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      秸稈降解菌的篩選及其纖維素降解性能的研究

      2019-03-15 05:52:08于慧娟郭夏麗
      生物技術(shù)通報 2019年2期
      關(guān)鍵詞:外切濾紙葡聚糖

      于慧娟 郭夏麗

      (鄭州大學(xué)化工與能源學(xué)院,鄭州 450000)

      據(jù)報道我國的秸稈年產(chǎn)量位居世界第一。秸稈中含有豐富的有機質(zhì)及氮、磷、鉀、鎂、鈣和硫等農(nóng)作物生長必需的營養(yǎng)元素,充分發(fā)揮和利用秸稈還田的積極效應(yīng),對促進農(nóng)作物生長和養(yǎng)分資源的高效利用具有重要意義。有研究表明,長期秸稈還田,能增加土壤有機質(zhì),改善土壤理化性狀。并且可以減少農(nóng)業(yè)生產(chǎn)造成的污染,實現(xiàn)秸稈資源化利用[1-3]。小麥成熟后,其秸稈中纖維素含量明顯增高,可高達51.16%[4],經(jīng)處理后在農(nóng)業(yè)方面可用做肥料、飼料、生活燃料及食用菌基料等。如何加速秸稈纖維素的降解是提高秸稈在農(nóng)業(yè)方面利用率的關(guān)鍵。

      纖維素酶在秸稈降解過程中起著至關(guān)重要的作用。1906年,Seilliere在蝸牛的消化液中發(fā)現(xiàn)纖維素酶,可以分解天然纖維素[5],人們相繼開展了利用微生物對作物秸稈進行降解的研究。自然界中存在大量能夠產(chǎn)生纖維素酶的真菌和細(xì)菌,20世紀(jì)40年代以來,眾多研究者已篩選出大量纖維素降解菌,主要包括木霉屬(Trichoderma)、青霉屬(Penicillium)、曲霉屬(Aspergillus)、漆斑霉屬(Myrothecium),毛殼霉屬(Chaetomium)等,為篩選秸稈降解菌提供了重要參考依據(jù)[6-10]。利用這些微生物處理纖維素具有纖維素分解效率高、無污染的特點,這類微生物資源經(jīng)分離篩選和馴化后一般對人畜無害、可提高生物轉(zhuǎn)化效率并且作用條件溫和。本實驗主要從森林中的腐殖土、小草的根際土壤還有食用桑葉的蠶蛹糞便中進行篩選。

      眾多研究者在篩選纖維素降解菌時多采用剛果紅染色法,但剛果紅染色法會造成菌落之間混雜以及假陽性等現(xiàn)象,故本實驗在篩選菌株時首先采用秸稈粉篩選培養(yǎng)基進行篩選,以秸稈粉作為唯一碳源考察菌株的生長情況,后用剛果紅染色法進行進一步篩選,以期更直接快速地篩選出理想菌株。將篩選得到的菌株液體培養(yǎng),測定小麥秸稈降解率以及纖維素酶活,探究菌株的纖維素酶活與秸稈降解之間的關(guān)系。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 菌種篩選樣品來源 菜田土、小草根際土、蠶糞及森林土。

      1.1.2 培養(yǎng)基 (1)赫奇遜氏(Huchinson)無機鹽培 養(yǎng) 液 :KH2PO41.0 g,NaCl 0.1 g,MgSO4·7H2O 0.3 g,NaNO32.5 g,CaCl20.1 g,F(xiàn)eCl30.01 g,蒸餾水1 000 mL。(2)羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)培養(yǎng)基:CMC-Na 15 g,瓊脂20 g,赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)液1 000 mL。(3)秸稈粉平板培養(yǎng)基:小麥秸稈80℃烘干至恒重,粉碎過100目篩。小麥秸稈粉10 g,瓊脂粉20 g,赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)液1 000 mL。(4)濾紙平板培養(yǎng)基:赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)液中添加瓊脂粉20 g/L,待菌種轉(zhuǎn)接至培養(yǎng)基后,立刻鋪一片無菌扇形濾紙片在培養(yǎng)基上。(5)液體產(chǎn)酶培養(yǎng)基:小麥秸稈粉20 g,赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)液1 000 mL。(6)秸稈降解培養(yǎng)基:小麥秸稈烘干剪成1 cm左右的段狀,段狀秸稈20 g,赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)液1 000 mL。(7)生物量測定培養(yǎng)基:CMC-Na 15 g,赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)液1 000 mL。

      1.2 方法

      1.2.1 菌種的分離與純化 稱取10 g樣品接入90 mL無菌水中,恒溫震蕩箱(28℃、120 r/min)中震蕩30 min,取樣品懸液,用無菌水稀釋成 10-1、10-2、10-3的濃度梯度,吸取稀釋濃度為10-3的稀釋液,涂布于秸稈粉平板培養(yǎng)基中[11],置于28℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5 d,根據(jù)在以秸稈粉為唯一碳源的培養(yǎng)基中菌落的直徑(即生長速度)來評估菌株對秸稈的降解利用情況,選取直徑較大的菌株進行分離純化并保存。將純化好的菌株分別點種在羧甲基纖維素鈉培養(yǎng)基上,28℃下培養(yǎng)4 d,用1 g/L 剛果紅染液染色20 min,棄去染液,加入1 mol/L NaCl溶液,洗滌20 min 后測量菌落直徑和透明圈直徑,分別用D和 H來表示。根據(jù)透明圈直徑和菌落直徑比值大小初步判斷菌株產(chǎn)纖維素酶的能力,選取比值大的菌株進行下一步研究[12-14]。

      1.2.2 秸稈降解 將純化保存的菌株分別轉(zhuǎn)接至平板,培養(yǎng)5 d后,用無菌水制成菌懸液,分別取5 mL菌懸液接種于每瓶秸稈降解培養(yǎng)基中,置于恒溫(28℃、120 r/min)震蕩培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。10 d后將秸稈取出,用蒸餾水沖洗,再用稀酸溶液沖洗,以去除其上附著的菌體和CaCO3沉淀等,再用蒸餾水沖洗3次,80℃烘干至恒重,以失重法計算秸稈降解率。

      W0:初始秸稈干重;Wt:培養(yǎng)t時間后秸稈干重。

      1.2.3 濾紙腐解 將菌株轉(zhuǎn)接至赫奇遜氏無機鹽培養(yǎng)基后,把滅菌后的扇形濾紙平鋪至平板中。28℃下培養(yǎng)7 d,觀察濾紙的腐爛程度。

      1.2.4 纖維素酶活的測定 纖維素粗酶液的制備:制備每株菌株的菌懸液(方法同1.2.2),接5 mL菌懸液入產(chǎn)酶培養(yǎng)基,置于恒溫震蕩(28℃、120 r/min)培養(yǎng)箱中培養(yǎng),分別于1、2、3、5、6、9、12和15 d取培養(yǎng)液過濾,濾液即為制備的粗酶液。

      內(nèi)切酶活(endo-1,4-β-D-glucanase,EG/Cen)的測定:取4支帶有刻度的試管,編號后分別加入1.5 mL的0.5% CMC-Na溶 液(0.5 g CMC-Na定容到100 mL 0.05 mol/L,pH4.8的醋酸-醋酸鈉緩沖溶液中)作反應(yīng)底物并提供緩沖環(huán)境,0.5 mL粗酶液,其中1號試管中加入2 mL DNS以鈍化酶活性,作空白對照。4支試管同時放入水浴鍋中50℃保溫30 min。保溫反應(yīng)后,立刻取出,并向2、3、4號試管中加入2 mL DNS以終止反應(yīng),搖勻后沸水浴10 min,之后冷卻至室溫并用蒸餾水定容至20 mL,充分混勻。以1號試管的溶液為空白對照調(diào)零點,在540 nm波長下測定2、3、4號試管溶液的吸光值[15]。葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制參見農(nóng)業(yè)行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)NY/T9122004[16],根據(jù)每次測定的葡萄糖量,計算出相應(yīng)的酶活力。

      外切酶活(exo-1,4-β-D-glucanase,CBH/Cex)的測定:用50 mg脫脂棉作為反應(yīng)底物,加入1.5 mL的醋酸-醋酸鈉緩沖溶液(0.05 mol/L,pH4.8),代替內(nèi)切酶活測定過程中CMC-Na溶液,其余操作一致。

      β-葡萄糖苷酶活(β-1,4-glucosidase,β-Gase)的測定:用1.5 mL 1%的水楊苷溶液作為反應(yīng)底物代替內(nèi)切酶活測定過程中CMC-Na溶液,其余操作一致。

      酶活單位(U/mL)定義為:50℃下,每毫升酶液在上述反應(yīng)條件下1 min內(nèi)催化底物水解生成 1 μmol 葡萄糖所需的酶量。

      纖維素酶活力(U/mL)=(m×1000×n)/(M×V×t)。m:反應(yīng)過程中產(chǎn)生葡萄糖的量(mg);n:粗酶液稀釋倍數(shù);M:葡萄糖分子質(zhì)量(μg /μmol);V:反應(yīng)體系中粗酶液的體積(mL);t:反應(yīng)時間(min)。

      1.2.5 生物量的測定 根據(jù)干重法測定不同菌株的生物量。

      2 結(jié)果

      2.1 菌種的篩選

      2.1.1 菌種的初篩 挑選可以在以秸稈粉為唯一碳源的秸稈粉培養(yǎng)基長勢較好和H/D較大的菌株。在秸稈粉平板中篩選得到5株菌株,編號為z-5、4-1、3-1、2-2、m-2。其中z-5菌落直徑最大,在剛果紅染色實驗的結(jié)果中,菌株z-5的H/D位居第二,達到16.2 mm,透明圈比較明顯,具有較大的研究潛力(表1)。

      表1 不同菌株的H/D

      2.1.2 小麥秸稈降解率的測定 本實驗篩菌的主要目的是篩選秸稈降解菌,故對菌株的秸稈降解率進行考察。將5株真菌分別接入秸稈降解培養(yǎng)基中,置于28℃,120 r/min下震蕩培養(yǎng)10 d,測得小麥秸稈降解率如圖1所示。

      綠色木霉是目前已知的纖維素酶活較高的菌株,常被應(yīng)用于農(nóng)作物秸稈的降解中,因此以綠色木霉為參考菌株。由圖1可知,5株真菌的秸稈降解率均高于綠色木霉。其中菌株z-5和菌株4-1的降解率最高,分別為47%和45%,其次是菌株3-1、菌株2-2和菌株m-2,分別為32%、31%和29%。在相同的秸稈降解條件下,綠色木霉的小麥秸稈降解率最低,為20%左右,菌株z-5的降解率是綠色木霉的2倍以上。

      圖1 不同菌株的小麥秸稈降解率

      2.2 不同菌株的濾紙腐解情況

      將秸稈降解率高于30%的4株菌株分別涂布轉(zhuǎn)接至濾紙培養(yǎng)基中培養(yǎng)7 d,結(jié)果如表2所示。其中菌株z-5和菌株4-1對濾紙的降解能力最強;菌株3-1和菌株2-2次之,實驗結(jié)果與小麥秸稈降解率實驗的結(jié)果相似。

      表2 不同菌種對濾紙的降解能力

      2.3 不同菌種纖維素酶活的測定

      將4株真菌進行液態(tài)培養(yǎng),分別測定它們在不同時期的外切葡聚糖酶活,內(nèi)切葡聚糖酶活和β-葡萄糖苷酶活。

      在整個培養(yǎng)過程中,菌株4-1、2-2和z-5的內(nèi)切葡聚糖酶活均呈現(xiàn)先增后降的趨勢,而菌株3-1的內(nèi)切葡聚糖酶活呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢(圖3)。菌株4-1和z-5的內(nèi)切酶活在第3 天達到最大,分別為56 U/mL和49 U/mL;而菌株2-2內(nèi)切酶活在第5天達到最大值,為76 U/mL。菌株3-1的內(nèi)切酶活在第15天時達到14.62 U/mL。

      圖3 不同菌株的內(nèi)切葡聚糖酶活

      菌株4-1、菌株2-2和菌株z-5的外切葡聚糖酶活變化趨勢與它們的內(nèi)切葡聚糖酶活變化趨勢相似,即先增后降(圖4)。在第3天時3個菌株的外切酶活均達到最大,分別為43 U/mL、58 U/mL和54 U/mL。第3-9天,菌株z-5與菌株2-2的外切酶活值接近。第9天至第15天,菌株z-5的外切酶活均大于菌株2-2。菌株3-1外切酶活在整個培養(yǎng)期中一直呈增長趨勢,在第15天達到10 U/mL。

      圖4 不同菌株的外切葡聚糖酶活

      菌株4-1、菌株z-5和菌株2-2的β-葡萄糖苷酶活變化與它們的內(nèi)、外切葡聚糖酶活變化趨勢相似,即先增后降(圖5)。菌株z-5和菌株4-1的酶活在第3天達到最大,分別為47 U/mL和59 U/mL,菌株2-2在第5天達到最大,為76 U/mL,其中菌株2-2的酶活峰值最大。在第9天,3個菌株的酶活值接近。在第9-12天,菌株z-5酶活下降不明顯,而菌株2-2和4-1均有明顯下降,其中菌株2-2下降幅度最大。菌株3-1的β-葡萄糖苷酶活隨著培養(yǎng)時間延長不斷增加,第9天后增加幅度加大,第15天達到了60 U/mL。

      圖5 不同菌株的β-葡萄糖苷酶活

      2.4 不同菌株生物量的比較

      比較4個菌株的生物量發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)10 d時菌株z-5的生物量最大,其次是菌株3-1和菌株4-1,菌株2-2的生物量最小,表明菌株z-5生長速率最大,菌株2-2生長速率最?。ū?)。菌株2-2的內(nèi)切酶活與外切酶活峰值均是菌株3-1相應(yīng)酶活峰值的5倍以上,但兩者的秸稈降解能力相似。在相同的培養(yǎng)條件下,菌株2-2的生物量僅為菌株3-1的約1/4,兩者生物量差異顯著(P<0.05)。由此推測較低的生物量可能是造成菌株2-2秸稈降解率偏低的因素之一。

      表3 不同菌株的生物量

      3 討論

      秸稈的主要成分是纖維素,纖維素是葡萄糖以β-1,4糖苷鍵結(jié)合形成的高分子化合物,包括葡萄糖單位2 000-10 000個,濾紙是聚合度中等的纖維素材料。本實驗中所篩選菌株的濾紙腐解結(jié)果與它們的秸稈降解結(jié)果相似,即菌株z-5和菌株4-1降解能力較高,而菌株3-1和菌株2-2較低。同時,通過對木質(zhì)素降解酶系即木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶和漆酶等酶活的測定,未發(fā)現(xiàn)這些菌株具有木質(zhì)素降解酶活(數(shù)據(jù)未呈現(xiàn)),表明本實驗所篩選的秸稈降解菌具有降解秸稈纖維素的能力,但不具有降解秸稈木質(zhì)素的能力。同時說明濾紙的腐爛程度能較好地反映出菌株的纖維素降解能力。

      外切葡聚糖酶作用于纖維素鏈的末端,產(chǎn)生纖維二糖。內(nèi)切葡聚糖酶作用于纖維素內(nèi)部的非結(jié)晶區(qū),水解纖維素分子內(nèi)部的β-1,4-糖苷鍵,將長鏈纖維素分子打斷,為外切葡聚糖酶提供更多的還原端或非還原端。β-葡萄糖苷酶將纖維二糖水解成葡萄糖分子。該3種酶的合理搭配能夠有效分解纖維素為葡萄糖。在纖維素酶活的檢測中發(fā)現(xiàn),所篩選菌株均具有3種纖維素降解酶,纖維素酶種類較為齊全,但它們的纖維素酶活的變化趨勢卻不完全相同,其中菌株3-1的3種纖維素降解酶活在實驗過程中逐漸加大,其他3株菌的3種纖維素酶活均為先增后降。菌株z-5和菌株4-1的3種酶活峰值均出現(xiàn)在同一天,而菌株2-2的3種酶活峰值出現(xiàn)在不同時間內(nèi)。菌株2-2的3種纖維素酶活的峰值均為最高,但秸稈降解率卻不是最高,這與王洪媛和范丙全[17-18]研究結(jié)果不同。推測原因有二:其一,菌株2-2的內(nèi)切酶活和β-葡萄糖苷酶活峰值均出現(xiàn)在第5天,外切酶活峰值則出現(xiàn)在第3天,3種酶的協(xié)同性較低。其二,菌絲的匍匐生長可破壞秸稈的致密結(jié)構(gòu),菌株2-2的生長速率較低,導(dǎo)致破壞秸稈結(jié)構(gòu)作用減弱,因此秸稈降解率最低。菌株z-5的3種酶的協(xié)同性較高,而且生長速率快,菌絲的蔓延對秸稈結(jié)構(gòu)能產(chǎn)生一定破壞作用,促進相應(yīng)酶與底物接觸,由此秸稈降解率最高。雖然菌株4-1的生長速率低于菌株3-1,但在秸稈降解的10 d內(nèi),菌株4-1的3種酶活均高于菌株3-1,由此菌株4-1的秸稈降解率高于菌株3-1,表明纖維素酶的作用在秸稈降解中起著主導(dǎo)作用。

      4 結(jié)論

      從土樣中分離純化出4株高效秸稈降解菌,經(jīng)初步鑒定4株菌株皆為真菌,測定所得菌株的纖維素酶活、濾紙腐爛情況和小麥秸稈降解率。其中秸稈降解效果最好的為菌株z-5,10 d內(nèi)秸稈降解率可達47%,并且菌株z-5酶系種類齊全,濾紙腐解試驗與小麥秸稈降解實驗結(jié)果相似。

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