遲惠榮 張亞惠 曾欣 陳衛(wèi)良 毛碧增
摘要 為鑒定藥用植物內(nèi)生菌的種類,采用稀釋涂布平板法從多花黃精Polygonatum cyrtonema Hua的根、莖、葉內(nèi)分離出11株內(nèi)生菌菌株,經(jīng)平板對(duì)峙法篩選出對(duì)尖孢鐮刀菌Fusarium oxysporum具有拮抗作用的菌株ZJU-3。經(jīng)形態(tài)學(xué)、生理生化鑒定及16S rDNA 序列分析,初步確定該菌株為貝萊斯芽胞桿菌Bacillus velezensis。通過(guò)基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間質(zhì)譜(MALDI-TOF-MS)分析,發(fā)現(xiàn)該菌株能產(chǎn)生表面活性素(surfactin)、泛革素(fengycin)和伊枯草菌素(iturin)三類脂肽類化合物。利用鹽酸沉淀和甲醇抽提法獲得了菌株ZJU-3發(fā)酵液中脂肽粗提物。該脂肽粗提物可明顯抑制尖孢鐮刀菌菌絲的生長(zhǎng),抑制率達(dá)到 51.6%。經(jīng)液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用(LC-MS)分析表明菌株ZJU-3可產(chǎn)生吲哚乙酸、激動(dòng)素、玉米素、赤霉素等多種植物激素。溫室栽培試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn)該菌株對(duì)多花黃精具有顯著的促生效果,根長(zhǎng)和單株根數(shù)明顯高于對(duì)照組。本研究可為進(jìn)一步應(yīng)用該菌株提供理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞 多花黃精; 貝萊斯芽胞桿菌; 內(nèi)生菌; 鑒定; 抗菌活性; 促生
中圖分類號(hào): S 476
文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼: A
DOI: 10.16688/j.zwbh.2018337
Hallmann[1]首次完整地將植物內(nèi)生菌(endophyte)定義為能夠在健康植物活組織內(nèi)生存而不引起明顯寄主植物病變的一大類微生物,主要包括細(xì)菌、真菌和放線菌,其中內(nèi)生細(xì)菌主要包括芽胞桿菌屬Bacillus、假單胞桿菌屬Pseudomonas、腸桿菌屬Enterobacter和土壤桿菌屬Agrobacterium等[2]。人們對(duì)植物內(nèi)生菌的研究主要涉及內(nèi)生菌的生物學(xué)作用,如可促進(jìn)宿主植物的生長(zhǎng),促進(jìn)植株對(duì)營(yíng)養(yǎng)元素的吸收[35]、可產(chǎn)生抗菌物質(zhì)抑制病原菌生長(zhǎng)[6]、誘導(dǎo)植物自身產(chǎn)生系統(tǒng)抗性等[67]。
多花黃精為百合科黃精屬植物,被《中國(guó)藥典》(2015年版)收錄[8],是一味藥食同源的中藥材。肥厚的地下根莖是多花黃精主要的藥用部位, 干燥根莖具有補(bǔ)氣養(yǎng)陰、健脾、潤(rùn)肺、益腎等功效。多花黃精主產(chǎn)于湖南、安徽、江西、浙江等地,生產(chǎn)上以根莖繁殖為佳,因其藥用價(jià)值和營(yíng)養(yǎng)保健等功能價(jià)值不斷被人們挖掘,目前黃精原材料處于供不應(yīng)求的狀況。
近年來(lái),隨著藥用植物的分類、化學(xué)藥理和栽培方式等方面的深入研究,其內(nèi)生菌的多樣性已成為當(dāng)今研究的熱點(diǎn)。然而,目前僅有少量文獻(xiàn)報(bào)道黃精內(nèi)生菌的研究,如李艷玲等[9]報(bào)道了泰山黃精的根、莖、葉和果實(shí)中分布最廣的內(nèi)生菌類群——鐮刀菌屬Fusarium sp.,并對(duì)其抑菌活性進(jìn)行了研究。汪瀅等[10]報(bào)道,浙江多花黃精內(nèi)生真菌變灰青霉Penicillium canescens可產(chǎn)生3種抗菌物質(zhì)——乙基氧苯氨基亞胺乙酸、灰黃霉素和呋喃-2-甲基-3-羧甲基-4-羥基-5-甲氧基萘,其對(duì)多種植物病原菌具有抑制活性。柏曉輝等[11]從黃山地區(qū)健康的野生黃精根莖中分離得到1株內(nèi)生菌 HJ-1,該菌對(duì)綠膿桿菌P.aeruginosa、鼠傷寒沙門氏菌Salmonella typhi和蘇云金芽胞桿菌B.thuringiensis均具有顯著抑菌效果。
本論文主要針對(duì)浙江省江山市的多花黃精的內(nèi)生細(xì)菌展開(kāi)研究,從中分離篩選到一株對(duì)尖孢鐮刀菌F.oxysporum具有拮抗作用的菌株。在此基礎(chǔ)上,開(kāi)展了該菌株的生理生化和分子鑒定;對(duì)其產(chǎn)生的抗菌物質(zhì)成分和植物激素種類進(jìn)行了分析,并測(cè)定了對(duì)尖孢鐮刀菌的抗菌作用和對(duì)植物的促生作用。
1 材料與方法
1.1 材料
供試植株:多花黃精采自浙江省江山市(28°22′26.97″N,118°30′36.14″E),由浙江省江山市保安鄉(xiāng)黃精種植基地提供。
供試菌株:多花黃精病原菌尖孢鐮刀菌F.oxysporum保存于浙江大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院生物技術(shù)研究所。
培養(yǎng)基與試劑:LB、PDA和PDB培養(yǎng)基參照《植病研究方法》[12]配制,分別用于細(xì)菌和真菌的培養(yǎng)。細(xì)菌基因組提取試劑盒購(gòu)于上海生工生物工程有限公司;PCR引物由北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司合成;Taq酶、dNTPs等試劑購(gòu)于北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司;其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
儀器設(shè)備:Bio-Rad T100型PCR儀;Fire Read 型凝膠成像儀;熱電LYNX6000型高速冷凍離心機(jī);Agilent 1100 高效液相色譜儀和Agilent 6410三重串聯(lián)四級(jí)桿質(zhì)譜儀;基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間質(zhì)譜(MALDI-TOF-MS);日立HITACHI-TM100臺(tái)式掃描電鏡;HITACHI-7650透射電鏡;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(RE301)。
1.2 內(nèi)生菌株的分離與拮抗作用測(cè)定
1.2.1 內(nèi)生菌株的分離
采集的多花黃精樣品用自來(lái)水沖洗10 min,自然晾干,然后依次用 75%乙醇浸泡1 min,無(wú)菌水沖洗3次,5% NaClO 浸泡6 min,無(wú)菌水沖洗5次。樣品經(jīng)表面消毒后,將根、莖、葉用無(wú)菌剪刀剪開(kāi),莖切成 1 cm 左右的小段,置于 LB 培養(yǎng)基平板和PDA平板上;另取將根、葉加無(wú)菌水研磨至糊狀,靜置 10 min,用無(wú)菌水按梯度102~106稀釋,取20 μL分別涂布于 LB 平板和PDA平板,同時(shí)取表面消毒時(shí)最后1次的洗滌水20 μL涂布于LB 平板和PDA平板上,作為對(duì)照組以驗(yàn)證消毒是否徹底。每個(gè)處理3個(gè)重復(fù),置于28℃下培養(yǎng)48 h。選取不同形態(tài)特征的單菌落反復(fù)平板劃線純化后,將不同菌株菌懸液與20%甘油按照1∶1比例混合,保存于-70℃。
1.2.2 內(nèi)生菌株拮抗作用測(cè)定
采用平板對(duì)峙培養(yǎng)法篩選對(duì)尖孢鐮刀菌F.oxysporum具有抑制作用的菌株。首先將尖孢鐮刀菌在PDA平板上于 28℃培養(yǎng)5 d,用直徑為5 mm的打孔器在平板上打取圓形病原菌菌餅,將其接入新的PDA平板中央,然后在病原菌菌餅兩側(cè)等距離(2.5 cm)處點(diǎn)接分離得到的細(xì)菌菌株,于 28℃培養(yǎng) 3 d 后觀察記錄抑菌圈。每個(gè)處理重復(fù)3 次,有抑菌圈的菌株即為拮抗菌。
1.3 內(nèi)生拮抗菌的鑒定
1.3.1 形態(tài)學(xué)觀察
將分離菌株劃線接種于LB培養(yǎng)基,28℃培養(yǎng) 24 h 后觀察菌落形態(tài)特征。進(jìn)行革蘭氏染色,并利用掃描電鏡、透射電鏡觀察菌體、芽胞形態(tài)及大小。
1.3.2 生理生化特征分析
將分離菌株劃線接種于LB 培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng) 24~48 h 后依據(jù)《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[13]對(duì)該菌株的生理生化特征進(jìn)行鑒定。
1.3.3 拮抗菌的16S rDNA序列測(cè)定、gyrB基因序列測(cè)定及同源性分析
利用細(xì)菌基因組提取試劑盒提取拮抗菌株全基因組DNA。采用細(xì)菌16S rDNA的通用引物27F:5′-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3′,1492R:5′-TAC GGC TAC TTG TTA CGA CTT-3′,以1.2.2篩選到的拮抗菌(ZJU-3)基因組為模板進(jìn)行16S rDNA PCR擴(kuò)增。PCR運(yùn)行程序:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,53℃退火30 s,72℃延伸1 min,共35個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。選用引物UP1和UP2r[14] 進(jìn)行g(shù)yrB基因擴(kuò)增,反應(yīng)條件:95℃ 4 min;98℃變性10 s,62℃退火1 min,72℃延伸3 min,30個(gè)循環(huán);72℃10 min。經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)得到特異性片段,將樣品送生工生物工程(上海)股份有限公司測(cè)序。將所測(cè)得序列登錄在NCBI網(wǎng)站,與GenBank中的所有細(xì)菌16S rDNA序列進(jìn)行BLAST比對(duì),選取同源性98%以上的序列,再結(jié)合其模式菌株序列,利用MEGA 5.0用鄰接法(neighbor-joining,N-J)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),進(jìn)行同源性分析鑒定。
1.4 菌株ZJU-3脂肽類化合物分析與抗菌檢測(cè)
1.4.1 MALDI-TOF-MS檢測(cè)與分析
將活化后的菌株ZJU-3按1%接種于LB液體培養(yǎng)基中,37℃,200 r/min,振蕩培養(yǎng)12 h。然后以無(wú)菌水稀釋后涂布于LB固體培養(yǎng)基37℃恒溫培養(yǎng)48 h。挑取2個(gè)單菌落于目標(biāo)板孔靶上,與1 μL輔助基質(zhì)混勻,自然風(fēng)干后進(jìn)行基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間質(zhì)譜(MALDI-TOF-MS)檢測(cè)[15]。儀器參數(shù)為: 反射操作模式,正離子檢測(cè),檢測(cè)范圍100~2 000 Da,激光點(diǎn)擊數(shù)每圖譜50,激光頻率30.0 Hz,離子源加速電壓 20 kV,反射電壓23.5 kV 脈沖離子。
1.4.2 脂肽粗提物的制備
菌株ZJU-3培養(yǎng):采用LB培養(yǎng)基,100 mL/250 mL三角瓶裝量,28℃、180 r/min恒溫?fù)u床振蕩培養(yǎng)72 h。發(fā)酵液經(jīng)8 000 r/min離心20 min,取上清液用孔徑為0.22 μm無(wú)菌過(guò)濾器過(guò)濾,獲得無(wú)菌發(fā)酵液。采取鹽酸沉淀和甲醇抽提法從無(wú)菌發(fā)酵液中獲得脂肽粗提物[16]。
1.4.3 脂肽粗提物對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲生長(zhǎng)的抑制
采用菌絲生長(zhǎng)速率法測(cè)定脂肽粗提物的生物活性。用甲醇將得到脂肽粗提液依次稀釋為440、 220、110、55 μg/mL,加入到融化的PDA培養(yǎng)基中制成脂肽平板,以加等體積甲醇的PDA平板為對(duì)照,在平板中央接種直徑為5 mm的尖孢鐮刀菌菌塊,每個(gè)處理重復(fù)3次,28℃ 培養(yǎng)4 d。采用十字交叉法測(cè)量菌落直徑,計(jì)算抑制率[17]。相對(duì)抑制率=[(對(duì)照菌落直徑-脂肽粗提物處理菌落直徑)/對(duì)照菌落直徑]× 100%。
1.5 菌株ZJU-3對(duì)多花黃精的促生作用
1.5.1 菌株ZJU-3發(fā)酵液中激素種類分析
將菌株ZJU-3接種至固體LB培養(yǎng)基上,28℃培養(yǎng)24 h后,轉(zhuǎn)接入LB液體培養(yǎng)基內(nèi), 37℃ 200 r/min振蕩培養(yǎng)12 h,制成種子液。取種子發(fā)酵液按照1%接種量接種100 mL的LB液體培養(yǎng)基中,180 r/min振蕩培養(yǎng)72 h,之后用乙酸乙酯對(duì)發(fā)酵液進(jìn)行萃取,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮,經(jīng)過(guò)0.22 μm濾膜過(guò)濾,于4℃保存,用高效液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀(LC-MS)測(cè)定吲哚乙酸(IAA)、激動(dòng)素(kinetin)、赤霉素(GA3)和玉米素(zeatin)的含量[18]。質(zhì)譜條件如下:采用電噴霧負(fù)/正離子模式,毛細(xì)管電壓3.0 kV,霧化氣壓力0.31 MPa,干燥氣體(N2)流速5 L/min,干燥氣體溫度325℃,鞘氣溫度350℃,鞘氣流速11 L/min。采用MRM 模式進(jìn)行檢測(cè),收集LC-MS如下數(shù)據(jù):樣品名稱,保留時(shí)間,碰撞解離電壓,母離子(m/z),子離子(m/z),碰撞能量和掃描模式。
1.5.2 盆栽促生試驗(yàn)
將3年生多花黃精塊莖用0.5%次氯酸鈉表面消毒15 min,無(wú)菌水漂洗3~4次,播種于基質(zhì)(草炭∶蛭石∶珍珠巖=2∶1∶1)中。設(shè)置3個(gè)處理。A:LB液體培養(yǎng)基灌根;B:1×108cfu/mL拮抗菌液灌根;C:1×107cfu/mL抗菌液灌根。每處理3盆,3個(gè)重復(fù),培養(yǎng)條件:25℃,L∥D=16 h∥8 h,觀察多花黃精的生長(zhǎng)情況,兩個(gè)月后記錄各個(gè)生物量的變化。
1.6 數(shù)據(jù)分析
采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)分析軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析,應(yīng)用最小顯著差數(shù)(LSD)法檢驗(yàn)差異顯著性。
2 結(jié)果與分析
2.1 內(nèi)生菌的分離及拮抗菌鑒定
從根、莖、葉中共分離出11株內(nèi)生菌,分別記作ZJU-1~ZJU-11(表1),采用平板對(duì)峙培養(yǎng)法獲得對(duì)尖孢鐮刀菌F.oxysporum有較強(qiáng)抑制作用的菌株ZJU-3(圖1),對(duì)尖孢鐮刀菌菌落邊緣的菌絲進(jìn)行觀察,發(fā)現(xiàn)處理組的菌絲明顯變粗,菌絲出現(xiàn)斷裂、消融現(xiàn)象,表面出現(xiàn)褶皺,表明該菌株對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲的生長(zhǎng)產(chǎn)生了一定的抑制作用。
2.2 菌株ZJU-3的鑒定
2.2.1 菌株ZJU-3的菌落形態(tài)和生理生化特性
ZJU-3在LB培養(yǎng)基上,28℃下培養(yǎng)24 h后,菌落類似圓形,邊緣不規(guī)則,皺褶狀凸起,表面粗糙不透明,干燥,菌落呈淺黃色(圖2a)。掃描電鏡觀察結(jié)果顯示,菌體呈桿狀,大小為(0.5~0.7)μm×(1~3)μm(圖2b),芽胞橢圓,中生或端生,長(zhǎng)為0.6~1 μm(圖2c~d)。菌株ZJU-3的硫化氫、接觸酶等多項(xiàng)生理生化特征的試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。
2.2.2 菌株ZJU-3的分子生物學(xué)鑒定
菌株ZJU-3經(jīng)16S rDNA PCR擴(kuò)增后,得到1條1 400 bp左右的條帶,膠回收測(cè)序后獲得長(zhǎng)度為1 425 bp 的DNA序列,將該序列在NCBI上注冊(cè),獲得序列登錄號(hào)MH298776。將菌株ZJU-3的16S rDNA序列與GenBank中的序列進(jìn)行比對(duì),結(jié)果表明,ZJU-3與B.velezensis CR-502(GenBank登錄號(hào):AY603658)、B.siamensis KCTC 13613(GenBank登錄號(hào): AJVF01000043)、B.amyloliquefaciens DSM 7(GenBank登錄號(hào):FN597644)的同源性分別為99.85%、99.72% 和99.58%。通過(guò)MEGA 5.0構(gòu)建該菌株的16S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),顯示該菌株與這3個(gè)菌株在一個(gè)分支上,無(wú)法確定其分類地位。
菌株ZJU-3經(jīng)gyrB基因序列的PCR擴(kuò)增后,得到1條1 147 bp的條帶,該序列與GenBank中B.velezensis strain KACC 13105(GenBank登錄號(hào):NZ_JTKJ02000014.1)、B.siamensis strain XY18(GenBank登錄號(hào):LAGT01000009.1)、 B.amyloliquefaciens DSM7(GenBank登錄號(hào):FN597644)同源性為99%,通過(guò) MEGA 5.0構(gòu)建該菌株的gyrB序列系統(tǒng)發(fā)育樹(shù),結(jié)果顯示該菌株與B.velezensis strain KACC 13105在一個(gè)分支上。參考《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》,根據(jù)枯草芽胞桿菌B.subtilis和解淀粉芽胞桿菌B.amyloliquefaciens不能產(chǎn)生卵磷脂酶,排除枯草芽胞桿菌和解淀粉芽胞桿菌的可能性。結(jié)合形態(tài)學(xué)及其他生理生化特征,將菌株ZJU-3鑒定為貝萊斯芽胞桿菌(于中國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心保藏,保藏編號(hào):CCTCC No: M 2018311)。
2.3 菌株ZJU-3脂肽類化合物分析
2.3.1 MALDI-TOF-MS檢測(cè)與分析
圖5a為貝萊斯芽胞桿菌經(jīng)MALDI-TOF-MS檢測(cè)所得的脂肽類次生代謝物的質(zhì)譜圖(m/z 700~1 500),結(jié)果顯示:表面活性素和伊枯草菌素的分子離子峰集中于m/z 1 000~1 100(圖5b);泛革素位于m/z 1 400~1 500(圖5c)。菌株ZJU-3在m/z值為1 053.6、1 069.6、1 066.7、1 083.7、1 081.6、1 097.7、1 095.7、1 111.7、1 099.7(圖5b)處有離子峰,這9個(gè)離子峰對(duì)應(yīng)于桿菌霉素的質(zhì)量;在m/z值為1 066.7、1 082.7、1 080.7、1 094.7、1 098.7(圖5b)處有離子峰,這5個(gè)峰對(duì)應(yīng)于伊枯草菌素的質(zhì)量;在m/z值為1 044.7、1 059.7、1 058.7、1 074.7(圖5b)處有離子峰,這4個(gè)峰對(duì)應(yīng)于表面活性素的質(zhì)量。在m/z值為1 435.0、1 450.0、1 464.0、1 478.0、1 492.0、1 506.0(圖5c)處有離子峰,這6個(gè)峰對(duì)應(yīng)于泛革素的質(zhì)量。
2.3.2 脂肽粗提物對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲生長(zhǎng)的抑制效果
采用酸沉淀和甲醇抽提法從ZJU-3發(fā)酵液中提取脂肽物質(zhì),進(jìn)行冷凍干燥后確定該脂肽粗提物的得率為20 mg/mL。尖孢鐮刀菌菌塊在含不同濃度脂肽粗提物的PDA培養(yǎng)基上23℃培養(yǎng)4 d后,與對(duì)照相比,供試濃度下ZJU-3脂肽物質(zhì)對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲擴(kuò)展均表現(xiàn)出抑制作用,而且隨著脂肽濃度的增加,其抑制作用增強(qiáng),440 μg/mL時(shí)抑制率為51.6%(圖6e)。
2.4 菌株ZJU-3對(duì)多花黃精的促生作用
2.4.1 菌株ZJU-3發(fā)酵液中的吲哚乙酸、激動(dòng)素、赤霉素和玉米素含量測(cè)定
通過(guò)LC-MS分析,定量測(cè)定菌株ZJU-3中吲哚乙酸(IAA)、激動(dòng)素(kinetin)、赤霉素(GA3)和玉米素(zeatin)的含量。在同樣的色譜條件下,赤霉素標(biāo)樣在3.28 min有一個(gè)色譜峰(如圖7a1),發(fā)酵液在保留時(shí)間3.88 min有一個(gè)色譜峰(如圖7a2),它們的保留時(shí)間基本一致,可以確定發(fā)酵液中產(chǎn)生了赤霉素,進(jìn)一步計(jì)算得到赤霉素的含量為0.07 ng/mL。
在同樣的色譜條件下,標(biāo)樣激動(dòng)素在保留時(shí)間2.48 min有一個(gè)色譜峰(如圖7b1),發(fā)酵液在保留時(shí)間2.48 min有一個(gè)色譜峰(如圖7b2),它們的保留時(shí)間一致,可以確定發(fā)酵液中產(chǎn)生了激動(dòng)素,進(jìn)一步計(jì)算得到激動(dòng)素的含量為21.34 ng/mL。
在同樣的色譜條件下,標(biāo)樣玉米素在保留時(shí)間1.59 min有一個(gè)色譜峰(如圖7c1),發(fā)酵液在保留時(shí)間1.74 min有一個(gè)色譜峰(如圖7c2),保留時(shí)間基本一致,可以確定發(fā)酵液中產(chǎn)生了玉米素,經(jīng)過(guò)計(jì)算,玉米素含量為0.02 ng/mL。
在同樣的色譜條件下,標(biāo)樣吲哚乙酸在保留時(shí)間5.94 min有一個(gè)色譜峰(如圖7d1),發(fā)酵液在保留時(shí)間5.48 min有一個(gè)色譜峰(如圖7d2),它們的保留時(shí)間基本一致,可以確定發(fā)酵液中產(chǎn)生了吲哚乙酸,進(jìn)一步計(jì)算得到吲哚乙酸的含量為8.29 ng/mL。
2.4.2 盆栽促生試驗(yàn)
多花黃精各項(xiàng)生物量如圖8所示,菌液處理后,多花黃精芽長(zhǎng)差異不明顯,但根長(zhǎng)、單株根數(shù)和芽數(shù)差異明顯,菌液處理后,根長(zhǎng)、根數(shù)都明顯增加,1×108 cfu/mL處理組的多花黃精部分根長(zhǎng)、單株根數(shù)相比于對(duì)照組增長(zhǎng)了44.6%、102.4%,1×107 cfu/mL處理組的多花黃精部分根長(zhǎng)、單株根數(shù)相比于對(duì)照組增長(zhǎng)了20.7%、64.5%,而處理組根莖上的芽長(zhǎng)明顯小于對(duì)照組,表明菌株ZJU-3對(duì)多花黃精地下部分有更明顯的促生長(zhǎng)作用,據(jù)此猜想與菌體自身產(chǎn)生的內(nèi)源激素有著密切的聯(lián)系。
3 討論
1993 年美國(guó)學(xué)者Stierle等[22]從短葉紅豆杉Taxus brevifolia中分離到內(nèi)生真菌,其可以產(chǎn)生抗癌藥物紫杉醇,這一發(fā)現(xiàn)掀起了從藥用植物中分離內(nèi)生菌的熱潮。人們逐漸開(kāi)始研究具有重要經(jīng)濟(jì)價(jià)值的藥用植物與自身內(nèi)生菌的關(guān)聯(lián)。國(guó)內(nèi)有學(xué)者研究表明,內(nèi)生菌對(duì)藥用植物生長(zhǎng)發(fā)育有著巨大影響,植物內(nèi)生菌自身能夠產(chǎn)生次生代謝物,對(duì)病蟲害產(chǎn)生一定程度的抵抗力[23]。Wen等[24]在藥用植物樟腦中發(fā)現(xiàn)枯草芽胞桿菌B.subtilis EBS05對(duì)小麥紋枯病菌Rhizoctonia cerealis的防治效果高達(dá)91.2%,并在該拮抗菌株所產(chǎn)生的抗菌物質(zhì)中分離得到surfactin A,并研究了該物質(zhì)對(duì)根莖生長(zhǎng)的作用。鄧建良等[25]發(fā)現(xiàn)解淀粉芽胞桿菌YN-1發(fā)酵液對(duì)棉花枯萎病有抑制作用,質(zhì)譜分析發(fā)現(xiàn)其發(fā)酵液中含有C14-Iturin A~C16-Iturin A、C14-Fengycin A~C17-Fengycin A、C16-Fengycin B和C17-Fengycin B 9種脂肽類抗生素。本試驗(yàn)采用提取效率更高的酸沉淀法,研究發(fā)現(xiàn)B.velezensis ZJU-3能夠產(chǎn)生表面活性素、桿菌霉素、伊枯草菌素、泛革素等多種脂肽類化合物,且440 μg/mL濃度的脂肽粗提液對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲生長(zhǎng)的抑制率達(dá)到51.6%,可抑制病原真菌菌絲生長(zhǎng)發(fā)育,或許在一定程度上破壞了膜結(jié)構(gòu),后期將針對(duì)脂肽粗提液對(duì)孢子的影響展開(kāi)研究。
同時(shí),研究表明,固氮螺菌屬Azospirillum、假單胞菌屬Pseudomonas、芽胞桿菌屬Bacillus、微桿菌屬M(fèi)icrobacterium以及根瘤菌屬Rhizobium等多種內(nèi)生菌可產(chǎn)生植物生長(zhǎng)激素吲哚乙酸[2],促進(jìn)植物的生長(zhǎng)。Lu等[26]發(fā)現(xiàn)黃花蒿內(nèi)生菌在體外培養(yǎng)時(shí),能產(chǎn)生對(duì)小麥和黃瓜幼苗生長(zhǎng)具有抑制或促進(jìn)作用的次級(jí)代謝產(chǎn)物,對(duì)其發(fā)酵產(chǎn)物進(jìn)行深入分析,發(fā)現(xiàn)該菌能產(chǎn)生吲哚乙酸。在本研究中發(fā)現(xiàn)B.velezensis ZJU-3產(chǎn)生多種植物內(nèi)源激素如吲哚乙酸、激動(dòng)素、玉米素,用菌株發(fā)酵液對(duì)多花黃精植株進(jìn)行定期澆灌,發(fā)現(xiàn)植株的側(cè)根明顯增多,根長(zhǎng)相比對(duì)照組明顯增加,植株?duì)I養(yǎng)代謝加快。
已有資料表明,在內(nèi)生菌與植物長(zhǎng)期協(xié)同進(jìn)化的過(guò)程中,內(nèi)生菌可能因與植物之間發(fā)生基因橫向轉(zhuǎn)移或受植物內(nèi)生環(huán)境的影響,具有產(chǎn)生與藥用植物相似結(jié)構(gòu)或相似功效的天然產(chǎn)物、甚至新結(jié)構(gòu)或新活性的天然活性產(chǎn)物的潛力[27]。我國(guó)學(xué)者已從蛇足石杉Huperzia serrata和柳杉葉馬尾杉Phlegmariurus cryptomerianus中分離到6種以上的產(chǎn)石杉?jí)A甲的內(nèi)生真菌,其中一株編號(hào)為 Slf14 的 Shiraia 屬菌株石杉?jí)A甲產(chǎn)量較高,達(dá)到了327.8 μg/L[28]。分離自黃花蒿的青霉屬Penicillium內(nèi)生真菌能有效促進(jìn)黃花蒿組培苗生長(zhǎng)及青蒿素合成[29]。但對(duì)于多花黃精來(lái)說(shuō),內(nèi)生菌與藥用黃精成分的相關(guān)性還需進(jìn)一步深入研究。
綜上所述,本研究獲得的多花黃精內(nèi)生貝萊斯芽胞桿菌菌株ZJU-3不但產(chǎn)生多種抗菌的脂肽類化合物,同時(shí)產(chǎn)生多種植物內(nèi)源激素,對(duì)多花黃精具有良好的促生長(zhǎng)效果,尤其促進(jìn)植株生根,以上研究為未來(lái)該菌株的綜合開(kāi)發(fā)利用及研制生防藥劑提供了理論依據(jù)。
參考文獻(xiàn)
[1] HALLMANN J, KLOEPPER J W, MAHAFFEE W F, et al.Bacterial endophytes in agricultural crops [J].Canadian Journal of Microbiology, 1997, 43(10): 895914.
[2] 喻江, 于鎮(zhèn)華, 劉曉冰, 等. 植物根組織內(nèi)生細(xì)菌多樣性及其促生作用[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2015, 31(13): 169175.
[3] MNASRI N, CHENNAOUI C, GARGOURI S, et al. Efficacy of some rhizospheric and endophytic bacteria in vitro and as seed coating for the control of Fusarium culmorum infecting durum wheat in Tunisia[J]. European Journal of Plant Pathology, 2017, 147(3): 501515.
[4] AHMAD F, AHMAD I, KHAN M S. Screening of free-living rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities [J].Microbiological Research,2008,163(2):173181.
[5] HASSAN E D.Plant growth-promoting activities for bacterial and fungal endophytes isolated from medicinal plant of Teucrium polium L.[J]. Journal of Advanced Research, 2017, 8(6): 687695.
[6] EGAMBERDIEVA D, WIRTH S J, SHURIGIN V V. Endophytic bacteria improve plant growth, symbiotic performance of chickpea (Cicer arietinum L.) and induce suppression of root rot caused by Fusarium solani under salt stress [J]. Frontiers in Microbiology, 2017, 8: 1887.
[7] HAN Qin, WU Fengli, WANG Xiaonan, et al. The bacterial lipopeptide iturins induce Verticillium dahliae cell death by affecting fungal signaling pathways and mediate plant defence responses involved in pathogen-associated molecular pattern-triggered immunity [J]. Environmental Microbiology, 2015, 17(4): 11661188.
[8] 國(guó)家藥典委員會(huì).中華人民共和國(guó)藥典[S].北京:中國(guó)科技醫(yī)藥出版社,2015:306307.
[9] 李艷玲,王德才,史仁玖,等.泰山黃精內(nèi)生真菌的分離鑒定及抑菌活性研究[J].中草藥,2013,44(11):14901494.
[10]汪瀅,王國(guó)平,王麗薇,等.一株多花黃精內(nèi)生真菌的鑒別及其抗菌代謝產(chǎn)物[J].微生物學(xué)報(bào),2010,50(8):10361043.
[11]柏曉輝,劉孝蓮,劉娣,等.一株黃精內(nèi)生菌的分離鑒定及抑菌活性研究[J].天然產(chǎn)物研究與開(kāi)發(fā),2018,30(5):777782.
[12]方中達(dá).植病研究方法[M].第2版.北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,1998.
[13]東秀珠,蔡妙英.常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)[M].北京:科學(xué)出版社,2001.
[14]YAMAMOTO S, HARAYAMA S. PCR amplification and direct sequencing of gyrB genes with universal primers and their application to the detection and taxonomic analysis of Pseudomonas putida strains [J].Applied Environmental Microbiology, 1995, 61(3): 11041109.
[15]李興玉,毛自朝,吳毅歆,等.芽孢桿菌環(huán)脂肽類次生代謝產(chǎn)物的快速檢測(cè)[J].植物病理學(xué)報(bào),2014,44(6):718722.
[16]呂倩,胡江春,王楠,等.南海深海甲基營(yíng)養(yǎng)型芽孢桿菌SHB114抗真菌脂肽活性產(chǎn)物的研究[J].中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2014,30(1):113120.
[17]魏新燕,黃媛媛,黃亞麗,等.甲基營(yíng)養(yǎng)型芽孢桿菌BH21對(duì)葡萄灰霉病菌的拮抗作用[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2018,51(5):883892.
[18]WANG Beibei, SHEN Zongzhuan, ZHANG Fengge, et al. Bacillus amyloliquefaciens strain W19 can promote growth and yield and suppress Fusarium wilt in banana under greenhouse and field conditions [J]. Pedosphere, 2016, 26(5): 733744.
[19]ONGENA M, JACQUES P. Bacillus lipopeptides: versatile weapons for plant disease biocontrol [J].Trends in Microbiology, 2008, 16(3): 115125.
[20]CHEN Xiaohua, KOUMOUTSI A, SCHOLZ R, et al. More than anticipated-production of antibiotics and other secondary metabolites by Bacillus amyloliquefaciens FZB42 [J]. Journal of Molecular Microbiology and Biotechnology, 2009, 16(1/2): 1424.
[21]LI Xingyu, MAO Zichao, WANG Yuehu, et al. Diversity and active mechanism of fengycin-type cyclopeptides from Bacillus subtilis XF-1 against Plasmodiophora brassicae [J]. Journal of Microbiology and Biotechnology, 2013, 23(3): 313321.
[22]STIERLE A, STROBLE G, STIERLE D, et al. Taxol and taxane production by Taxomycetes andreanae, an endophytic fungus of pacific yew [J].Science,1993,260(5105):214216.
[23]FAHEEM M, RAZA W, ZHONG W, et al. Evaluation of the biocontrol potential of Streptomyces goshikiensis YCXU against Fusarium oxysporum f.sp. niveum [J].Biological Control,2015, 81(10): 101110.
[24]WEN Caiyi, YIN Zhigang, WANG Kaixuan, et al. Purification and structural analysis of surfactin produced by endophytic Bacillus subtilis EBS05 and its antagonistic activity against Rhizoctonia cerealis[J]. Plant Pathology Journal, 2011, 27(4): 342348.
[25]鄧建良,劉紅彥,劉玉霞,等.解淀粉芽孢桿菌YN-1抑制植物病原真菌活性物質(zhì)鑒定[J].植物病理學(xué)報(bào),2010,40(2):202209.
[26]HONG Lu, ZOU Wenxin, MENG Juncai, et al. New bioactive metabolites produced by Colletotrichum sp. an endophytic fungus in Artemisia annua[J]. Plant Science, 2000, 151(1): 6773.
[27]譚小明,周雅琴,陳娟,等.藥用植物內(nèi)生真菌多樣性研究進(jìn)展[J].中國(guó)藥學(xué)雜志,2015,50(18):15631580.
[28]孫劍秋,郭良棟,臧威,等.藥用植物內(nèi)生真菌及活性物質(zhì)多樣性研究進(jìn)展[J].西北植物學(xué)報(bào),2006,26(7):15051519.
[29]袁亞菲,董婷,王劍文.內(nèi)生青霉菌對(duì)黃花蒿組培苗生長(zhǎng)和青蒿素合成的影響[J].生物資源,2011,33(4):14.
(責(zé)任編輯:田 喆)