李曉崗,張 雪,俞 捷,王希付,代紅洋,陳嘉偉,許均博,曹冠華,2*,賀 森,2*
1.云南中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院暨云南省南藥可持續(xù)利用重點實驗室,云南 昆明 650500
2.云南中醫(yī)藥大學(xué) 云南省傣醫(yī)藥與彝醫(yī)藥重點實驗室,云南 昆明 650500
多糖即多聚糖,廣泛存在于藥用植物中,如百合科、蘭科、五加科、茄科、唇形科、菊科等高等植物。作為中藥的重要質(zhì)量標志物(quality marker,Q-Markers),在組織分布中,藥用植物的果實、根、莖和花中均存在多糖及其衍生物[1]。多糖結(jié)構(gòu)較為復(fù)雜,一級結(jié)構(gòu)主要由主鏈和支鏈組合而成,而主鏈的基本結(jié)構(gòu)通常是葡聚糖、果聚糖、木聚糖、甘露聚糖、半乳聚糖等,或者是2 種及以上單糖的聚合物,支鏈則更為復(fù)雜多樣,故形成了多糖的復(fù)雜多樣性[2]。根據(jù)多糖異頭碳構(gòu)型,多糖可以分為α、β 構(gòu)型,研究表明,能夠在人體內(nèi)發(fā)揮藥理活性的主要為β-多糖[3]。多糖在植物體中扮演著重要的角色,在能量儲存、結(jié)構(gòu)支撐、信息存儲與識別、生理調(diào)節(jié)與免疫調(diào)控等方面發(fā)揮著重要作用。研究顯示,植物多糖具有抗氧化、抗腫瘤、抗衰老、免疫調(diào)節(jié)、降血糖、調(diào)血脂等藥理作用[4]。
目前對植物多糖的研究主要集中在多糖提取工藝、結(jié)構(gòu)解析、藥理等方面,而對多糖生物合成通路研究相對較少,主要集中在關(guān)鍵酶基因的克隆、表達特性及功能鑒定方面,對多糖結(jié)構(gòu)修飾、調(diào)控機制的研究尚處于起步階段。本文對藥用植物多糖合成通路及關(guān)鍵酶的研究進展進行了綜述,解析了植物多糖生物合成分子機制,不僅有益于了解藥用植物多糖的代謝通路,還可為多糖關(guān)鍵酶的研究提供理論參考。
多糖的基本結(jié)構(gòu)單元為單糖,單糖與單糖之間通過糖苷鍵相連接,形成線性或者分支的聚糖結(jié)構(gòu)。單糖的組成、比例及聚合形式?jīng)Q定了多糖的多樣性。即使是同科屬植物,其多糖中單糖的組成與比例也存在一定的差異,使植物多糖的質(zhì)量控制與品質(zhì)鑒定產(chǎn)生很大區(qū)別?!癚-Markers”一詞的提出,掀起了藥用植物多糖的研究熱潮,多糖定性、定量成為其質(zhì)量研究的重要方式。本文列舉了部分以多糖為主要Q-Markers 的藥用植物多糖分布部位、單糖組成和常見的藥理作用,見表1。
表1 部分藥用植物Q-Markers 多糖分布部位、單糖組成及藥理作用Table 1 Distribution, monosaccharide composition and pharmacological effects of quality markers polysaccharides of some medicinal plants
盡管植物多糖的結(jié)構(gòu)千變?nèi)f化,但合成通路基本保持一致。通過總結(jié)已發(fā)表的文獻,發(fā)現(xiàn)植物多糖生物合成途徑主要包括3 個步驟:第1 步為蔗糖經(jīng)過一系列轉(zhuǎn)化生成尿苷二磷酸葡萄糖(uridine diphosphate,UDP)-葡萄糖、鳥苷二磷酸甘露糖(guanosine diphosphate,GDP)-甘露糖和鳥苷二磷酸巖藻糖(guanosine diphosphate fucose,GDP)-巖藻糖;第2 步為UDP-葡萄糖轉(zhuǎn)化為其他 NDP 單糖;最后通過不同的糖基轉(zhuǎn)移酶(glycosyl transferases,GTs)將單糖從糖核苷酸供體結(jié)合到生長中的多糖聚合物中,隨后這些重復(fù)單元被聚合和輸出,形成植物多糖(圖1)[18-20]。UDP-葡萄糖是多糖合成途徑中其他NDP 單糖合成的基礎(chǔ),在整個合成的過程中起著至關(guān)重要的作用。
圖1 藥用植物多糖生物合成通路Fig.1 Biosynthetic pathway diagram of medicinal plant polysaccharides
藥用植物體內(nèi)蔗糖主要通過光合作用形成。UDP-葡萄糖與果糖-6 磷酸酯在蔗糖磷酸合成酶(sucrose phosphate synthase,SPS)作用下合成蔗糖磷酸酯,再經(jīng)過蔗糖磷酸酯酶(sucrose phosphate phoshatase,SPP)催化生成蔗糖或由游離果糖與UDP-葡萄糖在SPS 催化下直接生成蔗糖。在多糖生物合成過程中,蔗糖轉(zhuǎn)化部分包括3 個不同方向:一個方向為在蔗糖合成酶(sucrose synthase,SUS)的作用下直接生成UDP-葡萄糖;另一個方向為蔗糖由轉(zhuǎn)化酶(invertase,INV)催化生成葡萄糖,經(jīng)己糖激酶(hexokinase,HK)催化生成6-磷酸 葡 萄 糖 , 在 磷 酸 葡 萄 糖 變 位 酶(phosphoglucomutase,PGM)的作用下生成1-磷酸葡萄糖,再經(jīng)UDP-葡萄糖焦磷酸化酶(UDPglucose pyrophosphorylase,UGPase)生成UDP-葡萄糖;第3 個方向為蔗糖由SUS 催化生成果糖,經(jīng)果糖激酶(fructokinase,F(xiàn)RK)轉(zhuǎn)化為6-磷酸果糖,再由葡萄糖-6-磷酸異構(gòu)酶(glucose-6- phosphate isomerase,GPI)轉(zhuǎn)化為6-磷酸葡萄糖,然后在PGM 的作用下轉(zhuǎn)化為1-磷酸葡萄糖,最后由UGPase 轉(zhuǎn)化生成UDP-葡萄糖[21]。
此外,由蔗糖到GDP-甘露糖和GDP-巖藻糖的生物合成途徑亦基本清楚。首先,由SUS 催化蔗糖生成果糖,再經(jīng)HK 轉(zhuǎn)化生成6-磷酸果糖。而后6-磷酸果糖經(jīng)甘露糖-6-磷酸異構(gòu)酶(mannose-6- phosphate isomerase,MPI)催化生成6-磷酸甘露糖,再由磷酸甘露糖突變酶( phosphomannose isomerase,PMM)轉(zhuǎn)化為1-磷酸甘露糖,最后在GDP- 甘露糖焦磷酸化酶( GDP-mannose pyrophosphorylase,GMPP)的作用下形成GDP-甘露糖。研究發(fā)現(xiàn),GDP-甘露糖可以通過2 個步驟形成GDP-巖藻糖,首先在GDP-D-甘露糖-4,6-脫水酶(GDP-D-mannose-4,6-dehydratase,GMD)的作用下將GDP-D-甘露糖轉(zhuǎn)化為GDP-4-酮-6-脫氧甘露糖,隨之由GDP-4-酮-6-脫氧甘露糖-3,5-表觀酶-4-還原酶(GDP-4-keto-6-deoxy-D-mannose-3,5- epimerase-4-reductase,GER1)催化形成GDP-巖藻糖[22]。值得注意的是,GDP-甘露糖也可以作為合成UDP-鼠李糖、UDP-巖藻糖、UDP-半乳糖、UDP-木糖等的前體物質(zhì)[23]。
2.2.1 UDP-半乳糖合成途徑 在UDP-葡萄糖-4-差向異構(gòu)酶(UDP-glucose-4-epimerase,UGE)作用下,UDP-葡萄糖直接轉(zhuǎn)化生成UDP-半乳糖。而UDP 半乳糖又可經(jīng)過半乳糖脫氫酶(UDP-D-galactose dehydrogenase,UGD)催化生成尿苷二磷酸半乳糖醛酸,形成另一分支[24]。
2.2.2 UDP-阿拉伯糖合成途徑 UDP-葡萄糖經(jīng)葡萄糖脫氫酶(UDP-glucose dehydrogenase,UGDH)催化作用生成UDP-葡萄糖醛酸之后再由UDP-木糖合酶(UDP-D-xylose synthase,UXS)作用下生成UDP-D-木糖,隨后繼續(xù)由UDP-D-木糖差向異構(gòu)酶(UDP-D-xylosel-4-epimeras,UXE)和阿拉伯吡喃糖變位酶(UDP-arabinopyranose mutase,UAM)催化生成UDP-L-阿拉伯呋喃糖,并可進一步催化為UDP-L-阿拉伯吡喃糖。在該過程中,UDP-葡萄糖醛酸也可經(jīng)木糖合成酶(UDP-D-apiose/UDP-D-Xylose synthase,AXS)催化生成UDP-D-芹菜糖。此外,由于UDP-葡萄糖醛酸和UDP-半乳糖醛酸之間能夠通過UDP-葡萄糖醛酸異構(gòu)酶(UDP-glucose A-4- epimerase,GAE)相互轉(zhuǎn)化[25],故進一步增加了多糖構(gòu)成的復(fù)雜性。
2.2.3 UDP-鼠李糖合成途徑 以UDP-葡萄糖為底物,NAD+和NADPH 為輔因子,分3 步反應(yīng)催化UDP-鼠李糖[26],首先經(jīng)鼠李糖合成酶(UDP-rhamnose synthase,RHM)催化生成UDP-葡萄糖-4-酮-6-脫氧葡萄糖,再由RHM 催化生成UDP-4-酮-6-脫氧鼠李糖,最后在RHM 催化下形成UDP-鼠李糖。
目前植物體內(nèi)已知NDP 單糖有尿苷二磷酸單糖、鳥苷二磷酸單糖、胞苷二磷酸單糖等[27]。在天然產(chǎn)物生物合成的關(guān)鍵時刻,植物細胞質(zhì)內(nèi)形成UDP 單糖以及GDP 單糖之后,被核苷酸糖轉(zhuǎn)運蛋白轉(zhuǎn)運到高爾基體,在GTs 的作用下將這些單糖殘基從活性核苷酸糖轉(zhuǎn)移到延伸的多糖鏈上脫水、縮合從而形成多聚糖,并通過分泌囊泡的形式輸送到不同部位進行積累[28-29]。
酶在多糖的合成途徑中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用,根據(jù)多糖合成通路步驟可將關(guān)鍵酶對應(yīng)的分成3 個部分:第1 部分主要包括SUS、SPS、INV、HK、FRK、UGPase、MPI、PMM、GMPP;第2 部分主要包括UGE、UGDH、URHM;最后一部分主要是GTs,其主要作用見表2。
表2 植物多糖合成主要關(guān)鍵酶及其作用Table 2 Main key enzymes in synthesis of plant polysaccharides and their functions
SUS 是植物體內(nèi)參與蔗糖代謝的關(guān)鍵酶之一,在調(diào)控多糖合成中起到關(guān)鍵作用。SUS 能夠催化蔗糖可逆裂解為果糖和UDP-葡萄糖或腺苷二磷酸葡萄糖[30]。植物SUS 多肽鏈由N 端的細胞靶向結(jié)構(gòu)域(cellular targeting domain,CTD),早期結(jié)瘤素(early nodulin,ENOD)40 多肽結(jié)合結(jié)構(gòu)域,典型的糖基轉(zhuǎn)移酶折疊結(jié)構(gòu)(GT-B)和C 末端組成[31]。目前已從8 種藥用植物中克隆出了蔗糖合成酶基因,其開放閱讀框約為2400 bp,相對分子質(zhì)量約為92 000,所編碼的氨基酸序列為737~815 aa,部分生物學(xué)信息見表3。Zhang 等[32]從甘草中分別克隆出了GuSUS1、GuSUS2,結(jié)合UDP 葡萄糖含量變化,說明兩條基因編碼的酶對蔗糖的裂解有催化作用,并且不同生長時期2 個基因的表達量存有差異。張園等[33]對鐵皮石斛幼苗及二年生植株進行SUS家族基因克隆,發(fā)現(xiàn)SUS 的結(jié)構(gòu)和功能并未改變;二年生鐵皮石斛SUS 基因表達量存在組織差異性,相對豐度為莖>葉>根。SUS 穩(wěn)定性一直是該基因的關(guān)注點,對其進行穩(wěn)定性進行分析,發(fā)現(xiàn)藥用植物SUS 穩(wěn)定性遠低于細菌SUS,原因可能是因為細菌N-端截斷所引起的[32],這為藥用植物SUS 的應(yīng)用提供了良好的思路。
蔗糖磷酸合成酶被證明是多糖合成途徑的第一個限速酶,在光合作用產(chǎn)物向蔗糖和淀粉的分配中起到關(guān)鍵調(diào)控作用[74]。目前已從5 種藥用植物中克隆獲得了SPS 基因,其開放閱讀框約為3100 bp,所編碼的氨基酸序列長度在758~1061 aa,相對分子質(zhì)量約為110 000,見表3。王麗君等[40]從寧夏枸杞中獲得了1 個SPS 基因(LbSPS),qRT-PCR 結(jié)果顯示,該基因在枸杞花中表達量最高,葉中表達水平較低。Aleman 等[44]對紫花苜蓿中SPS 基因進行了克隆及表達分析,發(fā)現(xiàn)MsSPSA表達增強在根瘤碳氮代謝中發(fā)揮著重要的作用。
INV 又稱為β-呋喃果糖苷酶,在藥用植物中起到催化蔗糖降解為果糖和葡萄糖的作用,并參與細胞的滲透調(diào)節(jié)和貯藏器官中糖分的積累[75],為下游合成多糖提供底物,因此INV 是植物體內(nèi)多糖合成的關(guān)鍵酶之一。目前已從5 種藥用植物中克隆獲得了INV基因,其開放閱讀框約為1900 bp,所編碼的氨基酸長度介于455~714 aa,相對分子質(zhì)量約為70 000。INV 不可或缺的的保守結(jié)構(gòu)域有NDPNG、RDP、WECVD[76],相關(guān)生物學(xué)信息見表3。苗小榮等[48]從鐵皮石斛中克隆出DoNI2基因,qRT-PCR 結(jié)果發(fā)現(xiàn)DoNI2基因在鐵皮石斛根、莖和葉中均有表達,在莖中表達量最高,根中最低;且不同生長年限根莖中DoNI2基因表達量與INV 酶活性呈顯著正相關(guān)。Huang 等[77]研究表明通過Cu 脅迫中藥羊蹄,發(fā)現(xiàn)根部酸性轉(zhuǎn)化酶基因表達量與非脅迫條件下相比存在顯著差異,且酸性轉(zhuǎn)化酶活性與重金屬耐性存在著一定關(guān)系。
HK 和FRK 是植物體內(nèi)催化果糖磷酸化的2個關(guān)鍵酶。HK 和FRK 在植物體是調(diào)節(jié)控制植物生長和發(fā)育的信號分子[78-79],是植物體內(nèi)不可或缺的雙功能酶[80],參與糖的信號傳導(dǎo),它對糖的調(diào)控貫穿了整個生長發(fā)育的過程,對植物體內(nèi)許多基因的表達起到激活或阻遏的作用。目前報道的藥用植物HK 共有4 種,多數(shù)HK基因含有9 個外顯子,開放閱讀框約為1490 bp,共編碼494~498 aa,相對分子質(zhì)量在53 000 左右,相對穩(wěn)定。關(guān)于FRK,目前已從枸杞、龍眼、琵琶克隆獲得,其放閱讀框在1000~2000 bp,共編碼180~569 aa 氨基酸,相對分子質(zhì)量約為36 000。部分生物學(xué)信息見表3。
Niu 等[12]對不同磷水平處理下的滇黃精進行了HiSeq2500 轉(zhuǎn)錄組測序,共篩選出20 種與黃精多糖生物合成相關(guān)的基因,其中黃精多糖含量與HK 基因的表達呈負相關(guān)。趙建華等[54]從枸杞中克隆獲得了果糖激酶基因LbFRK7,發(fā)現(xiàn)LbFRK7在不同組織中均有表達,果實中的表達量最高,根中最低;隨著果實的發(fā)育,果實中LbFRK7基因的表達量呈先升后降的變化趨勢,這與果糖的磷酸化和積累密切相關(guān)。這些結(jié)果表明HK 和FRK 對藥用植物多糖合成與積累發(fā)揮著重要作用。
UGPase 是植物、動物和真菌體內(nèi)葡萄糖代謝的關(guān)鍵酶,能夠催化1-磷酸葡萄糖與尿苷三磷酸反應(yīng)生成UDP-葡萄糖和焦磷酸鹽,從而為藥用植物合成纖維素、半纖維素、果膠、糖脂、糖蛋白等提供前體物質(zhì),因此也是多糖合成途徑關(guān)鍵酶之一[81]。目前共從4種藥用植物中克隆獲得了UGPase基因,開放閱讀框約為1500 bp,編碼465~510 aa,相對分子質(zhì)量在51 000 左右,部分生物學(xué)信息見表3。孫晶等[58]研究了鐵皮石斛不同組織部位中UGPase基因的表達量,結(jié)果顯示,石斛根和莖中UGPase基因的表達量遠高于葉中,且該基因的表達量在高年生石斛中隨著木質(zhì)化和糖分累積基本停止而降低。Wu 等[60]從膜莢黃芪中克隆了UGPase基因AmUGPase,并通過大腸桿菌異源表達功能驗證發(fā)現(xiàn),該酶能夠在大腸桿菌中大量表達,表達量約為總細菌蛋白的40%,Northern blotting 雜交結(jié)果表明AmUGPase在黃芪的根、莖、葉及毛狀根中均有表達,且在根和毛狀根中的表達量較高。截至目前為止,UGPase 在多糖合成和積累中的作用機制仍不清楚,需進一步研究。
UGDH 廣泛存在于動物、植物細胞中,是合成多種核苷酸糖的關(guān)鍵酶。UGDH 能夠催化UDP-葡萄糖轉(zhuǎn)化為UDP-葡萄糖醛酸,為細胞質(zhì)膜上透明質(zhì)酸、高爾基體中UDP-木糖和蛋白多糖的合成及高等動物體內(nèi)激素的葡萄糖醛酸化提供前體物質(zhì)[82]。就藥用植物而言,UGDH 的缺失會導(dǎo)致UDP-木糖合成受限,進而影響UDP-阿拉伯糖合成,導(dǎo)致嚴重的細胞壁組成缺陷,阻礙根系的發(fā)育。經(jīng)統(tǒng)計,目前共從5 種藥用植物中克隆獲得了UGDH基因,相對比較保守,其開放閱讀框均為1443 bp,由480 aa 編碼而成,相對分子質(zhì)量相對保持在52 000,相關(guān)生物學(xué)信息見表3。劉峰等[62]、徐小萍等[63]分別從苧麻和龍眼中克隆了UGDH基因BnUGDH和DlUGD6,組織表達特性分析顯示,BnUGDH在根、莖、葉、皮中均有表達,且莖中的表達量最高;DlUGD6在龍眼非胚性愈傷組織中表達量相對較高,推斷DlUGD6基因可能與龍眼生長發(fā)育各個階段中細胞壁多糖合成密切相關(guān)。
PMM 和GMPP 是植物體內(nèi)合成GDP-甘露糖的關(guān)鍵酶,為GDP-甘露糖的合成提供前體物質(zhì),在植物多糖合成中發(fā)揮著重要作用[83]。目前共從5 種藥用植物體中克隆了PMM家族基因,其開放閱讀框在1000 bp 左右,編碼246~258 aa,相對分子質(zhì)量約為28 000,相關(guān)生物學(xué)信息見表3。He 等[66]從鐵皮石斛中克隆了PMM基因DoPMM,其在根、莖、葉、花中均有表達,且處于營養(yǎng)期和生殖期時,莖中表達豐度較高,表明DoPMM與石斛多糖合成密切相關(guān);通過擬南芥中過表達實驗發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因擬南芥中的多糖含量明顯增加;此外,DoPMM在響應(yīng)非生物脅迫中同樣發(fā)揮著重要作用。曹守波等[67]發(fā)現(xiàn)霍山石斛PMM 基因CpPMM,具有時空差異性,結(jié)果期表達量最高,且表達量與多糖含量呈顯著相關(guān)性。
研究顯示,目前已從白及、鐵皮石斛、霍山石斛3 種藥用植物中克隆出了GMPP 基因,開放閱讀框在1086~1248 bp,編碼361~415 aa,相對分子質(zhì)量約為40 000,相關(guān)生物學(xué)信息見表3。韓榮春等[69]從霍山石斛中克隆了DhGMP基因,qPCR 實驗結(jié)果顯示,DhGMP在霍山石斛根、莖、葉、花中均有表達,且莖中表達量最高,根中最低,且DhGMP表達量與多糖的含量高度相關(guān)。以上結(jié)果表明PMM 和GMPP 基因在藥用植物多糖生物合成中發(fā)揮著重要作用,但其作用機制仍需進一步研究。
在藥用植物細胞內(nèi),RHM 是調(diào)控鼠李糖合成的關(guān)鍵酶之一,主要負責(zé)催化UDP-葡萄糖轉(zhuǎn)化為UDP-鼠李糖。目前,關(guān)于植物RHM 研究報道較少,劉露等[71]從何首烏中克隆了RHM基因FmRHM1和FmRHM2,其開放閱讀框均為2013 bp,編碼670 aa,相對分子質(zhì)量為75 000,qRT-PCR 實驗結(jié)果顯示,F(xiàn)mRHM1和FmRHM2基因在根中的表達量最低,與莖和葉相比均存在顯著差異,說明FmRHM基因可能與何首烏莖、葉中糖類生物代謝相關(guān)。
糖基化是大部分植物質(zhì)量標志物生物合成的最后一步,GTs 作為該部分的關(guān)鍵酶,共有上百種酶參與了植物體內(nèi)多糖的合成,起到催化形成糖苷鍵的作用。目前,CAZY 數(shù)據(jù)庫(http://www.cazy.org/)共注釋了115 個GTs基因家族,參與多糖的生物合成的GTs 主要有2 種類型:一種為含有單個跨膜結(jié)構(gòu)域的GTs,另一種為含有多個跨膜結(jié)構(gòu)域的GTs[84]。藥用植物多糖合成相關(guān)GTs 的研究主要集中于蘭科植物石斛,先后克隆了9 條GTs 家族基因,開放閱讀框為1000~2000 bp,編碼342~599 aa,相對分子質(zhì)量約為50 000,見表3。He 等[72]克隆了8 條類纖維素合酶家族基因,其中將DoCSLA6導(dǎo)入擬南芥之后,與野生型植株相比甘露糖的含量得到顯著提高。Yu 等[73]所克隆的GT31 家族基因DoGALT2,在不同開花期該基因表達量與鐵皮石斛花粉黏液多糖含量呈正相關(guān),與野生型植株相比,DoGALT2過表達植株半乳糖和含半乳糖的醇不溶性殘基明顯增高,并增強了對非生物脅迫的耐受性,表明該基因可能參與了半乳糖多糖的生物合成[73]。
基于現(xiàn)有研究可知,光合作用糖代謝產(chǎn)物是植物多糖的合成基礎(chǔ)物質(zhì),之后選擇性的進入多糖合成通路,其中SUS、INV、UGPase、FRK、GTs 等關(guān)鍵酶在多糖聚合過程中發(fā)揮著重要作用;UGE、UGDH、RHM 在UDP-葡萄糖的分配上作用顯著;PMM、PGM 則是鳥苷二磷酸單糖合成部分的關(guān)鍵酶。多糖作為諸多藥用植物的質(zhì)量標志物,因組成單糖的種類和組成方式不同,其相對分子質(zhì)量和功能也大相徑庭,相應(yīng)的對關(guān)鍵酶基因的研究也不盡相同。橫向比較發(fā)現(xiàn),目前對以根莖為主要藥用部位(黃精、玉竹、黨參、白及、鐵皮石斛等)植物多糖生物合成下游部分關(guān)鍵酶的研究多集中在GMPP、PMM。
質(zhì)量標志物多糖是藥用植物體內(nèi)重要的代謝產(chǎn)物之一,具有顯著的藥理活性。由于難以從藥用植物中獲得足量且結(jié)構(gòu)均一的多糖,滿足生產(chǎn)和實踐需求,通過化學(xué)合成、生物工程或者植物組織培養(yǎng)的方法來促進多糖生產(chǎn)已成為當(dāng)下思考和研究的熱點。比較發(fā)現(xiàn)生物代謝工程是發(fā)展多糖合成最具可行性的方法,但由于物質(zhì)的合成是一個復(fù)雜的蛋白網(wǎng)絡(luò)調(diào)控結(jié)果,故明確多糖生物合成中每一關(guān)鍵酶的作用機制和催化活性成為目前首要解決的問題。受限于技術(shù)手段和研究偏好,目前對多糖合成關(guān)鍵酶的研究多集中于基因生物信息學(xué)的分析、目標基因克隆和組織表達特性分析,對諸多關(guān)鍵酶的作用機制則鮮有報道。在后續(xù)研究中,可以通過異源表達、體外酶促催化、基因敲除、RNA 干擾等技術(shù)來明確多糖合成關(guān)鍵酶的作用機制和催化活性,為人工合成目標多糖奠定基礎(chǔ)。
利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突