最強的活性氧自由基,是生物有機體過氧化損傷的主要因素。因此分析樣品對?OH的清除作用對抗氧化的研究起著至關(guān)重要的作用。實驗測得鮑內(nèi)臟多糖清除?OH的結(jié)果如圖2所示,鮑內(nèi)臟多糖均具有較好的?OH清除活性。CAVP對?OH的清除能力隨質(zhì)量濃度的增加近乎呈近線性增加,最終清除率可達約80%。而兩種純化鮑內(nèi)臟多糖AVP1和AVP2的?OH清除率均只能達到60%左右,之后增長緩慢呈近持平狀態(tài),但是AVP2在低質(zhì)量濃度0~5 mg/mL范圍內(nèi)對?OH的清除率即可達到60%,表明在低質(zhì)量濃度條件下AVP2與CAVP、AVP1對比抗氧化性能較強。
圖2 鮑內(nèi)臟多糖對?OH的清除作用Fig. 2 Hydroxyl radical scavenging capacity of abalone visceral polysaccharides
鮑內(nèi)臟多糖對?OH的清除作用回歸方程和IC50如表3所示,AVP1的IC50為15.27 mg/mL,CAVP和AVP2僅需要約AVP1的一半的劑量,因此以IC50值來分析樣品對?OH的清除能力,CAVP和AVP2要好于AVP1。
表3 鮑內(nèi)臟多糖清除·OH的回歸方程和IC50Table 3 Regression equations and IC50for hydroxyl radical scavenging capacity of abalone visceral polysaccharides
2.4 鮑內(nèi)臟多糖對H2O2引起LO2細胞損傷的保護作用
2.4.1 鮑內(nèi)臟多糖對LO2細胞生長的影響
圖3 不同質(zhì)量濃度的鮑內(nèi)臟多糖對LO2細胞生長的影響Fig. 3 Effects of different concentrations of abalone visceral polysaccharides on LO2 cells growth
由圖3可知,在多糖質(zhì)量濃度為4、2、1、0.5、0.25 mg/mL時,LO2細胞的存活率均在90%以上,細胞增殖率均在20%以下,多糖對細胞生長無顯著增殖或衰亡作用,因此確定以此多糖質(zhì)量濃度范圍進行進一步實驗具有一定的可行性。
2.4.2 LO2細胞氧化損傷模型的建立
篩選H2O2劑量與作用時間的條件是與空白對照組比較達到細胞的半致死率。H2O2對LO2細胞的損傷結(jié)果如圖4所示。隨著H2O2濃度的增加和H2O2作用時間的延長,細胞存活率明顯下降。在H2O2濃度為4 mmol/L,作用時間為2 h時,細胞存活率下降至50%,已達到半數(shù)致死率,因此選擇H2O2濃度為4 mmol/L、作用時間2 h,作為LO2細胞氧化損傷模型條件。
圖4 不同濃度H2O2對LO2細胞相對存活率的影響Fig. 4 Effects of different concentrations of H2O2 on the relative survival rate of LO2 cells
2.4.3 鮑內(nèi)臟多糖對H2O2損傷LO2細胞的保護作用
圖5 鮑內(nèi)臟多糖對LO2細胞氧化損傷的保護作用Fig. 5 Protective effect of abalone visceral polysaccharides against oxidative damage in LO2 cells
鮑內(nèi)臟多糖對LO2細胞氧化損傷的保護作用結(jié)果如圖5所示,與H2O2損傷模型組相比,CAVP在質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL時細胞存活率增長至78%,之后隨質(zhì)量濃度的增加細胞存活率相對持平(圖5a);AVP1和AVP2在質(zhì)量濃度為0.25 mg/mL時細胞存活率開始較損傷模型組有所增長,且隨著質(zhì)量濃度的升高細胞存活率增加(圖5b、c)。統(tǒng)計分析表明,CAVP、AVP1和AVP2均在加樣量0.5 mg/mL時較模型組開始差異顯著性(P<0.05,P<0.01),當質(zhì)量濃度為4 mg/mL時,保護細胞存活率較所選其他質(zhì)量濃度相比最高,且與損傷模型組相比差異極顯著(P<0.05),選擇加樣質(zhì)量濃度0.5 mg/mL和 4 mg/mL同時進行做后續(xù)指標的測定,比較各樣品間抗氧化指標的差異。
2.4.4 鮑內(nèi)臟多糖對細胞上清中LDH活力的影響
正常細胞經(jīng)由H2O2處理后,細胞膜被破壞從而導(dǎo)致細胞內(nèi)的LDH釋放。因此,上清液LDH活力的高低可反映出細胞的損傷程度。從圖6可以看出,LO2細胞經(jīng)H2O2損傷后細胞培養(yǎng)液中LDH活力顯著升高,而經(jīng)VC和鮑內(nèi)臟多糖保護的LO2細胞培養(yǎng)液中LDH的含量明顯少于損傷模型組。其中質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL的VC對細胞損傷的抑制作用最強,而3 種樣品組間差異不明顯,表明實驗組細胞損傷程度相對較低,鮑內(nèi)臟多糖具有抑制細胞損傷的能力。
圖6 鮑內(nèi)臟多糖對LDH活力的影響Fig. 6 Effects of abalone visceral polysaccharides on LDH activity
2.4.5 鮑內(nèi)臟多糖對細胞內(nèi)GSH-Px、CAT、SOD活力的影響
GSH-Px、CAT、SOD是機體內(nèi)抗氧化酶系統(tǒng)的重要組成部分,對催化H2O2分解、維持機體的氧化平衡起著至關(guān)重要的作用,因此,3 種抗氧化酶活力的高低可同時反映出組織清除自由基的能力[27]。
圖7鮑內(nèi)臟多糖對GSH-Px活力的影響Fig. 7 Effect of abalone visceral polysaccharides on GSH-Px activity
圖7 結(jié)果顯示,經(jīng)H2O2損傷的LO2細胞中GSH-Px活性較對照組極顯著降低(P<0.01),VC陽性對照組在兩個質(zhì)量濃度條件下較模型組均具有極顯著提高GSH-Px活力的作用(P<0.01),而CAVP、AVP1在質(zhì)量濃度達到4 mg/mL條件下才能極顯著提高受損細胞內(nèi)GSH-Px的活力(P<0.01)。AVP2對提高GSH-Px活力作用效果不顯著(P>0.05)。
圖8 鮑內(nèi)臟多糖對CAT活力的影響Fig. 8 Effect of abalone visceral polysaccharides on CAT activity
圖8結(jié)果顯示,經(jīng)H2O2損傷的LO2細胞中CAT活性較正常對照組極顯著降低(P<0.01),CAVP、AVP2在質(zhì)量濃度0.5 mg/mL條件下極顯著提高受損細胞內(nèi)CAT活性(P<0.01),AVP1對CAT活力的提高作用較弱,在質(zhì)量濃度為4 mg/mL條件下受損細胞內(nèi)的CAT活性才顯著升高(P<0.05),而VC陽性對照組對提高提高細胞內(nèi)CAT活力作用均優(yōu)于鮑內(nèi)臟多糖樣品。
圖9鮑內(nèi)臟多糖對SOD活力的影響Fig. 9 Effect of abalone visceral polysaccharides on SOD activity
圖9 結(jié)果顯示,經(jīng)H2O2損傷的LO2細胞中SOD活性較正常對照組極顯著降低(P<0.01),CAVP對提高受損細胞內(nèi)SOD活性作用較強,其次為VC陽性對照組,經(jīng)它們作用后的細胞中SOD活性與模型組相比均呈極顯著增加(P<0.01),樣品AVP1、AVP2也有相應(yīng)提高SOD活力的能力,表明鮑內(nèi)臟多糖能提高受損細胞中SOD活力,能防止其受損后快速氧化,具有一定的保護能力。
2.4.6 鮑內(nèi)臟多糖對MDA含量的影響
MDA是脂質(zhì)過氧化的生物標記物之一,幾十年來一直被國內(nèi)外學者用來反映脂質(zhì)過氧化的水平,MDA含量的高低又間接反映了機體細胞受到自由基攻擊的嚴重程度。圖10結(jié)果顯示,經(jīng)H2O2損傷LO2細胞脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物MDA含量較正常對照組極顯著增加(P<0.01),鮑內(nèi)臟多糖對受損細胞過氧化具有保護性能,可降低受損細胞內(nèi)MDA的產(chǎn)生,在質(zhì)量濃度為4 mg/mL時,樣品CAVP、AVP1和AVP2對降低脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物MDA的生成具有顯著作用(P<0.05,P<0.01),VC對降低脂質(zhì)過氧化作用較強,其MDA的含量幾乎接近正常對照組。
圖10 鮑內(nèi)臟多糖對MDA含量的影響Fig. 10 Effect of abalone visceral polysaccharides on MDA content
抗氧化在細胞水平發(fā)揮作用的機制有很多[28],其中重要的一點是抗氧化物可以上調(diào)抗氧化酶活性,減少有毒過氧化產(chǎn)物的生成,提高細胞氧化防御體系,增強細胞抗氧化能力。Zhai Li等[29]研究發(fā)現(xiàn),川芎嗪衍生物可保護被H2O2損傷的靜脈內(nèi)皮細胞,進一步機理分析得出,這種衍生物可增加內(nèi)皮型NO和一氧化氮合酶活性,可以增加SOD和GSH-Px的活性,減少LDH和過氧化產(chǎn)物的釋放,這些指標的變化均減少了細胞凋亡,提高了細胞活力,從而證明川芎嗪衍生物是通過上調(diào)抗氧化酶的活性來發(fā)揮抗氧化與抗凋亡作用;Qiu Lihong等[30]研究抗氧化物黃芪皂苷的抗氧化作用,發(fā)現(xiàn)它可以促進活化內(nèi)皮型一氧化氮合酶,從而產(chǎn)生內(nèi)源性一氧化氮,且一定程度上提高了SOD水平和活力。本實驗細胞水平抗氧化研究結(jié)果表明,H2O2的損傷導(dǎo)致LO2細胞存活率降低,細胞上清液LDH漏出量增多且能夠顯著造成細胞內(nèi)GSH-Px、CAT、SOD的活性降低及細胞脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物的增加。但當提前加入VC和鮑內(nèi)臟多糖樣品對細胞進行保護后,可通過上調(diào)細胞內(nèi)GSH-Px、CAT、SOD抗氧化酶活性、減少MDA的生成量,發(fā)揮其抗氧化作用,并且3 種多糖在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi)可小幅促進肝細胞LO2的增殖。該結(jié)果與之前研究發(fā)現(xiàn)的通過上調(diào)抗氧化物酶活性、減少有毒過氧化產(chǎn)物的生成作用機制相一致,說明3 種鮑內(nèi)臟多糖在細胞水平上均有抗氧化活性,表現(xiàn)為CAVP在提高細胞存活率的作用中效果較純化多糖好,但是兩種純化多糖對于保護細胞膜避免LDH的釋放作用較優(yōu),而3 種樣品在對提高細胞內(nèi)抗氧化酶活力上均起不同作用,原因可能是具體指標的作用機制與多糖的性質(zhì)結(jié)構(gòu)對細胞作用的差異有關(guān)。
有研究證明,多糖的結(jié)構(gòu)和性質(zhì)是影響其生物活性的重要因素。多糖的活性與支鏈的性質(zhì)密切相關(guān),如支鏈的多少和取代基的位置等,本實驗鮑內(nèi)臟多糖支鏈的主要取代基為蛋白氨基和硫酸基團,經(jīng)測定CAVP和AVP2的蛋白含量較高,因此推斷其氨基取代基較多,糖-蛋白的復(fù)合疊加效應(yīng)可使其抗氧化活性提高。硫酸化多糖中C4位上的硫酸基變?yōu)镃6位硫酸基,其抗凝血活性完全喪失[31]。鮑內(nèi)臟多糖AVP1中硫酸根含量較多,但并不是活性較高的多糖,可能原因就與其硫酸根位置有一定關(guān)系。多糖分子質(zhì)量過高不利于多糖跨越多重細胞膜障礙進入生物體內(nèi)發(fā)揮活性作用,而分子質(zhì)量過低,會導(dǎo)致無法形成聚合的活性結(jié)構(gòu),Alban等[32]研究發(fā)現(xiàn)分子質(zhì)量與硫酸化多糖抗凝血活性之間具有一種啞鈴型的相關(guān)曲線關(guān)系。由此可見,不同多糖產(chǎn)生生物活性的分子質(zhì)量范圍不同,本實驗中粗多糖CAVP分子質(zhì)量范圍寬泛、混合物種類較多、溶解性好、使其生物活性較好。多糖的性質(zhì)和結(jié)構(gòu)對生物活性的影響存在著相關(guān)性,結(jié)構(gòu)決定理化性質(zhì),從而影響活性。鮑內(nèi)臟多糖的構(gòu)效關(guān)系有待進一步研究。
綜上所述,鮑內(nèi)臟多糖具有一定的抗氧化能力,可有效清除DPPH自由基和?OH,且在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi)提高細胞存活率、改善抗氧化酶的活力、減少過氧化產(chǎn)物生成、對經(jīng)H2O2損傷的LO2細胞具有保護作用。
[1] PYROR W A. Free radical biology: xenobiotics, cancer and aging[J]. Annals of the New York Academy of Sciences, 1982, 393: 1-22. DOI:10.1111/j.1749-6632.1982.tb31228.x.
[2] LOMNITSKI L, BERGMAN M, SCHON I, et al. The effect of dietary vitamin E and β-carotene on oxidantion processes in the rat testis[J]. Biochimica et Biophysica Acta, 1991, 1082(1): 101-107. DOI:10.1016/0005- 2760(91)90305-2.
[3] HARMAN D. Free radicals in aging[J]. Molecular and Cellular Biochemistry, 1988, 84(2): 155-161. DOI:10.1007/BF00421050.
[4] 張君慧, 張暉, 王興國, 等. 抗氧化活性肽的研究進展[J]. 中國糧油學報, 2008, 23(6): 227-233. DOI:10.3321/j.issn:1003-7969.2004.05.013.
[5] 許龍, 黃運安, 朱秋勁, 等. 天麻多糖的提取及其清除自由基作用研究[J]. 廣東農(nóng)業(yè)科學, 2015, 42(21): 117-123. DOI:10.3969/ j.issn.1004-874X.2015.21.022.
[6] 許小向, 洪艷平, 胡捷敏, 等. 松針多糖微波提取工藝及抗氧化性研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2015, 36(23): 222-227.
[7] 李霞, 張峰, 李永才, 等. 蘭州百合不同部位多糖含量及抗氧化活性的比較[J]. 食品工業(yè)科技, 2012, 33(24): 88-91.
[8] CHEN Y, ZHANG H, WANG Y X, et al. Acetylation and carboxymethylation of the polysaccharide from Ganoderma atrum and their antioxidant and immunomodulating activities[J]. Food Chemistry, 2014, 156: 279-288. DOI:10.1016/j.foodchem.2014.01.111.
[9] ZENG W C, ZHANG Z, JIA L R. Antioxidant activity and characterization of antioxidant polysaccharides from pine needle (Cedrus deodara)[J]. Carbohydrate Polymers, 2014, 108: 58-64. DOI:10.1016/j.carbpol.2014.03.022.
[10] 謝明勇, 聶少平. 天然產(chǎn)物活性多糖結(jié)構(gòu)與功能研究進展[J]. 中國食品學報, 2010, 10(2): 1-11. DOI:10.3969/j.issn.1009-7848.2010.02.001.
[11] 陳玨曉, 王桂芬, 李麗, 等. 黃芪多糖對過氧化氫誘導(dǎo)的MRC-5細胞氧化損傷的保護作用[J]. 細胞與分子免疫學雜志, 2015, 31(8): 1062-1066.
[12] XUE Changhu, FANG Yu, LIN Hong, et al. Chemical characters and antioxidative properties of sulfated polysaccharides from Laminaria japonica[J]. Journal of Applied Phycology, 2001, 13(1): 67-70. DOI:10.1023/A:1008103611522.
[13] 林國榮, 吳明霞, 張澤生, 等. 南日鮑營養(yǎng)成分分析及評價[J]. 營養(yǎng)學報, 2015(1): 99-101.
[14] 薛長湖, 林洪, 曾名勇, 等. 我國水產(chǎn)品加工的現(xiàn)狀和未來[J]. 科學養(yǎng)魚, 2002(2): 6-7.
[15] 周歧存, 麥康森. 皺紋盤鮑營養(yǎng)研究進展[J]. 飼料研究, 1999(2): 16-17.
[16] ZHOU D Y, ZHU B W, QIAO L, et al. In vitro, antioxidant activity of enzymatic hydrolysates prepared from abalone (Haliotis discus hannai, Ino) viscera[J]. Food and Bioproducts Processing, 2012, 90(2): 148-154. DOI:10.1016/j.fbp.2011.02.002.
[17] 蘇永昌, 劉淑集, 王茵, 等. 鮑魚內(nèi)臟多糖的提取及其抗氧化活性研究[J]. 吉林農(nóng)業(yè)(學術(shù)版), 2010(10): 170-171.
[18] 鄧維星, 李紹鋒, 白佳欣, 等. 鮑魚內(nèi)臟多糖的分離及體外抗氧化的研究[J]. 中國食品添加劑, 2016(9): 103-109. DOI:10.3969/ j.issn.1006-2513.2016.09.010.
[19] 葉燕軍, 陳俊, 翁武銀. 超濾膜分離鮑魚內(nèi)臟酶解物及其體外抗氧化活性的研究[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2015, 31(5): 130-136; 284.
[20] JIN Y, ZHANG L N, ZHANG M, et al. Antitumor activities of heteropolysaccharides of Poria cocos mycelia from different strains and culture media[J]. Carbohydrate Research, 2003, 338(14): 1517-1521. DOI:10.1016/S0008-6215(03)00198-8.
[21] DODGSON K S, PRICE R G. A note on the determination of the ester sulphate content of sulphated polysaccharides[J]. Biochemical Journal, 1962, 84(1): 106-110. DOI:10.1016/ biochemj00801-0113.
[22] 陳健英, 周秋璇, 胡麗華. 凝膠滲透色譜與多角度激光光散射聯(lián)用儀(GPC-MALLS)的使用和維護[J]. 分析儀器, 2015(2): 94-95. DOI:10.3969/j.issn.1001-232X.2015.02.27.
[23] 涂立英. 魔芋多糖及其降解產(chǎn)物生物活性的研究[D]. 廈門: 集美大學, 2015: 9-15.
[24] 陳同強, ADILBEKOV J, 王娟, 等. 凝膠滲透色譜-多角度激光散射聯(lián)用技術(shù)研究紅芪多糖中4 個組分分子特征[J]. 中國中藥雜志, 2012, 37(12): 64-65.
[25] 張俐娜, 薛奇. 高分子物理近代研究方法[M]. 武漢: 武漢大學出版社, 2003: 65-73.
[26] 韋獻雅, 殷麗琴, 鐘成, 等. DPPH法評價抗氧化活性研究進展[J].食品科學, 2014, 35(9): 317-322. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201409062.
[27] 陳瑞川, 李立, 蘇金華, 等. 抗氧化劑Isoverbascoside對MGC80-3細胞抗氧化酶活性和癌基因表達的影響[J]. 廈門大學學報(自然科學版), 1999, 38(6): 913-917. DOI:10.3321/ j.issn:0438-0479.1999.06.021.
[28] 郭玉文, 曹婧然, 何立杰. 細胞水平的抗氧化機制研究進展[J]. 醫(yī)學綜述, 2016(1): 13-16. DOI:10.3969/j.issn.1006-2084.2016.01.004.
[29] ZHAI Li, ZHANG Peng, SUN Renyuan, et al. Cytoprotective effects of CSTMP, a novel stilbene derivative, against H2O2-induced oxidative stress inhuman endothelial cell[J]. Pharmacological Reports, 2011, 63(6): 1469-1480. DOI:10.1016/S1734-1140(11)70711-3.
[30] QIU Lihong, XIE Xianji, ZHANG Biqi, et al. Astragaloside Ⅳimproves homocysteineinduced acute phase endothelial dysfunction via antioxidation[J]. Biological & Pharmaceutical Bulletin, 2010, 33(4): 641-646. DOI:10.1248/bpb.33.641.
[31] MULLOY B, MOURAO P A S, GRAY E. Structure/function studies of anticoagulant sulphated polysaccharides using NMR[J]. Journal of Biotechnology, 2000, 77(1): 123-135. DOI:10.1016/S0168-1656(99)00211-4.
[32] ALBAN S, FRANZ G, Characterization of the anticoagulant actions of a semisynthetic curdlan sulfate[J]. Thrombosis Research, 2000, 99(4): 377-388. DOI:10.1016/S0049-3848(00)00264-4.
Antioxidant Activity of Polysaccharides from Abalone Viscera
WANG Jiao1, WEI Haocheng1, HE Chuanbo1, MA Ying2, XIONG Hejian1,*
(1. College of Food Science and Biotechnology, Jimei University, Xiamen 361021, China; 2. College of Fisheries, Jimei University, Xiamen 361021, China)
The antioxidant capacity of polysaccharides extracted from abalone viscera was studied by measuring their 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) and hydroxyl radical scavenging capacity and their ability to protect human liver LO2 cells against H2O2-induced oxidative damage. The results demonstrated that the crude polysaccharide (CAVP) and two purified fractions (AVP1 and AVP2) all had apparent free radical scavenging capacity with a half maximal inhibitory concentrations (IC50) of DPPH radical scavenging activity of 1.46, 1.74 and 1.55 mg/mL, respectively, and an IC50of hydroxyl radical scavenging activity of 7.14, 15.27 and 8.11 mg/mL, respectively. In addition, all three polysaccharides in the concentration range from 0.5 to 4.0 mg/mL could protect LO2 cells against H2O2-induced oxidative damaged as indicated by signif i cantly increased survival rate and CAVP at 4.0 mg/mL, AVP1 at 0.5 mg/mL and AVP2 at 0.5 mg/mL decreased the activity of lactic dehydrogenase (LDH) in cell culture supernatant. CAVP significantly increased the intracellular activities of glutathione peroxidase (GSH-Px) at 4.0 mg/mL, catalase (CAT) at 0.5 mg/mL and superoxide dismutase (SOD) at 0.5 mg/mL. AVP1 at 4.0 mg/mL resulted in a signif i cant elevation in CAT activity and a highly signif i cant increase in GSH-Px and SOD activities. AVP2 at both 0.5 and 4.0 mg/mL could highly signif i cantly increase CAT activity. All three polysaccharides at 4.0 mg/mL could signif i cantly reduce the content of malondialdehyde (MDA) as a lipid peroxidation product. Therefore, abalone visceral polysaccharides could be used as potential antioxidant ingredients in functional foods.
abalone viscera; polysaccharide; antioxidant activity; LO2 cells
10.7506/spkx1002-6630-201715019
TS254.1
A
1002-6630(2017)15-0115-07
2016-06-28
海洋公益性行業(yè)科研專項(201405016);福建省科技重點項目(2016N0022);
廈門市科技計劃項目(3502Z20153014)
王姣(1989—),女,碩士研究生,研究方向為天然活性物質(zhì)。E-mail:w.j0131@163.com
*通信作者:熊何?。?968—),男,研究員,碩士,研究方向為天然活性物質(zhì)。E-mail:hjxiong@jmu.edu.cn