景永帥蘇 蕾韓 鈺張丹參張瑞娟吳蘭芳鄭玉光秦 璇
(1. 河北科技大學(xué)化學(xué)與制藥工程學(xué)院,河北 石家莊 050018;2. 河北中醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院,河北 石家莊 050200;3. 石家莊市第二醫(yī)院康復(fù)國(guó)際部,河北 石家莊 050062)
北沙參為藥用植物珊瑚菜(GlehnialittoralisFr. schmidt ex Miq.)的根,被《本草綱目》列為五參之一,是衛(wèi)生部公布的藥食兩用資源,具有清補(bǔ)肺陰、和中降逆、涵養(yǎng)肝陰等效果[1-2]。主要有效成分為揮發(fā)油類、香豆素類、多糖類、苷類和聚炔類等,其中多糖類是含量最高的成分,具有抗氧化和調(diào)節(jié)機(jī)體免疫等功能[2-3]。
目前,對(duì)于北沙參多糖的研究,主要集中于提取工藝優(yōu)化和生物活性研究,如榮立新等[4]通過(guò)制備陰虛小鼠模型,檢測(cè)脾臟NK細(xì)胞殺傷活力、T淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化功能和小鼠血清抗綿羊紅細(xì)胞抗體IgM含量,發(fā)現(xiàn)北沙參多糖具有一定的免疫調(diào)節(jié)活性。相美榮等[5]通過(guò)星點(diǎn)設(shè)計(jì)-響應(yīng)面法,優(yōu)化了北沙參多糖的熱水浸提工藝,得到北沙參多糖的最大提取率為10.78%。與傳統(tǒng)的熱水浸提工藝相比,超聲波輔助提取法因具有效率高、操作時(shí)間短、設(shè)備簡(jiǎn)單等優(yōu)勢(shì),在食品和中藥行業(yè)中有較好的應(yīng)用[6]。但是,對(duì)于超聲波最優(yōu)工藝提取的北沙參多糖的理化性質(zhì)和生物活性未見相關(guān)研究報(bào)道。
本試驗(yàn)擬選用超聲波輔助提取法提取北沙參多糖,采用單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面法對(duì)北沙參多糖的提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,并測(cè)定北沙參多糖的理化性質(zhì)和生物活性,為北沙參多糖成分的進(jìn)一步開發(fā)利用提供理論依據(jù)。
北沙參:河北安國(guó)產(chǎn),經(jīng)河北中醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院生藥教研室鄭玉光教授鑒定為傘形科珊瑚菜(GlehnialittoralisFr. schmidt ex Miq.)的根;
α-葡萄糖苷酶:1.0×105U/g,上海源葉生物科技有限公司;
1,1-二苯基-2-苦味基肼(DPPH):色譜純,上海阿拉丁生化科技股份有限公司;
對(duì)硝基苯-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG):分析純,上海阿拉丁生化科技有限公司;
其他試劑為國(guó)產(chǎn)分析純。
恒溫水浴鍋:HH-2型,江蘇金壇宏華儀器廠;
旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:EYELAN-1100型,東京理化株式會(huì)社;
超聲波清洗器:KS-300DE型,昆山潔力美超聲儀器有限公司;
多功能中藥粉碎機(jī):400Y型,永康市鉑歐玉金制品有限公司;
紫外-可見分光光度計(jì):UV-2550型,島津儀器制造有限公司;
高速離心機(jī):TGL-15B型,上海安亭科學(xué)儀器廠;
電子分析天平:AL204型,梅特勒-托利國(guó)際貿(mào)易有限公司;
差熱—熱重聯(lián)用熱分析儀:STD-2960型,美國(guó)TA儀器公司;
傅里葉變換紅外光譜儀:S-100型,珀金埃爾默儀器有限公司。
1.3.1 樣品前處理 取北沙參藥材200.0 g,粉碎,過(guò)40目篩,用3倍體積的95%乙醇回流提取2次,除去脂溶性成分,藥渣50 ℃干燥后,備用。
1.3.2 單因素試驗(yàn)
(1) 超聲提取時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響:固定超聲提取溫度60 ℃,液料比20∶1 (mL/g),分別考察超聲提取時(shí)間(10,20,30,40 min)對(duì)多糖提取率的影響。
(2) 超聲提取溫度對(duì)北沙參多糖提取率的影響:在液料比20∶1 (mL/g)、超聲提取時(shí)間20 min的條件下,分別考察超聲提取溫度(20,40,60,80,90 ℃)對(duì)多糖提取率的影響。
(3) 液料比對(duì)多糖提取率的影響:固定超聲提取溫度60 ℃,超聲提取時(shí)間20 min,分別考察液料比為[10∶1,15∶1,20∶1,25∶1,30∶1 (mL/g)]對(duì)多糖提取率的影響。
1.3.3 響應(yīng)面分析 在單因素考察的基礎(chǔ)上,以北沙參多糖提取率作為響應(yīng)值,采用三因素三水平的響應(yīng)面分析法,得到回歸方程,確定多糖的最佳工藝條件,并重復(fù)最優(yōu)工藝進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。所有試驗(yàn)均重復(fù)3次,利用統(tǒng)計(jì)分析軟件Design Expert 8.0及Excel對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析。
1.3.4 北沙參多糖的理化性質(zhì)測(cè)定
(1) 紫外-可見光譜分析:配制0.1 mg/mL的北沙參多糖溶液,用紫外-可見分光光度計(jì)在200~700 nm掃描[7]。
(2) 紅外光譜分析:稱取1.0 mg的北沙參多糖,與KBr粉末混勻后壓片,紅外光譜儀在4 000~500 cm-1波數(shù)內(nèi)掃描[8]。
(3) 總糖含量的測(cè)定:采用苯酚-硫酸法[9]。
(4) 蛋白含量的測(cè)定:采用考馬斯亮藍(lán)法[10]。
(5) 熱重分析:稱取2.0 mg的北沙參多糖,溫度由室溫升至800 ℃,升溫速率為10 ℃/min,進(jìn)行熱重分析,包括:差示掃描量熱分析(differential scanning calorimetry,DSC)和熱解重量分析(thermal gravimetric analysis,TGA)[11]。
1.3.5 北沙參多糖的生物活性
(1) DPPH自由基清除能力:參照文獻(xiàn)[12]。
(2) OH自由基清除能力:參照文獻(xiàn)[13]。
(3) 對(duì)α-葡萄糖苷酶活性抑制:取pH 6.81緩沖溶液3 mL 和2 mmol/L PNPG溶液0.8 mL,37 ℃孵育20 min,加入40 U/mLα-葡萄糖苷酶溶液1 mL,繼續(xù)反應(yīng)20 min,加1.0 mol/L碳酸鈉1 mL終止反應(yīng),紫外-可見分光光度計(jì)在400 nm測(cè)吸光度值,為對(duì)照組A1。將體系中1 mLα-葡萄糖苷酶換為1 mL蒸餾水,其余條件不變,測(cè)定吸光度值,為空白組A2。
取pH 6.81緩沖溶液2 mL、2 mmol/L PNPG 0.8 mL,分別加入1 mL濃度分別為8.0,4.0,2.0,1.0,0.5 mg/mL的多糖溶液,同上法進(jìn)行反應(yīng),并測(cè)吸光度值,為樣品組A3。將體系中1 mLα-葡萄糖苷酶換為1 mL蒸餾水,其余條件不變,測(cè)定吸光度值,為樣品對(duì)照組A4[14]。阿卡波糖作為陽(yáng)性對(duì)照品。按式(1)計(jì)算抑制率。
(1)
式中:
R——抑制率,%;
A1——對(duì)照組的吸光度;
A2——空白組的吸光度;
A3——樣品組的吸光度;
A4——樣品對(duì)照組的吸光度。
2.1.1 提取時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響 由圖1可知,隨著超聲提取時(shí)間的延長(zhǎng),多糖提取率先上升后又趨于平緩,當(dāng)提取時(shí)間超過(guò)20 min時(shí),多糖的提取率不再發(fā)生明顯的變化。因在一定的時(shí)間內(nèi),超聲波的空化作用可提高多糖的提取率,但時(shí)間過(guò)長(zhǎng)會(huì)由于機(jī)械剪切作用和熱量聚集,降解多糖,從而使得多糖提取率不再增加,甚至降低。因此,選取20 min的超聲提取時(shí)間作為Box-Behnken Design(BBD)試驗(yàn)設(shè)計(jì)的中心點(diǎn)。
圖1 提取時(shí)間對(duì)北沙參多糖提取率的影響
Figure 1 Effect of extraction time on extraction rate of polysaccharide fromRadixGlehniae
2.1.2 提取溫度對(duì)多糖提取率的影響 由圖2可知,隨超聲提取溫度的增加,多糖提取率先上升后趨于平緩,這是由于升高溫度有助于傳質(zhì)過(guò)程的發(fā)生,可加劇分子擴(kuò)散,從而加快溶劑的滲透以及多糖類物質(zhì)的溶出。當(dāng)提取溫度超過(guò)60 ℃ 時(shí)提取率上升已不明顯,而且提取溫度過(guò)高會(huì)難以控制試驗(yàn)條件,浪費(fèi)資源,所以選取60 ℃提取溫度為后續(xù)BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)的中心點(diǎn)。
2.1.3 液料比對(duì)北沙參多糖提取率的影響 由圖3可知,多糖提取率隨提取液料比的增加而增加,當(dāng)液料比大于20∶1(mL/g)時(shí),提取率趨于平緩。溶劑量的增加使得北沙參與提取溶液的接觸面積增大,溶劑傳質(zhì)推動(dòng)力增強(qiáng),可使得多糖提取率和溶出速度增加。但溶劑體積過(guò)大可導(dǎo)致物料吸附溶劑的量也增大,多糖被物料吸附不易溶出。因此,選取20∶1 (mL/g)的液料比作為后續(xù)BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)的中心點(diǎn)。
圖2 提取溫度對(duì)北沙參多糖提取率的影響
Figure 2 Effect of extraction temperature on extraction rate of polysaccharide fromRadixGlehniae
圖3 液料比對(duì)北沙參多糖提取率的影響
2.2.1 數(shù)學(xué)模型的建立與檢驗(yàn) 基于上述單因素試驗(yàn)結(jié)果,采用響應(yīng)面法對(duì)北沙參多糖提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,以提取溫度、提取時(shí)間、液料比為自變量,多糖提取率(Y)為響應(yīng)值,根據(jù)BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法和原理,得出北沙參多糖提取率響應(yīng)面分析試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平表(表1)。
表1 響應(yīng)面分析試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平
采用BBD試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法設(shè)立17組試驗(yàn),各因素和響應(yīng)面值(多糖提取率)如表2所示,對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行二次回歸擬合,分析各因素的效應(yīng),最后得到北沙參多糖提取最優(yōu)工藝。
2.2.2 回歸方程的建立與方差分析 利用軟件對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行回歸分析,擬合得到北沙參多糖提取率的二次多元回歸方程為:
Y=11.76+0.62A+0.33B+0.25C+0.35AB+0.79AC-0.060BC-0.64A2-0.75B2-0.96C2。
(2)
表2 多糖提取率響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果
Table 2 Response surface experimental design and result of polysaccharide extraction rate ofRadixGlehniae
試驗(yàn)號(hào)ABC提取率/%10-119.81200011.8731-1010.54411011.68510-19.576-1109.517-10-110.08800012.11910-19.691001-110.261100010.531200011.8713-1-109.78140-1-19.411500012.4416-1019.241701-110.35
2.2.3 響應(yīng)面分析 圖4~6是因素(提取溫度、提取時(shí)間、液料比)交互影響的響應(yīng)面圖和等高線圖。由圖4可知,隨超聲提取溫度的升高,多糖提取率呈現(xiàn)先有所增加后緩慢降低的趨勢(shì)。超聲提取時(shí)間為15~25 min時(shí),提取率呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì);等值線區(qū)域水平,表示兩因素間具有顯著的交互作用。由圖5可知,隨提取溫度的升高,提取率呈現(xiàn)先增大后趨于平穩(wěn)的趨勢(shì);隨液料比的加大,提取率呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì)。由圖6可知,隨液料比的加大及超聲提取時(shí)間的延長(zhǎng),提取率呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì)。
通過(guò)對(duì)二次多項(xiàng)式回歸分析求最大值,得到超聲波輔助提取多糖的最佳工藝為:液料比22∶1 (mL/g)、超聲提取時(shí)間22.07 min、超聲提取溫度64.5 ℃,在此條件下,北沙參多糖提取率的理論預(yù)測(cè)值為12.17%,結(jié)合最優(yōu)工藝參數(shù)與實(shí)際生產(chǎn)可操作性,對(duì)各因素的取值進(jìn)行修正,最終確定超聲波輔助提取最優(yōu)工藝為:液料比22∶1 (mL/g)、超聲提取時(shí)間22 min、提取溫度65 ℃,經(jīng)3次重復(fù)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,北沙參多糖平均提取率為12.13%,與預(yù)測(cè)值相近,說(shuō)明優(yōu)化工藝重復(fù)性良好,最優(yōu)工藝的結(jié)果可靠。
表3 北沙參多糖提取率回歸模型方差分析
Table 3 Analysis of extraction rate regression model variance ofRadixGlehniaepolysaccharide
方差來(lái)源平方和自由度均方F值P值顯著性模型15.6491.745.090.021 7顯著A1.9211.925.610.049 7B0.5510.551.600.245 9C0.2110.210.600.462 8AB0.5010.501.460.266 9AC1.2111.213.540.101 9BC6.97E-0316.97E-030.020.890 5A21.4111.414.140.081 3B21.9511.955.710.048 2C21.8911.895.540.050 8殘差2.3970.34失擬項(xiàng)0.2610.260.720.427 3不顯著純誤差2.1360.36總回歸18.0316
由圖7可知,北沙參多糖在280 nm處有一定的吸收峰,說(shuō)明其可能含有蛋白類成分,蛋白含量采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定。
圖4 提取溫度和提取時(shí)間對(duì)北沙參多糖提取率的交互影響
圖5 提取溫度和液料比對(duì)北沙參多糖提取率的交互影響
圖6 提取時(shí)間和料液比對(duì)北沙參多糖提取率的交互影響
圖7 北沙參多糖紫外-可見光譜圖
由標(biāo)準(zhǔn)曲線得到的回歸方程為y=0.690 71x+1.103 5(R2=0.991)。經(jīng)計(jì)算樣品中蛋白質(zhì)的含量為1.22%。
由標(biāo)準(zhǔn)曲線得到的回歸方程為b=9.1a+0.082 4(R2=0.998)。經(jīng)計(jì)算樣品中總糖含量為90.40%。
從圖8可以看出,在1 021.28 cm-1處吸收峰是醇羥基的C—O伸縮振動(dòng),1 155.97 cm-1處為環(huán)上C—O的振動(dòng)峰,1 638.05 cm-1附近為—OH的彎曲振動(dòng)吸收峰,1 414.14 cm-1處為C—H鍵的彎曲振動(dòng)吸收峰,2 930.43 cm-1附近為多糖的C—H伸縮振動(dòng)吸收峰,3 409.19 cm-1附近為O—H的伸縮振動(dòng)峰,結(jié)果表明,樣品具有多糖類物質(zhì)典型特征峰[15-16]。
圖8 北沙參多糖紅外圖譜
由圖9可知,隨著樣品濃度的升高,北沙參多糖對(duì)羥基自由基的清除作用也逐漸增強(qiáng),呈現(xiàn)濃度依賴性,當(dāng)濃度為4.00 mg/mL時(shí),北沙參多糖對(duì)羥基自由基的清除率為78.9%,北沙參多糖對(duì)羥基自由基的半數(shù)清除率濃度IC50值為1.71 mg/mL,但清除效果弱于對(duì)照品VC(IC50值為0.072 mg/mL)。
圖9 北沙參多糖和VC對(duì)羥基自由基的清除作用
Figure 9 The scavenging rates on hydroxyl radical ofRadixGlehniaepolysaccharide and VC
由圖10可知,隨著樣品濃度的升高,北沙參多糖對(duì)DPPH自由基的清除作用也逐漸增強(qiáng),呈現(xiàn)濃度依賴性,當(dāng)濃度為4.00 mg/mL時(shí),北沙參多糖對(duì)DPPH自由基的清除率為70.2%,北沙參多糖對(duì)DPPH自由基的半數(shù)清除率濃度IC50值為1.99 mg/mL,但清除效果弱于對(duì)照品VC(IC50值為0.005 mg/mL)。
圖10 北沙參多糖和VC對(duì)DPPH自由基的清除作用
Figure 10 The scavenging rates on DPPH radical ofRadixGlehniaepolysaccharide and VC
由圖11可知,北沙參多糖對(duì)α-葡萄糖苷酶具有一定的抑制作用,隨著濃度的升高,抑制作用也增強(qiáng),整體呈線性關(guān)系。北沙參多糖對(duì)α-葡萄糖苷酶的半數(shù)抑制率濃度IC50值為5.23 mg/mL。阿卡波糖的IC50值為0.501 mg/mL,對(duì)比可得,北沙參多糖低于陽(yáng)性對(duì)照阿卡波糖對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用。試驗(yàn)結(jié)果表明北沙參多糖具有潛在的降血糖活性。
圖11 北沙參多糖與阿卡波糖對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用
本研究在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用響應(yīng)面法對(duì)超聲波輔助提取北沙參多糖工藝進(jìn)行了優(yōu)化,并對(duì)北沙參多糖的抗氧化活性及降血糖活性進(jìn)行了測(cè)定。結(jié)果表明:北沙參多糖的最優(yōu)提取工藝為提取溫度65 ℃,提取時(shí)間22 min,液料比22∶1 (mL/g),在此條件下多糖提取率為12.13%。最優(yōu)工藝條件下制備的北沙參多糖具有多糖的典型特征吸收峰,總糖含量為90.4%,蛋白質(zhì)含量為1.22%,熱降解溫度為300.32 ℃。北沙參多糖具有一定的清除羥基自由基和DPPH自由基的能力和潛在的降血糖活性(對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制率的IC50值為5.23 mg/mL)。
本試驗(yàn)僅在體外對(duì)北沙參多糖的活性進(jìn)行了測(cè)定,并未進(jìn)行體內(nèi)試驗(yàn),后續(xù)將對(duì)北沙參多糖的體內(nèi)抗氧化及降血糖活性進(jìn)行研究。