郝麗芬,燕孟嬌,房永雨,宋培玲,皇甫海燕,郭 晨,楊永青,賈曉清,皇甫九茹,李子欽
(內(nèi)蒙古自治區(qū)農(nóng)牧業(yè)科學院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010031)
植物在自然界生長,不可避免地要受到病原菌的侵染,促成了植物與病原菌的協(xié)同進化,人們已經(jīng)認識到來自病原菌的效應子蛋白和來自植物的抗性蛋白(或次級代謝物)可以在植物和微生物之間轉(zhuǎn)運,但是,近年研究證明,小RNA(sRNAs)也可以在不同生物界之間相互轉(zhuǎn)運,并且跨界沉默對方的靶基因。這種沉默靶基因的機制被命名為跨界RNA 干擾[1]。
sRNAs以兩種形式存在,微小RNA(microRNA,miRNA)和小干擾RNA(siRNA)。一般情況下,miRNA 起源于含有莖環(huán)結(jié)構(gòu)的單鏈RNA;而siRNA起源于長的雙鏈RNA的顛倒重復或依賴RNA的RNA 聚合酶(Rd RP)產(chǎn)物。siRNA 又可以根據(jù)其起源的路徑不同分為反式作用siRNA(ta-siRNAs)、次級階段siRNA(phasiRNAs)、異染色質(zhì)siRNA(hcsiRNAs)、自然反轉(zhuǎn)錄siRNA(nat-siRNAs)和長鏈siRNAs(lsiRNAs)。ta-siRNAs 研究較深入,已經(jīng)明確其在植物免疫和信號傳導過程中具有重要功能[2]。研究也表明,22 nt miRNA和phasiRNAs可以靶向抑制NLR 基因和PRRs 基因,在平衡植物的抗性和生長中起調(diào)控作用[3-4],hc-siRNAs 長度一般為24~30 nt,主要介導植物表觀遺傳[5]。lsiRNAs 長度一般為30~40 nt,研究發(fā)現(xiàn)其也參與植物抗性反應[6]。多項研究證明,miRNA和siRNA 在植物病原菌互作過程中發(fā)揮重要作用。2013年,sRNAs 首先在灰霉病菌與擬南芥、番茄的互作過程中被發(fā)現(xiàn)[7],隨后,科學家在多種植物和病原菌的互作過程中發(fā)現(xiàn)有sRNAs的參與,并將這種sRNAs 介導的寄主誘導基因沉默(HIGS)技術(shù)成功應用在植物保護工作中。筆者主要綜述了sRNAs 合成路徑和作用機理及其在寄主與病原菌互作過程中的轉(zhuǎn)運機制和應用實例的研究進展,以期為跨界RNA 干擾技術(shù)在植物病害防控領(lǐng)域的廣泛應用提供參考信息。
sRNAs 由于起源的路徑不同,合成路徑也不同。miRNAs 利用RNA 聚合酶Ⅱ(RNAPol Ⅱ)轉(zhuǎn)錄miRNA 基因產(chǎn)生原初miRNA,原初miRNA 轉(zhuǎn)錄形成折回結(jié)構(gòu),進一步加工形成帶有莖環(huán)結(jié)構(gòu)的前體miRNA(Pri-miRNA),由DICER 類蛋白1(DCL1)和HYL1(Hyponastic leaves 1)和SE(Serrate)作用形成雙重sRNAs,被HEN1(Huenhancer 1)在3′端甲基化,進入細胞質(zhì),成熟的miRNA 會優(yōu)先與AGO1 (Argonaute1) 蛋白結(jié)合,靶向切割目標mRNA[8]。
而siRNAs 來源于不完全配對的雙鏈RNA(dsRNA)前體,其他來源于反義轉(zhuǎn)錄或RNA 依賴的RNA 聚合酶產(chǎn)物,RNAPol Ⅱ轉(zhuǎn)錄非編碼TAS 基因,借助miRNAs和RNA 誘導的沉默復合物(RISCs)切割原始轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,產(chǎn)生5′片段和3′片段,在RDR6和SGS3 作用下,以產(chǎn)生的片段為模板合成互補鏈,形成雙鏈RNA,再由DCL4和DRB4 作用形成ta-siRNAs。正義和反義轉(zhuǎn)錄cis-NATs 產(chǎn)生nat-siRNAs,參與的細胞組分有DCL1 或DCL2,HYL1和HEN1[9]。而hc-siRNAs和ta-siRNAs 一般來源于轉(zhuǎn)座子、重復原件和異染色質(zhì)區(qū),合成依賴于DCL3-RDR2-Pol Ⅳ路徑。而lsiRNAs的合成依賴于DCL1、HYL1、HEN1、AGO7、HST的共同作用,部分依賴于RDR6和Pol Ⅳ組分作用[8]。
成熟的miRNA和siRNAs與AGO蛋白結(jié)合形成RNA 誘導的沉默復合物(RISC);活化的RISC以堿基互補配對的方式與靶mRNA 相結(jié)合,在酶的作用下將靶mRNA 切割降解或抑制其翻譯,行使其抑制靶基因表達的功能;RNA 沉默中還存在級聯(lián)放大效應,即以siRNA 中的一條鏈為引物,以mRNA為模板,在RNA 依賴的RNA 聚合酶(Rd RP)的作用下合成新的ds RNA,進而引發(fā)后續(xù)的循環(huán)擴大反應[10]。
植物分泌蛋白的方式分為傳統(tǒng)分泌方式和非經(jīng)典分泌方式。傳統(tǒng)方式是蛋白質(zhì)經(jīng)過內(nèi)質(zhì)網(wǎng)-高爾基體途徑將蛋白分泌到質(zhì)膜和細胞外;非經(jīng)典分泌方式(Unconventional protein secretion,UPS)[11]包括多種途徑,其中參與植物免疫的途徑有高爾基體旁路和特異細胞器介導的3種分泌方式,包括多泡體(MVB)、中心液泡(Central vacuole)和植物特異胞外陽性細胞器(Plant specific exocyst-positive organelles,EXPO)。植物胞外囊泡主要來源于MVB和EXPO與細胞膜的融合,參與植物的生物和非生物脅迫響應。胞外囊泡是小的膜封閉的囊泡隔室,胞外囊泡的主要功能是消除細胞內(nèi)廢物,被細胞釋放到外界傳送蛋白、RNA、代謝物和其他分子?;谖锓N起源路徑和生物標記物,胞外囊泡分為3 類,分別是外來體、細胞微泡和凋亡體;外來體起源于管腔內(nèi)的多泡體,細胞微泡是質(zhì)膜向外形成的芽體,凋亡體的細胞凋亡過程產(chǎn)生的囊泡[12]。
近年來的研究發(fā)現(xiàn),胞外囊泡是植物與病原菌交流的最主要途徑[13]。20世紀60年代首次發(fā)現(xiàn)植物胞外囊泡[14],2009年,首次從向日葵種子分離獲得,這些胞外囊泡可以在離體條件下被核盤菌吸入,導致核盤菌形態(tài)改變、細胞死亡或生長停滯[15],這表明胞外囊泡(Extracellular vesicles,EV)可以轉(zhuǎn)運植物的抗性物質(zhì)到病原菌。
胞外囊泡轉(zhuǎn)運小RNA分子主要包括3種方式[16]。MVB 釋放TET8/9 相關(guān)的外來體到細胞外空間,包含抗性相關(guān)的分子和寄主的小RNA。這些分子可以被病原菌內(nèi)化抑制其毒性,例如,MVB 參與擬南芥對大麥白粉病菌(Blumeria graminis)的非宿主抗性反應。EXPO 是單層膜結(jié)合的胞外泡囊,可能與抗性分子的重新定位相關(guān)。另外,長10~17 nt 短非編碼的sRNAs分子,可以通過PEN1 相關(guān)的囊泡傳輸,但不清楚是否和植物免疫有關(guān)。這3種胞外囊泡是獨立存在的[17]。
研究發(fā)現(xiàn),包含寄主sRNAs的植物外來體可以被真菌細胞在幾小時內(nèi)吸收,從含有胞外囊泡,并被葡萄孢霉菌感染的植物組織中分離葡萄孢霉(B.cinerea)原生質(zhì)體,發(fā)現(xiàn)體內(nèi)包含70%的植物sRNAs,這些研究證明胞外囊泡參與介導sRNAs的轉(zhuǎn)運。敲除擬南芥TET8/9 會抑制寄主sRNAs的傳輸[18],HOU 等[19]研究發(fā)現(xiàn)疫霉菌侵染擬南芥的過程中,大量siRNAs 存在于胞外囊泡中,不參與調(diào)控內(nèi)源性植物基因,推測可能沉默疫霉菌的基因。因為在疫霉菌中引入植物siRNAs,導致疫霉菌發(fā)育缺陷和毒力喪失,而擬南芥的siRNAs 缺陷的突變體對疫霉菌是敏感的,說明胞外囊泡中的siRNAs可以轉(zhuǎn)移到疫霉菌。
寄主植物與病原菌最初始的互作是激活植物先天免疫系統(tǒng),由病原相關(guān)分子模式激發(fā)的免疫反應(PAMP-triggered immunity,PTI)和效應蛋白激發(fā)的免疫反應(Effector-triggered immunity,ETI)組成。PTI 反應是植物識別病原相關(guān)分子模式(PAMP),主要為病原菌細胞壁組分(幾丁質(zhì)、鞭毛蛋白等),產(chǎn)生非特異性的防衛(wèi)反應。ETI 反應是病原菌分泌效應子進入寄主細胞,引起寄主產(chǎn)生抗性蛋白,產(chǎn)生特異性的防衛(wèi)反應。而sRNAs 廣泛存在于生物體中,在植物與病原菌的互作過程中發(fā)揮重要作用。NAVARRO ET 等[20]首次發(fā)現(xiàn)miRNA 參與植物免疫反應,表明擬南芥miR393 被PAMP 誘導產(chǎn)生,可以降低植物生長激素信號強度,引起PTI 反應。KATIYAR-AGARWAL 等[2]首次發(fā)現(xiàn)siRNA 參與植物免疫反應,證明細菌丁香假單孢菌(Pseudomonas syringae)誘導番茄產(chǎn)生nat-siRNAATGB2,攜帶效應子AvrRpt2,促進ETI 反應。ZHANG 等[21]鑒定得到兩個靶向真菌致病基因的棉花miRNAs(miR166和miR159),兩個致病基因分別編碼Ca2+依賴的半胱氨酸蛋白酶(VdClp-1)和異木霉素C-15 羥化酶(VdHiC-15),輸入兩個miRNA 至棉花,誘導sRNAs跨界干擾兩個致病基因的表達,增加了棉花對Verticillium的抗性。XU 等[22]研究發(fā)現(xiàn),棉花黃萎病菌(Verticillium dahliae)的G 蛋白信號(RGS)調(diào)控因子受病原菌誘導上調(diào)表達,將其中的VdRGS1 基因敲除獲得轉(zhuǎn)基因菌株,發(fā)現(xiàn)病原菌在孢子產(chǎn)生、菌絲發(fā)育、微菌核形成方面受到嚴重影響,判斷VdRGS1 基因?qū)甑亩玖π纬善痍P(guān)鍵作用。在此基礎(chǔ)上,利用病毒介導的HIGS 技術(shù)構(gòu)建轉(zhuǎn)基因棉花,發(fā)現(xiàn)該轉(zhuǎn)基因棉花對Verticillium dahliae的抗性增強。針對VdRGS1 基因的HIGS 技術(shù)提供了有效防治棉花黃萎病的新思路。
近年來,研究發(fā)現(xiàn)sRNAs 在調(diào)控病原菌毒性中發(fā)揮重要作用,可以作為一種新的效應子抑制寄主免疫,原核病原菌和真核病原菌都產(chǎn)生了大量的非編碼sRNAs,當然,原核的sRNAs 顯著不同于真核sRNAs。細菌的非編碼sRNAs 是多樣化的,長度在50 ~300 nt,大多數(shù)調(diào)控翻譯效率和穩(wěn)定靶向mRNAs,例如,黃單孢菌屬(Xanthomonas)、農(nóng)桿菌屬(Agrobacterium)和果膠桿菌屬(Pectobacterium)的非編碼sRNAs 響應脅迫和調(diào)控病原菌毒力[23-25]。
關(guān)于真核病原菌致病相關(guān)的sRNAs 研究較多,在水稻稻瘟病研究中發(fā)現(xiàn),大量sRNAs 在附著胞中富集[26],還有灰霉病菌(B.cinerea)在感染初期產(chǎn)生大量的sRNAs,說明sRNAs 是參與植物防御反應的重要成員。真菌灰霉病菌(B.cinerea)、大麗輪枝菌(V.dahlia)和卵菌(Oomycete)產(chǎn)生sRNAs 效應子,可以移動到寄主細胞,并且利用寄主RNAi 機制結(jié)合到寄主AGO1 或者沉默多個寄主免疫基因,增強病原菌毒性[7,27]。小麥柄銹菌也使用這種策略傳輸milR1 到寄主細胞抑制病程相關(guān)蛋白基因2(PR2),抑制植物免疫[28]。WEIBERG 等[7]研究灰霉病菌(B.cinerea)感染擬南芥和番茄的早期階段,發(fā)現(xiàn)Bc-sRNAs和信號調(diào)控相關(guān)基因被顯著富集,其中跨界轉(zhuǎn)運的3個Bc-sRNAs 靶向結(jié)合 擬南芥Argonaute 1(AGO1),沉默寄主抗性基因,影響擬南芥和番茄的免疫力,進一步進行試驗,雙突變B.cinerea的dcl1和dcl2 基因,不能合成DCL1和DCL2,造成sRNAs 合成受阻,影響了病原菌的毒性。證明病原菌產(chǎn)生sRNAs 轉(zhuǎn)運至寄主,進而影響寄主免疫。
跨界sRNAs 發(fā)生在植物與多種病原微生物互作過程中,包括真菌、細菌、病毒和線蟲等,針對病原真菌,利用HIGS 構(gòu)建跨界RNAi 載體,沉默病原菌毒性相關(guān)的靶向基因[29],從而使寄主獲得對病原菌的抗性,跨界RNAi 作為植物抗病的新“武器”,拓展了對抗病/感病機制的認識,還為抗病生物技術(shù)的發(fā)展帶來了新機遇,服務于我國農(nóng)作物病害綠色防控[30]。例如,ZHANG 等[21,31]利用HIGS 技術(shù)培育出了可穩(wěn)定遺傳的轉(zhuǎn)基因棉花,該棉花通過表達RNAi結(jié)構(gòu)使大麗輪枝菌形成菌核的VdH1 基因沉默,病原菌喪失產(chǎn)生菌核的能力,毒力下降。田間試驗證明,接種病原菌后,轉(zhuǎn)基因棉花有效控制了棉花黃萎病,該研究首次通過田間試驗證明HIGS 技術(shù)在植物抗病研究中的潛力。這些研究為利用sRNAs 技術(shù)進行農(nóng)作物抗病蟲改良提供了良好的范例。美國加利福尼亞大學的GOVINDARAJULU 等[32]利用HIGS技術(shù)培育出了抗萵苣盤梗霉(Bremia lactucae)的轉(zhuǎn)基因萵苣,該作物通過表達RNAi 結(jié)構(gòu)使萵苣盤梗霉中的關(guān)鍵基因發(fā)生沉默,這些基因的沉默抑制了病原菌的擴散,從而起到了控制霜霉病的作用,CHEN 等[33]利用HIGS 技術(shù)構(gòu)建靶向鐮刀菌FcGls1基因的RNAi 載體結(jié)構(gòu),導致菌絲細胞壁缺陷,轉(zhuǎn)基因小麥對赤霉病表現(xiàn)出有效抗性。最新的研究發(fā)現(xiàn),SKOMINSKA-DURDASIAK 等[34]基于文獻研究和國際小麥基因組數(shù)據(jù)聯(lián)盟的數(shù)據(jù)庫比對結(jié)果,標記小麥參與跨界RNAi的14個基因,并通過重組自交系‘Apache×Biscay’證明(Rab5-like GTPase)基因、Ara6和Dicer1 基因與小麥赤霉病抗性有關(guān)。這為利用跨界RNAi 服務小麥育種提供了參考信息。ZHU 等[35]在小麥銹?。≒uccinia striiformis)的研究中,發(fā)現(xiàn)PsFUZ7 是調(diào)控Puccinia striiformis 感染和發(fā)育的重要致病因子,針對PsFUZ7 基因,構(gòu)建含有RNAi 結(jié)構(gòu)的轉(zhuǎn)基因小麥品系,其對Puccinia striiformis 具有很強的抗性。該研究證實了基于RNAi的生物技術(shù)可以有效保護農(nóng)作物。
近年來,我國提出農(nóng)藥減施增效,發(fā)展綠色農(nóng)業(yè)的總體戰(zhàn)略,跨界sRNAs的發(fā)現(xiàn)為發(fā)展環(huán)境友好型的植物保護舉措提供了新的思路,是當前進行農(nóng)作物抗病育種的新策略[30]??缃鐂RNAs 進一步揭示了sRNAs 在植物免疫和病原菌毒力形成機制,明確了跨界sRNAs 是一把雙刃劍,如何利用跨界sRNAs 抑制病原菌毒性基因的表達,如何利用跨界sRNAs 提高植物的免疫能力是當前急需解決的科學問題。隨著深度測序技術(shù)的發(fā)展,建議利用新一代測序技術(shù)深入挖掘參與植物病原菌互作的sRNAs,充分了解sRNAs的調(diào)控作用。進一步鑒定來自病原菌的sRNAs和他們的目標基因,揭示病原菌的致病機制。還要進一步鑒定病原菌感染宿主過程中,sRNAs 合成路徑的關(guān)鍵酶,揭示是否可以通過控制病原菌合成sRNAs 路徑中的酶,進而控制病原菌的毒力。另外,在對sRNAs 功能鑒定的基礎(chǔ)上,應該著重考慮如何將其應用于生產(chǎn)實際。爭取將跨界RNAi 技術(shù)廣泛應用于植物病害防控領(lǐng)域,為發(fā)展綠色農(nóng)業(yè)提供有力工具。