盧文強(qiáng),孫昊宇,王雅娟,林志芬,張飲江,*
1. 上海海洋大學(xué)海洋生態(tài)與環(huán)境學(xué)院,上海 201306 2. 同濟(jì)大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,污染控制與資源化研究國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200092
抗生素作為一類可抑制微生物生長和繁殖,甚至殺死微生物的自然產(chǎn)生、部分合成或全合成的化合物,現(xiàn)已廣泛應(yīng)用在醫(yī)療衛(wèi)生與畜牧養(yǎng)殖業(yè)中,用于治療或預(yù)防細(xì)菌感染以及促進(jìn)畜牧業(yè)的增長等[1]。然而,抗生素的過度使用,導(dǎo)致水體[2-3]、土壤[4]和空氣[5]中殘留的抗生素不斷累積,不僅對生物體有潛在的毒性作用,更嚴(yán)重的是導(dǎo)致環(huán)境中抗生素抗性基因(antibiotics resistance genes, ARGs)的增加[6]。ARGs能夠降低抗生素對細(xì)菌感染的治療潛力,致使細(xì)菌感染的人和動物的死亡率上升[7-8]。目前,ARGs已被公認(rèn)為新興和持久的環(huán)境污染物,如果ARGs持續(xù)累積得不到有效控制,到2050年每年可能導(dǎo)致1千萬人死于ARGs污染[9]。因此,研究ARGs污染來源,深入探究ARGs污染機(jī)理,對采取更為有效的防治措施至關(guān)重要。
目前,有研究表明,抗生素是ARGs污染的主要驅(qū)動力[10]。例如,Zhao等[11]發(fā)現(xiàn)在活性污泥反應(yīng)器中抗生素與相應(yīng)的ARGs豐度相關(guān)。Zhang等[12]研究發(fā)現(xiàn),我國溫榆河及其支流耐藥大腸桿菌(Escherichiacoli,E.coli)的數(shù)量與殘留抗生素水平呈正相關(guān)關(guān)系。Rodriguez-Mozaz等[13]調(diào)查了醫(yī)院和城市廢水中殘留抗生素和ARGs的發(fā)生情況,發(fā)現(xiàn)檢測到的殘留抗生素與ARGs呈顯著正相關(guān)。然而,與此相反,還有一些研究表明,環(huán)境中殘留的抗生素與ARGs的污染無關(guān)。例如,在美國東北部一個未經(jīng)處理的混合糞肥坑中,研究者發(fā)現(xiàn),四環(huán)素抗性基因(tetO)的濃度與四環(huán)素濃度無關(guān)[14]。此外,Jia等[15]研究了巴河中殘留抗生素與ARGs的相關(guān)性,研究表明,殘留的抗生素與它們相應(yīng)的ARGs無明顯相關(guān)性。因此,ARGs污染與抗生素關(guān)系究竟如何,還需要進(jìn)一步探究。
眾所周知,ARGs污染源于ARGs的產(chǎn)生和傳播。ARGs的產(chǎn)生主要來源于抗生素誘導(dǎo)的細(xì)菌基因突變,在細(xì)菌增殖過程中,親代細(xì)胞中的ARGs可遺傳給子代細(xì)胞[16]。而ARGs在細(xì)菌之間的傳播主要由水平基因轉(zhuǎn)移引起。水平基因轉(zhuǎn)移是遺傳物質(zhì)通過可移動的遺傳因子(質(zhì)粒、轉(zhuǎn)座子和整合子等)在種內(nèi)或種間的轉(zhuǎn)移,包括接合,轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)導(dǎo)[17]。然而,轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)導(dǎo)這2種轉(zhuǎn)移方式因發(fā)生的條件較為苛刻,發(fā)生轉(zhuǎn)化的條件是細(xì)菌需建立感受態(tài),在自然環(huán)境中不是所用的細(xì)菌都能建立感受態(tài),并且,細(xì)菌建立感受態(tài)的條件較為苛刻,所以轉(zhuǎn)化在自然環(huán)境中發(fā)生頻率較少,例如,E.coli被認(rèn)為在自然條件下無法建立感受態(tài),然而,在低溫下,用鈣離子處理時可以建立感受態(tài)[18-19];轉(zhuǎn)導(dǎo)是病毒介導(dǎo)的細(xì)胞間進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)移,噬菌體轉(zhuǎn)導(dǎo)不需要裸露的DNA,而是噬菌體介導(dǎo)了兩宿主之間的DNA重組,所以,轉(zhuǎn)導(dǎo)發(fā)生頻率低[18,20];接合在環(huán)境中較容易發(fā)生,既可以在細(xì)菌之間發(fā)生,也可以在細(xì)菌與介質(zhì)之間發(fā)生,其也就成為環(huán)境中細(xì)菌水平基因轉(zhuǎn)移主要方式[21]。因此,研究抗生素對ARGs突變和接合轉(zhuǎn)移的影響可能是探討ARGs污染與抗生素關(guān)系的重要途徑。
磺胺類藥物(SAs)作為一種人工抗生素已被廣泛應(yīng)用于藥物治療和飼料添加[22]。近10年來,我國主要河流和海域的水和沉積物中檢出的近百種抗生素中,磺胺類抗生素是檢出率最高的抗生素之一[9]。在本研究中,選擇了SAs作為代表性的測試化合物,探討了在實(shí)驗(yàn)室條件下ARG的產(chǎn)生與傳播與抗生素脅迫之間的關(guān)系,并且用SAs對E.coli生長的毒性作用表征SAs對E.coli的脅迫,用ARGs的突變和接合轉(zhuǎn)移表征ARGs的產(chǎn)生和傳播。探討ARGs的產(chǎn)生和傳播與抗生素脅迫之間的關(guān)系,并分析影響抗生素脅迫與ARGs產(chǎn)生和傳播關(guān)系的環(huán)境因素等,為研究ARGs污染與抗生素的關(guān)系提供新的思路,對ARGs污染防治措施提供一定的理論支撐和依據(jù)。
實(shí)驗(yàn)用的E.coliMG1655購自北京譜如汀生物技術(shù)有限公司。在質(zhì)粒接合轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)中,含有RP4質(zhì)粒(能夠編碼bla、aphA、tetA和tetR基因)的E.coli(RP4)被設(shè)定為供體菌(耐卡那霉素、氨芐青霉素和四環(huán)素),而能夠耐萘啶酮酸的E.coli(Nal)被設(shè)定為受體菌。
實(shí)驗(yàn)用的磺胺類化合物購于Sigma-Aldrich化學(xué)制品有限公司(上海),純度均≥99%,試劑信息如表1所示。用二甲基亞砜(DMSO)改善SAs在樣品中的溶解度,并且DMSO在樣品中的濃度<0.1%。
表1 實(shí)驗(yàn)用化合物性質(zhì)Table 1 Characteristics of the test chemicals
LB培養(yǎng)基:取10 g胰蛋白胨、5 g酵母提取物和10 g NaCl于燒杯中,加入一定量的蒸餾水進(jìn)行水浴加熱,至成分完全溶解后冷卻,用蒸餾水定容至1 L,最后將培養(yǎng)基的pH調(diào)整至7.1±0.1。之后將培養(yǎng)基分裝、滅菌,于4 ℃下保存?zhèn)溆谩?/p>
MH培養(yǎng)基:取2 g牛肉浸粉、17.5 g酸水解酪蛋白和1.5 g水溶性淀粉于燒杯中,加入一定量的蒸餾水進(jìn)行水浴加熱,至成分完全溶解后冷卻,用蒸餾水定容至1 L,最后將培養(yǎng)基的pH調(diào)整至7.2~7.4。之后將培養(yǎng)基分裝、滅菌,于4 ℃下保存?zhèn)溆谩?/p>
首先,在透明96孔板中加入80 μL的SAs(作為實(shí)驗(yàn)組)或質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的NaCl溶液(作為對照組),80 μL的0.4倍MH培養(yǎng)基(0.4倍為總體積的最終倍數(shù))和40 μL準(zhǔn)備好的細(xì)菌(約為1×104cells·mL-1),在37 ℃、180 r·min-1培養(yǎng)22 h,所有毒性試驗(yàn)均為一式3份。在酶標(biāo)儀(Multiskan GO,美國賽默飛世爾科技公司)上測定實(shí)驗(yàn)組和對照組的OD600值,毒性結(jié)果計算如式(1)所示:
(1)
式中:Inhibition表示SAs對細(xì)菌生長的抑制率(%);ODt和ODc分別表示實(shí)驗(yàn)組和對照組的OD600值。使用Weibull函數(shù)(Origin8.6)擬合數(shù)據(jù)。
突變實(shí)驗(yàn)的培養(yǎng)條件與毒性試驗(yàn)相同。在37 ℃培養(yǎng)22 h后,收集平行孔中的菌液,將收集的菌液一部分稀釋106倍,剩余的部分濃縮3倍。稀釋后的菌液在不含有任何抗生素的LB培養(yǎng)基平板上進(jìn)行培養(yǎng),對照組和實(shí)驗(yàn)組皆為5組平行。計算總菌數(shù)(CFU·mL-1),濃縮的菌液充分混勻后在含有25 mg·L-1利福平的LB培養(yǎng)基平板上進(jìn)行利福平抗性突變體的篩選,計算突變體個數(shù)(CFU·mL-1)。
突變次數(shù)使用MM法(MSS maximum likelihood)計算[23]。根據(jù)式(2)和(3)計算突變頻率和變頻率促進(jìn)率:
(2)
(3)
式中:M為暴露于SAs的細(xì)菌突變頻率;m為突變體個數(shù)(CFU·mL-1);Nt表示培養(yǎng)物中活細(xì)胞的總數(shù)(CFU·mL-1);Promotion1表示突變頻率促進(jìn)率(%);Mt和Mc分別代表實(shí)驗(yàn)組和對照組的突變頻率。最后,利用Hormesis模型(Origin8.6)對突變數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合。
將E.coli(RP4)菌液和E.coli(Nal)菌液按1∶2的比例混合20 min。接合轉(zhuǎn)移體系的總體積是200 μL,包括40 μL SAs溶液(實(shí)驗(yàn)組)或質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的NaCl溶液(對照組),60 μL混合菌液和100 μL 2倍LB培養(yǎng)基,充分搖勻在37 ℃下培養(yǎng)8 h,對照組和實(shí)驗(yàn)組皆有3組平行。然后用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的NaCl溶液適當(dāng)稀釋混合菌液并搖勻,分別在受體菌篩選平板(含有40 mg·L-1萘啶酮酸)和接合子篩選平板(含有40 mg·L-1萘啶酮酸和40 mg·L-1卡那霉素)傾注,于37 ℃下倒置培養(yǎng)12 h后計算受體菌數(shù)(CFU·mL-1)和接合子數(shù)(CFU·mL-1)。根據(jù)式(4)和式(5)計算接合轉(zhuǎn)移頻率和接合轉(zhuǎn)移頻率促進(jìn)率:
(4)
(5)
式中:T為接合轉(zhuǎn)移頻率;Nc是接合子數(shù)(CFU·mL-1);Nr為受體菌數(shù)(CFU·mL-1);Promition2為接合轉(zhuǎn)移頻率促進(jìn)率(%);Tt和Tc分別為實(shí)驗(yàn)組和對照組的接合轉(zhuǎn)移頻率。最后,利用Hormesis模型(Origin8.6)擬合接合轉(zhuǎn)移數(shù)據(jù)。
采用SPSS18.0軟件進(jìn)行線性回歸分析,通過相關(guān)系數(shù)(r2)、標(biāo)準(zhǔn)誤差(SE)、Fisher統(tǒng)計(F)和顯著性水平(P)來評價。
如圖1(a)所示,SAs對E.coli生長毒性劑量-效應(yīng)曲線呈現(xiàn)典型的S型,說明SAs對E.coli生長的抑制率隨著SAs濃度的增加而逐漸增大。根據(jù)毒性劑量-效應(yīng)曲線,計算了SAs對E.coli生長的半數(shù)抑制濃度(EC50)(表1)。SAs的EC50順序?yàn)椋篠PY 圖1 磺胺類藥物(SAs)對E. coli的生長毒性劑量-效應(yīng)曲線注:(a)毒性;(b)突變頻率;(c)接合轉(zhuǎn)移頻率。Fig. 1 The concentration-response curves for sulfonamides (SAs) effect on E. coli growthNote: (a) the growth; (b) the mutation frequency; (c) the conjugative transfer frequency. 為了探究SAs脅迫與ARGs在E.coli中產(chǎn)生和傳播的關(guān)系,根據(jù)毒性劑量-效應(yīng)曲線選擇了典型的毒性參數(shù),包括無觀察效應(yīng)濃度(NOEC),EC50和抑制率80%的化合物濃度(EC80)。NOEC、EC50和EC80的對數(shù)值如表2所示。 表2 SAs對E. coli生長、突變和接合轉(zhuǎn)移作用的典型參數(shù)值Table 2 The typical concentration values of SAs to the growth, mutation, and the conjugative transfer of E. coli 如圖1(b)所示,SAs促進(jìn)E.coli突變頻率的劑量-效應(yīng)曲線呈倒U型,表明SAs對E.coli突變頻率的促進(jìn)率隨SAs濃度的增加先升高后降低。最大促進(jìn)率的順序?yàn)镾MZ(83.58%) 根據(jù)SAs促進(jìn)E.coli突變頻率的劑量-效應(yīng)曲線,本研究選取了典型的突變參數(shù),包括促進(jìn)率為1%時最低可觀測突變促進(jìn)效應(yīng)濃度(MC0-1)、促進(jìn)率為50%時突變促進(jìn)效應(yīng)濃度(MC50)和促進(jìn)率最大時突變促進(jìn)效應(yīng)濃度(MCmax),并且MC0-1、MC50和MCmax的對數(shù)值如表2所示。 由圖1(c)可知,SAs促進(jìn)E.coli接合轉(zhuǎn)移頻率的劑量-效應(yīng)曲線呈現(xiàn)典型的倒J型。隨著SAs濃度的增加,接合轉(zhuǎn)移促進(jìn)率的提升先增大后減小。最大促進(jìn)率的順序?yàn)镾MZ(29.18%) 圖2 SAs對E. coli的作用機(jī)理注:(a)抑制生長;(b)促進(jìn)突變頻率;(c)促進(jìn)接合轉(zhuǎn)移頻率;PABA表示對氨基苯甲酸,DHPS表示二氫蝶酸合成酶,DHFR表示二氫葉酸還原酶,DHFA表示二氫葉酸,THFA表示四氫葉酸。Fig. 2 The mechanistic hypothesis for SAs effect on E. coliNote: (a) the growth inhibition; (b) the promotion of the mutation frequency; (c) the promotion of the conjugative transfer frequency; PABA stands for para-aminobenzoic acid; DHPS stands for dihydropteroate synthase; DHFR stands for dihydrofolate reductase; DHFA stands for dihydrofolic acid; THFA stands for tetrahydrofolic acid. 典型的接合轉(zhuǎn)移參數(shù)包括促進(jìn)率為1%時最低可觀測接合轉(zhuǎn)移促進(jìn)效應(yīng)濃度(RC0-1)、促進(jìn)率最大時接合轉(zhuǎn)移促進(jìn)效應(yīng)濃度(RCmax)和促進(jìn)率為1%時最高可觀測接合轉(zhuǎn)移促進(jìn)效應(yīng)濃度(RC0-2),RC0-1、RCmax和RC0-2的對數(shù)值如表2所示。 通過毒性參數(shù)(NOEC、EC50和EC80)與突變參數(shù)(MC0-1、MC50和MCmax)的線性回歸,探討SAs脅迫與E.coli突變頻率之間的關(guān)系,回歸方程如式(6)~(14)。 logMC0-1=0.391logNOEC-3.369 n=5,r2= 0.437, SE=0.174,F=2.327,P=0.225 (6) logMC50=0.152logNOEC-4.755 n=5,r2=0.351, SE=0.081,F=1.624,P=0.292 (7) logMCmax=0.109logNOEC-4.767 n=5,r2=0.050, SE=0.185,F=0.159,P=0.717 (8) logM0-1=0.346logEC50-3.886 n=5,r2=0.529, SE=0.158,F=3.367,P=0.164 (9) logMC50=0.156logEC50-4.820 n=5,r2=0.577, SE=0.065,F=4.094,P=0.136 (10) logMCmax=0.045logEC50-5.221 n=5,r2=0.014, SE=0.188,F=0.041,P=0.852 (11) logM0-1=0.313logEC80-4.180 n=5,r2=0.635, SE=0.139,F=5.214,P=0.107 (12) logMC50=0.125logEC80-5.047 n=5,r2=0.544, SE=0.068,F=3.578,P=0.115 (13) logMCmax=0.027logEC80-5.344 n=5,r2=0.027, SE=0.189,F=0.021,P=0.895 (14) 根據(jù)以上的回歸結(jié)果可知,EC80與MC0-1回歸的r2為0.64,是這些方程中最高的,說明EC80與MC0-1的相關(guān)性更好。結(jié)合圖2(a)和圖2(b),分析EC80與MC0-1之間相關(guān)的可能機(jī)理如下(圖3):較高的SAs脅迫作用可能會導(dǎo)致THFA的合成大大減少,從而限制了核苷酸堿基的產(chǎn)生;同時,堿基對錯配的概率可能由于核苷酸堿基的減少而大大增加,最終導(dǎo)致E.coli突變頻率的提高[29]。此外,任何細(xì)菌在接近抗生素最低抑菌濃度(MIC)時,可以獲得突變的最大選擇壓力,這說明突變在高壓力下發(fā)生得更多[16]。此外,大多數(shù)細(xì)菌的染色體中都含有豐富的毒素-抗毒素(TA)系統(tǒng)[37]。在低SAs脅迫下,TA系統(tǒng)可能為細(xì)菌種群提供耐受性,并保護(hù)細(xì)菌免受基因突變的影響[38]。因此,只有當(dāng)SAs對E.coli施加更大的壓力時,SAs才可能導(dǎo)致E.coli突變頻率促進(jìn)率增加。 2.4.2 SAs的脅迫與E.coli中ARGs接合轉(zhuǎn)移頻率的關(guān)系 通過毒性參數(shù)(NOEC、EC50和EC80)與接合轉(zhuǎn)移參數(shù)(RC0-1、RCmax和RC0-2)的線性回歸,探討SAs脅迫與E.coli接合轉(zhuǎn)移頻率之間的關(guān)系,回歸方程如式(15)~(23)。 logRC0-1=- 1.052logNOEC-16.240 n=5,r2=0.532, SE=0.386,F= 3.410,P=0.162 (15) logRCmax=-0.732logNOEC-12.319 n=5,r2=0.115, SE=0.793,F=0.391,P=0.576 (16) logRC0-2=-0.967logNOEC-11.949 n=5,r2=0.276, SE=0.612,F=1.146,P=0.363 (17) logRC0-1=- 0.621logEC50-12.953 n=5,r2=0.286, SE=0.476,F=1.204,P=0.353 (18) logRCmax=-0.179logEC50-8.486 n=5,r2= 0.011, SE=0.839,F=0.032,P=0.869 (19) logRC0-2=-0.428logEC50-8.058 n=5,r2=0.084, SE=0.689,F=0.275,P=0.636 (20) logRC0-1=- 0.448logEC80- 11.761 n=5,r2=0.218, SE=0.499,F=0.837,P=0.428 (21) logRCmax=-0.023logEC80-7.525 n=5,r2=0.000, SE=0.843,F=0.001,P=0.980 (22) logRC0-2=-0.260logEC80-6.949 n=5,r2=0.045, SE= 0.703,F=0.142,P=0.731 (23) 由以上回歸方程可知,NOEC與RC0-1回歸的r2值最高,為0.53,說明NOEC與RC0-1的相關(guān)性較好。根據(jù)圖2(a)和圖2(c),分析了NOEC與RC0-1之間的密切關(guān)系如下(圖3):在低SAs脅迫下,THFA合成受阻可能導(dǎo)致DNA損傷,從而觸發(fā)細(xì)胞SOS反應(yīng),最終促進(jìn)RP4質(zhì)粒的接合轉(zhuǎn)移[39]。此外,umuDC操縱子被認(rèn)為是維持SOS應(yīng)答的關(guān)鍵因素,高SAs脅迫可能導(dǎo)致umuD蛋白和umuC的損傷,從而抑制SOS反應(yīng)[39]。因此,只有當(dāng)SAs對E.coli施加較低的壓力時,才會導(dǎo)致其對接合轉(zhuǎn)移頻率的提升率增加。 圖3 SAs脅迫與突變和接合轉(zhuǎn)移的關(guān)系Fig. 3 The relationship of mutation and conjugative transfer with the SAs stress 綜上所述,本研究認(rèn)為ARGs的產(chǎn)生和傳播可能受到不同水平的抗生素脅迫的調(diào)控(圖3):當(dāng)高濃度抗生素脅迫引起突變頻率的初始提升時,低濃度抗生素脅迫引起接合轉(zhuǎn)移頻率的初始提升。然而,正如引言中提到的,一些研究人員對ARGs和抗生素之間的關(guān)系得出了不同的結(jié)論。環(huán)境中ARGs與抗生素濃度之間關(guān)系的不一致性可能是由2個因素造成的: (1)不同的抗生素濃度。不同的環(huán)境條件下,抗生素濃度可能有很大的差異,這導(dǎo)致抗生素對細(xì)菌的脅迫大小不同,從而導(dǎo)致環(huán)境中ARGs的產(chǎn)生和傳播存在差異。 (2)在環(huán)境中可能的影響因素。在實(shí)際環(huán)境中,有許多因素影響抗生素脅迫與ARGs的產(chǎn)生和傳播的關(guān)系:①真實(shí)環(huán)境中存在許多抗生素外的其他種類的化合物可以影響ARGs的產(chǎn)生和傳播。例如,重金屬的亞抑制濃度,包括Cu(Ⅱ)、Ag(Ⅰ)、Cr(Ⅵ)和Zn(Ⅱ)都可以促進(jìn)ARGs的產(chǎn)生和傳播[34]。②傳播介質(zhì)的不同可能導(dǎo)致ARGs的傳播發(fā)生變化。例如,SMX促進(jìn)的pB10質(zhì)粒在活性污泥中的傳播速率遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于其促進(jìn)pB10質(zhì)粒在細(xì)菌之間的傳播速率[40]。此外,還有研究表明,低溫和高鹽度會阻礙ARGs的產(chǎn)生和傳播[15]。③不同菌種ARGs的產(chǎn)生和傳播可能相互干擾。例如,有研究發(fā)現(xiàn),來自其他細(xì)菌物種的水平基因轉(zhuǎn)移也會增加E.coli對抗生素的耐藥性[41]。 本研究發(fā)現(xiàn),ARGs產(chǎn)生與傳播和抗生素脅迫之間是密切相關(guān)的。然而,在真實(shí)環(huán)境中也存在許多其他因素影響ARGs產(chǎn)生與傳播,例如,其他種類化合物、環(huán)境介質(zhì)以及細(xì)菌種類等。因此,建議在探究ARGs產(chǎn)生與傳播時,應(yīng)考慮這些影響因素和抗生素脅迫的綜合作用。本研究為研究抗生素脅迫下ARGs的產(chǎn)生和傳播提供了新的思路,為尋找ARGs污染的防治方法提供了一定的指導(dǎo)。 ◆2.2 SAs對E. coli突變頻率的影響
2.3 SAs對E. coli接合轉(zhuǎn)移頻率的影響
2.4 SAs的脅迫與ARGs在E. coli中產(chǎn)生和傳播的關(guān)系2.4.1 SAs的脅迫與E. coli中ARGs突變頻率的關(guān)系
2.5 影響抗生素脅迫與ARGs產(chǎn)生和傳播關(guān)系的因素