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      BMP2信號轉(zhuǎn)導通路在特發(fā)性高鈣尿大鼠腎結(jié)石形成中的調(diào)控作用

      2018-07-23 03:29:26白栩搏
      西北藥學雜志 2018年4期
      關鍵詞:腎結(jié)石腎臟結(jié)石

      白栩搏

      (冀中能源邢臺礦業(yè)集團總醫(yī)院泌尿外科,邢臺 054000)

      腎結(jié)石是泌尿外科常見病之一,嚴重威脅人類健康[1]。目前對腎結(jié)石的發(fā)病機制仍不完全清楚。特發(fā)性高鈣尿(idiopathic hypercalciuria,IH)是臨床常見的代謝異常,也是草酸鈣結(jié)石的主要危險因素[2]。調(diào)查顯示[3],成人IH發(fā)病率為5%~8%,而合并IH的人群尿結(jié)石發(fā)病率是正常人群的5倍。盡管已知IH是腎結(jié)石的高危因素,但其在腎結(jié)石形成中的作用及機制尚不清楚。國外最新研究顯示[4],骨形成蛋白(bone morphoenetic protein,BMPs)與成骨分化和骨質(zhì)形成有關,其中骨形成蛋白2(BMP2)信號通路參與調(diào)控的異位鈣化是多種結(jié)石的主要誘導因素。BMP2、成骨細胞特異性轉(zhuǎn)錄因子2(runt-related protein 2,RUNX2)、肌肉片段同源盒2(muscle segment homeobox 2,MSX2)和鋅指結(jié)構轉(zhuǎn)錄因子(osterix,Osx)均是BMP2信號通路中的重要轉(zhuǎn)錄因子,且上述轉(zhuǎn)錄因子在血管鈣化部位呈高表達。因此,本研究利用高鈣尿模型大鼠,研究BMP2信號轉(zhuǎn)導通路在腎結(jié)石形成中的調(diào)控機制。

      1 儀器與試藥

      1.1儀器 凝膠成像分析系統(tǒng)(鄭州博邦公司);DYY-10C電泳儀(北京六一儀器公司);7500定量PCR儀(美國Thermo fisher公司);RM2235石蠟切片機(德國徠卡儀器有限公司)。

      1.2試藥 Von Kossa鈣染色試劑盒,購自上海舜田生物科技有限公司;兔抗大鼠BMP2抗體、兔抗大鼠MSX2抗體、兔抗大鼠RUNX2抗體和兔抗大鼠Osx抗體,均購自美國Santa Cruz公司;辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗小鼠二抗,購自武漢博士德生物工程公司;β-actin購自上海北諾生物科技有限公司;RIPA裂解液,購自北京碧云天生物技術有限公司;RNA提取試劑Trizol,購自美國Invitrogen公司;實時定量PCR反應液SYBR Green Ⅰ premix,購自日本TaKaRa公司;cDNA第一鏈合成試劑盒,購自Thermo Fisher Scientific公司。

      2 方法

      2.1大鼠分組 20只清潔級遺傳性高鈣尿結(jié)石大鼠(GHS組)和20只體質(zhì)量、月齡配對的健康清潔級SD大鼠(對照組),均購自華中科技大學同濟醫(yī)學院實驗動物中心,大鼠3月齡,體質(zhì)量200±20 g。大鼠于12 h光照/12 h黑暗條件下飼養(yǎng),適用性喂養(yǎng)1周后開始實驗。本研究取得實驗動物倫理委員會批準,嚴格按照科技部《關于善待實驗動物的指導性意見》[5]的相關要求進行操作。

      2.2樣本采集 2組大鼠適用性喂養(yǎng)1周后,腹腔注射質(zhì)量濃度為20 g·L-1的戊巴比妥鈉3 mL·kg-1全身麻醉,無菌操作下將腹膜切開,完全切下腎臟組織,液氮中保存待用。

      2.3Von Kossa鈣染色 從液氮中取出腎臟組織,用PBS緩沖液沖洗3次,用質(zhì)量濃度為0.4 g·L-1的多聚甲醛固定,梯度乙醇脫水,常規(guī)石蠟包埋,制成厚度4 μm的連續(xù)切片。石蠟切片脫蠟至水。加入質(zhì)量濃度為5 g·L-1的硝酸銀溶液1 mL,紫外光燈下照射1 h。雙蒸水沖洗3次,加入1 mL質(zhì)量濃度為50 g·L-1的硫代硫酸鈉溶液處理5 min,吸出殘液。自來水反復沖洗,加入2滴核固紅染液復染10 min,蒸餾水沖洗后,梯度乙醇脫水,二甲苯透明,室溫下晾干后中性樹膠封片,顯微鏡下觀察并拍照。

      2.4蛋白質(zhì)印跡法(Western Blot法)檢測BMP2、MSX2、RUNX2和Osx的蛋白表達 液氮中取出腎臟組織,用手術剪將腎臟組織剪成小塊,置于勻漿器中,加入1 mL RIPA裂解液,冰浴上提取總蛋白,BCA蛋白濃度試劑盒檢測總蛋白質(zhì)量分數(shù)。取50 μg總蛋白和等體積的上樣緩沖液,SDS-PAGE電泳分離,常規(guī)濕法轉(zhuǎn)膜,加入質(zhì)量濃度為5 g·L-1的脫脂牛奶孵育封閉1.5 h。用封閉液稀釋相應的一抗:BMP2(1∶500)、MSX2(1∶200)、RUNX2(1∶200)和Osx(1∶300),將PVDF膜浸于一抗的稀釋液中,4 ℃孵育過夜。用PBS緩沖液沖洗PVDF膜3次,再加入HRP標記的二抗(1∶20 000稀釋),室溫振蕩2 h。ECL化學發(fā)光顯影試劑盒顯影,以β-actin作為內(nèi)參照,掃描目的條帶和內(nèi)參條帶,使用Image J軟件對條帶進行分析,計算目的條帶的相對表達量。

      2.5實時定量PCR(RT-PCR)檢測BMP2、MSX2、RUNX2和Osx mRNA表達 取50 mg腎臟組織,液氮中用研缽將組織充分研成粉末,置于勻漿器中,加入1 mL Trizol提取試劑冰浴上孵育5 min,4 ℃下以5 000 r·min-1離心5 min,抽取上清液,加入150 μL氯仿充分振蕩孵育5 min,同樣條件下離心10 min,取上層液。加入400 μL異丙醇冰浴振蕩5 min,4 ℃下以5 000 r·min-1離心5 min,棄去上清液;沉淀用體積分數(shù)為70%的乙醇洗滌3次,紫外分光光度計檢測260和280 nm處吸光度的比值,確定總RNA濃度。根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄反應試劑盒說明書,將總RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板進行PCR擴增。采用Primer Premeir 5.0軟件設計引物,并委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成。引物序列見表1。PCR反應體系:上下游引物各0.2 μL,SYBR Green Ⅰ premix 12 μL,雙蒸水5.6 μL,cDNA 2 μL,總反應體系20 μL。PCR反應條件:95 ℃預變性15 s,95 ℃變性10 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,總計40個循環(huán)。反應結(jié)束后直接讀取Ct值,以β-actin作為內(nèi)參,按照2-△△Ct值計算目的基因相對表達量。ΔΔCt=(Ct目的基因-Ctβ-actin)-(Ct對照基因-Ct β-actin)。

      表1引物序列

      Tab.1 The primer sequence

      引物名稱引物序列BMP2引物上游:5'-GGCTGAGGGTTAGTGAGCA-3'序列下游:5'-AGGGAGTTGGTGAAAGACATC-3'MSX2引物上游:5'-AGGGCAGAATCATGAGCAAGT-3'序列下游:5'-AGGGTCTGCATTGGATGGCA-3'RUNX2引物上游:5'-CAGGCATTTCATCCCTCACT-3'序列下游:5'-TATGGAGTGCTGCTGGTCTG-3'Osx引物上游:5'-CCAAGGCAGTTGGCAATAGT-3'序列下游:5'-ATGAATGGGCTTCTTCCTCA-3'β-actin引物上游:5'-CACCATTGGCAATGAGGGGTTC-3'序列下游:5'-AGGTCTTTGCGGATGTCCACGT-3'

      3 結(jié)果

      3.1腎臟組織Von Kossa鈣染色結(jié)果 利用Von Kossa染色法檢測2組大鼠鈣鹽沉積情況,見圖1。由圖1可知,GHS組大鼠腎間質(zhì)中有明顯的鈣鹽沉積(鈣鹽被硝酸銀染成黑色);而對照組大鼠腎間質(zhì)則未見鈣鹽沉積情況。

      圖1大鼠腎間質(zhì)VonKossa鈣染色結(jié)果(×200)

      A.對照組;B.GHS組。注:箭頭表示鈣鹽沉積。

      Fig.1 The Von Kossa calcium staining in rat renal interstitium (×200)

      A.control group;B.GHS group.Note:the arraw indicates calcium deposition.

      3.2腎臟組織BMP2、MSX2、RUNX2和Osx mRNA表達 RT-PCR檢測結(jié)果顯示,GHS大鼠BMP2、MSX2、RUNX2和Osx mRNA表達水平明顯高于對照組,2組間比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖2。

      圖2RT-PCR檢測BMP2、MSX2、RUNX2和OsxmRNA在大鼠腎臟組織中的表達

      A.BMP2 mRNA表達;B.MSX2 mRNA表達;C.RUNX2 mRNA表達;D.Osx mRNA表達。*P<0.05,**P<0.01:GHS組vs對照組。

      Fig.2 The expression of BMP2,MSX2,RUNX2 and Osx mRNA in rat renal tissues detected by RT-PCR

      A.the expression of BMP2 mRNA;B.the expression of MSX2 mRNA;C.the expression of RUNX2 mRNA;D.the expression of Osx mRNA.*P<0.05,**P<0.01:GHS group vs control group.

      3.3腎臟組織BMP2、MSX2、RUNX2和Osx蛋白表達 與RT-PCR結(jié)果一致,Western Blot檢測結(jié)果顯示,GHS大鼠腎臟組織BMP2、MSX2、RUNX2和Osx蛋白明顯高于對照組,2組間比較差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖3。

      圖3WesternBlot檢測BMP2、MSX2、RUNX2和Osx蛋白在大鼠腎臟組織中的表達

      A.BMP2蛋白表達;B.MSX2蛋白表達;C.RUNX2蛋白表達;D.Osx蛋白表達。**P<0.05,**P<0.01:GHS組vs對照組。

      Fig.3 The expression of BMP2,MSX2,RUNX2 and Osx protein in rat renal tissues detected by Western Blot

      A.the expression of BMP2 protein;B.the expression of MSX2 protein;C.the expression of RUNX2 protein;D.the expression of Osx protein.*P<0.05,**P<0.01:GHS group vs control group.

      4 討論

      泌尿結(jié)石是最常見的泌尿系統(tǒng)疾病,多數(shù)患者發(fā)病年齡為30~45歲,且發(fā)病呈年輕化趨勢[6]。研究發(fā)現(xiàn)[7],40%以上的腎結(jié)石患者尿鈣明顯升高,這種升高機制可能與消化道鈣吸收增加、腎臟重吸收受限以及骨重吸收有關。張彬等[8]報道證實,IH是泌尿結(jié)石的危險因素之一,具有明顯的遺傳特點。IH與遺傳性高鈣尿(GHS)具有相似的生理病理特征,即血清鈣在正常范圍內(nèi),但腎小管對鈣重吸收減弱導致尿鈣增加,進而自發(fā)形成結(jié)石,且這種結(jié)石的形成僅與遺傳有關[9]。因此,GHS被認為是研究IH理想的動物模型。近年來研究報道[10],IH大鼠腎間質(zhì)存在明顯鈣化現(xiàn)象,特別是已形成腎結(jié)石者,腎間質(zhì)鈣化尤為明顯。本研究利用Von Kossa鈣染色法檢測大鼠腎組織的鈣鹽沉積情況,結(jié)果顯示,GHS組大鼠腎間質(zhì)中存在明顯的鈣鹽沉積,而對照組大鼠腎間質(zhì)無鈣鹽沉積現(xiàn)象。這一結(jié)果提示,GHS可能在某種調(diào)控作用下形成結(jié)石。然而關于高鈣尿?qū)δI結(jié)石形成的調(diào)控機制尚不清楚。

      國外最新研究表明[11],結(jié)石形成的誘因:異位鈣化與骨礦化過程具有相似的調(diào)控過程。BMPs屬于TGF-β超家族成員之一,也是參與骨合成的重要代謝因子。BMPs與特異性受體結(jié)合后,通過調(diào)控下游靶基因的轉(zhuǎn)錄,誘導機體發(fā)生異位鈣化。BMP2與異位鈣化的關系最為密切,機體在一系列外界刺激下,誘導間充質(zhì)前體細胞分泌BMP2,并激活BMP2介導的信號通路調(diào)控前體細胞分化為成骨樣細胞,并促進基質(zhì)礦化[12]。BMP2信號通路包括BMP2、MSX2、RUNX2和Osx轉(zhuǎn)錄因子,也是骨骼形成的重要調(diào)控因子。Kee H J等[13]報道,BMP2通過Smad信號通路誘導MSX2和RUNX2表達上調(diào),其中RUNX2是Osx的上游調(diào)控基因,參與骨細胞的形成、分化。劉光源等[14]則證實,MSX2高表達能夠上調(diào)間充質(zhì)細胞Osx表達,且這種高表達特異性貫穿于整個骨形成過程。Osx是含有特殊鋅指結(jié)構的轉(zhuǎn)錄因子,也被證實參與調(diào)控成骨分化和骨形成。Shrivats A R等[15]利用siRNA技術沉默小鼠Osx基因表達,結(jié)果顯示,干擾組小鼠軟骨發(fā)育出現(xiàn)明顯異常,表現(xiàn)為軟骨骨化受阻。

      本實驗利用GHS大鼠模型研究BMP2信號通路在腎結(jié)石形成中的調(diào)控作用,結(jié)果顯示,BMP2、MSX2、RUNX2、Osx蛋白和mRNA表達均明顯高于對照組大鼠,提示GHS可能通過激活BMP2信號通路誘導腎結(jié)石的形成。田晶等[16]報道,GHS大鼠腎臟組織維生素D受體(VDR)和BMP2表達上調(diào),并調(diào)節(jié)腎間質(zhì)鈣化。研究表明[17],腎間質(zhì)異位鈣化向腎乳頭延伸,誘導尿鈣晶體聚集黏附,最終出現(xiàn)鈣鹽沉積而形成結(jié)石。Cao H等[18]報道,VDR是BMP2信號通路的激活誘因,在血管鈣化方面發(fā)揮關鍵作用。本研究限于篇幅,尚未檢測2組大鼠VDR表達水平,這也是未來研究的方向之一。

      綜上所述,本研究初步證實了高鈣尿通過激活BMP2信號通路調(diào)控腎結(jié)石的形成,此結(jié)果為研究腎結(jié)石的發(fā)病機制指明了新方向。

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