吳衛(wèi)成,戴建波,,曹 艷,夏其樂,*,陳劍兵,孟祥河
(1.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 食品科學(xué)研究所,浙江 杭州 310021; 2.浙江工業(yè)大學(xué) 海洋學(xué)院,浙江 杭州 310014)
甘薯[Ipomoeabatatas(Linn.) Lamarck]是一種在國內(nèi)大范圍種植的薯類作物,具有巨大的產(chǎn)量和較完整的深加工產(chǎn)業(yè)鏈。然而,甘薯皮作為加工廢棄物,目前仍未得到有效的利用。甘薯皮低蛋白、高淀粉含量的特點(diǎn)限制了其在畜產(chǎn)業(yè)的應(yīng)用。但與此同時(shí),甘薯皮中也存在著豐富的多酚黃酮類物質(zhì)和纖維素。因此,是一種極佳的功能性膳食纖維來源。
研究發(fā)現(xiàn),甘薯膳食纖維能夠提高大鼠血漿和器官的抗氧化能力,并能通過介導(dǎo)抗炎和促炎細(xì)胞因子、轉(zhuǎn)化生長因子-β(TGF-β)和半胱天冬酶3的基因表達(dá)水平,對(duì)空腸、肝臟和脾臟的免疫功能產(chǎn)生積極的影響[1]。從甘薯中提取得到的中性多糖和酸性多糖均可增強(qiáng)正常小鼠中乙酸、丙酸和丁酸的產(chǎn)生[2];Zhang等[3]研究發(fā)現(xiàn),在木瓜皮中,酸性多糖較中性多糖表現(xiàn)出更好的熱穩(wěn)定性和持水持油性。由此可見,甘薯膳食纖維及其多糖具有非常好的醫(yī)用保健用途。
膳食纖維的提取改性方法通常有物理改性、化學(xué)改性、酶法改性和微生物發(fā)酵改性等。化學(xué)改性易產(chǎn)生有毒廢水,污染環(huán)境,且其化學(xué)殘留對(duì)消費(fèi)者來說同樣也是安全隱患;酶法改性由于酶難以重復(fù)回收利用,成本過高,目前難以推廣開來;微生物發(fā)酵改性需要巨大的發(fā)酵設(shè)備,投資過大,且發(fā)酵過程難以控制,易受污染[4]。隨著工業(yè)生產(chǎn)技術(shù)的發(fā)展,新型物理改性手段因具備低投入、無污染、速度快等特點(diǎn),已越來越多地被大眾所接受。例如:用微射流瞬時(shí)高壓超微粉碎法對(duì)甘薯膳食纖維進(jìn)行處理后,其粒徑顯著減小,可溶性膳食纖維(SDF)含量增加,持水持油、葡萄糖脂肪吸收能力和對(duì)胰脂肪酶活性的抑制能力均有大幅度提高[5]。
越來越多的試驗(yàn)證明,膳食纖維的SDF含量、物理結(jié)構(gòu),以及中性多糖和酸性多糖的比例都會(huì)影響其功能特性。另外,不同的處理方法對(duì)膳食纖維多糖的主要功能成分也有影響[6]。但目前關(guān)于不同物理改性方法對(duì)膳食纖維多糖主成分和形貌結(jié)構(gòu)影響的研究鮮見報(bào)道。為此,本研究擬運(yùn)用物理改性方法提高甘薯皮的SDF含量,探究不同物理改性方法對(duì)甘薯皮膳食纖維多糖主成分、中性多糖和酸性多糖比例組成,以及形貌結(jié)構(gòu)的影響,以進(jìn)一步開拓物理改性膳食纖維的適用范圍,并為后續(xù)純化多糖、提高其功能活性的研究提供參考依據(jù)。研究結(jié)果也可為增加甘薯皮利用率、提高產(chǎn)業(yè)附加值、促進(jìn)甘薯產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展提供參考。
甘薯皮,浙薯13品種甘薯削皮,厚度2~3 mm,清洗干凈,低溫烘干至水分含量5%以下,粉碎,過100目篩,備用。耐高溫α-淀粉酶、淀粉葡萄糖苷酶、胰蛋白酶,購自上海麥克林生化科技有限公司。其他試劑還包括95%乙醇、NaCl、苯酚、濃硫酸、葡萄糖、氫氧化鈉、鹽酸。
LXJ-IIB型離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;WF-4000型微波快速反應(yīng)系統(tǒng),上海屹堯分析儀器有限公司;D-1型高壓蒸汽滅菌鍋,北京發(fā)恩科貿(mào)有限公司;DHG-9146A型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;UItima Ⅳ型X射線衍射儀,日本理學(xué)公司;SCIENTZ-10N型冷凍干燥機(jī),寧波新芝生物科技股份有限公司;KQ-500DB型數(shù)控超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司;FW200型粉碎機(jī),常州市金壇友聯(lián)儀器研究所;UV-1800型紫外分光光度計(jì),SHIMADZU島津;HITACHI H-7650型透射電子顯微鏡,日本日立;Nicolet iS5型傅里葉紅外光譜儀,美國賽默飛世爾公司。
基于賴愛萍[7]試驗(yàn)方法做適當(dāng)優(yōu)化,使用熱水浸提法從甘薯皮中提取未改性總膳食纖維(TDF),提取條件為:溫度100 ℃,料液比1∶20,時(shí)間20 min;使用亞臨界水提取法從甘薯皮中提取亞臨界水改性TDF,提取條件為:溫度121 ℃,料液比1∶20,時(shí)間25 min;使用微波提取法從甘薯皮中提取微波改性TDF,提取條件為料液比1∶20、400 W、7 min。根據(jù)Pan等[8]試驗(yàn)報(bào)道,使用超聲提取法從甘薯皮中提取超聲改性TDF,提取條件為:溫度50 ℃,料液比1∶20,功率600 W,時(shí)間50 min。
提取結(jié)束后冷卻至室溫,將pH值調(diào)至5.5,將相當(dāng)于甘薯皮干質(zhì)量1%的耐高溫α-淀粉酶加入其中,然后置于95~100 ℃的水浴鍋中加熱20 min,冷卻后調(diào)節(jié)pH值至4.0,將相當(dāng)于甘薯皮干質(zhì)量1%的淀粉葡萄糖苷酶加入其中,70 ℃水浴加熱20 min,取出冷卻并調(diào)pH至中性,加入微量胰蛋白酶,再次70 ℃水浴加熱20 min,取出冷卻,加入4倍體積的95%乙醇,靜置24 h。去除上清液,將沉淀置于離心機(jī)中3 500 r·min-1離心15 min,將沉淀物取出凍干,粉碎備用[9]。
根據(jù)McCleary等[10]的酶質(zhì)量法測定、計(jì)算TDF和SDF的含量和得率。
使用D-葡萄糖作為標(biāo)準(zhǔn),通過苯酚-硫酸比色法在490 nm下測定樣品中的總碳水化合物含量。
將粗制膳食纖維(100 mg)用10 mL去離子水充分溶解,加到DEAE-Sepharose FF色譜柱(150 mL)上,靜置30 min。然后依次用200 mL蒸餾水和不同濃度的NaCl溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol·L-1)進(jìn)行洗脫,流速為2 mL·min-1。使用DBS-100型自動(dòng)收集器(上海滬西分析儀器廠有限公司)收集每支含5 mL洗脫液的試管,并使用以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)液的苯酚-硫酸法進(jìn)行檢測,洗脫曲線由使用的管數(shù)和吸光度(490 nm)繪制。
1.7.1 透射電鏡測定
利用透射電鏡(TEM),在15 kV加速電壓、5 μm線分辨率條件下,將TDF樣品裝載在銅網(wǎng)樣品架上,然后觀察微觀結(jié)構(gòu),并對(duì)樣品拍照。
1.7.2 傅里葉紅外光譜測定
用傅里葉紅外光譜儀(FTIR)測量TDF的官能團(tuán)變化。取干燥粉碎過的樣品(2 mg)用KBr(100 mg,光譜級(jí))研磨均勻,壓片制成均勻圓片,以空白KBr作為背景。掃描次數(shù),20 次;分辨率,4 cm-1;掃描范圍,500~4 000 cm-1。
1.7.3 X-射線衍射測定
使用步進(jìn)掃描法。測定參數(shù)如下:靶,Cu-Kα;步寬,0.02°;掃描速率,2°·min-1;掃描范圍,2°~40°。結(jié)晶度(Dc)[11]使用以下等式依曲線下的峰面積計(jì)算:
(1)
式(1)中:VDc為結(jié)晶度的數(shù)值;Ac和Aa分別為結(jié)晶區(qū)域和非晶區(qū)域的峰面積。
每組試驗(yàn)數(shù)據(jù)平行測3次。利用SPSS 20.0軟件進(jìn)行方差分析,用Origin 2017軟件繪圖。
如表1所示,物理改性方法中,只有亞臨界水改性對(duì)甘薯皮TDF的得率影響顯著(P<0.05),其他改性方法與未改性相比沒有顯著差異,亞臨界水改性后的TDF得率分別比未改性、超聲改性和微波改性提高4.19、3.42和2.87百分點(diǎn)。物理改性后,SDF得率較未改性均顯著(P<0.05)提升,其中亞臨界水改性的SDF得率分別比超聲改性和微波改性顯著(P<0.05)提高2.84和1.77百分點(diǎn)。原因可能是,亞臨界水改性的高溫高壓環(huán)境相比超聲和微波改性對(duì)纖維素間的氫鍵更具破壞力,從而將不可溶膳食纖維轉(zhuǎn)變?yōu)镾DF[12]。
表1 物理改性前后TDF與SDF的得率比較
Table1TDF and SDF yields before and after physical modifications
處理TreatmentTDF得率TDF yield/%SDF得率SDF yield/%未改性Unmodified18.75±0.31 b0.83±0.15 d超聲改性19.52±0.28 b5.37±0.34 cUltrasonic modification亞臨界水改性22.94±0.27 a8.21±0.47 aSubcritical water modification微波改性20.07±0.36 b6.44±0.26 bMicrowave modification
同列數(shù)據(jù)后無相同字母的表示處理間差異顯著(P<0.05)。下同。
Data marked without the same letters in the same column indicated significant difference atP<0.05. The same as below.
如圖1所示,經(jīng)過物理改性后,甘薯皮膳食纖維的多糖主成分均有所改變。未改性的甘薯皮膳食纖維中,中性多糖、0.2 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-W2)和0.3 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-W3)部分的含量多于其他部分;超聲改性后,中性多糖、0.3 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-U3)和0.6 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-U6)部分含量最多;亞臨界水改性后,中性多糖、0.3 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-H3)和0.4 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-H4)部分含量最多;微波改性后,中性多糖、0.3 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-M2)和0.6 mol·L-1NaCl酸性多糖(SPP-M3)部分含量最多。物理改性后,不同的機(jī)械作用力導(dǎo)致部分不可溶的膳食纖維分子間的氫鍵、共價(jià)鍵斷裂,從而導(dǎo)致原本不溶的半纖維素等物質(zhì)溶于水[13],提高了SDF的含量。改性后中性多糖含量的提高,也可能與此有關(guān)。
A、B、C、D分別展示未改性、超聲改性、亞臨界水改性和微波改性后甘薯皮膳食纖維的多糖成分。SPP-W0、SPP-W2和SPP-W3分別為中性多糖、0.2 mol·L-1和0.3 mol·L-1 NaCl酸性多糖;SPP-U0、SPP-U3和SPP-U6分別為中性多糖、0.3 mol·L-1和0.6 mol·L-1 NaCl酸性多糖;SPP-H0、SPP-H3和SPP-H4分別為中性多糖、0.3 mol·L-1和0.4 mol·L-1 NaCl酸性多糖;SPP-M0、SPP-M2和SPP-M3分別為中性多糖、0.3 mol·L-1和0.6 mol·L-1 NaCl酸性多糖。A, B, C, D exhibited polysaccharide components of dietary fiber in unmodified sweet potato peels samples and samples after ultrasonic, subcritical water and microwave modifications, respectively. SPP-W0, SPP-W2 and SPP-W3 were neutral polysaccharide, 0.2 mol·L-1 and 0.3 mol·L-1 NaCl acidic polysaccharide, respectively. SPP-U0, SPP-U3 and SPP-U6 were neutral polysaccharide, 0.3 mol·L-1 and 0.6 mol·L-1 NaCl acidic polysaccharide, respectively. SPP-H0, SPP-H3 and SPP-H4 were neutral polysaccharide, 0.3 mol·L-1 and 0.4 mol·L-1 NaCl acidic polysaccharide, respectively. SPP-M0, SPP-M2 and SPP-M3 were neutral polysaccharide, 0.3 mol·L-1 and 0.6 mol·L-1 NaCl acidic polysaccharide, respectively.
如表2所示,中性多糖含量占比最多的為亞臨界水改性后的甘薯皮,分別比未改性、超聲改性、微波改性顯著(P<0.05)提高24.24、22.35和1.73百分點(diǎn)。未改性甘薯皮膳食纖維中0.1、0.2、0.3、0.5 mol·L-1NaCl洗脫出的酸性多糖部分顯著(P<0.05)高于物理改性后的,其中改變最明顯的是未改性甘薯皮膳食纖維中0.3 mol·L-1NaCl洗脫出的酸性多糖部分,分別比超聲改性、亞臨界水改性和微波改性高出18.19、10.04和8.66百分點(diǎn)。0.4 mol·L-1NaCl洗脫出的酸性多糖部分,以亞臨界水改性后所占比例最多,分別比未改性、超聲改性和微波改性顯著(P<0.05)高出4.31、4.87和7.05百分點(diǎn);0.6 mol·L-1NaCl洗脫出的酸性多糖部分,以超聲改性后所占比例最多,分別較未改性、亞臨界水改性和微波改性顯著(P<0.05)高出37.80、34.47和38.16百分點(diǎn)。物理改性后,單位質(zhì)量甘薯皮膳食纖維中酸性多糖的比例均有所下降。原因可能是,原先溶于水的果膠等可溶部分,在物理機(jī)械作用下發(fā)生了不同程度的降解[14]。中性多糖含量占比從高到低依次為亞臨界水改性>微波改性>超聲改性>未改性,這與后面電鏡觀察到的甘薯皮膳食纖維被破壞的程度相一致,因此中性多糖含量的增加可能還與纖維的破壞程度有關(guān)。這與Ovodova等[6]的研究結(jié)果一致。
如圖2所示,未改性的甘薯皮TDF結(jié)構(gòu)致密,表面光滑,邊緣形態(tài)完整,具有明顯的纖維外觀。相比未改性,超聲改性后,TDF表面結(jié)構(gòu)出現(xiàn)明顯裂痕,部分纖維棒結(jié)構(gòu)疏松,出現(xiàn)褶皺。這可能是因?yàn)槔w維結(jié)構(gòu)受超聲波空化作用被破壞,微小空氣泡在爆破后產(chǎn)生的微射流使纖維結(jié)構(gòu)受到撞擊,導(dǎo)致結(jié)構(gòu)松散[15]。亞臨界水改性后,TDF邊緣變模糊,形態(tài)結(jié)構(gòu)遭到嚴(yán)重破壞,出現(xiàn)大量碎片,內(nèi)部區(qū)域更多地暴露出來,比表面積大大增加,呈現(xiàn)出更復(fù)雜的空間結(jié)構(gòu),因此能表現(xiàn)出更好的持水持油、吸水膨脹等有益于人體腸道健康的功能特性[16]。微波改性后,TDF的局部結(jié)構(gòu)遭到嚴(yán)重破壞,邊緣破碎,出現(xiàn)鱗片狀小顆粒,但仍有部分纖維結(jié)構(gòu)保持得比較完整,且有光滑的表面。這可能是由于微波在加熱時(shí)纖維內(nèi)部或邊角處因電磁場集聚而產(chǎn)生局部過熱,導(dǎo)致局部細(xì)胞內(nèi)蒸氣壓極速升高,水汽爆破[17]。
表2 物理改性前后甘薯皮膳食纖維多糖各部分比例比較
Table2Comparison of proportions of polysaccharides components of dietary fiber in sweet potato peels before and after physical modification
處理Treatment中性多糖Neutralpolysaccharide/%不同濃度(mol·L-1) NaCl洗脫出的酸性多糖Acidic polysaccharide eluted by different concentrations of NaCl/%0.10.20.30.40.50.6未改性Unmodified34.27±0.12 d8.48±0.25 a19.52±0.28 a28.44±0.40 a6.68±0.22 b2.32±0.16 a0.94±0.09 c超聲改性36.16±0.23 c2.33±0.08 c5.24±0.17 c10.25±0.19 d6.12±0.31 b1.50±0.11 b38.74±0.38 aUltrasonic modification亞臨界水改性58.51±0.34 a1.54±0.05 d5.81±0.14 c18.40±0.33 c10.99±0.18 a0.47±0.09 c4.27±0.14 bSubcritical water modification微波改性56.78±0.38 b4.65±0.11 b13.85±0.35 b19.78±0.26 b3.94±0.26 c0.41±0.07 c0.58±0.07 cMicrowave modification
A、B、C、D分別為未改性、超聲改性、亞臨界水改性和微波改性后甘薯皮TDF放大10 000倍的透射電鏡圖。A, B, C, D were transmission electron micrographs (10 000 times magnification) of TDF of unmodified sweet potato peel, and sweet potato peel after ultrasonic modification, subcritical water modification and microwave modification, respectively.
膳食纖維主要由有序結(jié)晶區(qū)和非晶區(qū)組成,分別占70%和30%。對(duì)比圖4中改性前后的X射線衍射圖可以看出,未改性甘薯皮TDF的整體衍射強(qiáng)度高于改性后。這是因?yàn)樘烊焕w維素有著結(jié)構(gòu)緊密的纖維骨架,從而具有高度有序的結(jié)晶區(qū)[26]。未改性TDF在衍射角14.78°、24.26°、26.60°、27.84°、32.48°附近出現(xiàn)衍射峰,具有典型纖維素Ⅰ型結(jié)構(gòu)所對(duì)應(yīng)的晶面[27]。超聲改性后,峰位置并沒有發(fā)生較大的改變,但是從峰型上來看,纖維主峰整體加寬,峰肩更加平緩,說明超聲改性并沒有使甘薯皮TDF的晶型結(jié)構(gòu)發(fā)生改變。亞臨界水改性TDF在衍射角20.80°和21.90°處出現(xiàn)新的衍射峰,是典型的結(jié)晶與非結(jié)晶共存的纖維素Ⅱ型結(jié)構(gòu)[28],說明亞臨界水改性改變了甘薯皮TDF的晶型結(jié)構(gòu)。亞臨界水改性的高溫高壓破壞了纖維素分子間的氫鍵[29],從而使原本平滑的纖維主峰出現(xiàn)雜亂小峰,說明與傳統(tǒng)熱水處理和超聲改性相比,亞臨界水改性能夠更有效地改變膳食纖維的晶型結(jié)構(gòu)。微波改性后,在衍射角20.76°和21.90°同樣出現(xiàn)新衍射峰,是典型的纖維素Ⅱ型結(jié)構(gòu),說明微波加熱產(chǎn)生的局部高熱作用能夠有效破壞纖維分子間的氫鍵[30],從而降低結(jié)晶區(qū)。從圖4可以看出,微波改性后的纖維主峰略高于亞臨界水改性,說明微波改性對(duì)甘薯皮TDF晶型的影響要小于亞臨界水改性。
圖3 甘薯皮TDF改性前后的紅外光譜圖Fig.3 Infrared spectrum of TDF in sweet potato peels before and after physical modification
由Jade 6.0軟件分峰擬合計(jì)算結(jié)晶度,亞臨界水改性(21.33%)和微波改性(25.74%)均低于超聲改性(29.18%)和未改性(36.45%),這可能是因?yàn)槔w維素的晶型結(jié)構(gòu)在高溫高壓或局部高溫?zé)嵝?yīng)下更容易被破壞[31],這與前面透射電鏡觀察到的結(jié)果一致。
圖4 甘薯皮改性前后的X射線衍射圖譜Fig.4 XRD patterns of TDF in sweet potato peels before and after physical modification
物理改性方法中,亞臨界水改進(jìn)對(duì)甘薯皮TDF得率影響大,分別比未改性、超聲改性和微波改性提高4.19、3.42和2.87百分點(diǎn),而其他方法對(duì)TDF得率沒有顯著影響。改性后,SDF得率均有顯著提升,且同樣以亞臨界水改性的提升效果最為明顯,分別比未改性、超聲改性和微波改性提高7.38、2.84和1.77百分點(diǎn)。物理改性前后,中性多糖占比最高的是亞臨界水改性,達(dá)到58.51%;酸性多糖中,使用0.1、0.2、0.3、0.5 mol·L-1NaCl洗脫出的部分占比最高的均為未改性多糖,分別達(dá)到8.48%、19.52%、28.44%和2.32%;酸性多糖中,0.4 mol·L-1NaCl洗脫出的部分占比最高的是亞臨界水改性,達(dá)到10.99%;0.6 mol·L-1NaCl洗脫出的部分占比最高的是超聲改性,達(dá)到38.74%。結(jié)合透射電鏡和X-射線衍射結(jié)果,SDF得率和多糖中中性多糖占比可能和膳食纖維被破壞的程度有關(guān)。
透射電鏡觀察發(fā)現(xiàn),亞臨界水改性對(duì)甘薯皮TDF的結(jié)構(gòu)破壞最為明顯,其次是微波改性。紅外光譜分析可知,改性后的膳食纖維仍具備多糖的官能團(tuán),超聲改性后有更多糖醛酸的存在,改性前后均存在果膠的多聚半乳糖醛酸結(jié)構(gòu),且物理改性后增加了膳食纖維中果膠的總含量。X-射線衍射結(jié)果分析可知,亞臨界水改性和微波改性均改變了甘薯皮TDF的纖維素晶型,其中亞臨界水改性對(duì)晶型的破壞最為嚴(yán)重。計(jì)算結(jié)晶度后發(fā)現(xiàn),亞臨界水改性的結(jié)晶度(21.33%)分別低于未改性、超聲改性和微波改性15.12、7.85和4.41百分點(diǎn)。研究結(jié)果可為進(jìn)一步深入探究物理改性作用與甘薯皮膳食纖維結(jié)構(gòu)間的量效關(guān)系,拓寬物理改性在提高甘薯皮利用率中的應(yīng)用范圍提供參考。