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      轉錄組測序分析糖尿病對小鼠AOM/DSS誘導結直腸癌發(fā)生的影響

      2020-05-25 02:32田曠怡林志玲許稷豪于濤陳其奎黎潔瑤
      新醫(yī)學 2020年5期
      關鍵詞:高通量測序結直腸癌糖尿病

      田曠怡?林志玲?許稷豪?于濤?陳其奎?黎潔瑤

      【摘要】目的 探討糖尿病(DM)對小鼠化學誘導結直腸癌發(fā)生的影響。方法 采用氧化偶氮甲烷/葡聚糖硫酸鈉誘導db/db小鼠和野生型(WT)小鼠產(chǎn)生結直腸癌,通過Illumina高通量測序技術篩選DM組與非DM組小鼠結腸腫瘤癌旁組織之間的差異表達基因,并對差異表達基因進行基因本體(GO)、京都基因與基因組百科全書(KEGG)功能注釋與富集分析。結果 與WT小鼠相比,DM小鼠結直腸的平均腫瘤體積增加(P < 0.05)。DM小鼠與WT小鼠共有1656個差異表達基因(q < 0.05),其中有70個mRNA在整個實驗過程中均差異表達,主要組織相容性復合體(MHC) Ⅱ類基因包括H2-Ea-ps、H2-Q1、H2-DMb2、H2-Q4均在DM小鼠中表達上調(diào)(q < 0.05)。GO富集分析發(fā)現(xiàn)免疫反應的調(diào)控和激活途徑、抗原加工與提呈途徑、抗原結合是顯著富集的類型(q < 0.05)。KEGG富集分析發(fā)現(xiàn)與免疫反應相關的抗原加工與呈遞是顯著富集的類型(q < 0.05)。結論 DM狀態(tài)下,小鼠免疫反應激活,MHC Ⅱ類基因表達存在顯著差異,可能參與促進結直腸癌的發(fā)生發(fā)展。

      【關鍵詞】糖尿病;結直腸癌;小鼠模型;高通量測序

      Transcriptomic high-throughput sequencing of AOM/DSS-induced colorectal carcinogenesis in mouse models with diabetes mellitus Tian Kuangyi, Lin Zhiling, Xu Jihao, Yu Tao, Chen Qikui, Li Jieyao. Department of Gastroenterology, Sun Yat-sen Memorial Hospital, Sun Yat-sen University, Guangzhou 510120, China

      Corresponding author, Li Jieyao, E-mail: lijieyaoxh@ qq. com

      【Abstract】Objective To investigate the effect of diabetes mellitus (DM) on the chemically-induced colorectal carcinogenesis in mouse modsels.? Methods Both db/db (DM) and wild-type (WT) mice were treated with AOM/DSS to induce colorectal carcinogenesis. The differentially expressed genes between the DM-CRC group and the WT-CRC group were identified using Illumina Hiseq sequencing systems. The functional enrichment analysis was mapped in gene ontology (GO) and Kyoto encyclopedia of genes and genomes (KEGG) pathway databases. Results Compared with the WT mice, DM mice presented with significantly enhanced average tumor volume (P < 0.05). A total of 1656 mRNAs were differentially expressed (all q < 0.05) between DM and WT mice, and 70 mRNAs were differentially expressed throughout the whole experiment. Major histocompatibility complex (MHC) classⅡ genes including H2-Ea-ps, H2-Q1, H2-DMb2 and H2-Q4 were all significantly up-regulated in DM mice (all q < 0.05). GO enrichment analysis demonstrated that? regulation and activation of immune response, antigen processing and presentation, and antigen binding were significantly enriched (all q < 0.05). The KEGG pathway enrichment analysis revealed that the DEGs were significantly associated with antigen processing and presentation (q < 0.05). Conclusion Immune response can be activated in DM mice.? The MHC classⅡ genes are significantly differentially expressed, which probably promotes the incidence and progression of colorectal cancer? under DM state.

      【Key words】Diabetes mellitus;Colorectal cancer;Mouse model;High-throughput sequencing

      中國約有1.164億人口患有糖尿?。―M),居世界首位[1]。近年來,大量研究認為DM與結直腸癌(CRC)之間有著密切的聯(lián)系,DM患者尤其是2型DM(T2DM)患者較非DM人群的CRC發(fā)病風險大幅升高[2-3]。癌旁組織常被用作腫瘤研究中的正常對照,也有研究表明,毗鄰腫瘤的癌旁組織在轉錄組和表觀遺傳學等方面亦有畸變,可被用于研究腫瘤發(fā)生發(fā)展及機制變化[4-5]。本課題組前期實驗對致癌劑氧化偶氮甲烷(AOM)合并促炎劑葡聚糖硫酸鈉(DSS)在小鼠模型上誘導CRC形成進行探索,并發(fā)現(xiàn)2循環(huán)的DSS飲水可得到成本/效益較佳的實驗結果;此外,我們發(fā)現(xiàn)與人類相似,T2DM小鼠的CRC成瘤效率高于非DM小鼠[6]。然而,DM與CRC之間的協(xié)同機制尚不完全清楚,深入探索DM并發(fā)CRC的機制有助于早期防治,改善患者預后,減輕社會負擔。本研究擬通過Illumina高通量測序技術檢測DM組及正常組小鼠的結腸癌旁組織中轉錄組的表達,篩選差異表達基因并進行差異表達基因的基因本體(GO)、京都基因與基因組百科全書(KEGG)功能注釋與富集分析,以期為DM狀態(tài)下AOM/DSS誘導的小鼠CRC發(fā)生發(fā)展的機制或潛在藥物治療靶點提供科學研究基礎。

      材料與方法

      一、主要試劑和動物

      AOM(Sigma,美國),DSS(MP Biomedicals,美國)。C57BLKS/J-Leprem2Cd479/Nju(db/db)小鼠及其野生型對照C57BLKS/JNju(wild type,WT)小鼠,雄性,7周齡,各36只。小鼠均由南京集萃藥康生物科技公司(南京,中國)提供,常規(guī)飼養(yǎng)于中山大學東校園實驗動物中心,實驗室環(huán)境溫度為(23±3)℃,相對濕度為(55±15)%,晝夜明暗交替。所有有關動物的實驗過程均在中山大學實驗動物倫理委員會的監(jiān)督指導下完成,符合實驗動物倫理學要求。

      二、DM小鼠CRC模型的建立及處理

      1.建模及分組

      db/db小鼠隨機分為DM-CRC組及DM-Con組,WT小鼠隨機分為WT-CRC組及WT-Con組,每組各18只小鼠。所有小鼠經(jīng)適應性飼養(yǎng)1周后開始實驗。CRC組均于第1周(W1)皮下注射10

      mg/kg AOM,W2予2% DSS溶液自由飲用7 d,隨后予正常飲用水2周。每1周DSS與2周正常飲用水為1個循環(huán)周期,共循環(huán)2次。Con組均于W1皮下注射0.1 ml/10 g生理鹽水。各組分別于W7、W9、W11隨機處死6只小鼠。

      2.標本采集及腫瘤計數(shù)

      小鼠經(jīng)頸椎脫臼法處死,沿腹中線打開腹腔,剪取自回盲部至直腸的腸段,使用預冷的磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗腸道,沿長軸打開腸腔,仔細觀察并觸摸腸腔表面有無腫瘤形成。若發(fā)現(xiàn)腫瘤形成,觀察記錄腫瘤的數(shù)量、大小、位置,測量并記錄每個腫瘤的最長徑和垂直短徑。留取毗鄰腫瘤的癌旁組織保存于液氮中,以便后續(xù)實驗使用。

      按下述公式計算腫瘤體積、腫瘤發(fā)生率、平均成瘤數(shù)量和荷瘤小鼠平均成瘤數(shù)量:腫瘤體積 =(最長徑×垂直短徑2) / 2;成瘤小鼠占比= 荷瘤小鼠數(shù)量/實驗小鼠數(shù)量;平均成瘤數(shù)量 = 腫瘤數(shù)量/實驗小鼠數(shù)量;荷瘤小鼠平均成瘤數(shù)量 = 腫瘤數(shù)量/荷瘤小鼠數(shù)量。

      三、Illumina高通量測序

      DM-CRC組及WT-CRC組分別于W7、W9、W11各隨機抽取3只小鼠。取小鼠結腸癌旁組織提取得到RNA,進行RNA質檢、完整性等分析合格后,進行文庫構建。去除rRNA、進行mRNA純化后將RNA片段化;一鏈、二鏈cDNA合成;3末端腺苷酸化、連接測序接頭;PCR擴增;Agilent 2100生物分析儀(Agilent Technogies,美國)定量cDNA文庫;DNA成簇擴增;于HiSeq2500測序儀(Illumina, 美國)進行高通量測序。

      四、測序數(shù)據(jù)分析

      測序得到的原始圖像文件經(jīng)堿基識別、誤差過濾、除接頭序列、低質量片段等過濾方法,得到可用于數(shù)據(jù)分析的clean reads。應用Hisat2(version:2.0.4)的spliced mapping算法對clean reads進行轉錄組測序數(shù)據(jù)的基因組比對,估計基因表達的水平[7]。但由于reads數(shù)除與基因表達水平成正比外,還與基因本身的長度、測序的數(shù)據(jù)量有關。為了使不同基因、不同樣本間的基因表達水平具有可比性,應用Stringtie(version:1.3.0)對Hisat2比對后每個基因的片段數(shù)進行計數(shù),再使用M值的加權截尾均值(TMM)法進行數(shù)據(jù)的歸一化,最后利用perl腳本計算出每個基因的每千個堿基的轉錄每百萬映射讀取的片段(FPKM)值,進行基因表達量的標準化[8-11]。

      使用FPKM計算轉錄本表達量,并計算不同基因在不同組間的差異表達倍數(shù)。應用edgeR進行樣本間的差異基因分析,對P值進行多重假設檢驗校正,通過控制錯誤發(fā)現(xiàn)率以決定P值的閾值,得到校正后的P值,亦即q值[12-14]。根據(jù)q < 0.05篩選出不同組之間的差異表達基因。得到差異表達基因后,采用R語言、cluster、Cytoscape、David等軟件進行聚類分析,得到聚類分析熱圖、火山圖。

      GO是基因本體聯(lián)合會建立的數(shù)據(jù)庫(http://geneontology.org),使用了規(guī)范化的術語描述基因和基因產(chǎn)物的特性。對細胞組分、分子功能和生物過程3個層次上對應的差異基因數(shù)目進行統(tǒng)計,并把所挑選的差異表達基因向GO數(shù)據(jù)庫的各個條目映射,計算每個條目的基因數(shù)目。應用超幾何分布進行假設檢驗,得到富集結果的P值,P值越低則富集結果越顯著,進而篩選出富集程度高的基因,從而對差異表達基因進行GO功能分析。同理,使用整合分子互動網(wǎng)絡的KEGG Pathway數(shù)據(jù)庫(https://www.genome.jp/kegg/pathway.html)對各個信號通路上的差異表達基因數(shù)目和富集情況進行KEGG Pathway分析。

      五、統(tǒng)計學處理

      采用SPSS 20.0分析。正態(tài)分布的定量資料用表示,非正態(tài)分布的定量資料用中位數(shù)(四分位數(shù)間距)表示;成瘤小鼠占比的比較使用Fisher確切概率法。2組非正態(tài)分布的定量資料的比較用Mann-Whitney U檢驗,多組非正態(tài)分布的定量資料的比較用Kruskal-Wallis法。α=0.05,兩兩比較用Bonferroni法,即P < 0.05 /比較次數(shù)為差異有統(tǒng)計學意義。

      結果

      一、DM狀態(tài)對小鼠CRC形成的影響

      WT-CRC組小鼠的成瘤小鼠占比均隨暴露時間的增加而增加(P < 0.05/3,表1);WT-Con組小鼠均未形成腫瘤。在W7和W11之間,DM-CRC

      組小鼠的平均成瘤數(shù)量和荷瘤小鼠平均成瘤數(shù)量比較差異均有統(tǒng)計學意義(P < 0.05/3,表1);WT-CRC組差異則未見統(tǒng)計學意義(P > 0.05/3,表1)。WT-CRC組與DM-CRC組小鼠的平均腫瘤體積在W7和W11、W9和W11比較差異均有統(tǒng)計學意義(P < 0.05/3,表1)。此外,在W11,DM小鼠的平均腫瘤體積遠遠大于WT小鼠(P < 0.05,表1)。

      二、測序數(shù)據(jù)質控

      各組小鼠結腸癌旁組織的RNA電泳條帶明亮清晰,泳道無彌散區(qū),未見蛋白和DNA污染(圖1A);RNA完整值(RIN)接近10,28S/18S≥1.5(表2);檢測峰圖基線較平整(圖1B)。提示樣本質量和純度較好,質檢結果合格,進行Illumina高通量測序。

      三、差異表達基因篩選與聚類

      根據(jù)q≤0.05篩選差異表達基因,進行聚類分析,并繪制熱圖及火山圖。可見組內(nèi)表達相似的基因聚類后出現(xiàn)在同一簇中,DM-CRC組與WT-CRC組共有1656個差異基因(圖2)。DM-CRC組與WT-CRC組相比,在W7有210個mRNA差異表達,其中112個上調(diào),98個下調(diào)(圖3A);在W9有604個mRNA差異表達,其中136個上調(diào),468個下調(diào)(圖3B);在W11有1237個mRNA差異表達,其中522個上調(diào),715個下調(diào)(圖3C)。綜合上述所有差異表達基因,共有70個mRNA在整個實驗過程中差異表達(圖3D),其中43個上調(diào),包括MHCⅡ類基因:H2-Ea-ps(qW7 = 2.50×10-59,

      qW9 = 3.31×10-38,qW11 = 3.53×10-59)、H2-Q1(qW7 = 5.68×10-11,qW9 = 2.91×10-14,q W11 = 2.00×10-6)、H2-DMb2(qW7 = 1.01×10-2,qW9= 3.12×10-2,qW11 = 1.65×10-6)、 H2-Q4(qW7 =6.17×10-5,qW9 = 4.78× 10-3,qW11 = 3.26×10-5);另有24個下調(diào);3個有波動,在部分時間點上調(diào),部分時間點下調(diào)。

      四、GO功能顯著性富集分析

      對1656個差異表達基因的GO功能進行注釋、分類并統(tǒng)計(圖4)。結果顯示,在生物過程分組,免疫反應的調(diào)控和激活途徑、肽或多糖通過MHC Ⅱ類分子的抗原加工與提呈途徑、包括多肽抗原在內(nèi)的抗原加工與提呈途徑是顯著富集的類型(q < 0.05);在分子功能分組,MHC Ⅰ類蛋白復合物和血漿膜蛋白復合物是顯著富集的類型(q < 0.05);在細胞組分分組,包括多肽在內(nèi)的抗原結合、絲氨酸類型的肽酶、內(nèi)肽酶及水解酶活性、酰胺類物質的結合是顯著富集的類型(q < 0.05)。

      五、KEGG Pathway顯著富集分析

      結合1656個差異表達基因的KEGG功能注釋結果進行KEGG Pathway顯著性富集分析,并選取富集度最高的前30個條目進行分類統(tǒng)計。結果顯示與免疫反應相關的抗原加工與呈遞、移植排斥反應、移植物抗宿主病、自身免疫性甲狀腺疾病等方向顯著富集(q < 0.05,圖5)。

      討論

      在T2DM患者中,約有10%的患者合并CRC,且初次診斷時大多處于中晚期,患者預后不夠理想[15-16]。因此,我們需要更多的研究來尋找DM狀態(tài)下CRC發(fā)生發(fā)展前期的分子機制變化。AOM可通過誘導基因突變損傷,進而促進嚙齒類動物CRC的形成;在其基礎上加用DSS,可誘導腸上皮的慢性炎癥狀態(tài),加快建模效率[17]。db/db小鼠先天具有高血糖和高脂血癥,是一種常用的T2DM小鼠模型[18]。參考本課題組的前期實驗,我們本次使用AOM聯(lián)合2循環(huán)DSS,誘導DM小鼠及WT小鼠形成CRC[6]。通過對小鼠成瘤情況的評估,發(fā)現(xiàn)在W11,DM小鼠的平均腫瘤體積遠遠大于WT小鼠,提示DM狀態(tài)可促進小鼠CRC的發(fā)生,與人類的DM與CRC之間的協(xié)同機制相一致,對該模型進一步的研究或可為DM合并CRC的機制及潛在的藥物治療靶點提供參考依據(jù)。

      癌旁組織在臨床實驗中常被用作腫瘤的正常對照,然而近年來已有多項研究發(fā)現(xiàn),盡管毗鄰腫瘤的癌旁組織在大體上未見異常,病理觀察下可能已發(fā)生組織異常增生,并在分子水平較無腫瘤的正常組織發(fā)生改變,可用于研究腫瘤發(fā)生發(fā)展早期的分子變化[4-5, 19-21]。轉錄組測序是指利用以Illumina高通量測序為代表的二代測序技術,對組織或者細胞中所有mRNA反轉錄生成的cDNA序列進行測序,全面快速獲得細胞或組織在特定時期內(nèi)的幾乎所有轉錄本序列信息,進而篩選差異表達基因,并對基因進行預測,為在分子水平尋找可能的生物標志物提供了極大的便利[22]。本實驗通過獲取成瘤小鼠毗鄰腫瘤的癌旁組織,利用Illumina高通量測序分析,探討DM對小鼠CRC發(fā)生的潛在病理機制。

      我們通過實驗得到差異表達mRNA共1656條,并發(fā)現(xiàn)70個mRNA在整個實驗過程中均差異表達,其中MHC Ⅱ類基因包括H2-Ea-ps、H2-Q1、H2-DMb2、H2-Q4均在DM小鼠中表達顯著上調(diào)。在GO生物過程分組上,免疫反應的調(diào)控和激活途徑、肽或多糖通過MHC Ⅱ類分子的抗原加工與提呈途徑、包括多肽抗原在內(nèi)的抗原加工與提呈途徑是顯著富集的類型;在分子功能分組上,MHC Ⅰ類蛋白復合物是顯著富集的類型;在細胞組分分組上,包括多肽在內(nèi)的抗原結合是顯著富集的類型。在KEGG Pathway顯著性富集分析中,與免疫反應相關的抗原加工與呈遞顯著富集。

      MHC Ⅱ類分子是免疫反應的關鍵介質之一,起著向CD4+ T淋巴細胞提呈經(jīng)過加工的外源性抗原和誘發(fā)免疫反應的作用[23]。這些基因均具有高度的多態(tài)性,可影響功能性氨基酸的變化,并導致個體對抗原反應的差異[24]。結直腸由于持續(xù)暴露于外源性抗原,如食物、化學物質、細菌等,導致該處相對恒定的炎癥狀態(tài),與其它器官相比,在MHC Ⅱ類基因表達方面具有顯著差異[25]。此外,有學者發(fā)現(xiàn),MHC Ⅱ類等位基因的高表達可提示結腸炎患者患CRC的風險增高[26]。

      在對DM易感的個體,其先天性免疫系統(tǒng)被激活,炎癥因子分泌增加,進而引起胰島素抵抗、胰島素分泌功能障礙和代謝綜合征的發(fā)生[27]。而DM患者在持續(xù)高血糖的狀態(tài)下,可損傷線粒體功能,增加活性氧產(chǎn)生,激活炎癥介質與機體的免疫反應[28]。上述研究提示免疫炎癥反應在DM和CRC的發(fā)病中均起著重要的作用。綜合本次實驗結果,我們認為,DM狀態(tài)下CRC的發(fā)病風險增高,可能與生物體以MHC Ⅱ類基因為主的免疫反應激活有關;H2-Ea-ps、H2-Q1、H2-DMb2、H2-Q4這4個基因有望成為DM患者CRC診治的靶點。

      綜上所述,我們探討了AOM/DSS誘導小鼠產(chǎn)生CRC,發(fā)現(xiàn)DM可促進CRC的形成,顯著增加小鼠的平均腫瘤體積;比較DM與WT狀態(tài)下癌旁組織的差異表達基因,并對結果進行GO和KEGG分析,發(fā)現(xiàn)4個高表達的MHC Ⅱ類基因:H2-Ea-ps、H2-Q1、H2-DMb2、H2-Q4,為DM合并CRC的發(fā)病機制提供可靠的生物學標志物,并對其早期診治提供可能的新靶點。

      參 考 文 獻

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      (收稿日期:2019-10-18)

      (本文編輯:楊江瑜)

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