楊興華,張靜,林靜,李兵,王小娟,孫俊偉
(1.山東省煙臺市業(yè)達醫(yī)院口腔科, 煙臺 264006;2.山東第一醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院,泰安 271000;3.滕州市中心人民醫(yī)院口腔科,滕州 277500)
家蠶絲很早就被就用于臨床醫(yī)學(xué)及其研究領(lǐng)域,被用作手術(shù)縫合線已有100余年的歷史[1]。家蠶絲由絲膠和絲素構(gòu)成,絲素蛋白是蠶絲主要成份。根據(jù)不同使用目的,絲素可被加工成膜狀、多孔狀、膠體狀等。目前常用的絲素蛋白 (silk fibroin,SF )溶解劑有9.3 mol/L LiBr、氯化鈣三元溶解體系(摩爾比為CaCl2∶C2H5OH∶H2O=1∶2∶8)等[2-3]。絲素制備孔隙的方法主要有冷凍法、冷凍干燥法(凍干法)、鹽析法、發(fā)泡法、有機溶劑揮發(fā)法等,其中凍干法操作簡單,獲得的支架穩(wěn)定,是常用的方法[4]。支架的孔徑、孔隙率和孔壁的厚度可以通過調(diào)節(jié)溫度、濃度、制孔劑來實現(xiàn)[5]。SF支架的應(yīng)用受壓縮強度低,缺乏細胞生長分化因子等因素限制,需與高分子有機物、殼聚糖等材料復(fù)合以改善其性能[6]。
牙本質(zhì)為多孔結(jié)構(gòu),通過對牙本質(zhì)脫鈣處理,使脫鈣牙本質(zhì)基質(zhì)(decalcified dentin matrix,DDM)具有誘導(dǎo)成骨的能力,其含有大量有助于細胞生長的蛋白和細胞因子,能誘導(dǎo)干細胞定向分化、趨化、增殖,是天然的細胞外成骨誘導(dǎo)基質(zhì)材料[7]。DDM顆粒的大小對成骨也有影響,研究發(fā)現(xiàn)200~1 000 μm的直徑粒度更利于新骨形成,其殘留的鈣、磷離子可為成骨提供原材料[8-9]。因此,DDM作為臨床的骨增量材料常應(yīng)用于口腔種植。通過對比DDM和Bio-Oss兩種材料發(fā)現(xiàn),牙種植區(qū)新骨生成量DDM具有與Bio-Oss同樣的臨床效果,可替代Bio-Oss使用[10]。DDM可以取自體阻生牙或者埋伏牙、異體的健康牙齒,經(jīng)過冷凍降低其免疫性,具有廣泛的應(yīng)用前景。
聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)作為載體可延長藥物半衰期。利用PEG6000與SF交聯(lián),可增加材料的壓縮強度、拉伸強度和柔韌性[11]。
利用SF多孔、可吸收、通透性、可塑性和生物相容性好及DDM的成骨誘導(dǎo)性強、壓縮強度高、結(jié)構(gòu)穩(wěn)定的優(yōu)點,本研究構(gòu)建了DDM-SF可吸收多孔支架,并研究其對牙周干細胞的生長和成骨誘導(dǎo)的影響,以期將來應(yīng)用于牙周、種植骨量不足的臨床治療。
細胞計數(shù)劑Kit-8,yiyuan,上海;LiBr,20022726,國藥集團;紅外線光譜儀,Tensor II;掃描電鏡,MDI Jade 5.0;BCA試劑盒,Solarbio;ALP一抗( 108337 abcam)、BMP-2一抗( 14933 abcam)、RUNX2一抗(ab23981 Abcam)、I型膠原一抗(abcam);SD 雄性大鼠,山東大學(xué)試驗動物中心提供。
2.2.1SF溶液的制備 將適量桑蠶絲置于0.02 mol/L碳酸鈉溶液中,100℃煮1 h,脫膠、沖洗、晾干;絲素放入1 L LiBr(摩爾濃度9.3 M)溶液中,60℃水浴溶解、流水透析48 h,蒸餾水透析24 h,檢測SF初始濃度,并將其稀釋或濃縮至工作濃度[12]。
2.2.2DDM顆粒的制作 正畸拔除離體牙拔髓后進行脫鈣、沖洗、脫脂、清洗、晾干處理,冷凍后碾成100~500 μm的顆粒保存。
2.2.3支架制備及性能測定 將100~500 μm的6%SF顆粒與DDM以體積比7:3混合、濕潤,加入試件模具,消滅空腔后滴加(6%SF+1%PEG6000)溶液至液平,-20℃真空冷凍干燥,置于80%冷乙醇浸泡12 h;經(jīng)去離子水沖洗、凍干、消毒后備用。制備分別用于細胞培養(yǎng)和壓縮強度測試的膜狀和柱狀(直徑1 cm,高2 cm)復(fù)合支架。支架孔徑采用電鏡下標尺測量10個不同位點的孔徑平均值。采用萬用電子力學(xué)壓縮機壓斷各組材料試件時的壓力平均值測定其壓縮強度,并對材料進行特性光譜檢測,X-ray diffraction(XRD)和BET比表面積檢測。
2.2.4人牙周膜干細胞(human periodontal ligament stem cells,HPDLSC)的分離與培養(yǎng) 采用正畸減數(shù)拔牙的年輕患者離體牙齒,1 h內(nèi)在含雙抗的瓶中轉(zhuǎn)移至試驗室無菌臺內(nèi)。PBS沖洗3遍后,刮取離體牙中下部牙周膜,沖洗、剪碎,置于培養(yǎng)皿內(nèi),37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中貼壁培養(yǎng)[13],待原代培養(yǎng)的細胞鋪滿80%皿底時,消化、吹打、傳代。取第二代細胞進行細胞表面抗原CD11b、CD29、CD44、CD45、CD90等的流式檢測及成脂、成骨分化誘導(dǎo)、成神經(jīng)元樣細胞等干細胞的特性鑒定。
2.2.5細胞毒性檢測 實驗組為30%DDM(v/v)的DDM-SF支架,對照組為SF支架。無菌條件下,將膜狀支架覆蓋96孔板底部,第二代HPDLSC以5×105個/mL的密度,每孔20 μL接種于材料上。24 h后PBS清洗每孔,加入含10%cck-8的基礎(chǔ)培養(yǎng)基,孵育2 h在酶標儀450 nm處測細胞培養(yǎng)基的吸光度(optical absorbance,OA)值,連續(xù)7 d。
2.2.6支架對細胞影響檢測 第二代HPDLSC以1×106個/mL接種到含DDM體積比為10%、30%、50%的三組DDM-SF支架上培養(yǎng),在7、21、35 d時,采用研磨法提取細胞的蛋白,WB測細胞ALP、RUNX2、COL-1、BMP-2變化。掃描電鏡(SEM)觀察細胞與支架。30%DDM-SF支架復(fù)合細胞后植入大鼠皮下顱骨表面,分別于2、4、12、24周取出,固定,脫鈣、脫水、包埋、切片、HE染色。
脫膠溶解后的SF溶液為淡黃色,且具有一定的粘度。制備的SF溶液初始濃度約3%~6%(m/v);制備的支架為白色、有韌性的多孔材料。在凍干條件下,測得DDM-SF支架孔徑及壓縮強度見表1,可知SF材料支架加入牙本質(zhì)后的壓縮強度隨牙本質(zhì)比例的增加逐漸增大,且同等條件下DDM-SF的孔徑要小于SF的孔徑,材料孔徑隨著濃度的增加而縮小。
按成組設(shè)計多個樣本比較的秩和檢驗(Kruskal-Wallis法),樣本壓縮強度經(jīng)秩和檢驗,得P=0.0148。P<0.05,各組壓縮強度有差異。
表1 DDM-SF復(fù)合支架的孔徑、壓縮強度
SF特征峰在3 500 cm-1譜峰為酰胺中NH伸縮振動和—OH伸縮振動,見圖1(a)。DDM特征波長1 033 cm-1為磷酸根,1 385 cm-1為碳酸根,3 442.20 cm-1、1 631.92 cm-1含有氮氫鍵,見圖1(b)。PEG特征峰在3 500 cm-1為O—H鍵,2 885.6 cm-1、1 468 cm-1為O—CH2鍵,見圖1(c)。在DDM-SF支架1 631 cm-1處譜峰為酰胺鍵中—CN伸縮振動和—NH面內(nèi)變形振動,氮氫鍵—CO—NH活潑,C—O鍵伸縮振動,有共價鍵形成,見圖1(d)。
圖1 DDM-SF復(fù)合支架的紅外光譜
SF支架結(jié)晶度非常低,在22°和40°附近有兩個衍射包。DDM-SF支架結(jié)晶度比較好,而且存在尖銳的無機鹽衍射峰,具有三維有序結(jié)構(gòu),堆積緊密,但晶體的對稱性低。經(jīng)BET檢測,材料的孔隙率達98%,材料的孔隙直徑10~160 nm,見圖2。
圖2 BET檢測結(jié)果
使用第二代干細胞經(jīng)流式細胞儀檢測CD29、CD44、CD90結(jié)果呈陽性,見圖3Ⅰ(a)—(c);CD11b、CD45呈陰性,見圖3Ⅰ(d)—(e)。貼壁培養(yǎng)的牙周膜組織塊在第3 d左右開始爬出成纖維細胞樣細胞,以組織塊為中心向四周放射狀生長,鋪滿70%~80%底壁時,消化傳代。傳代后細胞形態(tài)呈長梭形、短棒形。HPDLSC成骨誘導(dǎo)后光鏡下見鈣化結(jié)節(jié);茜素紅染色為陽性;成脂誘導(dǎo)光鏡下胞漿內(nèi)可見脂滴樣物;油紅O染色呈粟狀紅色;成神經(jīng)元誘導(dǎo)可形成成神經(jīng)元樣細胞;NSE免疫熒光染色呈陽性見圖3Ⅱ(a)—(i)。
圖3 HPDLSC“干”性鑒定
HPDLSC接種于絲素支架后,cck-8法( 450 nm OA值,n=6)測定細胞活性 ,SF、DDM-SF材料組曲線開始漸漸降低,然后提升緩慢,說明支架初期對細胞有抑制作用,1周左右細胞恢復(fù)至正常增殖狀態(tài)。對兩組材料OA值進行F檢驗,P=0.0042,P<0.05具有顯著差異,說明含DDM的支架更易促進細胞增殖,見圖4。
圖4 兩組材料OA數(shù)值曲線圖
制備供細胞培養(yǎng)用的SF膜形支架和尺寸約1 cm×2 cm的柱形支架。SF支架的HE染色顯示各孔相通,孔呈圓形,且HE染色干細胞與支架結(jié)合緊密。SEM掃描顯示干細胞與6%的SF支架、DDM-SF復(fù)合支架結(jié)合緊密,細胞狀態(tài)良好,細胞突觸舒展充分,見圖5。
圖5 支架形態(tài)及SEM掃描支架表面細胞
作為成骨分化早期成骨指標,RUNX2、BMP-2等蛋白表達隨時間的延長逐漸增強。ALP、Col-1等蛋白有較早表達,可能與細胞和材料有關(guān),ALP在第三周時表達最為充分。10%的DDM含量對成骨細胞影響較弱,30%、50%影響明顯,說明支架的DDM含量對成骨蛋白表達有影響,見圖6。
圖6 DDM-SF支架表面HPDLSC Westernblot檢測結(jié)果
HE染色顯示,隨著時間的延長,支架組織逐漸被吸收。實驗組和對照組的吸收時間基本一致,實驗組第4周時細胞開始在牙本質(zhì)表面形成吸收凹陷,到24周時DDM大部分被吸收,呈凹陷狀,細胞深入到牙本質(zhì)內(nèi)部的凹陷類骨質(zhì)形成,而對照組細胞增殖緩慢,材料吸收緩慢,24周時仍無硬組織形成,見圖7。
圖7 SF、DDM-SF植入體內(nèi)不同時間段HE染色結(jié)果
本研究證實在冷凍干燥條件下1%PEG+6%SF與30%DDM(v/v)脫鈣牙本質(zhì)基質(zhì)制作的絲素蛋白脫鈣牙本質(zhì)復(fù)合支架(DDM-SF)成孔良好,且具有良好的成骨誘導(dǎo)性和抗壓縮強度。本研究測得DDM-SF支架試件的壓縮強度為87.33 MPa,足以維持一定生理外形。通過測量孔徑,SEM微觀下檢測證實,DDM-SF致孔率適中,孔徑為100 μm左右。DDM在復(fù)合支架中不僅增強壓縮強度,還起到細胞誘導(dǎo)因子的作用。培養(yǎng)在DDM-SF支架上的HPDLSC代謝旺盛,30%DDM體積比構(gòu)建的支架細胞合成的成骨指標COL-1、BMP-2、RUNX2濃度最佳。DDM-SF具有的多孔、生物活性、抗壓、可吸收等性能,在組織工程骨和口腔種植骨量不足治療方面具有廣闊前景。隨著新技術(shù)如靜電紡絲技術(shù)、3D打印技術(shù)、納米技術(shù)的出現(xiàn),在后續(xù)材料制作研究中考慮采用以上技術(shù),以實現(xiàn)對制作均勻孔徑的可控性和材料的抗菌性。此外,考慮將新材料與SF進行復(fù)合,如與石墨烯材料的復(fù)合[14],以增強材料的拉伸強度,或嫁接生長調(diào)控因子等。隨著技術(shù)發(fā)展,后續(xù)將對DDM-SF支架的制作工藝進一步優(yōu)化,以實現(xiàn)對其吸收速度和強度的調(diào)控。