王朝旭 任 靜
(1.太原理工大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,山西 晉中 030600;2.山西省市政工程研究生教育創(chuàng)新中心,山西 晉中 030600)
水體氮污染是我國(guó)環(huán)境可持續(xù)發(fā)展的重要限制因素之一。國(guó)家致力于降低水環(huán)境氨氮濃度,以緩解水體黑臭等環(huán)境問(wèn)題。目前,我國(guó)多地城鎮(zhèn)污水處理廠執(zhí)行《城鎮(zhèn)污水處理廠污染物排放標(biāo)準(zhǔn)》(GB 18918—2002)一級(jí)A標(biāo)準(zhǔn)和《地表水環(huán)境質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)》(GB 3838—2002)Ⅴ類。因此,低濃度氨氮廢水處理成為當(dāng)前研究熱點(diǎn)。一般來(lái)說(shuō),氨氮≤50 mg/L的廢水稱為低濃度氨氮廢水[1]。
針對(duì)低濃度氨氮廢水處理已有較多研究[2-3]。主要處理方法有化學(xué)沉淀法、離子交換法、折點(diǎn)加氯法、生物法和吸附法等。其中,生物法適用范圍廣、便于操作;吸附法工藝簡(jiǎn)單,且吸附劑種類多、成本低、多數(shù)能重復(fù)利用[4]。常用的吸附材料有沸石、膨潤(rùn)土、粉煤灰等。生物炭作為一種新型吸附材料,制備原料來(lái)源廣泛(如稻殼、玉米秸稈、牛糞、污泥等),具有較大的比表面積,吸附能力強(qiáng),國(guó)內(nèi)外應(yīng)用廣泛[5-6]。
與吸附法相比,生物法效率較低;以生物炭為氨氮吸附材料,存在吸附飽和后的再生問(wèn)題。因此,采用生物炭基微生物固定化體(以下簡(jiǎn)寫為固定化體),將生物炭的吸附性能與微生物的降解性能相結(jié)合,能更好去除水中氨氮[7]。另外,改性可提高生物炭的比表面積,增加生物炭表面官能團(tuán)數(shù)量,增強(qiáng)生物炭對(duì)氨氮的吸附去除能力[8-10]。YU等[11]研究發(fā)現(xiàn),改性核桃殼生物炭聯(lián)合施氏假單胞菌(Pseudomonasstutzeri)XL-2對(duì)氨氮的去除率高于純細(xì)菌和單獨(dú)生物炭吸附。然而,以改性生物炭為載體制備的固定化體,對(duì)低濃度氨氮廢水的處理效果如何,能否達(dá)標(biāo)排放,鮮見(jiàn)報(bào)道。
因此,本研究從污水處理廠污泥中篩選一株異養(yǎng)硝化菌,分別以未改性稻殼生物炭(BC)、NaOH和H2O2改性BC為載體,用吸附法制備固定化體,開展生物炭和固定化體對(duì)水中低質(zhì)量濃度氨氮(約10 mg/L)的去除動(dòng)力學(xué)研究。
1.1.1 富集、分離和純化
菌種來(lái)源為山西省晉中市某污水處理廠的濃縮池污泥。將2 mL污泥上清液接種至200 mL異養(yǎng)硝化培養(yǎng)基(氨氮初始質(zhì)量濃度10.00 mg/L)進(jìn)行富集培養(yǎng)(170 r/min、30 ℃)[12],每3天按1%(體積分?jǐn)?shù))接種量將培養(yǎng)基上清液再次接種至相同新鮮的異養(yǎng)硝化培養(yǎng)基中,連續(xù)轉(zhuǎn)接3次。然后,用平板涂布法和平板劃線法分離和純化,將分離的單菌落接種到斜面培養(yǎng)基上30 ℃培養(yǎng)48 h,即得到異養(yǎng)硝化菌菌株[13]。
1.1.2 生物化學(xué)和分子生物學(xué)鑒定
將分離純化的菌株接種至異養(yǎng)硝化培養(yǎng)基(氨氮初始質(zhì)量濃度9.43 mg/L),分別于0、12、16、24、48、72 h測(cè)定培養(yǎng)基中氨氮,再測(cè)定氨氮降解能力最強(qiáng)菌株培養(yǎng)體系中總氮、硝態(tài)氮和亞硝態(tài)氮。本研究共篩選3株菌(N1、N2、N3),通過(guò)其氨氮降解能力鑒定細(xì)菌的生物化學(xué)活性,選取氨氮降解能力最強(qiáng)的菌株進(jìn)行后續(xù)研究。
采用與喬鑫[14]相同的方法,進(jìn)行所選取菌株的分子生物學(xué)鑒定。將菌株序列通過(guò)BLAST檢索,與GenBank中的核酸序列進(jìn)行同源性比對(duì),利用MEGA-X軟件,以鄰接法構(gòu)建16S rDNA基因系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.2.1 生物炭
BC使用前過(guò)100目篩。分別用1 mol/L NaOH和10%(體積分?jǐn)?shù))H2O2制備改性BC,生物炭和改性液的比例始終為1 g∶50 mL[15],改性時(shí)間均為12 h。將改性BC過(guò)濾,用去離子水淋洗至pH穩(wěn)定,并烘干。NaOH和H2O2改性后的BC分別記為NaOH-BC和H2O2-BC。
生物炭的pH采用pH計(jì)(Mettler Toledo Delta 320)測(cè)定(炭水比例1 g∶15 mL);表面零電荷點(diǎn)(pHpzc)采用滴定法測(cè)定;電導(dǎo)率采用數(shù)顯電導(dǎo)率儀(雷磁DDS-307A)測(cè)定;酸堿性含氧官能團(tuán)數(shù)量采用Boehm滴定法測(cè)定。
1.2.2 固定化體
從斜面培養(yǎng)基上挑取篩選出的菌株接種于400 mL LB液體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)至600 nm處吸光度(OD600)為1.0(170 r/min、25 ℃),然后將培養(yǎng)基分裝至離心管中離心收集菌體,用無(wú)菌水洗滌兩次,最后懸于20 mL無(wú)菌水中,分別加入0.2 g BC、NaOH-BC或H2O2-BC,振蕩24 h(170 r/min、25 ℃),過(guò)濾,并用無(wú)菌水淋洗,由此得到固定化體,分別記為BC+N3、NaOH-BC+N3或H2O2-BC+N3。采用磷脂法測(cè)定BC、NaOH-BC和H2O2-BC的微生物吸附量(以磷計(jì)),磷脂在所有微生物細(xì)胞中均存在,是細(xì)胞膜的主要成分,且在細(xì)胞死亡后很快分解,是表示活菌總數(shù)的理想指標(biāo)[16]。
為探究生物炭和固定化體對(duì)水中低濃度氨氮的去除效果,分別將0.2 g生物炭和固定化體加入20 mL模擬氨氮廢水(具體配置參考文獻(xiàn)[17])中。170 r/min、25 ℃下培養(yǎng),定期采集水樣,0.45 μm濾膜過(guò)濾后測(cè)定氨氮濃度。
為探究固定化體對(duì)水中氨氮去除的動(dòng)力學(xué)規(guī)律,分別用準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程(見(jiàn)式(1))和準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程(見(jiàn)式(2))對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合。
Qt=Qe×(1-e-K1×t)
(1)
t/Qt=1/(K2×Qe2)+t/Qe
(2)
式中:t為時(shí)間,h;Qt為t時(shí)刻氨氮去除量,mg/g;Qe為平衡時(shí)氨氮去除量,mg/g;K1為準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)速率常數(shù),h-1;K2為準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)速率常數(shù),g/(mg·h)。
所有實(shí)驗(yàn)均設(shè)3個(gè)重復(fù),使用Excel 2010對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行平均值和標(biāo)準(zhǔn)偏差的計(jì)算,使用Origin 8.5進(jìn)行繪圖和方程擬合,使用Statistics 22進(jìn)行方差分析和多重比較。
由圖1(a)計(jì)算可得,培養(yǎng)72 h,菌株N1、N2、N3對(duì)氨氮的降解率分別為52.65%、64.18%、72.02%,菌株N3比N1、N2更能有效降解氨氮。菌株N3對(duì)總氮的降解率為51.47%,硝態(tài)氮和亞硝態(tài)氮濃度在培養(yǎng)過(guò)程中無(wú)明顯變化,均保持在較低水平,硝態(tài)氮、亞硝態(tài)氮最高分別為0.627、0.027 mg/L(見(jiàn)圖1(b))。選擇菌株N3為目標(biāo)菌株制備固定化體。
與GenBank中的核酸序列進(jìn)行同源性比對(duì),結(jié)果見(jiàn)圖2。該菌株與惡臭假單胞菌(DQ060242)、惡臭假單胞菌SNSK 589(MG584872)和惡臭假單胞菌(KC189961)的進(jìn)化距離較近,相似性分別為99.93%、99.86%和99.86%,從而確定菌株N3為惡臭假單胞菌,命名為惡臭假單胞菌N3(MN602471)。
由表1可見(jiàn),與BC相比,NaOH-BC的pH和pHpzc分別增大1.76和1.61,微生物吸附量增加129.77 nmol/g;H2O2-BC的pH和pHpzc分別減小1.66和1.73,微生物吸附量減少86.52 nmol/g。除內(nèi)酯基外,改性前后BC各含氧官能團(tuán)指標(biāo)均顯著變化。
由圖3(a)可見(jiàn),BC+N3和NaOH-BC+N3處理中,氨氮分別由最初的12.53、12.50 mg/L降至48 h時(shí)的1.39、1.37 mg/L,均低于GB 3838—2002中氨氮Ⅳ類限值(1.5 mg/L);H2O2-BC+N3處理中,氨氮由最初的14.03 mg/L降至48 h時(shí)的2.76 mg/L,高于Ⅳ類限值。0~<12 h時(shí),NaOH-BC+N3處理的氨氮明顯低于BC+N3,但12~48 h時(shí)兩個(gè)處理氨氮差別不大;0~<5、>12~48 h時(shí),H2O2-BC+N3處理的氨氮總體高于BC+N3,5~12 h時(shí)明顯低于BC+N3。
圖1 氨氮降解過(guò)程中總氮、氨氮、硝態(tài)氮和亞硝態(tài)氮的變化Fig.1 Changes of total nitrogen,ammonia nitrogen,nitrate nitrogen and nitrite nitrogen during ammonia nitrogen degradation
圖2 菌株N3的16S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.2 16S rDNA sequence phylogenetic tree of strain N3
表1 改性前后BC的基本性質(zhì)1)
由圖3(b)可見(jiàn),3種處理中,BC+N3、NaOH-BC+N3和H2O2-BC+N3處理的氨氮去除速率均在0~10 min快速增加到最大值,最大值分別為16.54、22.26、15.24 mg/(L·h);10 min后迅速降低,5~48 h趨于平緩。
生物炭對(duì)氨氮的吸附在8 h達(dá)到平衡??傮w上,培養(yǎng)初期,固定化體對(duì)氨氮的去除率低于生物炭,隨培養(yǎng)時(shí)間延長(zhǎng),固定化體對(duì)氨氮的去除率逐漸升高,并最終高于生物炭處理。培養(yǎng)12 h,BC+N3的氨氮去除率(85.66%)高于BC(49.30%);培養(yǎng)1 h,NaOH-BC+N3的氨氮去除率(45.09%)高于NaOH-BC(43.00%);培養(yǎng)5 h,H2O2-BC+N3的氨氮去除率(59.91%)高于H2O2-BC(37.06%)。培養(yǎng)48 h,BC+N3、NaOH-BC+N3和H2O2-BC+N3對(duì)氨氮的去除率(88.94%、89.08%、79.00%)均高于相應(yīng)生物炭(8 h時(shí)BC、NaOH-BC和H2O2-BC分別為49.30%、53.51%和36.57%);與改性前相比,改性固定化體更利于惡臭假單胞菌N3(MN602471)活性恢復(fù)與氨氮去除。
各處理的準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程的R2均大于準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)(見(jiàn)表2);根據(jù)準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程計(jì)算的Qe與實(shí)測(cè)值(BC+N3、NaOH-BC+N3和H2O2-BC+N3處理分別為1.11、1.11、1.13 mg/g)較接近。因此,準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程能更好描述固定化體對(duì)氨氮的去除過(guò)程。NaOH-BC+N3處理的準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程R2和K2均大于BC+N3、H2O2-BC+N3處理,表明NaOH改性固定化體對(duì)水中低濃度氨氮的去除能力最強(qiáng),去除速率最大。
圖3 固定化體去除氨氮過(guò)程中氨氮質(zhì)量濃度和去除速率的變化Fig.3 Changes of ammonia nitrogen mass concentration and removal rate during the removal of ammonia nitrogen by biochar-based microbial immobilization body
表2 固定化體去除水中氨氮的動(dòng)力學(xué)擬合參數(shù)
與BC相比,NaOH-BC的pH顯著升高,主要原因?yàn)楦男赃^(guò)程中NaOH中和了生物炭表面較多的酸性含氧官能團(tuán),使總酸性含氧官能團(tuán)顯著減少、總堿性含氧官能團(tuán)顯著增加;H2O2-BC的pH顯著降低,主要由于H2O2是一種強(qiáng)氧化性弱酸,可中和生物炭表面部分堿性含氧官能團(tuán),并使總酸性含氧官能團(tuán)顯著增加、總堿性含氧官能團(tuán)顯著減少。
與BC相比,NaOH-BC的pHpzc顯著增大,H2O2-BC的pHpzc顯著減小,主要由于NaOH改性顯著減少了生物炭表面羧基數(shù)量(比BC減少7.90%),而H2O2改性顯著增加了生物炭表面羧基數(shù)量(比BC增加12.61%),同時(shí)酸性含氧官能團(tuán)是pHpzc的主控因素[18]。生物炭的pHpzc是影響生物炭微生物吸附量的重要指標(biāo),主要由于其可改變生物炭和微生物之間的靜電引力。生物炭表面電荷的正負(fù)性與生物炭的pHpzc、溶液的pH有關(guān)[19]。NaOH-BC的pHpzc(8.74)大于模擬廢水pH(7.00),故其表面帶正電荷,而大多數(shù)細(xì)菌的pHpzc(3~4)小于模擬廢水pH,故細(xì)菌表面帶負(fù)電荷,因此細(xì)菌在靜電引力作用下易附著在NaOH-BC上。然而,H2O2-BC的pHpzc(5.40)小于模擬廢水pH,故其表面帶負(fù)電荷,與帶負(fù)電荷的微生物之間的靜電斥力不利于吸附微生物。另外,H2O2-BC表面較多的酸性含氧官能團(tuán)對(duì)微生物活性有一定抑制作用[20]。因此,NaOH-BC的微生物吸附量顯著大于H2O2-BC。
固定化體去除氨氮的過(guò)程可分為氨氮迅速降低和趨于平緩兩個(gè)階段。在培養(yǎng)初期,生物炭吸附起主要作用,生物炭將氨氮吸附到其表面或孔隙中,氨氮濃度在短時(shí)間內(nèi)急劇降低;隨著培養(yǎng)的進(jìn)行,微生物降解發(fā)揮作用,異養(yǎng)硝化菌與生物炭吸附的氨氮直接接觸,并利用廢水中的碳源降解氨氮,使氨氮濃度逐漸降低。吸附與降解的協(xié)同作用使廢水中的氨氮濃度達(dá)到平衡,這一過(guò)程符合WANG等[21]提出的固定化細(xì)菌吸附協(xié)同生物降解假說(shuō)模型。
BC+N3、NaOH-BC+N3和H2O2-BC+N3對(duì)氨氮的去除率分別在12、1、5 h后才分別高于相應(yīng)生物炭處理,表明與生物炭吸附相比,培養(yǎng)初期固定化體對(duì)氨氮的去除率較低,其原因可能為生物炭固定的惡臭假單胞菌N3對(duì)氨氮起降解作用需要一定的時(shí)間。固定化體的氨氮去除率(48 h)遠(yuǎn)高于生物炭吸附平衡時(shí)(8 h)的氨氮去除率,表明固定化體的吸附協(xié)同生物降解作用比生物炭的吸附作用更高效、徹底[22]。與BC+N3相比,NaOH-BC+N3和H2O2-BC+N3處理的氨氮去除率超過(guò)相應(yīng)生物炭處理所需時(shí)間較短,表明以改性生物炭為載體制備的固定化體更利于微生物發(fā)揮其降解作用,尤其是NaOH改性固定化體。其主要原因:(1)NaOH對(duì)生物炭有一定清洗作用,可清洗生物炭表面和孔隙中堵塞的灰分,增加生物炭比表面積,從而利于吸附固定微生物[23]。與BC和H2O2-BC相比,NaOH-BC的微生物吸附量最高(423.31 nmol/g),而氨氧化微生物是氨氮去除的主要參與者[24]。(2)與BC和H2O2-BC相比,NaOH-BC的pH最高(9.74),由于氨氧化過(guò)程會(huì)消耗堿度,投加NaOH-BC可補(bǔ)充水中堿度,進(jìn)而促進(jìn)氨氧化作用,提高氨氮去除率[25]。
固定化體對(duì)氨氮的去除過(guò)程更符合準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)。固定化體對(duì)氨氮的去除由多個(gè)過(guò)程控制。生物炭表面豐富的官能團(tuán)和內(nèi)部孔隙結(jié)構(gòu),對(duì)氨氮吸附均有貢獻(xiàn)。在氨氮從水相向生物炭遷移過(guò)程中,經(jīng)歷了水膜擴(kuò)散、生物炭顆粒表面擴(kuò)散和顆粒內(nèi)部微孔擴(kuò)散等多個(gè)過(guò)程;氨氮被生物炭吸附后,負(fù)載在生物炭上的微生物以氨氮為氮源,在酶促作用下將其分解[26]。
(1) 從污水處理廠濃縮池污泥中篩選一株異養(yǎng)硝化菌,經(jīng)分子生物學(xué)鑒定為惡臭假單胞菌,其對(duì)氨氮的72 h降解率為72.02%。
(2) 與BC相比,NaOH-BC的pH和pHpzc分別增大1.76和1.61,微生物吸附量增加129.77 nmol/g;H2O2-BC的pH和pHpzc分別減小1.66和1.73,微生物吸附量減少86.52 nmol/g。
(3) 培養(yǎng)48 h,固定化體對(duì)氨氮的去除率均高于相應(yīng)生物炭;與改性前相比,改性固定化體更利于惡臭假單胞菌N3(MN602471)活性恢復(fù)與氨氮去除。
(4) 固定化體的氨氮去除過(guò)程更符合準(zhǔn)二級(jí)動(dòng)力學(xué)方程;NaOH-BC+N3對(duì)水中低濃度氨氮的去除能力優(yōu)于BC+N3和H2O2-BC+N3。