毛洋,丁寄葳,陳淑敏,岑山,李曉宇
研究報(bào)告
SLFN14抗LINE-1分子機(jī)制研究
毛洋,丁寄葳,陳淑敏,岑山,李曉宇
中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院&北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院醫(yī)藥生物技術(shù)研究所免疫生物學(xué)室,北京 100050
長(zhǎng)散在核重復(fù)序列1 (long interspersed nuclear element-1, LINE-1)是迄今為止發(fā)現(xiàn)的人體基因組中唯一具有自主轉(zhuǎn)座活性的逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子,其轉(zhuǎn)座常引起宿主基因組不穩(wěn)定,從而導(dǎo)致包括癌癥在內(nèi)的各種嚴(yán)重基因疾病的發(fā)生。宿主因子在宿主抗LINE-1轉(zhuǎn)座中發(fā)揮著重要作用。宿主因子SLFN14作為免疫系統(tǒng)重要組成員,具有抗病毒活性。本實(shí)驗(yàn)室研究發(fā)現(xiàn)SLFN14對(duì)于LINE-1的轉(zhuǎn)座具有抑制作用。為進(jìn)一步探究其具體的作用機(jī)制,通過(guò)對(duì)LINE-1復(fù)制周期中的轉(zhuǎn)錄、翻譯、逆轉(zhuǎn)錄、整合環(huán)節(jié)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)分析,證實(shí)SLFN14能夠通過(guò)影響LINE-1 mRNA轉(zhuǎn)錄過(guò)程及其半衰期,降低LINE-1 mRNA的水平,從而影響LINE-1蛋白及cDNA表達(dá)水平,最終導(dǎo)致LINE-1復(fù)制受阻。同時(shí),通過(guò)對(duì)SLFN14活性中心的定位,本研究還發(fā)現(xiàn)SLFN14的抗LINE-1活性與其核糖核酸內(nèi)切酶結(jié)構(gòu)域和核糖體結(jié)合結(jié)構(gòu)域密切相關(guān)。上述研究結(jié)果展示了SLFN14調(diào)控LINE-1復(fù)制的機(jī)制,進(jìn)一步完善了宿主因子調(diào)控網(wǎng)絡(luò),為控制因LINE-1復(fù)制引起的基因組不穩(wěn)定提供了新思路。
轉(zhuǎn)座;逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子;LINE-1;SLFN14;5?-UTR內(nèi)部啟動(dòng)子區(qū)
轉(zhuǎn)座子,又被稱為轉(zhuǎn)座元件(transposable elements, TEs),是一類能在基因組移動(dòng)的DNA重復(fù)序列,約占基因組總量的45%[1]。LINE-1是目前發(fā)現(xiàn)的人類基因組中唯一具有自主轉(zhuǎn)座活性的轉(zhuǎn)座子,占據(jù)人類基因組的17%,其全長(zhǎng)約為6000 bp[2],包括5'端和3'端的非翻譯區(qū)(untranslated regions, UTR)和兩個(gè)開(kāi)放式讀碼框架ORF1及ORF2 (open reading frame 1 protein, open reading frame 2 protein)。5'-UTR是其內(nèi)部啟動(dòng)子區(qū)域[3];ORF1p是RNA結(jié)合蛋白,具有分子伴侶活性[4];ORF2p具有逆轉(zhuǎn)錄酶活性和核酸內(nèi)切酶活性[5~8]。LINE-1的轉(zhuǎn)座方式為“復(fù)制–粘貼”型轉(zhuǎn)座,即在LINE-1的逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座過(guò)程中,首先RNA聚合酶II介導(dǎo)LINE-1啟動(dòng)子啟動(dòng)轉(zhuǎn)錄,轉(zhuǎn)錄生成的LINE-1 RNA既能作為L(zhǎng)INE-1的基因組RNA,又能行使mRNA的功能。隨后,LINE-1 RNA出核,進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),翻譯出ORF1p和ORF2p,兩者能與LINE-1 RNA結(jié)合形成核糖核蛋白復(fù)合物(ribonucleoprotein complexes, RNPs)。LINE-1 RNPs進(jìn)入細(xì)胞核,識(shí)別宿主細(xì)胞基因組DNA上的目的序列,并在雙鏈DNA的其中一條鏈上切開(kāi)一個(gè)切口,逆轉(zhuǎn)錄酶引導(dǎo)LINE-1 RNA逆轉(zhuǎn)錄生成LINE-1 cDNA,該過(guò)程被稱為靶位點(diǎn)引導(dǎo)反轉(zhuǎn)錄(target-site primed reverse transcription, TPRT)。最后,DNA的另一條鏈也被切開(kāi),繼續(xù)進(jìn)行另一條DNA鏈的合成,LINE-1 cDNA被整合入到基因組中新的位點(diǎn),完成逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座[9~11]。
LINE-1轉(zhuǎn)座對(duì)基因組的結(jié)構(gòu)和功能都會(huì)產(chǎn)生重要影響。在正常分化的細(xì)胞中,LINE-1啟動(dòng)子為高甲基化狀態(tài),不進(jìn)行轉(zhuǎn)座[12~15];而在生殖細(xì)胞發(fā)育、胚胎發(fā)育的早期則為激活狀態(tài),一旦對(duì)其進(jìn)行抑制,小鼠胚胎無(wú)法正常發(fā)育[16]。由此可見(jiàn),宿主細(xì)胞對(duì)LINE-1的活躍與抑制具有嚴(yán)格的調(diào)控。同時(shí),各項(xiàng)研究表明LINE-1在多數(shù)腫瘤細(xì)胞中高表達(dá)[17,18],這表明在病理狀態(tài)下,活躍的LINE-1會(huì)對(duì)基因組結(jié)構(gòu)和功能造成不利影響進(jìn)而引起基因疾病和癌癥,這可能是由于LINE-1可以通過(guò)插入、缺失、重組和轉(zhuǎn)導(dǎo)等方式影響基因組的完整性和不穩(wěn)定性。因此,通常情況下,細(xì)胞會(huì)通過(guò)表觀遺傳學(xué)修飾、RNA干擾和宿主限制因子調(diào)控等手段對(duì)LINE-1的轉(zhuǎn)座進(jìn)行嚴(yán)格控制[19,20]。表觀遺傳學(xué)修飾主要包括DNA甲基化和組蛋白修飾,它能在轉(zhuǎn)錄層面抑制LINE-1轉(zhuǎn)座;RNA干擾途徑主要在轉(zhuǎn)錄后層面抑制LINE-1轉(zhuǎn)座;宿主限制因子也是近年來(lái)研究的熱點(diǎn)之一,目前已發(fā)現(xiàn)多種宿主限制因子能夠抑制LINE-1轉(zhuǎn)座活性[21],其中包括APOBEC家族蛋白、SAMHD1蛋白以及本課題組正在研究的Schlafen (SLFN)家族蛋白。
SLFN家族作為胸腺細(xì)胞成熟和激活的調(diào)節(jié)劑被首次發(fā)現(xiàn)[22],隨后多篇研究報(bào)道了它在其他細(xì)胞中的多種功能,如調(diào)控細(xì)胞增殖、調(diào)節(jié)T細(xì)胞和巨噬細(xì)胞分化、抑制腫瘤細(xì)胞的移動(dòng)和侵襲及增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞對(duì)化療藥物的敏感性等[23]。這些研究證實(shí)SLFN蛋白是免疫系統(tǒng)的重要組成部分,在抗病毒復(fù)制和抗腫瘤方面發(fā)揮著重要作用[23]。有研究證實(shí),部分SLFN家族成員具有抗逆轉(zhuǎn)錄病毒活性,并且SLFN14作為SLFN家族成員之一已被證實(shí)是一種新型抗病毒因子[24,25],考慮到LINE-1在復(fù)制周期上與逆轉(zhuǎn)錄病毒具有相似性,分析認(rèn)為SLFN14可能對(duì)LINE-1具有抑制作用。因此本研究對(duì)SLFN14是否具有抑制LINE-1轉(zhuǎn)座的活性進(jìn)行研究,并對(duì)其抗LINE-1活性位點(diǎn)進(jìn)行分析,同時(shí)對(duì)SLFN14抗LINE-1機(jī)制進(jìn)行了初步探討。
HEK293T、HeLa細(xì)胞系(購(gòu)于美國(guó)ATCC細(xì)胞庫(kù))培養(yǎng)于含有10%胎牛血清(購(gòu)自美國(guó)Gibco公司)的DMEM (購(gòu)自美國(guó)Life Technologies公司)。HEK293T細(xì)胞與HeLa細(xì)胞均以1∶6的比例進(jìn)行傳代,傳代后的細(xì)胞置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng),接種后2~3 d即可長(zhǎng)成致密單層。
HEK293T與HeLa細(xì)胞系以合適的密度(轉(zhuǎn)染過(guò)表達(dá)質(zhì)粒時(shí)細(xì)胞密度應(yīng)為70%~90%)接種于相應(yīng)的孔板中。接種24 h后,HEK293T細(xì)胞使用Lipo-fectamine 2000 (購(gòu)自美國(guó)Life Technologies公司)、HeLa使用TransEasy (購(gòu)自北京博雅創(chuàng)新科技發(fā)展有限公司)按說(shuō)明書進(jìn)行質(zhì)粒轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染后,將培養(yǎng)皿放置于培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)4~6 h,之后更換細(xì)胞對(duì)應(yīng)的完全培養(yǎng)液正常培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染48 h后收樣。
對(duì)轉(zhuǎn)染48 h后的HeLa細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù),在六孔板中接種2.0×105個(gè)細(xì)胞/孔的HeLa細(xì)胞,用含有適宜濃度的G418培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)。10~12 d后,用PBS潤(rùn)洗六孔板,每孔加入1 mL甲醇固定10 min,隨后結(jié)晶紫染色10 min,最后用蒸餾水沖洗干凈。對(duì)形成的細(xì)胞集落進(jìn)行計(jì)數(shù)。
按廣州美基生物科技有限公司的RNA提取試劑盒使用說(shuō)明書提取細(xì)胞總RNA,測(cè)定RNA濃度。取2 μg所提取RNA,使用隨機(jī)引物通過(guò)M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以反轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板進(jìn)行相對(duì)定量PCR擴(kuò)增檢測(cè)。PCR擴(kuò)增引物見(jiàn)表1,PCR反應(yīng)體系見(jiàn)表2。反應(yīng)條件:98℃ 2 min;98℃ 10 s,55℃ 15 s,72℃ 2 min 15 s,40個(gè)循環(huán)。
按照QIAamp DNA Mini Kit基因組提取試劑盒說(shuō)明書要求提取cDNA,取2 μL cDNA進(jìn)行絕對(duì)定量PCR實(shí)驗(yàn)。PCR擴(kuò)增引物見(jiàn)表1,PCR反應(yīng)體系見(jiàn)表2。反應(yīng)條件:98℃ 2 min;98℃ 10 s,72℃2 min 40 s,40個(gè)循環(huán)。
表1 PCR擴(kuò)增所需引物序列
表2 PCR擴(kuò)增體系
提取收集細(xì)胞總蛋白后,通過(guò)Western blot 法檢測(cè)細(xì)胞系中SLFN14-flag或ORF1蛋白表達(dá)量。SDS-PAGE進(jìn)行蛋白分離,恒壓電流濃縮膠70 V,分離膠120 V。濕轉(zhuǎn)法進(jìn)行蛋白轉(zhuǎn)膜,冰浴中以75 V恒壓電轉(zhuǎn)75 min。質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%的脫脂奶粉室溫封閉1 h。按照說(shuō)明書標(biāo)示比例加入一抗稀釋液(購(gòu)自蘇州新賽美生物科技有限公司)稀釋的β-actin抗體(購(gòu)自美國(guó)Abcam公司,SC-47778)、flag抗體(購(gòu)自美國(guó)Sigma-Aldrich公司,#14793)、ORF1p抗體(由中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院病原微生物研究所郭斐研究員實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)),4℃輕搖過(guò)夜。次日,洗膜后按照體積比1∶5000比例加入PBST稀釋的二抗,室溫輕搖1 h。最后辣根過(guò)氧化物酶化學(xué)發(fā)光法顯色。
HeLa細(xì)胞鋪Ф35 mm共聚焦專用皿,每皿接種5×104個(gè)細(xì)胞。細(xì)胞置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h后轉(zhuǎn)染,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,收細(xì)胞處理。PBS潤(rùn)洗細(xì)胞3次,4%細(xì)胞固定液室溫固定10 min;吸棄細(xì)胞固定液,加入0.02% Triton X-100溶液,室溫打孔10 min;PBS洗滌細(xì)胞3次,2% BSA溶液封閉1 h后,一抗孵育1 h;回收一抗,PBS洗滌細(xì)胞3次,熒光二抗孵育1 h;回收二抗,PBS洗滌細(xì)胞3次,加入1~2滴含DAPI的封片液。激光共聚焦顯微鏡觀察。
HEK293T鋪六孔板,轉(zhuǎn)染48 h后收取細(xì)胞。細(xì)胞吹打混勻,吸取50 μL混勻的細(xì)胞液至白色底板中,加入50 μL 2×裂解液,混勻后置于37℃孵箱中放置25 min;將孵育好的樣品混勻后吸取10 μL至白色底板中,再加入40 μL luciferase熒光底物,混勻后酶標(biāo)儀檢測(cè)。
HeLa細(xì)胞鋪10 cm細(xì)胞培養(yǎng)皿,24 h后轉(zhuǎn)染。繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收取細(xì)胞。加入細(xì)胞裂解液裂解1 h后離心20 min,收集上清液。配置50 mL 8%和16%的蔗糖溶液(1 mol/L NaCl 1.6 mL,0.1 mol/L MgCl22.5 mL,1 mol/L Tris-HCl (pH 7.5) 1 mL,1 mol/L DTT 50 μL,蛋白酶抑制劑1片,無(wú)RNA酶水45 mL及4 g或8 g蔗糖)。隨后將配制好的蔗糖溶液加入到超速離心管中,上層加入裂解液,4℃超速離心41,000 r/min,3 h。超速離心后用100 μL無(wú)RNA酶水溶解離心管底部樣品,1∶1加入甘油,–20℃保存。取一部分樣品定量后,取適量樣品加入到49 μL LEAP反應(yīng)體系中,反應(yīng)體系組分見(jiàn)表3。37℃孵育1 h,將反轉(zhuǎn)錄后的cDNA進(jìn)行Real-time PCR擴(kuò)增,測(cè)定各組cDNA量。LEAP實(shí)驗(yàn)所需引物序列見(jiàn)表4。
HEK293T鋪六孔板,轉(zhuǎn)染24 h后用放線菌素D (5 μg/mL)進(jìn)行處理,分別于0、0.5、1、2、4、8 h收集細(xì)胞,提取細(xì)胞總RNA。利用Real-time PCR對(duì)LINE-1 RNA進(jìn)行檢測(cè)。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用GraphPad Prism 5 進(jìn)行處理,以3次實(shí)驗(yàn)的平均值和標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示。組間比較用檢驗(yàn)。
表3 LEAP孵育體系
表4 LEAP實(shí)驗(yàn)所需引物序列
為確定SLFN14能否抑制LINE-1轉(zhuǎn)座活性,本研究進(jìn)行了逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座實(shí)驗(yàn)。該實(shí)驗(yàn)是利用Thierry Heidmann實(shí)驗(yàn)室的報(bào)告質(zhì)粒CMV-LINE-1-NEORT(以下簡(jiǎn)稱LINE-1質(zhì)粒),該質(zhì)粒在LINE-1的3?-UTR上游設(shè)計(jì)了一個(gè)含有內(nèi)含子的新霉素()抗性基因,此基因只有在LINE-1質(zhì)粒成功進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座去除內(nèi)含子后才能表達(dá)新霉素抗性(圖1A)。在含有G418抗性的培養(yǎng)基中,含有成功進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座LINE-1的HeLa細(xì)胞才能存活,并形成細(xì)胞集落,細(xì)胞集落數(shù)目的多少便能反映LINE-1轉(zhuǎn)座效率的高低[26]。
在HeLa細(xì)胞中,共同轉(zhuǎn)染LINE-1與不同濃度的SLFN14-flag質(zhì)粒,通過(guò)逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座實(shí)驗(yàn)觀察發(fā)現(xiàn),不同轉(zhuǎn)染量SLFN14-flag對(duì)含LINE-1細(xì)胞的集落形成產(chǎn)生影響。結(jié)果顯示,隨著SLFN14表達(dá)的增加,LINE-1形成的細(xì)胞集落數(shù)量有明顯的下降(圖1B)。此結(jié)果表明,外源表達(dá)的SLFN14能明顯抑制LINE-1轉(zhuǎn)座且這種抑制活性與SLFN14的表達(dá)呈劑量依賴性關(guān)系。同時(shí)還發(fā)現(xiàn),隨著SLFN14表達(dá)量的增加,LINE-1 ORF1p的表達(dá)也在下降,而且下降的幅度與LINE-1轉(zhuǎn)座水平下降的趨勢(shì)一致(圖1C),這表明SLFN14有可能直接抑制LINE-1 ORF1p蛋白的表達(dá),抑或是通過(guò)抑制LINE-1 RNA表達(dá)水平來(lái)降低ORF1p蛋白的表達(dá)?;诖朔治?,后續(xù)的實(shí)驗(yàn)中將直接通過(guò)檢測(cè)ORF1p的表達(dá)量來(lái)反映SLFN14對(duì)LINE-1轉(zhuǎn)座的影響。
圖1 SLFN14抑制LINE-1逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座
A:逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座實(shí)驗(yàn)原理示意圖。抗性基因中含有一段反向的內(nèi)含子,此基因只有在LINE-1質(zhì)粒成功進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座去除內(nèi)含子后才能表達(dá)新霉素抗性。B:逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座實(shí)驗(yàn)檢測(cè)分別轉(zhuǎn)染0、100、200、400 ng SLFN14-flag及1000 ng LINE-1質(zhì)粒后LINE-1逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座形成的細(xì)胞集落數(shù)量變化。將未轉(zhuǎn)染SLFN14-flag的對(duì)照組細(xì)胞集落數(shù)目看作100;*:< 0.05,***:< 0.001。C:免疫印跡法檢測(cè)SLFN14對(duì)LINE-1 ORF1p表達(dá)的影響。
SLFN14包括3個(gè)分別具有內(nèi)切核糖核酸酶活性、核糖體結(jié)合功能和解旋酶活性的關(guān)鍵結(jié)構(gòu)域,因此本研究分別構(gòu)建了缺失以上3個(gè)關(guān)鍵結(jié)構(gòu)域的SLFN14 dC1、dC2、dC3、dN1、dN2、dN3六個(gè)截短體(圖2A)以對(duì)不同結(jié)構(gòu)域進(jìn)行分析。
從2.1實(shí)驗(yàn)可知,SLFN14對(duì)LINE-1轉(zhuǎn)座的影響可以通過(guò)LINE-1 ORF1p的表達(dá)體現(xiàn)。因此,為確定SLFN14 dC1、dC2、dC3、dN1、dN2、dN3六個(gè)截短體是否仍然具有抗LINE-1活性,本研究共同轉(zhuǎn)染LINE-1與SLFN14的六個(gè)截短體質(zhì)粒,并以SLFN14野生型作為對(duì)照。通過(guò)檢測(cè)ORF1p蛋白表達(dá)的變化,發(fā)現(xiàn)與野生型SLFN14相比,dC1和dC2依然能夠一定程度抑制ORF1p的表達(dá)活性,證明SLFN14的C端的解旋酶結(jié)構(gòu)域不是SLFN14抑制LINE-1轉(zhuǎn)座活性的關(guān)鍵結(jié)構(gòu)域;另一方面dN3的表達(dá)對(duì)LINE-1 ORF1p的影響與未轉(zhuǎn)染SLFN14-flag質(zhì)粒的空白對(duì)照組相比沒(méi)有顯著性差異,這提示dN3完全喪失了抗LINE-1活性(圖2B)。此結(jié)果表明SLFN14解旋酶結(jié)構(gòu)域在其抗LINE-1活性中可能作用有限,而內(nèi)切核糖核酸酶結(jié)構(gòu)域與核糖體結(jié)合結(jié)構(gòu)域在其中發(fā)揮重要作用。
利用激光共聚焦顯微鏡對(duì)SLFN14及其截短體在細(xì)胞中的分布情況進(jìn)行了觀察。結(jié)果顯示,保留主要抗LINE-1活性的dC1的細(xì)胞定位情況與野生型完全一致,主要定位于細(xì)胞質(zhì)中;而完全喪失了抗LINE-1活性的SLFN14 dN3則有明顯彌散現(xiàn)象,在細(xì)胞質(zhì)、細(xì)胞核均有分布(圖2C)。
上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,SLFN14 dN3不抑制LINE-1 ORF1p表達(dá)?;诖?,在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中以SLFN14 dN3為陰性對(duì)照進(jìn)行SLFN14抗LINE-1活性的機(jī)制研究。
圖2 SLFN14抑制LINE-1轉(zhuǎn)座的活性結(jié)構(gòu)域定位
A:SLFN14野生型及各個(gè)截短體結(jié)構(gòu)域示意圖。B:Western blot檢測(cè)HEK293T細(xì)胞中轉(zhuǎn)染SLFN14-flag野生型及各個(gè)截短體質(zhì)粒時(shí)對(duì)ORF1p表達(dá)情況的影響。將轉(zhuǎn)染LINE-1及pcDNA4.0質(zhì)粒組作為陰性對(duì)照,將轉(zhuǎn)染LINE-1及SLFN14-flag野生型質(zhì)粒組作為陽(yáng)性對(duì)照。C:免疫熒光實(shí)驗(yàn)檢測(cè)HeLa細(xì)胞中轉(zhuǎn)染SLFN14-flag野生型及各個(gè)截短體質(zhì)粒時(shí)SLFN14蛋白在細(xì)胞內(nèi)的定位情況。
以上實(shí)驗(yàn)證實(shí)SLFN14可以抑制LINE-1逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座,這意味著SLFN14可能會(huì)減少插入宿主基因組的LINE-1拷貝數(shù)。為驗(yàn)證SLFN14是否會(huì)減少插入到細(xì)胞基因組中的LINE-1 cDNA,本研究設(shè)計(jì)了一對(duì)引物,其中正向引物只與拼接的基因結(jié)合,這樣只有從拼接的RNA中逆轉(zhuǎn)錄的LINE-1 cDNA才能被擴(kuò)增(圖3A)。與僅轉(zhuǎn)染LINE-1質(zhì)粒的對(duì)照組相比,SLFN14的表達(dá)呈劑量依賴性地降低LINE-1 cDNA水平(圖3B),而SLFN14 dN3的表達(dá)不降低LINE-1 cDNA水平(圖3C)。
SLFN14減少LINE-1 cDNA拷貝數(shù)的原因有多種,最可能的是影響了LINE-1 ORF2p逆轉(zhuǎn)錄酶的活性或直接減少了其RNA的拷貝數(shù),為此首先采用LEAP實(shí)驗(yàn)來(lái)給予驗(yàn)證。利用細(xì)胞內(nèi)各組分沉降系數(shù)的差異進(jìn)行差速離心,分離各個(gè)組分,通過(guò)超速區(qū)帶離心分離得到LINE-1 RNP。對(duì)其定量后,利用RNP中自帶的ORF2p以及LINE-1 RNA模板模擬TPRT過(guò)程,反轉(zhuǎn)錄出LINE-1 cDNA并用實(shí)時(shí)定量PCR進(jìn)行定量[27]。在等量RNP的情況下,檢測(cè)SLFN14對(duì)逆轉(zhuǎn)錄過(guò)程的影響,結(jié)果顯示SLFN14不影響LINE-1的逆轉(zhuǎn)錄過(guò)程(圖3D),提示SLFN14對(duì)LINE-1 cDNA的影響并非通過(guò)影響LINE-1 ORF2p逆轉(zhuǎn)錄酶活性而實(shí)現(xiàn)的。由于LINE-1 RNA同時(shí)作為編碼蛋白質(zhì)的mRNA和RNA中間體產(chǎn)生新的cDNA拷貝,因此SLFN14更可能是影響了LINE-1 RNA 的轉(zhuǎn)錄,SLFN14影響LINE-1 ORF1p表達(dá)同樣證明了這一觀點(diǎn)。
將LINE-1和不同濃度的SLFN14質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,然后Real-time PCR測(cè)定總LINE-1 RNA,結(jié)果顯示,隨著SLFN14的增加,LINE-1 RNA明顯下降且呈劑量依賴性(圖4A),SLFN14 dN3則與對(duì)照組相比無(wú)顯著差異(圖4B),這表明SLFN14影響了LINE-1 RNA水平。
圖3 SLFN14并非通過(guò)影響ORF2p逆轉(zhuǎn)錄酶活性而影響LINE-1 cDNA水平
A:擴(kuò)增LINE-1 cDNA的引物示意圖。此正向引物被設(shè)計(jì)成只與拼接的耐新霉素基因結(jié)合,這樣只有從拼接的RNA中逆轉(zhuǎn)錄的LINE-1 cDNA才能被擴(kuò)增。B:Real-time PCR檢測(cè)梯度轉(zhuǎn)染野生型SLFN14后LINE-1 cDNA的變化情況。C:Real-time PCR檢測(cè)轉(zhuǎn)染野生型SLFN14及截短體SLFN14 dN3后LINE-1 cDNA的變化情況。D:LEAP實(shí)驗(yàn)檢測(cè)ORF2p逆轉(zhuǎn)錄活性對(duì)LINE-1 cDNA水平的影響。將轉(zhuǎn)染LINE-1及pcDNA4.0質(zhì)粒組作為陰性對(duì)照組;*:< 0.05;**:<0.01;***:< 0.001;:無(wú)顯著性差異。
圖4 SLFN14能夠降低LINE-1 RNA水平
A:Real-time PCR檢測(cè)梯度轉(zhuǎn)染野生型SLFN14后LINE-1 RNA的變化情況。B:Real-time PCR檢測(cè)轉(zhuǎn)染野生型SLFN14及截短體SLFN14 dN3后LINE-1 RNA的變化情況。轉(zhuǎn)染LINE-1及pcDNA4.0質(zhì)粒組作為陰性對(duì)照組;***:< 0.001;:無(wú)顯著性差異。C:Real-time PCR檢測(cè)放線菌素D處理后不同時(shí)間段SLFN14對(duì)LINE-1 RNA降解情況的影響。
那么SLFN14是在轉(zhuǎn)錄前還是轉(zhuǎn)錄后水平發(fā)揮作用呢?有研究證實(shí)兔源SLFN14具有核酸內(nèi)切酶活性,能夠降解RNA[28]。因此本研究利用放線菌素D能夠抑制RNA聚合酶II活性的特性,通過(guò)測(cè)量LINE-1 RNA的衰減變化進(jìn)而驗(yàn)證SLFN14是否對(duì)LINE-1 RNA穩(wěn)定性產(chǎn)生影響。將LINE-1和SLFN14質(zhì)粒(1 mg)共轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞24 h后放線菌素D(5 μg/mL)處理,于0、0.5、1、2、4、8 h后收集細(xì)胞,提取細(xì)胞總RNA,利用Real-time PCR對(duì)LINE-1 RNA進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果顯示,SLFN14對(duì)于LINE-1 RNA降解有作用(圖4C),這表明SLFN14可以在轉(zhuǎn)錄后水平影響LINE-1 RNA的降解。
SLFN14是否也會(huì)在LINE-1轉(zhuǎn)錄前水平發(fā)揮作用呢?LINE-1的5?-UTR包含具有轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)功能的啟動(dòng)子,這對(duì)于LINE-1的轉(zhuǎn)錄至關(guān)重要。為確定SLFN14是否影響LINE-1啟動(dòng)子活性,將LINE-1 5?-UTR啟動(dòng)子序列克隆至pGL3-basic啟動(dòng)子活性報(bào)告質(zhì)粒(圖5A),該質(zhì)粒的多克隆位點(diǎn)下游是一個(gè)缺少啟動(dòng)子序列的熒光素酶(luciferase)序列,只有在其上游插入具有啟動(dòng)子活性的序列,才能被激活進(jìn)而表達(dá)出熒光素酶,而后加入相應(yīng)底物,便可以通過(guò)酶標(biāo)儀測(cè)定生物熒光變化,反映基因的表達(dá)情況。在排除SLFN14對(duì)CMV強(qiáng)啟動(dòng)子影響(圖5B)后,結(jié)果顯示,野生型SLFN14會(huì)極大程度地抑制LINE-1 5?-UTR啟動(dòng)子活性(圖5C),而SLFN14 dN3則無(wú)抑制作用(圖5D),這表明SLFN14也可以在轉(zhuǎn)錄前水平抑制了LINE-1 5?啟動(dòng)子活性從而抑制LINE-1 RNA表達(dá),最終影響LINE-1逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座。
近年來(lái)對(duì)SLFN家族成員,特別是SLFN14的研究較少,其功能還沒(méi)有被了解完全。迄今為止對(duì)SLFN14唯一的功能描述是稱其為一真正的哺乳動(dòng)物內(nèi)切核糖核酸酶,而目前對(duì)SLFN14病理性研究主要集中于血液病方向,SLFN14是最近發(fā)現(xiàn)的與遺傳性血小板減少相關(guān)的基因之一,研究認(rèn)為SLFN14可能參與了血小板形成和成熟過(guò)程及核糖體的降解[29~32]。此外,有研究表明在流感病毒感染時(shí)SLFN14表達(dá)于細(xì)胞核,并對(duì)流感病毒的核蛋白(nuclearprotein, NP)表達(dá)進(jìn)行限制[25],這提示SLFN14可能與NP相互作用。對(duì)此,本課題組也對(duì)SLFN14與LINE-1核蛋白ORF1p的相互作用進(jìn)行探究,但卻沒(méi)有發(fā)現(xiàn)兩者存在相互作用(結(jié)果未顯示)。這提示SLFN14抗LINE-1轉(zhuǎn)座機(jī)制可能與其抗流感感染機(jī)制不同,SLFN14是通過(guò)間接作用影響LINE-1 ORF1p的表達(dá)。
圖5 SLFN14能夠通過(guò)抑制LINE-1 5?-UTR啟動(dòng)子活性來(lái)抑制LINE-1轉(zhuǎn)座
A:用于檢測(cè)LINE-1 5?-UTR活性的LINE-1-FL質(zhì)粒示意圖。B:Luciferase啟動(dòng)子活性報(bào)告系統(tǒng)檢測(cè)轉(zhuǎn)染野生型SLFN14對(duì)CMV啟動(dòng)子活性的影響。C:Luciferase啟動(dòng)子活性報(bào)告系統(tǒng)檢測(cè)轉(zhuǎn)染野生型SLFN14后對(duì)LINE-1 5?-UTR內(nèi)部啟動(dòng)子活性的影響。D:Luciferase啟動(dòng)子活性報(bào)告系統(tǒng)檢測(cè)轉(zhuǎn)染SLFN14截短體dN3對(duì)LINE-1 5?-UTR內(nèi)部啟動(dòng)子活性的影響。*:< 0.05,***:< 0.001,:無(wú)顯著性差異。
本實(shí)驗(yàn)室對(duì)SLFN14的序列進(jìn)行了分析,經(jīng)蛋白亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)工具網(wǎng)站(https://www.genscript. com/psort.html)比對(duì),SLFN14具有核定位序列,預(yù)測(cè)其核定位序列為PRVKKLH。通過(guò)免疫熒光實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),野生型SLFN14主要定位于細(xì)胞質(zhì)中。對(duì)此,F(xiàn)letcher等[32]同樣證實(shí)了這一點(diǎn),即SLFN14主要定位于細(xì)胞質(zhì)當(dāng)中,在細(xì)胞核中僅有少量點(diǎn)狀分布。然而,SLFN14截短體的細(xì)胞分布卻發(fā)生了顯著變化,喪失抗LINE-1活性的截短體dN3在細(xì)胞質(zhì)、細(xì)胞核中彌散分布。因此推測(cè)一旦SLFN14大量停留在細(xì)胞核中,便會(huì)喪失抗LINE-1活性。這表明正確的細(xì)胞分布對(duì)于SLFN14的抗LINE-1活性至關(guān)重要,細(xì)胞分布的改變會(huì)對(duì)其活性產(chǎn)生負(fù)面影響。
通過(guò)The Human Protein Atlas數(shù)據(jù)庫(kù)(https:// www.proteinatlas.org/)分析SLFN14在細(xì)胞中蛋白表達(dá)水平低,且經(jīng)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)室常見(jiàn)細(xì)胞系無(wú)內(nèi)源SLFN14蛋白表達(dá),因此沒(méi)有對(duì)內(nèi)源SLFN14的抗LINE-1轉(zhuǎn)座活性進(jìn)行進(jìn)一步驗(yàn)證,具有一定的局限性。同時(shí),SLFN14更詳細(xì)的抗LINE-1轉(zhuǎn)座作用機(jī)制,特別是與SLFN14通過(guò)何種方式影響LINE-1 5?-UTR的相關(guān)分子機(jī)制研究還有待進(jìn)一步研究。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)SLFN14可以抑制LINE-1的轉(zhuǎn)座活性,并將其活性中心定位于N端的核糖核酸內(nèi)切酶及核糖體結(jié)合結(jié)構(gòu)域上,此部分的缺失會(huì)導(dǎo)致SLFN14細(xì)胞定位發(fā)生變化,從而使SLFN14喪失抗LINE-1活性;進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)證實(shí)SLFN14能夠在轉(zhuǎn)錄前通過(guò)抑制LINE-1 5?啟動(dòng)子活性從而降低LINE-1 RNA產(chǎn)生,也能在轉(zhuǎn)錄后加速LINE-1 RNA的降解,隨后減少LINE-1 ORF1p及cDNA的表達(dá),最終抑制了LINE-1的轉(zhuǎn)座。
[1] Lander ES, Linton LM, Birren B, Nusbaum C, Zody MC, Baldwin J, Devon K, Dewar K, Doyle M, FitzHugh W, Funke R, Gage D, Harris K, Heaford A, Howland J, Kann L, Lehoczky J, LeVine R, McEwan P, McKernan K, Meldrim J, Mesirov JP, Miranda C, Morris W, Naylor J, Raymond C, Rosetti M, Santos R, Sheridan A, Sougnez C, Stange-Thomann Y, Stojanovic N, Subramanian A, Wyman D, Rogers J, Sulston J, Ainscough R, Beck S, Bentley D, Burton J, Clee C, Carter N, Coulson A, Deadman R, Deloukas P, Dunham A, Dunham I, Durbin R, French L, Grafham D, Gregory S, Hubbard T, Humphray S, Hunt A, Jones M, Lloyd C, McMurray A, Matthews L, Mercer S, Milne S, Mullikin JC, Mungall A, Plumb R, Ross M, Shownkeen R, Sims S, Waterston RH, Wilson RK, Hillier LW, McPherson JD, Marra MA, Mardis ER, Fulton LA, Chinwalla AT, Pepin KH, Gish WR, Chissoe SL, Wendl MC, Delehaunty KD, Miner TL, Delehaunty A, Kramer JB, Cook LL, Fulton RS, Johnson DL, Minx PJ, Clifton SW, Hawkins T, Branscomb E, Predki P, Richardson P, Wenning S, Slezak T, Doggett N, Cheng JF, Olsen A, Lucas S, Elkin C, Uberbacher E, Frazier M, Gibbs RA, Muzny DM, Scherer SE, Bouck JB, Sodergren EJ, Worley KC, Rives CM, Gorrell JH, Metzker ML, Naylor SL, Kucherlapati RS, Nelson DL, Weinstock GM, Sakaki Y, Fujiyama A, Hattori M, Yada T, Toyoda A, Itoh T, Kawagoe C, Watanabe H, Totoki Y, Taylor T, Weissenbach J, Heilig R, Saurin W, Artiguenave F, Brottier P, Bruls T, Pelletier E, Robert C, Wincker P, Smith DR, Doucette-Stamm L, Rubenfield M, Weinstock K, Lee HM, Dubois J, Rosenthal A, Platzer M, Nyakatura G, Taudien S, Rump A, Yang H, Yu J, Wang J, Huang G, Gu J, Hood L, Rowen L, Madan A, Qin S, Davis RW, Federspiel NA, Abola AP, Proctor MJ, Myers RM, Schmutz J, Dickson M, Grimwood J, Cox DR, Olson MV, Kaul R, Raymond C, Shimizu N, Kawasaki K, Minoshima S, Evans GA, Athanasiou M, Schultz R, Roe BA, Chen F, Pan H, Ramser J, Lehrach H, Reinhardt R, McCombie WR, de la Bastide M, Dedhia N, Blocker H, Hornischer K, Nordsiek G, Agarwala R, Aravind L, Bailey JA, Bateman A, Batzoglou S, Birney E, Bork P, Brown DG, Burge CB, Cerutti L, Chen HC, Church D, Clamp M, Copley RR, Doerks T, Eddy SR, Eichler EE, Furey TS, Galagan J, Gilbert JG, Harmon C, Hayashizaki Y, Haussler D, Hermjakob H, Hokamp K, Jang W, Johnson LS, Jones TA, Kasif S, Kaspryzk A, Kennedy S, Kent WJ, Kitts P, Koonin EV, Korf I, Kulp D, Lancet D, Lowe TM, McLysaght A, Mikkelsen T, Moran JV, Mulder N, Pollara VJ, Ponting CP, Schuler G, Schultz J, Slater G, Smit AF, Stupka E, Szustakowki J, Thierry-Mieg D, Thierry-Mieg J, Wagner L, Wallis J, Wheeler R, Williams A, Wolf YI, Wolfe KH, Yang SP, Yeh RF, Collins F, Guyer MS, Peterson J, Felsenfeld A, Wetterstrand KA, Patrinos A, Morgan MJ, de Jong P, Catanese JJ, Osoegawa K, Shizuya H, Choi S, Chen YJ, Szustakowki J, International Human Genome Sequencing Consortium. Initial sequencing and analysis of the human genome., 2001, 409(6822): 860–921.
[2] Rodi? N, Burns KH. Long interspersed element-1 (LINE-1): passenger or driver in human neoplasms?, 2013, 9(3): e1003402.
[3] Leibold DM, Swergold GD, Singer MF, Thayer RE, Dombroski BA, Fanning TG. Translation of LINE-1 DNA elements in vitro and in human cells., 1990, 87(18): 6990–6994.
[4] Martin SL. Nucleic acid chaperone properties of ORF1p from the non-LTR retrotransposon, LINE-1., 2010, 7(6): 706–711.
[5] Piskareva O, Ernst C, Higgins N, Schmatchenko V. The carboxy-terminal segment of the human LINE-1 ORF2 protein is involved in RNA binding., 2013, 3: 433–437.
[6] Christian CM, deHaro D, Kines KJ, Sokolowski M, Belancio VP. Identification of L1 ORF2p sequence important to retrotransposition using Bipartile Alu retrotransposition (BAR)., 2016, 44(10): 4818–4834.
[7] Ye ZJ, Liu QP, Cen S, Li XY. The function of LINE-1-encoded reverse transcriptase in tumorigenesis., 2017, 39(5): 368–376.葉仲杰, 劉啟鵬, 岑山, 李曉宇. LINE-1編碼的逆轉(zhuǎn)錄酶在腫瘤形成過(guò)程中的作用. 遺傳, 2017, 39(5): 368– 376.
[8] Duan XC, Jin X, Xie Y, Jiao N, Liu J, Wang XY, Lv ZJ. Different effects on reporter gene expression by distinct L1-ORF2 segements., 2009, 31(1): 50– 56.段肖翠, 靳霞, 謝英, 焦寧, 劉靜, 王曉燕, 呂占軍. L1-ORF2不同片段對(duì)報(bào)告基因表達(dá)產(chǎn)生不同影響. 遺傳, 2009, 31(1): 50–56.
[9] Goodier JL, Kazazian HH Jr. Retrotransposons revisited: the restraint and rehabilitation of parasites., 2008, 135(1): 23–35.
[10] Babushok DV, Kazazian HH Jr. Progress in understanding the biology of the human mutagen LINE-1., 2007, 28(6): 527–539.
[11] Ostertag EM, Kazazian HH Jr. Biology of mammalian L1 retrotransposons., 2001, 35: 501–538.
[12] Crowther PJ, Doherty JP, Linsenmeyer ME, Williamson MR, Woodcock DM. Revised genomic consensus for the hypermethylated CpG island region of the human L1 transposon and integration sites of full length L1 elements from recombinant clones made using methylation-tolerant host strains., 1991, 19(9): 2395–2401.
[13] Thayer RE, Singer MF, Fanning TG. Undermethylation of specific LINE-1 sequences in human cells producing a LINE-1-encoded protein., 1993, 133(2): 273–277.
[14] Woodcock DM, Lawler CB, Linsenmeyer ME, Doherty JP, Warren WD. Asymmetric methylation in the hypermethylated CpG promoter region of the human L1 retrotransposon., 1997, 272(12): 7810–7816.
[15] Hata K, Sakaki Y. Identification of critical CpG sites for repression of L1 transcription by DNA methylation., 1997, 189(2): 227–234.
[16] Jachowicz JW, Bing X, Pontabry J, Bo?kovi? A, Rando OJ, Torres-Padilla ME. LINE-1 activation after fertilization regulates global chromatin accessibility in the early mouse embryo., 2017, 49(10): 1502–1510.
[17] Rodic N. LINE-1 activity and regulation in cancer., 2018, 23: 1680–1686.
[18] Liu Q, Wang JH, Li XY, Cen S. The connection between LINE-1 retrotransposition and human tumorigenesis., 2016, 38(2): 93–102.劉茜, 王瑾暉, 李曉宇, 岑山. 逆轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子LINE-1與腫瘤的發(fā)生和發(fā)展. 遺傳, 2016, 38(2): 93–102.
[19] Bodak M, Yu J, Ciaudo C. Regulation of LINE-1 in mammals., 2014, 5(5): 409–428.
[20] Wang XY, Zhang Y, Yang N, Cheng H, Sun YJ. DNMT3a mediates paclitaxel-induced abnormal expression of LINE-1 by increasing the intragenic methylation., 2020, 42(1): 100–111.王昕源, 張雨, 楊楠, 程禾, 孫玉潔. DNMT3a通過(guò)提升基因內(nèi)部甲基化介導(dǎo)紫杉醇誘導(dǎo)的LINE-1異常表達(dá). 遺傳, 2020, 42(1):100–111.
[21] Goodier JL. Restricting retrotransposons: a review., 2016, 7: 16.
[22] Schwarz DA, Katayama CD, Hedrick SM. Schlafen, a new family of growth regulatory genes that affect thymocyte development., 1998, 9(5): 657–668.
[23] Liu FR, Zhou PT, Wang Q, Zhang MC, Li D. The Schlafen family: complex roles in different cell types and virus replication., 2018, 42(1): 2–8.
[24] Li MQ, Kao E, Gao X, Sandig H, Limmer K, Pavon- Eternod M, Jones TE, Landry S, Pan T, Weitzman MD, David M. Codon-usage-based inhibition of HIV protein synthesis by human schlafen 11., 2012, 491(7422): 125–128.
[25] Seong RK, Seo SW, Kim JA, Fletcher SJ, Morgan NV, Kumar M, Choi YK, Shin OS. Schlafen 14 (SLFN14) is a novel antiviral factor involved in the control of viral replication., 2017, 222(11): 979–988.
[26] Esnault C, Maestre J, Heidmann T. Human LINE retrotransposons generate processed pseudogenes., 2000, 24(4): 363–367.
[27] Kopera HC, Flasch DA, Nakamura M, Miyoshi T, Doucet AJ, Moran JV. LEAP: L1 element amplification protocol., 2016, 1400: 339–355.
[28] Pisareva VP, Muslimov IA, Tcherepanov A, Pisarev AV. Characterization of novel ribosome-associated endori-bonuclease SLFN14 from rabbit reticulocytes., 2015, 54(21): 3286–3301.
[29] Stapley RJ, Pisareva VP, Pisarev AV, Morgan NV. SLFN14 gene mutations associated with bleeding., 2020, 31(3): 407–410.
[30] Marconi C, Di Buduo CA, Barozzi S, Palombo F, Pardini S, Zaninetti C, Pippucci T, Noris P, Balduini A, Seri M, Pecci A. SLFN14-related thrombocytopenia: identification within a large series of patients with inherited thrombocy-topenia., 2016, 115(5): 1076–1079.
[31] Fletcher SJ, Johnson B, Lowe GC, Bem D, Drake S, Lordkipanidzé M, Guiú IS, Dawood B, Rivera J, Simpson MA, Daly ME, Motwani J, Collins PW, Watson SP, Morgan NV. SLFN14 mutations underlie thrombocytopenia with excessive bleeding and platelet secretion defects., 2015, 125(9): 3600–3605.
[32] Fletcher SJ, Pisareva VP, Khan AO, Tcherepanov A, Morgan NV, Pisarev AV. Role of the novel endoribonuclease SLFN14 and its disease-causing mutations in ribosomal degradation., 2018, 24(7): 939–949.
SLFN14 inhibits LINE-1 transposition activity
Yang Mao, Jiwei Ding, Minshu Chen, Shan Cen, Xiaoyu Li
Long interspersed nuclear element-1 (LINE-1) is the only active autonomous transposon in the human genome. Its transposition frequently induces host genome instability, leading to a variety of genetic diseases, including cancers. The host factors play important roles in inhibiting LINE-1 retrotransposition. As an important component of the immune system, the host factor SLFN14 has antiviral activity. Our laboratory shows that SLFN14 possesses potent inhibitory activity against LINE-1 retrotransposition. To explore the potential mechanism of SLFN14 inhibition, we analyzed its effects on transcription, translation, reverse transcription and insertion in the LINE-1 replication cycle. We confirmed that SLFN14 could suppress the LINE-1 mRNA level by affecting its transcription and degradation, thereby diminishing the protein and cDNA levels of LINE-1, which eventually block the LINE-1 retrotransposition. Further, by mapping the active domains of SLFN14, we found its inhibitory activity on LINE-1 being closely related to its endoribonuclease and ribosome binding domains. These results demonstrate the mechanism of SLFN14 in regulating LINE-1 replication, which further provide new insights for improving the regulation network of host factors for controlling genomic instability caused by LINE-1 replication.
transposition; retrotransposon; LINE-1; SLFN14; 5 ?-UTR internal promotor region
2020-04-26;
2020-05-22
國(guó)家科技重大專項(xiàng)(編號(hào):2018ZX10301408-004)和中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)與健康創(chuàng)新工程項(xiàng)目(編號(hào):CIFMS 2016-I2M-2-002)資助[Supported by the National Science and Technology Major Project of the Ministry of Science and Technology of China (No. 2018ZX10301408-004)] and Chinese Academy of Medical Sciences Innovation Fund for Medical Sciences (No. CIFMS 2016-I2M- 2-002)]
毛洋,在讀碩士研究生,專業(yè)方向:宿主因子對(duì)轉(zhuǎn)座子調(diào)控機(jī)制研究。E-mail: yangmao-MY@outlook.com
李曉宇,博士,副研究員,研究方向:病毒學(xué)。E-mail: xiaoyulik@hotmail.com
岑山,博士,研究員,研究方向:病毒學(xué)。E-mail: shancen@imb.pumc.edu.cn
10.16288/j.yczz.20-081
2020/5/26 10:53:37
URI: http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1913.R.20200525.1400.002.html
(責(zé)任編委: 宋旭)