林昶,李玉平,齊建彤,鄭曙光,朱璨,柴藝匯,徐昌君,王和生,楊長福
(貴州中醫(yī)藥大學,貴州 貴陽 550002)
何首烏為蓼科植物何首烏的干燥塊根,作為中醫(yī)常用的一味傳統(tǒng)中藥,在我國有著悠久的應用歷史。現(xiàn)代研究表明,何首烏具有抗動脈粥樣硬化的作用[1]。該藥主要含3類有效成分:蒽醌類、二苯乙烯苷類及多糖類化合物。其中二苯乙烯苷有降血脂和抗動脈粥樣硬化(Atherosclerosis, AS)的作用,但其作用機制還不清楚[2-4]。本實驗以肝癌HepG2細胞作為研究對象,采用氧化性低密度脂蛋白(oxidation low density lipoprotein, ox-LDL)制作高膽固醇細胞模型,二苯乙烯苷干預后觀察膽固醇含量的變化,以及ATP結合盒轉運蛋白A1(ATP-binding cassette transporter A1, ABCA1)、ATP結合盒轉運蛋白G1(ATP-binding cassette transporterG1, ABCG1)和B族I型清道夫受體(Scavenger reptor class B type I, SR-BI)mRNA表達水平的變化,初步探索二苯乙烯苷降膽固醇的作用機制。
肝癌HepG2細胞(上海陸奧生物科技有限公司),0.25%胰蛋白酶(美國Gibco公司),青鏈霉素混合液(哈爾濱哈藥集團制藥總廠),高糖DMEM(美國HyClone公司),胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司),總RNA提取試劑盒(日本TaKaRa公司MiniBEST Universal RNA Extraction Kit),cDNA鏈合成試劑盒(PrimeScriptTMRT reagent Kit with Gdna Eraser)、PCR酶(Premix TaqTM)、瓊脂糖及DNA Marker等購自寶生物工程(大連)有限公司,ox-LDL(北京索萊寶科技有限公司),膽固醇含量測定試劑盒(蘇州科銘生物技術有限公司),DL5和00 DNA Marker(北京康為世紀生物科技有限公司),油紅O染液(北京索萊寶科技有限公司),生工生物工程(上海)股份有限公司合成逆轉錄聚合酶鏈反應(reverse transcription-polymerase chain reaction, RT-PCR)擴增引物。見表1。
MSL-3020型全自動高壓滅菌鍋(日本三洋有限公司),BSC 1800-Ⅱ-A/B3型超凈工作臺(上海瑞仰凈化裝備有限公司),TS-100F型倒置相差顯微鏡(日本Nikon公司),Multiskan FC自動酶標讀儀(美國Thermo公司),NKSY恒溫水浴鍋(江蘇諾基儀器有限公司),二氧化碳培養(yǎng)箱(美國Thermo公司),微量加樣器(德國Eppendorf公司),D-37520臺式冷凍高速離心機(美國Thermo Fisher公司),JA2004N型電子天平(上海箐海儀器有限責任公司),SIM-F140AY6ICEMAKER型制冰機(日本三洋有限公司),ELIX/RIOS-20型反滲透純水系統(tǒng)(法國Millipore公司),總/游離膽固醇含量測定試劑盒(E1015/E1016)(蘇州科銘生物技術有限公司),PCR擴增儀(GeneAmp 9700型,美國ABI公司),凝膠圖像分析系統(tǒng)(GGM/D2,英國Syngene公司),超低溫冰箱(德國Eppendorf公司),Bio-Rad GEL DOC 2000凝膠成像系統(tǒng)(美國BIO-RAD公司),細胞培養(yǎng)瓶(美國Corning公司),6孔和96孔培養(yǎng)板(美國 Corning公司)。
表1 PT-PCR引物序列
1.3.1 細胞培養(yǎng)HepG2細胞常規(guī)培養(yǎng)于鏈霉素和青霉素終濃度為100 u/ml的含10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基中,每2~3天細胞傳代1次。取對數(shù)生長期的細胞用于實驗研究。
取HepG2細胞懸液,在顯微鏡下進行細胞計數(shù),調整細胞濃度為5×106個/ml,將細胞懸液接種于25 cm2培養(yǎng)瓶內,1ml/瓶,用培養(yǎng)基補足至3.5 ml,在37℃、5%二氧化碳CO2環(huán)境下孵育24 h至細胞貼壁,棄培養(yǎng)基,用提前預冷的PBS沖洗2次,更換培養(yǎng)液。實驗分為正常組、模型組(ox-LDL 50 mg/L)、 A組(ox-LDL 50 mg/L+二苯乙烯苷250μmol/L)、B組 (ox-LDL 50 mg/L+二苯乙烯苷188μmol/L)、C組(ox-LDL 50 mg/L二苯乙烯苷125μmol/L)及D組(ox-LDL 50 mg/L+二苯乙烯苷62.5μmol/L),每組培養(yǎng)3瓶,重復3次,換成相應的培養(yǎng)液后繼續(xù)培養(yǎng)細胞48 h后。油紅O脂肪染色法觀察,測定各組細胞內總膽固醇(total cholesterol, TC)、游離膽固醇(free cholesterol, FC)及培養(yǎng)基上清TC和FC。采用RTPCR檢測肝癌HepG2細胞ABCG1、ABCA1和SR-BI mRNA表達水平的變化。
1.3.2 細胞變化按照油紅O脂肪染色試劑盒說明書進行染色。吸去培養(yǎng)基,PBS清洗貼壁的細胞3次,ORO Fixative固定10 min,吸去固定液并干燥,ORO Stain液染15 min,加入適量60%異丙醇漂洗30 s并用流水沖洗,蘇木精復染2 min,ORO Buffer染1 min,流水沖洗晾干后鏡下觀察結果。
1.3.3 膽固醇測定室溫下2 000 r/min離心5 min后,取各組細胞沉淀和培養(yǎng)基,沉淀需用PBS洗2次后以1×106個細胞加0.1 ml試劑盒配備的裂解液混勻,靜置10 min后取上清進行膽固醇測定。用E1015試劑盒和E1016檢測沉淀和培養(yǎng)基中TC、FC。取適量上清用BCA法蛋白定量試劑盒(#p1511)測定蛋白濃度,以每毫克蛋白濃度校正上清TC、FC含量,校正上清膽固醇=上清總蛋白/FC濃度×蛋白濃度。應用膽固醇的外流率=培養(yǎng)基TC/(培養(yǎng)基TC+細胞內TC)的方式計算膽固醇的外流率。
1.3.4 總RNA提取及RT-PCR擴增按購買的RNA提取試劑盒說明書和cDNA合成試劑盒的方法進行總RNA提取并合成cDNA鏈,進行PCR擴增反應,PCR反應條件:94℃預變性2 min,94℃變性30 s,58℃(GAPDH)、60℃(ABCA1、ABCG1)、62℃(SR-BI)退火30 s,72℃延伸30 s,共30個循環(huán),72℃繼續(xù)延伸10 min。取5μl產物進行電泳檢測,用BioRad凝膠成像系統(tǒng)觀察并拍照記錄,最后用GAPDH灰度值對目的基因進行矯正并采用Quantity One軟件分析。
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較用LSD-t檢驗,P <0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
各組膽固醇情況比較,經單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05);正常組、A、B、C和D組細胞內TC、FC含量均低于模型組(P <0.05),同時A、B、C和D組上清TC較模型組升高(P <0.05),B、C組上清FC較模型組升高(P <0.05)。二苯乙烯苷能夠減少HepG2細胞內膽固醇含量,增加膽固醇外流率(P <0.05),其中二苯乙烯苷濃度為125μmol/L時達最高值(t =10.094,P =0.000)。見表2和圖1。
表2 各組膽固醇情況比較 (±s)
表2 各組膽固醇情況比較 (±s)
注:?與模型組比較,P <0.05
組別細胞內TC/(mmol/L)細胞內FC/(mmol/L)上清TC/(mmol/L)上清FC/(mmol/L)膽固醇外流率/%正常組33.49±0.99?17.21±1.78?111.43±6.49?85.52±1.44?76.77±1.55?模型組120.42±1.4546.15±1.83139.21±4.9789.29±1.4453.59±0.76 A組43.91±1.42?25.84±1.32?177.61±6.49?88.98±2.0680.16±0.66?B組75.99±2.85?34.98±1.32?180.87±8.65?94.64±1.13?70.39±0.79?C組37.33±2.18?23.56±1.32?198.85±7.79?89.92±1.13?84.12±0.62?D組43.91±1.42?27.36±2.02?182.51±7.08?87.71±1.5880.59±0.59?F值1 015.091116.23765.97112.269468.170 P值0.0000.0000.0000.0000.000
圖1 油紅O脂肪染色結果 (×400)
各組ABCA1、ABCG1和SR-BI mRNA表達水平比較,經單因素方差分析,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05)。模型組可見各基因條帶較細,較弱,進一步兩兩比較顯示,模型組細胞ABCA1 mRNA表達水平較正常組下降(P <0.05)。A、B、C和D組ABCA1、ABCG1表達水平較模型組升高(P <0.05),A、B和C組SR-BI表達水平較模型組升高(P <0.05),A組與B組ABCA1、ABCG1及SR-BI mRNA表達水平比較,差異無統(tǒng)計學意義(t =1.586、0.221和0.372,P =0.139、0.829和0.716)。見表3和圖2~7。
表3 各組ABCA1、ABCG1和SR-BI mRNA表達水平 比較 (±s)
表3 各組ABCA1、ABCG1和SR-BI mRNA表達水平 比較 (±s)
注:?與模型組比較,P <0.05
組別ABCA1ABCG1SR-BI正常組1.13±0.11?1.40±0.14?0.76±0.12?模型組0.80±0.110.89±0.130.35±0.12 A組1.24±0.11?1.49±0.13?0.81±0.12?B組1.10±0.11?1.46±0.14?0.84±0.14?C組1.07±0.11?1.22±0.14?0.81±0.12?D組1.04±0.11?1.23±0.15?0.28±0.13 F值5.3907.68912.642 P值0.0080.0020.000
圖2 HepG2細胞ABCA1 mRNA的表達
圖3 各組ABCA1與GAPDH比值比較 (±s)
圖4 HepG2細胞ABCG1 mRNA的表達
圖5 各組ABCG1與GAPDH比值比較 (±s)
圖6 HepG2細胞SR-BI mRNA的表達
圖7 各組SR-BI與GAPDH比值比較 (±s)
高脂血癥是指血漿TC或/和甘油三脂(Triglyceride, TG)的異常增高,其是公認的AS發(fā)生、發(fā)展最重要的原因,AS病變中脂質源于血漿脂蛋白的浸潤,主要為FC、膽固醇脂(cholesterol ester, CE),其次為TG、磷脂及載脂蛋白[5]。過多的脂質沉積在動脈膜內,是局部形成隆起的病灶,繼而內膜纖維結締組織增生,將其圍起、固定,形成粥樣斑塊。流行病學調查證明,AS的嚴重程度隨血漿膽固醇水平的升高呈線性加重[5]。
膽固醇外流與多個受體或蛋白參與密切相關[6]。當體內膽固醇過多時,可通過上調ABCA1、ABCG1和SR-BI,增加肝臟膽固醇向膽汁外流[7]。ABCA1、ABCG1和SR-BI是介導細胞膽固醇外流的重要調節(jié)蛋白,對調節(jié)膽固醇水平起著重要作用[8-10]。ABCA1參與膽固醇外流的最初始的階段,介導細胞內FC結合到載脂蛋白apoA-I上形成pre-βHDL,接著在卵磷脂-膽固醇脂酰基轉移酶(lecithin-cholesterol acyltransferase, LCAT)作用下將結合的FC酯化成CE,從而形成成熟的高密度脂蛋白(High density lipoprotein, HDL)[11]。成熟的HDL在ABCG1介導下繼續(xù)結合FC,最終形成富含脂質的HDL[12]。富含脂質的HDL轉運膽固醇有2條路徑:一條是在CETP介導下將自身CE和極低密度脂蛋白(very low density lipoprotein, VLDL)中的TG進行交換,使VLDL顆粒逐漸變小,密度逐漸增加,最終轉變成低密度脂蛋白(low-density lipoprotein, LDL),進而被肝細胞上的LDL受體識別而入肝,并在肝臟將CE解離出來[13]。繼而又從CE中將FC分解出來,這一部分FC經肝細胞上ABCA1介導再次進入血液循環(huán);另一條是富含脂質的HDL直接被肝細胞上的HDL受體SR-BI選擇性識別并介導入肝,肝臟將CE解離出來,最終CE中膽固醇轉化為糞甾醇類和膽汁酸后外排到膽汁[11]。ABCA1在肝細胞和外周組織細胞都有大量表達,ABCG1主要表達在外周組織細胞,SR-BI主要表達在肝組織細胞[14-16]。ABCA1使肝細胞和外周組織細胞膽固醇流出至apoA-I形成HDL,ABCG1使外周組織細胞膽固醇流出至HDL形成富含脂質的HDL,增加ABCA1或ABCG1的表達能使肝細胞和周圍組織細胞流出到HDL的膽固醇增加,降低膽固醇的含量。增加SR-BI表達后,增加其介導HDL流向肝臟同時,也使膽固醇主要以HDL的形式轉移至肝,減少了LDL的生成,進而降低LDL被氧化成ox-LDL的量。ABCA1、ABCG1和SR-BI是一個正性調節(jié)劑,其高表達可促進膽固醇外流,清除體內過多的膽固醇[17-18]。
ox-LDL是LDL經氧化而成的,是觸發(fā)AS炎癥反應引起AS的關鍵因子[19-20]。炎癥反應貫穿AS的整個過程,與高膽固醇血癥共同構成了AS的主要病因[21]。二苯乙烯苷能通過調脂、抗氧化、抗炎、舒張血管及增強免疫力等多靶點多環(huán)節(jié),多途徑發(fā)揮抗AS作 用[2-4]。有研究表明二苯乙烯苷降血脂的同時ox-LDL減少[22]。
本實驗以不同濃度的二苯乙烯苷處理高膽固醇HepG2細胞后,發(fā)現(xiàn)二苯乙烯苷確有降膽固醇的效果,與模型組相比,ABCG1、ABCA1和SR-BI mRNA表達水平均明顯上調。因此筆者認為二苯乙烯苷可能是通過上調ABCG1、ABCA1和SR-BI的表達,增加肝癌HepG2細胞膽固醇的外流,降低膽固醇的 含量。