李尊元,李曉燕,趙 創(chuàng),陳春蘭,李 淼,譚 倩,梁 薇,劉志丹△
(1.上海市寶山區(qū)中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院,上海 201999;2.上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬曙光醫(yī)院寶山分院,上海 201999;3.上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬岳陽中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院,上海 200437;4.南京中醫(yī)藥大學(xué),江蘇 南京 210046)
類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(Rheumatoid arthritis,RA)是一種以侵蝕性關(guān)節(jié)炎為主要表現(xiàn)的自身免疫性疾病,臨床表現(xiàn)為對稱性、持續(xù)性多關(guān)節(jié)炎,最終導(dǎo)致關(guān)節(jié)畸形和功能喪失,嚴(yán)重影響患者生活質(zhì)量[1]。目前現(xiàn)代醫(yī)學(xué)常用的RA治療藥物有抗風(fēng)濕藥(DMARDs)、非甾體類抗炎藥(NSAIDs)、糖皮質(zhì)激素、生物制劑以及靶向小分子藥物等[2]。RA發(fā)病機制尚不明確,已發(fā)現(xiàn)炎癥因子及自身免疫反應(yīng)介導(dǎo)的免疫系統(tǒng)紊亂在RA的發(fā)病中起重要作用。
類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎在中醫(yī)學(xué)中屬“痹癥”?!端貑枴ど鷼馔ㄌ煺摗吩疲骸瓣枤庹撸珓t養(yǎng)神,柔則養(yǎng)筋。”《千金方》中記載:“歷節(jié)風(fēng)痛,但痛處灸二七壯,佳。”從古至今的文獻(xiàn)均記載,艾灸能治療包括類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎在內(nèi)的痹病?,F(xiàn)代研究顯示,艾灸能夠減輕RA患者臨床癥狀、改善生活質(zhì)量[3-6],作為RA綜合治療方案的完善和補充,有著重要的意義。臨床上懸灸與直接灸是灸法實施的兩種不同方式,其治療RA的臨床療效均有文獻(xiàn)支持[7-10]。但運用動物模型研究艾灸療法治病機制的時候,有些研究運用直接灸(麥粒灸)[11-14],有些運用懸灸[15-21];那么究竟兩種艾灸方法在療效和機制上有何不同,是值得探討的重要問題。
本研究在CIA小鼠模型基礎(chǔ)上,比較了兩種不同灸法對于CIA小鼠關(guān)節(jié)炎的干預(yù)效果,報道如下。
8~10周齡雄性DBA/1J小鼠36只,提供單位為南京生物醫(yī)藥研究院實驗動物中心,其許可證號:SCXK(蘇)2015-0001。先將小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周,第1周后將其隨機分組,每組各6只,共計6組。將其中1組設(shè)為正常組,另外5組小鼠先混合,之后進(jìn)行造模,待模型成功后,將其隨機分為模型組、安慰治療組、不治療組、懸灸組和直接灸組。小鼠分籠飼養(yǎng),每籠各3只,采用自然光照,投放普通小鼠飼料,并定期清潔、消毒。本實驗研究中對動物的處置均按照國家科技部2006年頒布的《關(guān)于善待實驗動物的指導(dǎo)性意見》執(zhí)行。本研究動物實驗經(jīng)過寶山區(qū)中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院倫理委員會審核并取得倫理批件(201412-11)。
本實驗采用的甲醛、無水乙醇、石蠟、氨水和二甲苯由上海國藥集團提供;牛Ⅱ型膠原由Chondrex公司提供;福氏完全佐劑(Freunds' Complete adjuvant,FCA)、福氏不完全佐劑(Incomplete Freund's Adjuvant,IFA)由Sigma公司提供;蘇木素、伊紅由BASO公司提供;中性樹脂由上海長島生物技術(shù)有限公司提供;小鼠IL-1β、IL-6、IL-10、IL-17及TGF-β酶聯(lián)免疫分析(ELISA)試劑盒由Bio-swamp公司提供;淋巴細(xì)胞分離液由CEDARLANE公司提供;蛋白定量BCA試劑盒由南京建成公司提供;小鼠Anti-CD4 FITC、小鼠Anti-CD25 APC、鼠Anti-IL-17 PE、鼠Anti-FoxP3 PE由Ebioscienc公司提供;冰乙酸由上海試劑四廠提供。實驗中所有化學(xué)試劑均為分析純。
石蠟切片機:徠克公司,SQ2125;攤片機:徠克公司,PPTHK-21B;酶標(biāo)儀:芬蘭雷勃,MK3;CX41正置顯微鏡:OLYMPUS公司;酶聯(lián)免疫檢測儀:Bio- Rad公司,model 550; CO2恒溫培養(yǎng)箱:Thermo Forma公司,3111;低溫冷凍離心機:上海盧湘儀離心機儀器有限公司,TG-16M;流式細(xì)胞儀:Bio- Rad公司,Accuri C6;數(shù)碼相機:NIKON公司;IMS圖象分析系統(tǒng):基爾頓生物科技(上海)有限公司,D5100。
參照文獻(xiàn)[22]建立Ⅱ型膠原誘導(dǎo)的類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎小鼠模型:Ⅱ型膠原(牛)溶解在濃度為0.05 mol/L的醋酸中,將其配制成2 mg/mL的膠原溶液,4℃過夜。用樣本均質(zhì)儀進(jìn)行低速混合時,滴加等體積的FCA,配制終濃度為1 mg/mL的Ⅱ型膠原乳劑。以每只小鼠200 μL的劑量于尾根部皮下注射進(jìn)行免疫。21天后再次在鼠尾基部皮內(nèi)注射100 μLⅡ型膠原乳劑進(jìn)行二次免疫。以小鼠出現(xiàn)至少1只腿踝關(guān)節(jié)明顯紅腫為模型成功建立。
參照文獻(xiàn)[23-26]中大鼠的取穴定位[腎俞:第2腰椎棘突下兩旁;足三里(后三里)穴:膝關(guān)節(jié)后外側(cè),腓骨小頭下方]進(jìn)行取穴,取穴后用記號筆在穴位處標(biāo)記。將小鼠放入特制的艾灸裝置中,露出需要艾灸的穴位進(jìn)行艾灸。選用45∶1精制艾絨作為艾灸材料,生產(chǎn)廠家:南陽艾顏堂艾絨有限責(zé)任公司。將精制艾絨制成1 mg/壯大小進(jìn)行艾灸:懸灸組用鑷子將艾絨夾持并點燃,置于略高于動物穴位毛發(fā)處(避免燒傷皮膚);直接灸組直接置于穴位毛發(fā)上(可能會造成一定程度的皮膚燒傷)。安慰治療組用醫(yī)用棉花制成上述艾絨同等大小,用上述方法進(jìn)行艾灸。每只小鼠每穴艾灸6壯。連續(xù)治療6天為1個療程,共治療2個療程,兩個療程間休息2天。
從艾灸治療第1天開始,每隔1天對發(fā)病的關(guān)節(jié)進(jìn)行關(guān)節(jié)炎指數(shù)評分,一共觀察8次。評分標(biāo)準(zhǔn)參照文獻(xiàn)[27-28],0分:無紅斑、水腫;1分:兩只足小趾關(guān)節(jié)紅斑水腫;2分:全部趾關(guān)節(jié)或前腳掌紅斑水腫;3分:踝關(guān)節(jié)以下延伸到趾紅斑水腫;4分:踝關(guān)節(jié)至全爪紅腫或畸形。本評分標(biāo)準(zhǔn)最高分16分,關(guān)節(jié)炎指數(shù)為每只小鼠四肢評分的總和。根據(jù)觀察各次關(guān)節(jié)炎指數(shù)評分結(jié)果,繪制出曲線圖。
模型組的設(shè)立,是為說明CIA模型治療前的情況,該組小鼠造模成功后即予以處死并取材;不治療組不進(jìn)行治療,目的為說明CIA小鼠未經(jīng)治療的15天后的情況,僅實施與艾灸組相同的抓取過程,將結(jié)果與艾灸組進(jìn)行對比,成模15天后與懸灸組、直接灸組和安慰治療組一同處死、取材。
于艾灸組末次治療24 h后,用頸椎脫臼法處死各組小鼠,并于75%的酒精中浸泡10~15 min,然后取及和踝關(guān)節(jié)。脾臟經(jīng)剪碎、研磨,過200目細(xì)篩,用淋巴細(xì)胞分離液重懸、離心后吸取中間白膜層。該層即為脾單核細(xì)胞。加RMPI-1640培養(yǎng)基洗滌1次,加紅裂液,離心,再洗滌1次;洗滌結(jié)束后,細(xì)胞重懸,計數(shù)、定量、分管凍存。踝關(guān)節(jié)用10%福爾馬林固定,石蠟包埋,矢狀面切片,常規(guī)HE染色。
方法參照所購小鼠IL-1β、IL-6、IL-10、IL-17及TGF-β酶聯(lián)免疫分析(ELISA)試劑盒以及BCA蛋白定量試劑盒說明書。用酶標(biāo)儀測定OD值(450 nm波長)。劃定標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算上述指標(biāo)的含量,統(tǒng)計分析。
Th17細(xì)胞檢測:調(diào)整細(xì)胞濃度(1×106個/mL),接種24孔板,加佛10 ng/mL波醇乙酯(PMA),1 μmol/L離子霉素和500 ng/mL蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運抑制劑莫能菌素,37℃、5%CO2培養(yǎng)4 h;收集細(xì)胞、重懸;加anti-CD45 μL,4℃避光孵育1 h。設(shè)不加抗體作管為陰性對照。孵育結(jié)束,離心、沉淀、PBS洗、重懸、離心,棄上清;所有樣本離心、棄上清、洗兩次,細(xì)胞沉淀PBS重懸,加入IL-17抗體1 μL,4℃避光孵育1 h。孵育結(jié)束后,用預(yù)冷的PBS洗滌兩次,上機檢測。
Treg細(xì)胞檢測步驟:調(diào)整細(xì)胞濃度(1×106個/mL)。每樣本設(shè)檢測管14個:陰性對照管:不加抗體,只加100 μL細(xì)胞懸液;同型對照管:加入細(xì)胞懸液100 μL和同型對照抗體5 μL;CD4單標(biāo)管:加入細(xì)胞懸液100 μL和anti-CD4 5 μL;CD25單標(biāo)管:加入細(xì)胞懸液100 μL和5 μL anti-CD25; Foxp3單標(biāo)管:只加細(xì)胞懸液100 μL;CD4+CD25+FOXP3三標(biāo)管:先加入100 μL細(xì)胞懸液,anti-CD4 5 μL,anti-CD25 5 μL,輕輕混勻;4℃避光孵育1~2 h。孵育1~2 h后,F(xiàn)oxp3單標(biāo)管和CD4+CD25+FOXP3三標(biāo)管進(jìn)行離心、棄上清,細(xì)胞沉淀洗兩次,0.5 mL 1× Foxp3 FIX buffer重懸,4℃固定30 min;其他檢測管可進(jìn)行上機檢測;固定結(jié)束后,F(xiàn)oxp3單標(biāo)管和CD4+CD25+FOXP3三標(biāo)管每管分別用0.5 mL 1× Foxp3 Permeabilization and Wash buffer洗滌兩次;洗滌結(jié)束后,F(xiàn)oxp3單標(biāo)管和CD4+CD25+FOXP3三標(biāo)管每管分別加入0.5 mL 1× Foxp3 Permeabilization和Wash buffer,放置4℃破膜30 min;然后,F(xiàn)oxp3單標(biāo)管和CD4+CD25+FOXP3三標(biāo)管每管分別加入Foxp3抗體5 μL;4℃避光孵育1 h。上機檢測步驟同Th17檢測。
所有數(shù)據(jù)都以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。計量資料數(shù)據(jù)若符合正態(tài)分布同時滿足方差齊性要求的,采用方差分析進(jìn)行組間比較;不符合正態(tài)分布或方差不齊的數(shù)據(jù),則用非參數(shù)檢驗(秩和檢驗)進(jìn)行分析。P≤0.05則認(rèn)為有統(tǒng)計學(xué)意義。用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行分析計算。
如圖1所示:CIA模型建立后,模型組與正常組關(guān)節(jié)比較明顯紅腫。經(jīng)治療,懸灸組小鼠關(guān)節(jié)紅腫相對模型組有較明顯的消退;而安慰治療組和不治療組小鼠關(guān)節(jié)紅腫無明顯消退,直接灸組小鼠腫脹較前更加明顯。不治療組、懸灸組、直接灸組和安慰治療組4組小鼠關(guān)節(jié)評分組間差異經(jīng)重復(fù)測量數(shù)據(jù)的方差分析比較,從第4次開始差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.03)。根據(jù)圖2曲線變化及統(tǒng)計分析,可判斷第4~8次評分懸灸組小鼠關(guān)節(jié)評分均低于其它3組(P<0.05)。這表明懸灸對治療小鼠的關(guān)節(jié)腫脹有一定作用。
圖1 RA小鼠艾灸治療前后的關(guān)節(jié)腫脹變化及與正常爪的對比
圖2 艾灸組與對照組RA小鼠的關(guān)節(jié)評分曲線對比
如封三彩圖3所示類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎模型建立后(即模型組),與正常組對比,關(guān)節(jié)面較正常組粗糙,且滑膜層變薄,經(jīng)過懸灸治療后,小鼠病變關(guān)節(jié)面恢復(fù)平整,滑膜層變厚,與正常組較為接近。而直接灸組,治療后粗糙的關(guān)節(jié)面有一定程度的恢復(fù),但不如懸灸組恢復(fù)得好。而安慰治療組與模型組、不治療組比較變化不明顯(圖中方框所示為關(guān)節(jié)滑膜面)。
統(tǒng)計分析顯示:CIA模型小鼠脾臟中IL-1β、IL-6、IL-17等致炎因子表達(dá)增高(P=0.00);懸灸和直接灸治療后上述致炎因子含量相應(yīng)降低(與模型組比較P=0.00),且兩組之間無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05);安慰治療組、不治療組與模型組無顯著的統(tǒng)計學(xué)差異(均P>0.05)。而抑炎因子IL-10、TGF-β在CIA模型小鼠脾臟中表達(dá)降低;懸灸和直接灸治療后它們的表達(dá)明顯提高(與模型組比較P=0.00),且兩組之間無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05);安慰治療組、不治療組與模型組無顯著的統(tǒng)計學(xué)差異(均P>0.05)。見表1。
表1 各組小鼠炎癥相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)比較單位:pg/mL)
注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,▲P<0.05
統(tǒng)計分析顯示:與正常小鼠比較,CIA模型小鼠Treg細(xì)胞下降(P=0.00);懸灸治療后,Treg細(xì)胞的數(shù)量有顯著上升(與模型組比較,P=0.00);而直接灸對Treg細(xì)胞數(shù)量的影響無顯著差異(與模型組比較,P=0.22)。而安慰治療組和不治療組Treg細(xì)胞的數(shù)量與模型組無顯著差異(均P>0.05)。與正常小鼠比較,CIA模型小鼠Th17細(xì)胞上升(P=0.00);懸灸治療后,Th17細(xì)胞的數(shù)量有顯著下降(與模型組比較,P=0.00);而直接灸組Th17細(xì)胞數(shù)量的影響無顯著差異(與模型組比較,P=0.44)。而安慰治療組和不治療組Th17細(xì)胞的數(shù)量與模型組無顯著差異(均P>0.05)。見表2。
表2 流式細(xì)胞術(shù)分析各組Th17、Treg細(xì)胞數(shù)量比較
注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,▲P<0.05
這說明,懸灸能正向調(diào)節(jié)膠原誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎模型中的Treg/Th17細(xì)胞失衡,提高Treg細(xì)胞、抑制Th17細(xì)胞數(shù)量,而直接灸作用不明顯。
艾灸治療的施治方式、技術(shù)參數(shù)是影響療效的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。近年來艾灸治療RA的實驗研究中,越來越多地關(guān)注了穴位的選擇[25]、灸溫[27]、時間[28-30]、方法[31]、距離[22]對實驗結(jié)果的影響,但對施灸方式異同的比較研究并不多見。既往研究艾灸治療RA的動物實驗中,有的研究采用麥粒灸,有的采用艾柱懸灸,兩種方式均有一定療效。那么到底直接灸和懸灸,哪種灸法治療RA模型動物更好,尚不明了。
回顧相關(guān)文獻(xiàn),只有一項研究[31]在實驗中比較了溫和灸、隔姜灸和直接灸3種不同方法對RA模型兔關(guān)節(jié)炎的作用,結(jié)果發(fā)現(xiàn)3種灸法均有明顯的抗炎作用,但療效上隔姜灸作用更明顯;不同灸法對下丘腦-垂體-腎上腺皮質(zhì)軸(Hypothalamic Pituit Aryadvenal Axis, HPAA)功能均有明顯的調(diào)整作用,但不同灸法比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義。該結(jié)果仍然無法回答直接灸和懸灸對于治療RA模型鼠尤其是CIA小鼠關(guān)節(jié)炎孰優(yōu)孰劣的問題。
本研究首次在CIA小鼠模型上比較了“腎俞”和“足三里”穴直接灸與懸灸治療的不同效應(yīng),并用棉花灸作為安慰對照證實艾灸的作用。結(jié)果發(fā)現(xiàn):直接灸和懸灸均能減輕CIA小鼠關(guān)節(jié)滑膜病變、下調(diào)IL-1β、IL-6、IL-17等致炎因子和上調(diào)IL-10、TGF-β等抗炎細(xì)胞因子含量;說明兩者均有一定的療效。但也觀察到,與懸灸治療比較,直接灸治療對CIA小鼠關(guān)節(jié)腫脹有不減反增的作用,并且對于糾正脾Treg/Th17細(xì)胞失衡狀態(tài)無顯著作用。這說明懸灸和直接灸的效應(yīng)還是有不同之處的,直接灸治療CIA小鼠的療效和作用機理還需進(jìn)一步研究。但也有研究[23-24]表明用麥粒灸直接灸療可改善實驗性RA大鼠足趾腫脹程度,其機制可能是通過改善滑膜組織增生與炎癥因子的凋亡。上述研究與本研究結(jié)果有所不同,可能與選擇的實驗?zāi)P拖嚓P(guān)。CIA小鼠關(guān)節(jié)較小,1 mg/壯的麥粒灸刺激量仍顯過大,也可能是導(dǎo)致腫脹不減反增的原因。
同時,還有一項研究[32]觀察了直接灸、溫和灸、隔姜灸3種不同灸法產(chǎn)生的“艾灸血清”的RA模型大鼠膝關(guān)節(jié)滑膜成纖維細(xì)胞的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)3組RA滑膜成纖維細(xì)胞48 h后均狀態(tài)變好,形態(tài)逐漸接近于正?;こ衫w維細(xì)胞,其中以隔姜灸組最為明顯。但該研究為艾灸后的產(chǎn)物——艾灸血清體外作用于培養(yǎng)的成纖維細(xì)胞的研究,又不能直接用于說明與其體內(nèi)的作用是同出一轍。但這項研究中隔姜灸法治療效果更好的發(fā)現(xiàn)與上述研究直接灸、溫和灸、隔姜灸一致,也提示應(yīng)該將直接灸、懸灸、隔姜灸用于CIA小鼠,進(jìn)一步比較其異同。