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      miR-133b介導(dǎo)食管鱗癌細(xì)胞的失巢凋亡

      2017-09-12 06:08:31朱金峰
      關(guān)鍵詞:胞外基質(zhì)鱗癌癌細(xì)胞

      曾 薇,朱金峰,單 莉*

      (新疆醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院1.肺內(nèi)科一病區(qū);2.胃腸外科,新疆 烏魯木齊 830011)

      ·實(shí)驗(yàn)研究·

      miR-133b介導(dǎo)食管鱗癌細(xì)胞的失巢凋亡

      曾 薇1,朱金峰2,單 莉1*

      (新疆醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院1.肺內(nèi)科一病區(qū);2.胃腸外科,新疆 烏魯木齊 830011)

      目的 研究探討miR-133b在人食管鱗癌細(xì)胞失巢凋亡中的作用。方法 人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450培養(yǎng),細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-133b mimic,細(xì)胞凋亡實(shí)驗(yàn)檢測上述細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-133b mimic對(duì)細(xì)胞失巢凋亡的影響。結(jié)果 人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450轉(zhuǎn)染miR-133b mimic,可顯著上調(diào)細(xì)胞中miR-133b在轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá),并促進(jìn)細(xì)胞失巢凋亡的發(fā)生。結(jié)論 人食管鱗癌細(xì)胞中過表達(dá)的miR-133b可以降低細(xì)胞失巢凋亡抵抗。

      食管鱗癌;miR-133b;失巢凋亡

      轉(zhuǎn)移是食管鱗癌等大多數(shù)實(shí)體腫瘤引發(fā)死亡的首要原因,防止腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移、擴(kuò)散是提高食管鱗癌患者生存率的一項(xiàng)重要手段目前研究發(fā)現(xiàn),失巢凋亡(Anoikis)與腫瘤的轉(zhuǎn)移和存活過程密切相關(guān)。失巢凋亡是一種細(xì)胞的程序性死亡,當(dāng)細(xì)胞與鄰近細(xì)胞或細(xì)胞外基質(zhì)發(fā)生接觸脫離時(shí),通過線粒體或細(xì)胞表面死亡受體途徑而誘導(dǎo)發(fā)生的[1]。目前研究發(fā)現(xiàn)miRNAs與腫瘤的失巢凋亡過程相關(guān)[2-3]。miRNAs是一類長度為18~25 nt的調(diào)控性的非編碼單鏈小分子RNA[4],通過抑制靶mRNA翻譯或誘導(dǎo)靶mRNA降解,參與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、侵襲、轉(zhuǎn)移過程。Kano等研究發(fā)現(xiàn),在食管鱗癌組織中miR-133b的表達(dá)下調(diào),提示miR-133b可能作為抑癌基因,參與食管鱗癌的發(fā)生、發(fā)展過程。Fu等研究報(bào)道,在食管鱗癌組織中呈低表達(dá)的miR-133b與腫瘤的淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、浸潤深度呈負(fù)相關(guān),并預(yù)測miR-133b可作為食管鱗癌治療的潛在靶點(diǎn)。但是,目前對(duì)于miR-133b在食管鱗癌失巢凋亡的作用尚不完全清楚,本文將對(duì)此進(jìn)行初步的研究、探討。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      ①細(xì)胞:人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450均購自ATCC細(xì)胞庫。②試劑:DMEM培養(yǎng)基、FBS、PBS、Trypsin Solution(美國Gibco公司),Lipofectamine 2000(美國Invitrogen公司),Annexin V-FITC/PI細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(美國ThermoFisher Scientific公司),miR-133bmimic、scramble(購自美國Life Technologie公司)。

      1.2 方法

      1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)

      人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450置于含100 U/ml青霉素和100 μg/ml鏈霉素的90%DMEM和10%胎牛血清中,在5% CO2、37℃、飽和濕度條件下培養(yǎng)。倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞生長情況,隔日更換培養(yǎng)液。當(dāng)細(xì)胞生長達(dá)90%匯合時(shí),用0.25%胰酶對(duì)細(xì)胞進(jìn)行消化傳代。

      1.2.2 細(xì)胞轉(zhuǎn)染

      轉(zhuǎn)染前一天,胰酶消化人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450并計(jì)數(shù),細(xì)胞鋪板,待細(xì)胞融合至50%~80%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染;使用250 μl無血清DMEM培養(yǎng)基稀釋4.0 μg質(zhì)粒;使用250 μl DMEM培養(yǎng)基稀釋10 μl Lipofectamine 2000試劑;混合稀釋的質(zhì)粒與稀釋的Lipofectamine 2000,在室溫下孵育20 min;加入混合物,搖動(dòng)培養(yǎng)板,輕輕混勻;在37℃,5%的CO2中培養(yǎng)4 h后更換培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,收集細(xì)胞進(jìn)行檢測。

      1.2.3 miR-133b的表達(dá)檢測

      查找目的基因序列,設(shè)計(jì)引物(見表1);Trizol法提取細(xì)胞的總RNA;甲醛變性的瓊脂糖凝膠電泳法檢測總RNA的完整性;紫外分光光度計(jì)測定RNA的含量(A260值)和純度(A260/A280比值);逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA;以cDNA為模板,進(jìn)行定量PCR;擴(kuò)增結(jié)束后分析溶解曲線;擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳分析特異性;每個(gè)樣本中miRNA含量是指它與同標(biāo)本中U6 snRNA的相對(duì)量,依據(jù)公式2-ΔCt計(jì)算得到。

      表1 qRT-PCR實(shí)驗(yàn)引物序列

      1.2.4 失巢凋亡的誘導(dǎo)

      PolyHEMA以終濃度為20 mg/ml溶于95%的乙醇,65℃水浴至溶解;按lml孔鋪好六孔板,晾干備用;將消化好的細(xì)胞置于鋪有PolyHEMA的六孔板中進(jìn)行懸浮培養(yǎng),以模擬細(xì)胞脫離鄰近細(xì)胞或細(xì)胞外基質(zhì)的狀態(tài),誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生失巢凋亡。

      1.2.5 細(xì)胞失巢凋亡檢測

      人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450轉(zhuǎn)染miR-133b mimic、scramble 24 h后繼續(xù)懸浮培養(yǎng)18 h;用不含EDTA的胰酶消化收集上述各組細(xì)胞;使用預(yù)冷1×PBS洗滌細(xì)胞;使用1×Binding Buffer懸浮細(xì)胞;加入Annexin V-FITC,避光室溫孵育15 min;上機(jī)前進(jìn)行PI標(biāo)記,流式細(xì)胞儀檢測各組細(xì)胞的凋亡情況。

      1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

      采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料以±s表示,各組間均數(shù)比較采用t檢驗(yàn)或方差分析,檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。以P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      2 結(jié) 果

      2.1 人食管鱗癌細(xì)胞中miR-133b的表達(dá)

      人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450分別轉(zhuǎn)染miR-133b mimic、scramble作為實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組。人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150,實(shí)驗(yàn)組中miR-133b mRNA相對(duì)表達(dá)量為1.77±0.07,對(duì)照組為0.86±0.06,兩組比較P<0.01,見表2。人食管鱗癌細(xì)胞KYSE450,實(shí)驗(yàn)組中miR-133b mRNA相對(duì)表達(dá)量為1.77±0.05,對(duì)照組為0.83±0.05,兩組比較P<0.01,見表2、表3。

      表2 miR-133b在人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150中的表達(dá)(±s)

      表2 miR-133b在人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150中的表達(dá)(±s)

      2-ΔΔCT t P實(shí)驗(yàn)組 1.77±0.07 16.71 <0.01對(duì)照組 0.86±0.06

      表3 miR-133b在人食管鱗癌細(xì)胞KYSE450中的表達(dá)(±s)

      表3 miR-133b在人食管鱗癌細(xì)胞KYSE450中的表達(dá)(±s)

      分組 2-ΔΔCTt P實(shí)驗(yàn)組 1.77±0.05 23.50 <0.01對(duì)照組 0.83±0.05

      2.2 miR-133b促進(jìn)食管鱗癌細(xì)胞失巢凋亡

      人食管鱗癌細(xì)胞KYSE150、KYSE450轉(zhuǎn)染miR-133b mimic、scramble 24 h后繼續(xù)懸浮培養(yǎng)18 h,采用Annexin/PI雙染法對(duì)細(xì)胞失巢凋亡進(jìn)行檢測。scramble/KYSE150懸浮組細(xì)胞失巢凋亡率為51.00±3.61,miR-133b mimic/KYSE150懸浮組細(xì)胞失巢凋亡率為61.67±1.53,兩組比較P<0.01; scramble/KYSE450懸浮組細(xì)胞失巢凋亡率為50.67±3.21,miR-133b mimic/KYSE450懸浮組細(xì)胞失巢凋亡率為63.33±6.03,兩組比較P<0.05;結(jié)果表明,上調(diào)miR-133b的表達(dá)能明顯促進(jìn)食管鱗癌細(xì)胞失巢凋亡的發(fā)生,見表4。

      表4 miR-133b促進(jìn)食管鱗癌細(xì)胞凋亡(±s)

      表4 miR-133b促進(jìn)食管鱗癌細(xì)胞凋亡(±s)

      注:a:scramble/KYSE150懸浮組vs miR-133b mimic/KYSE150懸浮組;b:scramble/KYSE450懸浮組 vs miR-133b mimic/KYSE450懸浮組

      細(xì)胞凋亡比率(%) t P scramble/KYSE150懸浮組 51.00±3.61 miR-133b mimic/KYSE150懸浮組 61.67±1.53 4.72 <0.01ascramble/KYSE450懸浮組 50.67±3.21 miR-133b mimic/KYSE450懸浮組 63.33±6.03 3.21 <0.05b

      3 討 論

      腫瘤轉(zhuǎn)移是指腫瘤細(xì)胞從原發(fā)部位脫落,進(jìn)入血液循環(huán)中并得以存活,形成循環(huán)腫瘤細(xì)胞(circulating tumor cells,CTCs),到達(dá)遠(yuǎn)處器官并不斷增殖,最終形成轉(zhuǎn)移灶。目前研究發(fā)現(xiàn),腫瘤細(xì)胞脫離原發(fā)灶侵襲入血循環(huán)后產(chǎn)生抵抗失巢凋亡是其發(fā)生轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵步驟。失巢凋亡是指細(xì)胞脫離原來的生長部位,失去細(xì)胞與細(xì)胞,細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)之間的黏附,從而發(fā)生的一種程序化死亡。正常細(xì)胞和大多數(shù)腫瘤細(xì)胞在脫離原發(fā)灶之后,由于喪失了周圍細(xì)胞黏附和賴以生存的細(xì)胞基質(zhì)都會(huì)發(fā)生失巢凋亡。然而,部分腫瘤細(xì)胞在脫離原發(fā)灶進(jìn)入血液循環(huán)后,可以通過多種途徑獲得抵抗失巢凋亡的能力,腫瘤細(xì)胞才有機(jī)會(huì)與血管內(nèi)皮進(jìn)行黏附,從血管壁滲出并進(jìn)入周圍基質(zhì),最終在新的環(huán)境下形成轉(zhuǎn)移灶。因此,對(duì)腫瘤細(xì)胞抗失巢調(diào)往的生物學(xué)機(jī)制進(jìn)行研究,對(duì)于了解腫瘤轉(zhuǎn)移過程至關(guān)重要。在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)與轉(zhuǎn)染scramble相比,人食管鱗癌細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-133b mimics可以顯著上調(diào)miR-133b在轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)。接著,我們通過在鋪有PolyHEMA的六孔板中對(duì)細(xì)胞進(jìn)行懸浮培養(yǎng),來模擬食管鱗癌細(xì)胞與鄰近細(xì)胞脫離的狀態(tài),誘導(dǎo)食管鱗癌細(xì)胞發(fā)生失巢凋亡,并采用Annexin/PI雙染法對(duì)細(xì)胞的失巢凋亡進(jìn)行檢測。結(jié)果發(fā)現(xiàn),與轉(zhuǎn)染scramble相比,轉(zhuǎn)染miR-133b mimic上調(diào)miR-133b的表達(dá),可顯著提高食管鱗癌細(xì)胞發(fā)生失巢凋亡的比率。提示在食管鱗癌中,過表達(dá)的miR-133b可以促進(jìn)脫離鄰近細(xì)胞或細(xì)胞外基質(zhì)的食管鱗癌細(xì)胞發(fā)生失巢凋亡,減少食管鱗癌細(xì)胞的失巢凋亡抵抗,對(duì)腫瘤的轉(zhuǎn)移起到負(fù)向調(diào)控的作用,提示miR-133b可能作為今后食管鱗癌的診療靶點(diǎn)之一。

      [1] Grossmann J.Molecular mechanisms of detachmentinduced apoptosis—Anoikis[J].Apoptosis,2002,7(3):247-260.

      [2] Liu Y,Zhang Y,Wu H,et al.miR-10a suppresses colorectal cancer metastasis by modulating the epithelial-to-mesenchymal transition and anoikis[J].Cell Death Dis,2017,8(4):e2739.

      [3] Wei JL,Li YC,Ma ZL,et al.MiR-181a-5p promotes anoikis by suppressing autophagy during detachment induction in the mammary epithelial cell line MCF10A[J].Protein Cell,2016,7(4):305-9.

      [4] Bartel DP.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2),281-297.

      本文編輯:吳 衛(wèi)

      R735.1

      B

      ISSN.2095-8242.2017.30.5743.02

      新疆維吾爾自治區(qū)自然科學(xué)基金(項(xiàng)目編號(hào):2015211C137)

      單莉,E-mail:shanlinew319@163.com

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