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      從江香豬miR-143-3P 克隆及組織表達(dá)

      2021-05-17 08:12:08吳巧群許厚強(qiáng)崔小芝楊麗紅諶穎蓮
      中國(guó)畜牧雜志 2021年5期
      關(guān)鍵詞:從江貴州大學(xué)測(cè)序

      吳巧群,許厚強(qiáng),崔小芝,楊麗紅,諶穎蓮

      (1.貴州大學(xué)高原山地動(dòng)物遺傳育種與繁殖教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽(yáng) 550025;2.貴州大學(xué)貴州省動(dòng)物遺傳育種與繁殖重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽(yáng) 550025;3.貴州大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽(yáng) 550025;4.貴州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽(yáng) 550025;5.貴州大學(xué)醫(yī)學(xué)院,貴州貴陽(yáng) 550025)

      MicroRNAs(miRNA)是由20~25 個(gè)核苷酸組成的非編碼RNA 小分子,其通過與靶mRNA 的3'-UTR端區(qū)域結(jié)合來抑制目的基因的翻譯或降解目的基因[1],從而參與動(dòng)物、植物、病毒、細(xì)菌[2-5]中多種生理或病理過程的調(diào)控。隨著對(duì)miRNA 的深入了解,牛[6]、羊[7]、豬[8]等家畜也不斷被作為研究對(duì)象,目前miRNA 在豬方面的研究主要集中在對(duì)脂肪、肌肉、生殖系統(tǒng)以及疾病的發(fā)生發(fā)展方面,但當(dāng)中的具體調(diào)控機(jī)制還有待研究。對(duì)miRNA 的研究方法主要通過高通量測(cè)序、微陣列芯片、RT-qPCR 等技術(shù)來提高檢測(cè)的特異性與靈敏度[9],雖然軟件的預(yù)測(cè)準(zhǔn)確性不斷提高,可仍需要實(shí)驗(yàn)手段才能得以驗(yàn)證。從江香豬屬于地方型豬種,具有肉質(zhì)細(xì)嫩、抗病性強(qiáng)、基因純合度高等特點(diǎn),但該豬種體型矮小,生長(zhǎng)緩慢[10]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),PRKAA1基因在從江香豬各組織中均有表達(dá)且在肺組織的表達(dá)量最高[11]。吳小敏通過在線軟件篩選出PRKAA1基因相關(guān)的2 條LncRNAs,分別是ALNCI 和ALNC2,并通過構(gòu)建相應(yīng)真核表達(dá)載體干擾、熒光定量PCR 以及檢測(cè)蛋白等證實(shí)這2 個(gè)LncRNAs 可促進(jìn)脂肪形成和脂肪前體細(xì)胞分化[12]。因此,本實(shí)驗(yàn)以PRKAA1基因?yàn)檠芯勘尘?,篩選相應(yīng)miRNAs,研究篩選出的miRNA 對(duì)從江香豬生物機(jī)制的調(diào)控。為了研究差異表達(dá)miRNAs 的生物學(xué)功能,本實(shí)驗(yàn)篩選出多個(gè)miRNAs 后,選取表達(dá)量相對(duì)較高的miRNA-143-3P 為研究對(duì)象,了解該miRNA 在從江香豬組織中的表達(dá)規(guī)律,為后期研究miR-143-3P對(duì)從江香豬生長(zhǎng)和生物功能的調(diào)控機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 實(shí)驗(yàn)材料 在貴州大學(xué)種豬場(chǎng)采集2 月齡從江香豬的胃、大腸、舌、腦、腎、肝、肺、脾、小腸各組織樣30 g,分裝放入液氮中,隨后將其轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱中保存。

      1.1.2 主要儀器與試劑 普通PCR 儀(Bio-Rad)、CFX-96熒光定量PCR 儀(Bio-Rad);DH5α感受態(tài)細(xì)胞由貴州大學(xué)高原山地動(dòng)物遺傳育種與繁殖教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。pMD-19-T 載體購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自美國(guó)Thermo Fisher 公司;2×EsTaq Master Mix 購(gòu)自康為世紀(jì)生物科技有限公司;DM 2000 Marker 購(gòu)自擎科生物技術(shù)有限公司;Trizol 試劑購(gòu)自英駿生物技術(shù)有限公司;氯仿、異丙醇、無水乙醇、75%的酒精購(gòu)自宏達(dá)爾生物科技有限公司;超微量紫外分光光度計(jì)購(gòu)自美國(guó)Thermo Scientific 公司。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 miR-143-3P 的預(yù)測(cè) 根據(jù)NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中豬的PRKAA1基因(登錄號(hào):XM-0210 76522)3'-UTR 端序列,利用R 軟件(http://cran.r-project.org)編寫SWChen 2.3 程序以Simth-Waterman 算法預(yù)測(cè)出候選的miRNAs,將預(yù)測(cè)的結(jié)果與高通量測(cè)序的部分結(jié)果運(yùn)用在線軟件Venny2.1 做韋恩圖取三者交集,選出表達(dá)量相對(duì)較高的miRNAs。

      1.2.2 引物設(shè)計(jì) 從NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中查找豬的miR-143-3P 序列(登錄號(hào):NR_038529.1),采用莖環(huán)法設(shè)計(jì)引物選取特異性莖環(huán)用于逆轉(zhuǎn)錄,以GAPDH作為內(nèi)參基因,引物合成均由生工生物工程股份有限公司完成。具體引物序列見表1。

      表1 引物序列

      1.2.3 從江香豬miR-143-3P 序列克隆 根據(jù)Trizol 試劑盒說明書提取從江香豬胃、大腸、舌、腦、肺、腎、肝、脾、小腸組織的總RNA,將各樣本RNA 進(jìn)行濃度測(cè)定。根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明,反應(yīng)體系為20 μL。第一步,在無酶的PCR 管中加入1 μL 的DNA 酶,10×RT Buffer 1 μL,各RNA 樣與水共加8 μL,共10 μL,放入PCR儀中37℃ 2 min,55℃ 5 min。第二步,加入莖環(huán)引物1 μL,內(nèi)參下游1 μL,dNTP Μixture 1 μL,再加水2 μL,65℃ 5 min。第三步,加入5×RT Buffer 4 μL,逆轉(zhuǎn)錄酶加1 μL,25℃ 10 min,50℃ 30 min,85℃ 5 min。以脾臟的cDNA 為模板進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。反應(yīng)體系為20 μL:cDNA 模板1 μL,上下游引物各1 μL(10 mmoL),2×EsTaq Μaster Μix 10 μL,加水7 μL。PCR 反應(yīng)條件:預(yù)變性95℃ 5 min,變性95℃ 30 s,退火59℃ 30 s,25 個(gè)循環(huán),延伸72℃ 5 min。產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳,與maker 比對(duì),將與目的條帶相近的部分進(jìn)行膠回收,再與pMD-19-T 載體連接,并轉(zhuǎn)化到DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,在氨芐板中挑選出陽(yáng)性菌落,送至生工生物工程股份有限公司測(cè)序。

      1.2.4 miR-143-3p 序列保守性分析 利用MegAlign 軟件將miR-143-3P 的成熟序列與人(Homo sapiens,hsa)、豬(Sus scrofa,sus)、山羊(Capra hircus,chi)、小鼠(Mus muscμLus,mmu)、鯉魚(Cyprinus carpio,ccr)、馬(Equus caballus,eca)、雞(Gallus gallus,gga)、牛(Bos taurus,bta)的前體序列進(jìn)行同源性分析。

      1.2.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 將逆轉(zhuǎn)錄各組織的cDNAs 進(jìn)行Real-time qPCR 反應(yīng),反應(yīng)體系為10 μL:2×ΜLtra SYBR Mixture(High ROX)5 μL,上下游引物各1.5 μL(10 mmoL)、cDNA 1 μL、水1 μL;反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3 min,95℃變性30 s,59℃退火45 s,40 個(gè)循環(huán);每個(gè)樣品都有3 個(gè)重復(fù),檢測(cè)結(jié)果運(yùn)用2-ΔΔCt公式計(jì)算,用SPSS19.0 軟件分析,當(dāng)P<0.05 時(shí)表示差異顯著,P<0.01 時(shí)表示差異極顯著。

      2 結(jié)果

      2.1 靶基因的預(yù)測(cè) 利用R 軟件編寫SWChen 2.3 程序以PRKAA1 基因3'-UTR 端篩選出的miRNAs 選取803個(gè),再以miRNA 的種子區(qū)篩選出825 個(gè),選取高通量測(cè)序部分結(jié)果中的40 個(gè),利用Draw Venn Diagram 在線(http://bioinformatics.psb.ugent.be)軟件選取三者(圖1)共有的8 個(gè)miRNAs,其中包含有miR-143-3P。

      圖1 以PRKAA1 的3'-UTR 預(yù)測(cè)的miRNAs 交集結(jié)果

      2.2 從江香豬miR-143-3P 的克隆及保守性分析 以從江香豬脾臟的cDNA 為模板進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,成功克隆出從江香豬miR-143-3P 序列,擴(kuò)增總長(zhǎng)度為88 bp(圖2),測(cè)序結(jié)果比對(duì)也完全一致(圖3),其中miR-143-3P 的序列長(zhǎng)度為21 bp。

      圖2 從江香豬miR-143-3P 克隆菌液PCR 結(jié)果

      MegAlign 軟件對(duì)從江香豬miR-143-3P 成熟序列與不同物種間的同源性分析結(jié)果如圖4 所示,從江香豬中miR-143-3P 的成熟序列與山羊、牛、人、鯉魚、豬、馬、雞、小鼠前體miRNA-143 的序列相似性都是100%。

      2.3 miR-143-3P 在從江香豬各組織中的表達(dá)差異 由圖5可知,熔解曲線峰值單一,表明實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)可用。檢測(cè)結(jié)果(圖6)顯示,miR-143-3P 在從江香豬各組織中均有表達(dá),其中在肝中表達(dá)量最高,在舌組織中表達(dá)量最低;在肝、胃、脾、肺、小腸中表達(dá)量均極顯著高于大腸、舌、腦、腎(P<0.01);在肺和小腸中表達(dá)差異不顯著(P>0.05);在舌、腦、腎之間的表達(dá)量差異不顯著(P>0.05)。

      3 討 論

      圖3 從江香豬miR-143-3P 測(cè)序結(jié)果圖

      圖4 miR-143-3P 成熟序列與不同物種miRNA-143 的前體序列比對(duì)

      近年來,越來越多的研究表明miRNA 參與動(dòng)物的基本生理功能,例如在冷應(yīng)激下,大鼠肝臟中的miRNA-383、miRNA-92a 表達(dá)有極顯著升高[13],在奶牛熱應(yīng)激中miRNA-19a 與miRNA-19b 都參與了調(diào)控[14];miRNA 還參與了豬生殖器官的發(fā)育,如Wright 等[15]證實(shí)了miRNA-21 表達(dá)會(huì)影響卵母細(xì)胞的成熟率;miRNA 還參與了絨山羊絨毛的生長(zhǎng),在絨毛生長(zhǎng)的不同時(shí)期,miRNA-1298-5P 具有差異性表達(dá),還可通過負(fù)調(diào)控TGF-βRI基因?qū)q山羊絨毛的生長(zhǎng)起調(diào)節(jié)作用,促進(jìn)絨毛生長(zhǎng)[16]。這些都體現(xiàn)出miRNA 在動(dòng)物機(jī)體中參與的調(diào)控較多,起重要作用。從江香豬的肌內(nèi)脂肪含量高于大白豬[17],肌內(nèi)脂肪含量又是影響肉質(zhì)品質(zhì)的重要因素,有研究表明miRNA 能夠調(diào)控豬脂肪代謝[18],由此推測(cè)miRNA 可能參與從江香豬生長(zhǎng)發(fā)育的調(diào)控。

      研究動(dòng)物的miRNA 靶基因預(yù)測(cè)軟件較多,有TargeScan、RNAhybrid、MiRBase、miRTarBase、miRWalk 等,但這些軟件也可通過某個(gè)具體基因來預(yù)測(cè)相應(yīng)的miRNAs,預(yù)測(cè)機(jī)制各有不同,有通過基因的3'-UTR 與軟件數(shù)據(jù)庫(kù)中miRNAs 靶向結(jié)合來預(yù)測(cè)[19],也有通過基因與miRNA 之間形成二聚體來預(yù)測(cè)基因的miRNAs[20]。這些軟件預(yù)測(cè)的結(jié)果都存在著假陽(yáng)性,應(yīng)結(jié)合多個(gè)軟件預(yù)測(cè),取交集選用共有的miRNAs 或靶基因來減少假陽(yáng)性。

      miR-143 為廣泛性表達(dá)的基因,該miRNA 與肉品質(zhì)以及代謝多方面的調(diào)控作用存在密切聯(lián)系,所以一直都是研究熱點(diǎn)。為了解miR-143-3P 在從江香豬的表達(dá)規(guī)律,本實(shí)驗(yàn)以從江香豬中脾臟的cDNA 為模板成功克隆出miRNA-143-3P 的成熟序列,比對(duì)分析發(fā)現(xiàn)其與人、豬、鼠、牛、馬、鯉魚、雞、山羊的前體序列完全一致,這說明miR-143-3p 序列在各物種間為高度保守,與高玲玲[21]研究has-miR-143、趙冉[22]研究廣西巴馬小型豬miR-143-5p 的保守性一致,這提示了該基因在生物學(xué)功能的相似性和重要性。本實(shí)驗(yàn)利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR 檢測(cè)時(shí)發(fā)現(xiàn),該基因在從江香豬的9 個(gè)組織中均有表達(dá),且表達(dá)水平存在差異,其中在肝、脾、胃中的表達(dá)高于其他組織。miR-143-3P 在從江香豬各組織的表達(dá)水平與李東偉[23]、張曉東[24]等人分別在牛、白山羊中的研究結(jié)果不同,以往研究顯示在肝臟中的表達(dá)量較低,在脾臟與胃的表達(dá)量豐富;與云青[25]在長(zhǎng)白豬的研究存在差異,該研究中的miRNA-143-3P 在心臟表達(dá)水平高,其次是肝臟,而在脾臟中的表達(dá)量較低。進(jìn)一步證實(shí)了miRNA 的表達(dá)水平在不同物種、不同品種動(dòng)物中的同一組織存在較大差異[26],導(dǎo)致這樣結(jié)果的原因可能與各器官在不同品種中的功能性強(qiáng)弱有關(guān)。這也提示了miRNA-143-3P 可能在從江香豬肝臟中的發(fā)育及功能發(fā)揮中起重要作用。

      4 結(jié) 論

      本實(shí)驗(yàn)通過PRKAA1基因3'-UTR 成功篩選出相關(guān)miR-143-3P,以從江香豬的脾cDNA 為模板成功克隆出miR-143-3P 序列,實(shí)時(shí)熒光定量PCR 檢測(cè)出該miRNA 在各組織中均有表達(dá),且在肝中的表達(dá)量最高,其次是胃與脾;對(duì)miR-143-3P 進(jìn)行生物信息學(xué)分析,結(jié)果顯示miRNA 具有較高的保守性。

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