費 燁,王 雍,龔仕英,田 艷,王筑婷,雷霆雯,張禮林,汪希蘭,李紅梅,*
(1.貴州醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,生物化學(xué)與分子生物學(xué)教研室,貴州 貴陽 550025;2.貴州醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,貴州 貴陽 550025)
糖尿病是由胰島素分泌不足或胰島素抵抗(insulin resistance,IR)引起的糖、脂肪和蛋白質(zhì)代謝失調(diào)綜合征[1]。它是一種慢性內(nèi)分泌系統(tǒng)紊亂,主要表現(xiàn)為長期高血糖。糖尿病主要分為1型和2型糖尿?。╰ype 2 diabetes mellitus,T2DM),其中T2DM占所有糖尿病病例的90%~95%[2]。近幾十年來,全球T2DM患病率持續(xù)以驚人的速度增長。目前,全球約有3 710萬 人患有T2DM,其中中國和美國患者分別占總量的11.6%和11.3%[3]。據(jù)國際糖尿病聯(lián)合會(international diabetes federation,IDF)估計,到2030年,全球T2DM患者人數(shù)將達(dá)到3.42億,并且年輕人的患病率將會增高[4]。因此,T2DM的防治已成為一個嚴(yán)重的全球性公共衛(wèi)生問題。
T2DM的主要病因是IR,IR在T2DM的發(fā)生發(fā)展中起著重要的作用。IR的特征是胰島素調(diào)節(jié)和功能受損,正常水平的胰島素?zé)o法在靶組織(如肝臟、脂肪和骨骼?。┲幸鸬湫偷囊葝u素反應(yīng)[5]。當(dāng)體內(nèi)出現(xiàn)IR時,胰島素敏感組織對葡萄糖的利用率下降,導(dǎo)致糖尿病[6]。大量的研究表明氧化應(yīng)激是導(dǎo)致IR的關(guān)鍵因素[7],因此通過抗氧化改善IR是T2DM的一種防治策略。
苦蕎(tartary buckwheat)學(xué)名韃靼蕎麥,別名萬年蕎、野蘭蕎、蕎葉七,隸屬于蓼科蕎麥屬(FagoPyrum tataricum Gaertn.),與何首烏、大黃等同屬蓼科,是我國藥食同源文化的典型體現(xiàn),具有很高的食藥兩用價值??嗍w營養(yǎng)豐富,富含蛋白質(zhì)、維生素、膳食纖維、黃酮類化合物和多種微量礦物質(zhì)元素等營養(yǎng)物質(zhì)[8-9]。研究發(fā)現(xiàn)苦蕎蛋白具有降膽固醇、抑制脂肪蓄積、抗衰老、抑制大腸癌和乳腺癌、抑制膽結(jié)石等作用[10]。本課題組前期采用堿性蛋白酶酶解苦蕎清蛋白后發(fā)現(xiàn)酶解物具有體外抗氧化活性[11],并且分子質(zhì)量小于3 kDa的酶解物抗氧化活性最強(qiáng)。因此本研究將苦蕎清蛋白酶解物(tartary buckwheat albumin hydrolysate,TBAH)超濾后,采用分子質(zhì)量小于3 kDa的TBAH作用于高糖高胰島素誘導(dǎo)的人肝細(xì)胞癌細(xì)胞系HepG2 IR模型,探討TBAH對細(xì)胞IR的影響及其可能的機(jī)制。
細(xì)胞株(HepG2細(xì)胞) 上海細(xì)胞庫;苦蕎粉貴州威寧苦蕎專賣店。
DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清 美國HyClone公司;乳酸脫氫酶(lactic dehydrogenase,LDH)、一氧化氮(nitric oxide,NO)、微量丙二醛(malondialdehyde,MDA)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、活性氧(reactive oxygen species,ROS)測定試劑盒 南京建成生物工程研究所;胰島素受體底物1(insulin receptor substrate 1,IRS-1)、磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)、蛋白激酶B(protein kinase B,Akt)、磷酸化Akt(phosphorylated Akt,p-Akt)(Ser407)、葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白4(glucose transporter 4,GLUT4)、β-肌動蛋白(β-actin) 美國Proteintech公司;磷酸化IRS-1(phosphorylated IRS-1,p-IRS-1)(Ser307) 北京Cell Signaling Technology公司;辣根過氧化物酶標(biāo)記羊抗兔免疫球蛋白G(immunoglobulins G,IgG)、辣根過氧化物酶標(biāo)記羊抗鼠IgG 美國Jackson Immuno Research公司;羅格列酮、重組人胰島素 北京Solarbio公司;堿性蛋白酶南寧龐博生物工程有限公司。
二氧化碳細(xì)胞培養(yǎng)箱 日本松下公司;制膠器及電轉(zhuǎn)移裝置、DYY-6C型穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀 北京六一儀器廠;多功能酶標(biāo)儀 美國Bio-Tek公司;Syngene凝膠成像儀 美國基因有限公司;熒光倒置顯微鏡 日本尼康公司;氨基酸自動分析儀 德國Sykam公司。
1.3.1 苦蕎清蛋白的制備
按1∶1(m/V)的比例用正己烷溶解苦蕎粉48 h以脫脂,然后將已脫脂苦蕎粉按1∶10(m/V)的比例加入ddH2O,攪拌2 h,4 ℃、6 000 r/min離心15 min,取上清液用1 mol/L的HCl溶液調(diào)節(jié)pH值至4.5,以利于苦蕎清蛋白充分沉淀,蛋白沉淀用ddH2O沖洗2 次后用0.1 mol/L的NaOH溶液調(diào)至中性,置于真空冷凍干燥機(jī)除去水分,由此制得苦蕎蛋白粉末[12]。
1.3.2 TBAH的制備
準(zhǔn)確稱取一定量的苦蕎蛋白凍干粉,用ddH2O溶解配制3%的底物溶液。用1 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)pH值至10.0,加入堿性蛋白酶(酶與底物質(zhì)量比為5%)45 ℃孵育4 h,反應(yīng)完成后將酶解液置于100 ℃沸水浴中滅酶10 min,冷卻后6 000 r/min離心10 min,收集上清液即得TBAH。采用截留分子質(zhì)量為3 kDa的超濾管對TBAH進(jìn)行截留分離,收集分子質(zhì)量不大于3 kDa的組分,凍干成粉末,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.3 TBAH的氨基酸組成
凍干后的TBAH加入6 mol/L HCl溶液混勻,放入液氮中冷凍,然后110 ℃水解24 h,冷卻后用0.45 μm濾膜過濾,然后真空干燥,加入pH 2.2樣品緩沖液溶解,0.22 μm濾膜過濾,隨后通過氨基酸自動分析儀進(jìn)行分析。
1.3.4 HepG2細(xì)胞培養(yǎng)與傳代
利用含10%胎牛血清、1%青霉素、鏈霉素的DMEM低糖培養(yǎng)液,37 ℃、5% CO2飽和濕度下對細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),0.25%胰蛋白酶進(jìn)行消化、傳代,取對數(shù)生長期的細(xì)胞進(jìn)行實驗。
1.3.5 HepG2細(xì)胞IR模型建立
將處于對數(shù)生長期的HepG2細(xì)胞用0.25%胰蛋白酶消化后,1 000 r/min離心5 min收集細(xì)胞,加新鮮培養(yǎng)液吹打成單細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞密度至1×105個/mL,均勻接種于48 孔培養(yǎng)板中,待細(xì)胞貼壁后,更換為無胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)12 h,然后更換為含1 μmol/L胰島素和25 mmol/L葡萄糖的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),設(shè)置3 個復(fù)孔并設(shè)無胰島素空白孔。經(jīng)37 ℃、5% CO2孵育36 h后檢測培養(yǎng)基上清液的葡萄糖含量。以空白孔葡萄糖含量減去樣品孔葡萄糖含量計算出各孔細(xì)胞的葡萄糖消耗量[13]。
1.3.6 葡萄糖消耗實驗
實驗分為6 組:正常對照組(Control)、IR模型組、低質(zhì)量濃度苦蕎蛋白酶解肽組(2.5 μg/mL TBAH,L-TBAH)、中質(zhì)量濃度苦蕎蛋白酶解肽組(5 μg/mL TBAH,M-TBAH)、高質(zhì)量濃度苦蕎蛋白酶解肽組(10 μg/mL TBAH,H-TBAH)、羅格利酮陽性對照組(4 μg/mL,RGT)。TBAH各組的劑量根據(jù)葡萄糖消耗實驗確定,羅格列酮的劑量參照文獻(xiàn)[14]進(jìn)行。建模完成后將48 孔培養(yǎng)板中舊培養(yǎng)液去除,正常對照組、IR模型組更換正常DMEM培養(yǎng)液。藥物干預(yù)組分別給予相應(yīng)濃度的藥物處理24 h。24 h后采用葡萄糖氧化酶-過氧化物酶法測定每孔細(xì)胞培養(yǎng)基中葡萄糖的含量,通過與未接種細(xì)胞DMEM葡萄糖濃度平均值相減,計算每孔細(xì)胞葡萄糖的含量。
1.3.7 氧化損傷標(biāo)志物活性及含量的檢測
收集各組細(xì)胞,用磷酸鹽緩沖液洗滌2 次,加入細(xì)胞裂解液,冰上裂解1 h,12 000 r/min、4 ℃離心10 min,收集上清液,細(xì)胞內(nèi)總蛋白水平采用BCA法測定,SOD、LDH活力、MDA、NO含量的測定按照相應(yīng)試劑盒說明書操作。
1.3.8 ROS水平檢測
按照ROS試劑盒說明書操作。建模完成以后每孔加入母液DCFH-DA于培養(yǎng)基,使其濃度為10 μmol/L,37 ℃孵育細(xì)胞1 h。用0.25%胰蛋白酶消化細(xì)胞3 min,加入培養(yǎng)基終止消化,制成細(xì)胞懸液,1 000×g離心5 min收集細(xì)胞,用磷酸鹽緩沖液洗滌2 次,離心收集細(xì)胞沉淀物用于熒光檢測。將收集好的細(xì)胞用磷酸鹽緩沖液重懸,計數(shù),并用于檢測。波長設(shè)置:最佳激發(fā)波長500、485 nm,最佳發(fā)射波長525 nm。孵育完畢,未消化的細(xì)胞使用熒光倒置顯微鏡記錄拍照。
1.3.9 IRS-1、Akt、PI3K、GLUT4、p-IRS-1、p-Akt蛋白表達(dá)水平檢測
提取各組細(xì)胞蛋白,采用BCA法蛋白定量后,取蛋白樣品15 μg進(jìn)行電泳,轉(zhuǎn)膜、封閉、加入IRS-1、Akt、PI3K、GLUT4、p-IRS-1、p-Akt抗體孵育。洗滌之后加入辣根過氧化酶標(biāo)記的二抗,孵育,洗滌后用ECL化學(xué)發(fā)光試劑反應(yīng),曝光后掃描,采用Image J軟件進(jìn)行光密度分析。
實驗重復(fù)3 次,實驗數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,采用方差齊性檢驗和單因素方差分析對多組進(jìn)行比較,P<0.05具有統(tǒng)計學(xué)意義。
表1 分子質(zhì)量小于3 kDa TBAH的氨基酸組成Table 1 Amino acid composition of TBAH (< 3 kDa)
由表1可知,TBAH富含谷氨酸(Glu)和精氨酸(Arg),質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為14.47%和14.13%,其他帶電荷的極性氨基酸如天冬氨酸(Asp)、組氨酸(His)和賴氨酸(Lys),質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為7.58%、6.79%和6.83%,酸性氨基酸和堿性氨基酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為49.80%;總的非極性疏水性氨基酸(甘氨酸(Gly)、丙氨酸(Ala)、脯氨酸(Pro)、纈氨酸(Val)、亮氨酸(Leu)、異亮氨酸(Ile))的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為33.78%;芳香族氨基酸中苯丙氨酸(Phe)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5.67%,酪氨酸(Tyr)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3.00%;而含硫氨基酸量很少,如甲硫氨酸(Met)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.93%,半胱氨酸(Cys)質(zhì)量分?jǐn)?shù)僅為0.17%。
如表2所示,在HepG2細(xì)胞中,25 mmol/L葡萄糖和1 μmol/L胰島素聯(lián)合作用36 h可顯著降低葡萄糖消耗量,IR組較正常對照組葡萄糖消耗量下降66%,表明高糖高胰島素可誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞IR。羅格列酮和TBAH作用后可提高葡萄糖消耗,TBAH的作用更強(qiáng),并且呈劑量依賴性。結(jié)果表明TBAH可以減輕IR。
表2 TBAH對HepG2細(xì)胞IR的影響(n=3)Table 2 Effect of TBAH on insulin resistance in HepG2 cells (n= 3)
表3 TBAH對IR HepG2細(xì)胞氧化指標(biāo)的影響(n=3)Table 3 Effect of TBAH on oxidative stress indices in HepG2 cells with insulin resistance (n= 3)
如表3所示,25 mmol/L葡萄糖和1 μmol/L胰島素孵育HepG2細(xì)胞36 h,導(dǎo)致MDA、NO和ROS水平升高,同時SOD活力下降,LDH活力升高,說明在IR時氧化應(yīng)激增強(qiáng)。與IR模型組相比,羅格列酮和TBAH可顯著降低MDA、NO和ROS水平(表3和圖1),同時提高SOD活力,降低LDH活力。TBAH對SOD的影響呈劑量依賴性。結(jié)果表明TBAH能改善IR的氧化損傷。
圖1 TBAH對IR HepG2細(xì)胞中ROS的影響Fig.1 Effect of TBAH on ROS generation in HepG2 cells with insulin resistance
圖2 TBAH對IR HepG2細(xì)胞IRS-1/PI3K/Akt信號通路的影響Fig.2 Effect of TBAH on IRS-1/PI3K/Akt signaling pathway in HepG2 cells with insulin resistance
如圖2所示,高糖高胰島素誘導(dǎo)的IR模型中,p-IRS-1(Ser307)表達(dá)水平增加,說明IR的發(fā)生與IRS-1的磷酸化調(diào)節(jié)密切相關(guān),而羅格列酮和TBAH能明顯地逆轉(zhuǎn)這種變化。其次,IR模型中,PI3K、p-Akt表達(dá)水平降低,而羅格列酮和TBAH能促進(jìn)PI3K、p-Akt的表達(dá),結(jié)果提示TBAH對IR的改善可能與細(xì)胞中Akt蛋白的磷酸化調(diào)節(jié)有關(guān)。與IR模型組相比,羅格列酮和TBAH能促進(jìn)GLUT4蛋白的表達(dá),其中TBAH對GLUT4的影響呈劑量依賴性,說明TBAH通過促進(jìn)GLUT4的表達(dá)提供細(xì)胞對葡萄糖的利用,從而降低血糖。
因為氧化應(yīng)激是IR發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵因素,因此,一些抗氧化劑用于改善IR和治療T2DM。如N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)是一種有效的自由基清除劑,已被證實可以降低高脂飲食誘導(dǎo)的肥胖小鼠的高血糖和高胰島素血癥,并改善IR[15]。近年來,蛋白水解物以其多種生物活性和高度的安全性引起眾多研究者的關(guān)注[16]。研究認(rèn)為生物活性肽的生物活性取決于它們的氨基酸組成和序列[17]。在具有抗氧化活性的生物活性肽中,含有羧基或氨基的氨基酸,如酸性氨基酸Glu、Asp和堿性氨基酸Arg、Lys和His可通過其電離基團(tuán)與自由基相互作用,從而清除自由基,His的咪唑基還能通過提供電子將自由基轉(zhuǎn)化為穩(wěn)定分子而使自由基失活[18]。疏水氨基酸(Ala、Val、Gly、Ile和Leu)和芳香族氨基酸(如Tyr和Phe)可以通過直接電子轉(zhuǎn)移或與疏水性靶點(如脂肪酸和細(xì)胞膜)相互作用來促進(jìn)肽的自由基清除活性[19]。在本實驗中,TBAH富含Glu(14.47%)和Arg(14.13%),此外,酸性氨基酸和堿性氨基酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)達(dá)到49.80%,非極性疏水性氨基酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)為33.78%,說明TBAH含有豐富的抗氧化氨基酸。在IR細(xì)胞模型實驗中,TBAH能降低氧化物MDA、NO和ROS的含量,同時提高了抗氧化酶SOD的活力,降低了氧化酶LDH的活力。說明TBAH能通過清除ROS來增強(qiáng)細(xì)胞抗氧化活性。
IR是T2DM的主要發(fā)病原因,IR的特征是葡萄糖消耗減少[20]。當(dāng)體內(nèi)出現(xiàn)IR時,胰島素敏感組織對葡萄糖的利用率下降,導(dǎo)致糖尿病[21]。本實驗采用高糖高胰島素誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞建立IR模型,發(fā)現(xiàn)25 mmol/L葡萄糖聯(lián)合1 μmol/L胰島素孵育細(xì)胞36 h后,葡萄糖消耗減少,而TBAH能增加細(xì)胞對葡萄糖的消耗,且呈劑量依賴性,提示TBAH可阻礙IR的發(fā)展。
在正常細(xì)胞中,胰島素主要通過PI3K/Akt信號途徑調(diào)節(jié)葡萄糖代謝[22-23]。當(dāng)血糖水平升高,胰島素結(jié)合并激活胰島素受體,促進(jìn)IRS-1的酪氨酸磷酸化,從而激活PI3K和Akt,調(diào)節(jié)葡萄糖轉(zhuǎn)運和代謝[24-25]。此外,激活的PI3K/Akt信號途徑促進(jìn)GLUT4向細(xì)胞膜的運輸,促進(jìn)葡萄糖攝入到細(xì)胞中,并最終降低血糖水平[26]。研究認(rèn)為IR的形成主要是由于胰島素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路受阻,或者通路中關(guān)鍵蛋白作用減弱而使胰島素不能發(fā)揮其正常的生理作用[27]。IRS蛋白的絲氨酸/蘇氨酸磷酸化被認(rèn)為是IR的分子基礎(chǔ)[28-29],IRS-1的絲氨酸磷酸化,特別是Ser307和Ser636/639上的絲氨酸磷酸化后,可抑制IRS-1的酪氨酸磷酸化[30]。在本研究中,TBAH可逆轉(zhuǎn)高糖高胰島素引起的IRS-1蛋白Ser307磷酸化水平的升高,調(diào)節(jié)胰島素信號轉(zhuǎn)導(dǎo),激活PI3K/Akt信號通路增加GLUT4的表達(dá),從而增加細(xì)胞對葡萄糖的攝取。
綜上所述,在高糖高胰島素誘導(dǎo)的IR中,TBAH可防止HepG2細(xì)胞氧化-抗氧化系統(tǒng)失衡,通過抑制IRS-1蛋白Ser307磷酸化,激活PI3K/Akt信號通路,增加GLUT4的表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)細(xì)胞對葡萄糖的攝取,從而改善IR。