• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      鴨胚成纖維細(xì)胞上坦布蘇病毒受體蛋白的鑒定

      2019-09-10 07:22:44趙冬敏韓凱凱劉青濤黃欣梅楊婧劉宇卓
      關(guān)鍵詞:受體

      趙冬敏 韓凱凱 劉青濤 黃欣梅 楊婧 劉宇卓

      摘要:【目的】拓展對(duì)坦布蘇病毒受體的認(rèn)知,為研究其在鴨體內(nèi)的感染機(jī)制打下基礎(chǔ)。【方法】取9日齡SPF鴨胚制備鴨胚成纖維細(xì)胞(DEF),待細(xì)胞長(zhǎng)成單層后提取DEF膜蛋白,利用免疫共沉淀試驗(yàn)篩選出DEF膜蛋白中可與坦布蘇病毒結(jié)合的蛋白,經(jīng)病毒輔覆蛋白結(jié)合分析(VOPBA)驗(yàn)證后通過(guò)LC-MSMS質(zhì)譜分析進(jìn)行鑒定;同時(shí)人工合成鴨熱休克蛋白70基因(HSP70)序列的開(kāi)放閱讀框(1905 bp),構(gòu)建重組質(zhì)粒pET32a-HSP70并轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達(dá),以重組蛋白免疫小鼠制備抗鴨HSP70血清,與DEF細(xì)胞共孵育后接種坦布蘇病毒,并采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)抗血清對(duì)病毒感染的抑制作用?!窘Y(jié)果】DEF膜蛋白中分子量約70 kD的蛋白可與坦布蘇病毒結(jié)合,經(jīng)LC-MSMS質(zhì)譜分析和序列比對(duì)可確定該蛋白即為鴨熱休克蛋白70(HSP70)。含重組質(zhì)粒pET32a-HSP70的BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞經(jīng)IPTG誘導(dǎo)4 h后,SDS-PAGE檢測(cè)發(fā)現(xiàn)在分子量約85 kD處出現(xiàn)目的蛋白條帶,獲得的重組鴨HSP70蛋白主要以包涵體形式進(jìn)行表達(dá),且能與His標(biāo)簽抗體發(fā)生特異性反應(yīng)。以重組鴨HSP70蛋白免疫小鼠獲得的抗鴨HSP70血清可封閉DEF細(xì)胞上的HSP70,而競(jìng)爭(zhēng)性抑制坦布蘇病毒感染。【結(jié)論】HSP70是坦布蘇病毒感染DEF細(xì)胞的受體,可作為新的靶點(diǎn)用于抗坦布蘇病毒藥物設(shè)計(jì)。

      關(guān)鍵詞: 坦布蘇病毒;鴨胚成纖維細(xì)胞;熱休克蛋白70;受體;免疫共沉淀;病毒輔覆蛋白結(jié)合分析(VOPBA)

      中圖分類號(hào): S852.657? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):2095-1191(2019)01-0173-06

      0 引言

      【研究意義】自2010年以來(lái),坦布蘇病毒(Tembusu virus,TMUV)在我國(guó)多個(gè)?。ㄊ校啞ⅨZ養(yǎng)殖場(chǎng)引起一種以食欲急劇減退、產(chǎn)蛋量驟降為主要特征的新發(fā)疫病,給水禽養(yǎng)殖業(yè)造成重大經(jīng)濟(jì)損失(趙冬敏等,2014;黃欣梅等,2015)。坦布蘇病毒感染率最高可達(dá)100%,死亡率5%~30%(Su et al.,2011)。除鴨和鵝外,坦布蘇病毒還可自然感染雞、鴿子和麻雀等禽類(Tang et al.,2013)。在人工攻毒條件下,坦布蘇病毒可感染小鼠并表現(xiàn)出對(duì)神經(jīng)系統(tǒng)的致病力(Zhang et al.,2017)。體外培養(yǎng)試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),坦布蘇病毒在哺乳動(dòng)物細(xì)胞系(Vero、BHK-21、Hela、HepG2和SH-SY5Y)、禽源細(xì)胞系(DEF、CEF、GEF和DF-1)和蚊細(xì)胞系(C6/36和白紋伊蚊細(xì)胞)中均表現(xiàn)出良好的繁殖特性(Zhang et al.,2017),說(shuō)明其感染宿主譜極其廣泛。因此,明確坦布蘇病毒在不同動(dòng)物體內(nèi)的感染機(jī)制,對(duì)科學(xué)防控坦布蘇病毒病具有重要意義?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】坦布蘇病毒隸屬于黃病毒科(Flaviviridae)黃病毒屬(Flavivirus),該屬病毒還包括登革病毒、日本腦炎病毒、西尼羅病毒、黃熱病毒和寨卡病毒等蟲媒病毒(趙冬敏等,2017)。黃病毒屬病毒囊膜蛋白以延伸的二聚體形式平鋪于病毒表面,在病毒感染細(xì)胞的過(guò)程中,囊膜蛋白作為吸附蛋白與細(xì)胞表面的受體分子結(jié)合,使病毒粒子吸附于靶細(xì)胞,隨后通過(guò)內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞(Smit et al.,2011)。黃病毒屬病毒感染不同細(xì)胞時(shí)所使用的受體具有多樣性,不同細(xì)胞型表面的不同分子均有可能成為受體。Liu等(2017)通過(guò)免疫共沉淀和病毒輔覆蛋白結(jié)合分析(VOPBA)鑒定出熱休克蛋白A9是坦布蘇病毒在DF-1細(xì)胞上的受體分子;Zhao等(2018)利用VOPBA分析和間接免疫熒光法證實(shí)GRP78作為受體分子參與坦布蘇病毒感染BHK-21細(xì)胞。受體的分子類型依賴于細(xì)胞類型和病毒血清型,已有研究結(jié)果顯示,CD14相關(guān)蛋白(Chen et al.,1999)、整合素β3(Chu and Ng,2004)、GRP78/BiP (Jindadamrongwech et al.,2004)、高親和性層粘連蛋白(Thepparit and Smith,2004)、熱休克蛋白90/70(Reyes-Del Valle et al.,2005)、DC-SIGN(Pokidysheva et al.,2006)、硫酸乙酰肝素(Pattnaik et al.,2007)、凝集素(Chen et al.,2008)和微管蛋白的β鏈(Fang et al.,2013)等均可作為黃病毒屬病毒感染不同細(xì)胞時(shí)的受體,而這些受體正是研發(fā)抗黃病毒屬病毒藥物的潛在靶點(diǎn)?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】坦布蘇病毒感染宿主譜十分廣泛,但針對(duì)其受體的研究較少,且至今尚無(wú)坦布蘇病毒感染鴨胚成纖維細(xì)胞(DEF)受體鑒定的相關(guān)報(bào)道?!緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】利用免疫共沉淀試驗(yàn)分離DEF細(xì)胞膜中能與坦布蘇病毒結(jié)合的受體蛋白,經(jīng)VOPBA驗(yàn)證后通過(guò)LC-MSMS質(zhì)譜分析進(jìn)行鑒定,旨在拓展對(duì)坦布蘇病毒受體的認(rèn)知,為研究其在鴨體內(nèi)的感染機(jī)制打下基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1. 1 試驗(yàn)材料

      坦布蘇病毒JS804株和坦布蘇病毒囊膜蛋白特異性單克隆抗體均由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所禽病與生物獸藥研究室保存提供;9日齡SPF鴨胚購(gòu)自中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所;細(xì)胞膜蛋白提取試劑盒購(gòu)自賽默飛世爾科技(中國(guó))有限公司;Protein A+G瓊脂糖、His標(biāo)簽抗體和堿性磷酸酶標(biāo)記的羊抗鼠IgG均購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。

      1. 2 DEF細(xì)胞制備

      取9日齡SPF鴨胚置于蛋托上,以75%酒精棉球擦拭蛋殼,隨后在氣室部位將蛋殼擊碎,用無(wú)菌剪刀將卵膜剪開(kāi),取出鴨胚,去除鴨胚四肢、眼、喙、內(nèi)臟及腦組織。以PBS洗滌鴨胚后放入小燒杯中剪碎,PBS洗滌剪碎的鴨胚,靜置5 min,棄上清液;加入1.0 mL胰酶37 ℃消化10 min,再加入10.0 mL含5%胎牛血清的DMEM終止反應(yīng),用吸管吹打數(shù)次后進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)。計(jì)數(shù)后吸取上清液分裝于細(xì)胞瓶中,每瓶約5×106個(gè)細(xì)胞。

      1. 3 DEF膜蛋白提取

      以胰酶消化長(zhǎng)成單層的DEF細(xì)胞,用含5%胎牛血清的DMEM終止反應(yīng),2000 r/min離心5 min,收集細(xì)胞,根據(jù)細(xì)胞膜蛋白提取試劑盒說(shuō)明提取DEF膜蛋白。提取的DEF膜蛋白分裝后-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1. 4 免疫共沉淀試驗(yàn)

      (1)去除非特異性結(jié)合:取400.0 μL提取的DEF膜蛋白,加入10.0 μL陰性小鼠血清和20.0 μL Protein A+G瓊脂糖,4 ℃搖床(緩慢搖動(dòng),下同)孵育2 h;3500 r/min離心5 min,取上清液用于后續(xù)試驗(yàn)。(2)免疫共沉淀:于上述上清液中加入400.0 μL純化的坦布蘇病毒,4 ℃搖床孵育5 h,再加入10.0 μL坦布蘇病毒囊膜蛋白特異性單克隆抗體,4 ℃搖床孵育過(guò)夜;加入20.0 μL充分重懸的 Protein A+G瓊脂糖,4 ℃搖床孵育3 h。3500 r/min離心5 min,小心棄除上清液,沉淀用PBS洗滌5次,加入40.0 μL 4×SDS-PAGE電泳上樣緩沖液重懸沉淀,沸水處理5 min后進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)。對(duì)照組不加坦布蘇病毒,其余操作相同。電泳結(jié)束后進(jìn)行考馬斯亮藍(lán)染色,并將篩選獲得的蛋白條帶切下送至上海博苑生物科技有限公司進(jìn)行LC-MSMS質(zhì)譜分析。

      1. 5 VOPBA分析

      對(duì)提取的DEF膜蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳并轉(zhuǎn)印至NC膜上,利用3%牛血清白蛋白封閉后,加入純化坦布蘇病毒,4 ℃孵育過(guò)夜。NC膜以PBST洗滌3次,加入坦布蘇病毒囊膜蛋白特異性單克隆抗體,37 ℃孵育1 h后用PBST洗滌3次,加入堿性磷酸酶標(biāo)記的羊抗鼠IgG,37 ℃再孵育1 h。孵育結(jié)束后,以PBST洗滌3次,利用堿性磷酸酶顯色試劑盒進(jìn)行顯色反應(yīng)。對(duì)照組不加入坦布蘇病毒,其余操作相同。

      1. 6 鴨熱休克蛋白70(HSP70)原核表達(dá)及鑒定

      根據(jù)蛋白質(zhì)譜分析結(jié)果和GenBank已公布的鴨HSP70基因序列(EU678246.2),人工合成鴨HSP70基因序列的開(kāi)放閱讀框(1905 bp),并分別在5'和3'端加入Sal I(GTCGAC)和Not I(GCGGCCGC)酶切位點(diǎn)。在合成鴨HSP70基因片段的Sal I和Not I位點(diǎn)插入pET32a原核表達(dá)載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,過(guò)夜培養(yǎng)后選取酶切鑒定呈陽(yáng)性的重組質(zhì)粒送至南京金斯瑞生物科技有限公司測(cè)序,測(cè)序正確的重組質(zhì)粒命名為pET32a-HSP70。將含pET32a-HSP70的BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞接種至含100 μg/mL氨芐霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃振蕩培養(yǎng)至OD600約0.4,加入終濃度為1 mmol/L的IPTG進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)。誘導(dǎo)4 h后收集菌液,6000 r/min離心10 min,棄上清液,沉淀用PBS重懸,超聲波破碎15 min后6000 r/min離心10 min,分別取上清液和沉淀進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)。同時(shí)將表達(dá)蛋白轉(zhuǎn)印至NC膜上,用5% BSA在37 ℃下封閉2 h,PBST(含0.05% Tween-20)洗滌3次,加入抗His標(biāo)簽抗體,4 ℃孵育過(guò)夜;PBST洗滌3次,加入堿性磷酸酯酶標(biāo)記的羊抗鼠IgG,37 ℃孵育1 h;PBST洗滌3次,加入堿性磷酸酶底物顯色。

      1. 7 抗鴨HSP70血清制備

      將純化的重組鴨HSP70蛋白與等量弗氏完全佐劑完全乳化后免疫6周齡雌性Balb/c小鼠,免疫劑量為70 μg/只。每隔2周加強(qiáng)免疫1次,共免疫3次,最后一次免疫后2周采集血清。以提取的DEF膜蛋白包被ELISA板,利用間接ELISA檢測(cè)血清中抗重組鴨HSP70蛋白的抗體效價(jià)(朱文姣等,2018)。

      1. 8 抗鴨HSP70血清對(duì)坦布蘇病毒感染的抑制作用

      接種DEF細(xì)胞于48孔板中,長(zhǎng)成單層后與終濃度為100 μg/mL的抗鴨HSP70血清4 ℃共孵育1 h。對(duì)照組DEF細(xì)胞與空白小鼠的陰性血清進(jìn)行共孵育,其余操作相同。棄孵育上清液,以冰預(yù)冷的PBS洗滌2次,接種坦布蘇病毒,4 ℃孵育30 min后再37 ℃孵育1 h。棄上清液,以冰預(yù)冷的PBS洗滌2次,加入含10%胎牛血清的1640培養(yǎng)液,37 ℃孵育24 h。收集細(xì)胞,利用QIAamp Viral RNA Mini Kit(Qiagen)試劑盒提取RNA,按照HiScript II Q select RT SuperMix for qPCR(諾唯贊)說(shuō)明進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。以合成的cDNA為模板,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)坦布蘇病毒核酸,并以GAPDH為內(nèi)參基因,采用2?△△Ct計(jì)算其相對(duì)表達(dá)量(Livak and Schmittgen,2001)。

      2 結(jié)果與分析

      2. 1 DEF膜蛋白與坦布蘇病毒的免疫共沉淀試驗(yàn)結(jié)果

      利用免疫共沉淀試驗(yàn)篩選DEF膜蛋白中可與坦布蘇病毒結(jié)合的蛋白,SDS-PAGE檢測(cè)結(jié)果(圖1)顯示,約在70 kD處出現(xiàn)1條目的蛋白條帶,而對(duì)照組未出現(xiàn)對(duì)應(yīng)的目的條帶。將分子量約70 kD的蛋白條帶切下送至上海博苑生物科技有限公司進(jìn)行LC-MSMS質(zhì)譜分析。

      2. 2 DEF膜蛋白與坦布蘇病毒結(jié)合的驗(yàn)證結(jié)果

      為進(jìn)一步驗(yàn)證DEF膜蛋白與坦布蘇病毒的結(jié)合作用,對(duì)提取的DEF膜蛋白進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)并轉(zhuǎn)印至NC膜上,與純化坦布蘇病毒孵育后進(jìn)行VOPBA分析。結(jié)果顯示,在分子量約70 kD處通過(guò)坦布蘇病毒囊膜蛋白特異性單克隆抗體檢測(cè)到1條蛋白條帶(圖2),與免疫共沉淀試驗(yàn)結(jié)果一致;而對(duì)照組未出現(xiàn)對(duì)應(yīng)的目的條帶,故確定DEF膜蛋白中分子量約70 kD的蛋白可與坦布蘇病毒結(jié)合。

      2. 3 LC-MSMS質(zhì)譜分析結(jié)果

      為確定分子量約70 kD的蛋白是何種蛋白,將該蛋白條帶切下送至上海博苑生物科技有限公司進(jìn)行LC-MSMS質(zhì)譜分析,并將質(zhì)譜分析結(jié)果(表1)輸入鴨蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行比對(duì),發(fā)現(xiàn)得分最高的蛋白為鴨熱休克蛋白70(HSP70)。鑒于檢測(cè)到的其他幾種蛋白為細(xì)胞生長(zhǎng)、代謝和凋亡等相關(guān)蛋白,同時(shí)參考其他黃病毒屬病毒的HSP70受體(Das et al.,2009),因此,可確定通過(guò)免疫共沉淀和VOPBA分析篩選獲得可與坦布蘇病毒結(jié)合的蛋白即為鴨HSP70。

      2. 4 鴨HSP70蛋白原核表達(dá)及鑒定結(jié)果

      SDS-PAGE檢測(cè)結(jié)果顯示,含重組質(zhì)粒pET32a-HSP70的BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞經(jīng)IPTG誘導(dǎo)4 h后,可在分子量約85 kD處出現(xiàn)目的蛋白條帶(圖3)。經(jīng)超聲波破碎后的SDS-PAGE檢測(cè)結(jié)果(圖4)顯示,重組鴨HSP70蛋白主要以包涵體形式進(jìn)行表達(dá)。利用His標(biāo)簽抗體進(jìn)行Western blotting鑒定,結(jié)果顯示誘導(dǎo)后的菌液在分子量約85 kD處出現(xiàn)能與His標(biāo)簽抗體反應(yīng)的特異性條帶(圖5)。

      2. 5 抗鴨HSP70蛋白血清效價(jià)測(cè)定結(jié)果

      用提取的DEF膜蛋白包被ELISA板,以重組鴨HSP70蛋白免疫小鼠血清為一抗,采用間接ELISA測(cè)定其血清效價(jià),結(jié)果表明,免疫小鼠產(chǎn)生了抗鴨HSP70蛋白的抗體,抗體效價(jià)達(dá)1∶400。

      2. 6 抗鴨HSP70血清對(duì)坦布蘇病毒感染的競(jìng)爭(zhēng)性抑制作用

      為檢驗(yàn)抗鴨HSP70血清是否可封閉DEF細(xì)胞上的HSP70而抑制坦布蘇病毒感染,在接種坦布蘇病毒前加入抗鴨HSP70血清與DEF細(xì)胞進(jìn)行共孵育,對(duì)照組采用空白小鼠的陰性血清進(jìn)行共孵育。實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)結(jié)果(圖6)顯示,與對(duì)照組相比,抗鴨HSP70血清孵育DEF細(xì)胞中的坦布蘇病毒含量顯著降低(P<0.05),說(shuō)明抗鴨HSP70血清可結(jié)合HSP70而封閉受體,競(jìng)爭(zhēng)性抑制坦布蘇病毒感染。

      3 討論

      熱休克蛋白(HSP)是從細(xì)菌到哺乳動(dòng)物廣泛存在的一類高度保守的熱應(yīng)激蛋白,按其分子量大小可分為HSP100、HSP90、HSP70、HSP60、小分子HSP和泛素,其中最主要的是HSP70家族(張杰等,2017)。HSP70在進(jìn)化上高度保守,可劃分為3個(gè)功能域:N端為45 kD的ATPase活性結(jié)構(gòu)域,緊接著為18 kD的多肽結(jié)合域及C端功能尚不明確的10 kD結(jié)構(gòu)域(任寶波等,2005)。HSP70已被鑒定為登革病毒感染單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞及C6/36細(xì)胞時(shí)的受體(Fang et al.,2013;張響英等,2017)。此外,Reyes-Del Valle等(2005)研究表明,HSP70和HSP90是登革病毒侵入人類神經(jīng)母細(xì)胞瘤所需受體復(fù)合物的組成部分;Das等(2009)研究證實(shí)HSP70是乙型腦炎病毒感染蚊細(xì)胞和神經(jīng)細(xì)胞(Neuro2A細(xì)胞)時(shí)的受體??梢?jiàn),HSP70作為受體或受體復(fù)合物的一部分在黃病毒屬病毒入侵宿主細(xì)胞的過(guò)程中發(fā)揮重要作用。本研究采用免疫共沉淀試驗(yàn)分離出坦布蘇病毒感染DEF細(xì)胞的受體是分子量為70 kD的蛋白,通過(guò)LC-MSMS質(zhì)譜分析確定該蛋白為HSP70,首次鑒定出坦布蘇病毒在DEF細(xì)胞中的受體,為進(jìn)一步研究鴨坦布蘇病毒的感染和致病機(jī)制打下基礎(chǔ)。

      病毒吸附蛋白與細(xì)胞受體分子間的相互作用介導(dǎo)病毒進(jìn)入宿主細(xì)胞,目前認(rèn)為這種相互作用與病毒的宿主譜、組織嗜性和致病機(jī)制有關(guān)。病毒—受體的相互作用是一個(gè)多步驟過(guò)程,且該過(guò)程中可能依次涉及多種受體或輔助受體(Reyes-Del Valle et al.,2005)。黃病毒屬病毒感染細(xì)胞所需的受體呈多樣性,且依賴于細(xì)胞類型和病毒血清型,即使同一細(xì)胞也可能采用不同分子作為受體(Liu et al.,2017)。本研究結(jié)果雖然顯示抗鴨HSP70血清對(duì)坦布蘇病毒感染具有競(jìng)爭(zhēng)性抑制作用,但并不能完全抑制病毒感染,說(shuō)明在DEF細(xì)胞中還存在其他受體分子,具體是何種受體尚有待進(jìn)一步探究。

      4 結(jié)論

      HSP70是坦布蘇病毒感染DEF細(xì)胞的受體,可作為新的靶點(diǎn)用于抗坦布蘇病毒藥物設(shè)計(jì)。

      參考文獻(xiàn):

      黃欣梅,趙冬敏,劉宇卓,楊婧,韓凱凱,李銀. 2015. 鵝坦布蘇病毒E蛋白結(jié)構(gòu)域III的原核表達(dá)及抗原性分析[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),46(1):150-154. [Huang X M,Zhao D M,Liu Y Z,Yang J,Han K K,Li Y. 2015. Prokaryotic expression and antigenic analysis of E protein domain III in goose tembusu virus[J]. Journal of Southern Agriculture,46(1):150-154.]

      任寶波,王玉艷,王純凈,李士澤,楊煥民. 2005. HSP70家族的分類及基因結(jié)構(gòu)與功能[J]. 動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,26(1):98-101. [Ren B B,Wang Y Y,Wang C J,Li S Z,Yang H M. 2005. Classification,gene structure and function of HSP70 family[J]. Progress in Veterinary Medicine,26(1):98-101.]

      張杰,單寶來(lái),田永生,彭日荷,姚泉洪,汪良駒. 2017. 葡萄HSP17基因的合成與功能分析[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),33(3):503-509. [Zhang J,Shan B L,Tian Y S,Peng R H,Yao Q H,Wang L J. 2017. Synthesis and functional ana-lysis of HSP17 gene in grape[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences,33(3):503-509.]

      張響英,唐現(xiàn)文,陳靜波,李騰騰. 2017. 熱應(yīng)激誘導(dǎo)奶牛乳腺上皮細(xì)胞凋亡及其對(duì)HSP70基因表達(dá)的影響[J]. 河南農(nóng)業(yè)科學(xué),46(8):142-146. [Zhang X Y,Tang X W,Chen J B,Li T T. 2017. Effects of heat stress on apoptosis and expression of HSP70 mRNA in bovine mammary epithelial cells[J]. Journal of Henan Agricultural Sciences,46(8):142-146.]

      趙冬敏,黃欣梅,劉宇卓,韓凱凱,楊婧,謝星星,劉曉燕,李銀. 2014. 鵝坦布蘇病毒E蛋白結(jié)構(gòu)域I的原核表達(dá)及免疫原性鑒定[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),45(12):2259-2263. [Zhao D M,Huang X M,Liu Y Z,Han K K,Yang J,Xie X X,Liu X Y,Li Y. 2014. Prokaryotic expression and immunogenicity identification of goose tembusu virus E protein domain I[J]. Journal of Southern Agriculture,45(12):2259-2263.]

      趙冬敏,劉宇卓,黃欣梅,韓凱凱,楊婧,劉青濤,畢可然,李銀. 2017. 坦布蘇病毒E蛋白結(jié)構(gòu)域I/II蛋白免疫保護(hù)效果[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),33(2):379-383. [Zhao D M,Liu Y Z,Huang X M,Han K K,Yang J,Liu Q T,Bi K R,Li Y. 2017. Immunoprotective effect of tembusu virus E protein domains I and II[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences,33(2):379-383.]

      朱文姣,常琛,朱玉虎,周國(guó)麗,尹志安,楊國(guó)慶,劉慧敏. 2018. 豬流行性腹瀉病毒coe基因的克隆表達(dá)及卵黃抗體的制備[J]. 河南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),52(4):560-565. [Zhu W J,Chang C,Zhu Y H,Zhou G L,Yin Z A,Yang G Q,Liu H M. 2018. Clone and expression of coe gene and preparation of egg yolk antibody against COE of porcine epidemic diarrhea virus[J]. Journal of Henan Agricultural University,52(4):560-565.]

      Chen S T,Lin Y L,Huang M T,Wu M F,Cheng S C,Lei H Y,Lee C K,Chiou T W,Wong C H,Hsieh S L. 2008. CLEC5A is critical for dengue-virus-induced lethal di-sease[J]. Nature,453(7195):672-676.

      Chen Y C,Wang S Y,King C C. 1999. Bacterial lipopolysaccharide inhibits dengue virus infection of primary human monocytes/macrophages by blockade of virus entry via a CD14-dependent mechanism[J]. Journal of Viorology,73(4):2650-2657.

      Chu J J,Ng M L. 2004. Interaction of West Nile virus with αVβ3 integrin mediates virus entry into cells[J]. The Journal of Biological Chemistry,279(52):54533-54541.

      Das S,Laxminarayana S V,Chandra N,Ravi V,Desai A. 2009. Heat shock protein 70 on Neuro2a cells is a putative receptor for Japanese encephalitis virus[J]. Virology,385(1):47-57.

      Fang S,Wu Y,Wu N,Zhang J,An J. 2013. Recent advances in DENV receptors[J]. The Scientific World Journal,684690. doi: 10.1155/2013/684690.

      Jindadamrongwech S,Thepparit C,Smith D R. 2004. Identification of GRP 78 (BiP) as a liver cell expressed receptor element for dengue virus serotype 2[J]. Archives of Virology,149(5):915-927.

      Livak K J,Schmittgen T D. 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2?ΔΔCT method[J]. Methods,25(4):402-408.

      Liu Q,Huang X,Zhao D,Han K,Liu Y,Yang J,Bi K,Li Y. 2017. Identification of heat shock protein A9 as a tembusu virus binding protein on DF-1 cells[J]. Virus Research,227:110-114.

      Pattnaik P,Babu J P,Verma S K,Tak V,Rao P V. 2007. Bacterially expressed and refolded envelope protein(domain III) of dengue virus type-4 binds heparan sulfate[J]. Journal of Chromatography,846(1-2):184-194.

      Pokidysheva E,Zhang Y,Battisti A J,Bator-Kelly C M,Chipman P R,Xiao C,Gregorio G G,Hendrickson W A,Kuhn R J,Rossmann M G. 2006. Cryo-EM reconstruction of dengue virus in complex with the carbohydrate recognition domain of DC-SIGN[J]. Cell,124(3):485-493.

      Reyes-Del Valle J,Chávez-Salinas S,Medina F,Del Angel R M. 2005. Heat shock protein 90 and heat shock protein 70 are components of dengue virus receptor complex in human cells[J]. Journal of Virology,79(8):4557-4567.

      Smit J M,Moesker B,Rodenhuis-Zybert I,Wilschut J. 2011. Flavivirus cell entry and membrane fusion[J]. Viruses,3(2):160-171.

      Su J,Li S,Hu X,Yu X,Wang Y,Liu P,Lu X,Zhang G,Hu X,Liu D,Li X,Su W,Lu H,Mok N S,Wang P,Wang M,Tian K,Gao G F. 2011. Duck egg-drop syndrome caused by BYD virus,a new tembusu-related flavivirus[J]. PLoS One,6(3):e18106.

      Tang Y,Diao Y,Yu C,Gao X,Ju X,Xue C,Liu X,Ge P,Qu J,Zhang D. 2013. Characterization of a tembusu virus isolated from naturally infected house sparrows(Passer domesticus) in northern China[J]. Transboundary and Emer-ging Disease,60(2):152-158.

      Thepparit C,Smith D R. 2004. Serotype-specific entry of dengue virus into liver cells:identification of the 37-kilodalton/67- kilodalton high-affinity laminin receptor as a dengue virus serotype 1 receptor[J]. Journal of Virology,78(22):12647-12656.

      Zhang W,Chen S,Mahalingam S,Wang M,Cheng A. 2017. An updated review of avian-origin tembusu virus:A newly emerging avian Flavivirus[J]. The Journal of General Virology,98(10):2413-2420.

      Zhao D,Liu Q,Han K,Wang H,Yang J,Bi K,Liu Y,Liu N,Tian Y,Li Y. 2018. Identification of Glucose-regulated protein 78(GRP78) as a receptor in BHK-21 cells for duck tembusu virus infection[J]. Frontiers in Microbiology,9:694. doi: 10.3389/fmicb.2018.00694.

      (責(zé)任編輯 蘭宗寶)

      猜你喜歡
      受體
      α7-煙堿乙酰膽堿受體在肺癌發(fā)生、發(fā)展及治療中的作用
      維生素D受體或是糖尿病治療的新靶點(diǎn)
      中老年保健(2021年3期)2021-12-03 02:32:25
      Toll樣受體在胎膜早破新生兒宮內(nèi)感染中的臨床意義
      2,2’,4,4’-四溴聯(lián)苯醚對(duì)視黃醛受體和雌激素受體的影響
      血管緊張素Ⅱ及其受體在疼痛中的研究進(jìn)展
      TSH受體單克隆抗體研究進(jìn)展
      μ阿片受體在嗎啡鎮(zhèn)痛耐受中的研究進(jìn)展
      海帶多糖對(duì)糖尿病小鼠降鈣素受體樣受體表達(dá)的影響
      Toll樣受體:免疫治療的新進(jìn)展
      死亡受體5氨基末端的結(jié)構(gòu)與功能
      休宁县| 洮南市| 色达县| 乐东| 乳源| 涟源市| 革吉县| 鱼台县| 含山县| 新兴县| 宜兴市| 兴山县| 桐梓县| 吉首市| 泗洪县| 长丰县| 沁阳市| 松阳县| 来宾市| 永登县| 简阳市| 龙陵县| 保山市| 鱼台县| 金阳县| 来安县| 泾川县| 四平市| 宁国市| 黑水县| 台东市| 曲水县| 宁陵县| 崇文区| 宁海县| 庄河市| 皋兰县| 桑日县| 安图县| 盐津县| 尼勒克县|