劉洋 張洋 范立強 趙夢瑤 趙黎明
摘要:【目的】探究 N-乙酰氨基葡萄糖(N-acetyl-D-glucosamine,NAG)對水稻幼苗的抗寒效果及其潛在的抗寒機制,以期為NAG在農(nóng)業(yè)免疫誘抗領(lǐng)域的應(yīng)用提供理論依據(jù)?!痉椒ā恳运酒贩N內(nèi)5優(yōu)907為供試材料,外源施用不同濃度(0、50、100、150 mg/L)的NAG進行根系培養(yǎng),測定低溫條件下水稻幼苗的生長指標、葉綠素含量及可溶性糖含量,表征NAG的抗寒效果并篩選最適施用濃度。進一步在生理生化水平從滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)、根系系統(tǒng)、抗氧化系統(tǒng)和脫落酸代謝途徑探究NAG對水稻幼苗的抗寒機制。【結(jié)果】外源施用NAG可促進水稻幼苗在低溫環(huán)境下正常生長,具有明顯的抗寒效果,其最適施用濃度為100 mg/L,在此濃度下幼苗單株鮮重(0.118±0.009 g)、株高(21.21±0.72 cm)、根長(5.76±0.43 cm)及可溶性糖(41.031±0.992 μg/g)和總?cè)~綠素含量(5.959±0.020 mg/g)較對照組漲幅最大,分別顯著增長14.14%、7.14%、7.22%、63.09%和36.79%(P<0.05,下同)。生理生化水平相關(guān)結(jié)果表明,100 mg/L NAG促進寒害幼苗中滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)積累,可溶性蛋白、脯氨酸和游離氨基酸積累量較低溫對照組分別顯著增長19.58%、19.49%和36.82%;保護幼苗根系系統(tǒng),促進寒害幼苗根系活力提高至低溫對照組的1.56倍,并使莖葉組織中硝態(tài)氮含量下降15.65%;有效促進幼苗中丙二醛積累量下降23.92%,并將超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)活力分別提高34.94%和25.42%,保護幼苗抗氧化系統(tǒng);增加寒害幼苗脫落酸代謝通路中OsNCED、OsSDR和AAO基因表達量至低溫對照組的3.52、1.73和1.64倍,從而實現(xiàn)幼苗中內(nèi)源脫落酸的積累。【結(jié)論】外源施用NAG根系處理能夠調(diào)控低溫脅迫下水稻幼苗滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)、根系系統(tǒng)、抗氧化系統(tǒng)及內(nèi)源脫落酸代謝途徑,進而提高水稻抗寒性。
關(guān)鍵詞: N-乙酰氨基葡萄糖;水稻;抗寒性;脫落酸途徑
Abstract:【Objective】To evaluate the cold resistance effect of N-acetyl-D-glucosamineon on rice seedlings,and to further explore its potential cold resistance mechanism,with a view to providing the theoretical basis for the application of NAG in the field of agricultural immune induction. 【Method】With the rice variety Nei 5 You 907 as the test material,different concentrations(0,50,100,150 mg/L) NAG were exogenously applied to rice seedlings for root culture. The growth potential,growth index,chlorophyll content and soluble sugar content of rice seedlings under low temperature conditions were measured to characterize the cold resistance effect of NAG and to screen the optimum applied concentration. Furthermore,the cold resistance mechanism of NAG on rice seedlings was explored from osmotic adjustment system,root system,antioxidant system and abscisic acid metabolism pathways at the physiological and biochemical level. 【Result】Exogenous application of NAG promoted the growth of rice seedlings in low temperature environments,and had obvious cold resistance effect. The optimum applied concentration was 100 mg/L. Under this concentration,the fresh weight(0.118±0.009 g),plant height(21.21±0.72 cm),root length(5.76±0.43 cm),soluble sugar(41.031±0.992 μg/g) and the total chlorophyll content(5.959±0.020 mg/g)of seedlings increased the most in comparison with the control group,which significantly increased by 14.14%,7.14%,7.22%,63.09% and 36.79% respectively(P<0.05,the same below). The results of the physiological and biochemical level showed that 100 mg/L NAG promoted the accumulation of osmotic adjustment substances, soluble protein, proline,free amino acid in the cold injury seedlings increased significantly by 19.58%,19.49% and 36.82% respectively compared with the control group;effectively protected the root system of seedlings,the root acti-vity of cold injury seedlings was increased to 1.56 times,and the nitrate nitrogen content in the stem and leaf tissues was decreased by 15.65% compared with the low-temperature control group;effectively reduced the accumulation of malondialdehyde in the cold injury seedlings by 23.92% and increased the activities of superoxide dismutase(SOD) and peroxidase(POD) by 34.94% and 25.42% respectively,thereby protecting the antioxidant system of seedlings;increased the OsNCED,OsSDR and AAO genes expression in the abscisic acid metabolism pathway to 3.52,1.73 and 1.64 times of low temperature control,so as to achieve the accumulation of endogenous abscisic acid in cold injury seedlings. 【Conclusion】Exogenous application of NAG with root treatment can regulate osmotic adjustment system,root system, antioxidant system and the endogenous abscisic acid metabolism pathway of rice seedlings under cold stress,thereby improving the cold resistance of rice.
Key words: N-acetyl-D-glucosamine; rice; cold resistance; abscisic acid pathway
0 引言
【研究意義】植物生長過程中通常會面臨生物脅迫(病毒、蟲害、真菌等)及非生物脅迫(寒害、旱害、鹽堿、礦物質(zhì)缺乏、重金屬等)的壓力,其中溫度是植物生長發(fā)育的重要條件之一(Lukatkin et al.,2012)。水稻作為亞熱帶喜溫植物,對低溫環(huán)境敏感,低溫會造成水稻幼苗生長發(fā)育不良甚至死亡,嚴重影響水稻產(chǎn)量(Hussain et al.,2016)。為提高植物的抗寒能力,脫落酸、多效唑、氯膽堿等植物生長調(diào)節(jié)劑及甜菜堿、多胺等化合物作為抗寒劑已被廣泛應(yīng)用(Hussain et al.,2018)?;瘜W抗寒劑雖效果較優(yōu),但易產(chǎn)生化學殘留并危害植物生長,造成環(huán)境污染。所以開發(fā)對植物威脅小、綠色、安全且具有良好經(jīng)濟效益的植物免疫誘抗劑尤為重要。目前,甲殼素及其衍生物作為含氮多糖,憑借其安全、綠色等優(yōu)勢已被廣泛應(yīng)用于免疫誘抗領(lǐng)域,N-乙酰氨基葡萄糖(N-acetyl-D-glucosamine,NAG)是葡萄糖分子中C2上羥基被乙酰氨基所替代的一種氨基己糖,是構(gòu)成甲殼素的結(jié)構(gòu)單元物質(zhì),但其在植物免疫誘抗領(lǐng)域的應(yīng)用研究較為少見。此外,關(guān)于外源功能性糖在植物抗寒領(lǐng)域的機制研究尚不清晰,對于相關(guān)代謝通路的研究尚不深入。因此,探究NAG對水稻幼苗的抗寒作用及其潛在的抗寒機制,可為NAG在農(nóng)業(yè)免疫誘抗領(lǐng)域的應(yīng)用提供理論支撐,對保護水稻抵御外界低溫脅迫損傷具有重要意義。【前人研究進展】郝林華等(2006)研究指出,牛蒡寡糖作為新型寡糖可顯著保護低溫脅迫后黃瓜幼苗細胞膜穩(wěn)定性及抗氧化酶系統(tǒng),進而調(diào)控植物抗寒。劉瑞志等(2009)研究發(fā)現(xiàn),0.2%的褐藻寡糖通過提高煙草的抗逆酶活力,減少寒害對細胞組織的損傷,促進其抵御寒害逆境。劉同梅(2018)研究表明,海藻酸鈉寡糖通過誘導水楊酸通路激活擬南芥免疫途徑達到抗病效果。此外,殼寡糖和幾丁寡糖作為兩種不同的甲殼素類氨基寡糖,已有較成熟的產(chǎn)品被開發(fā)應(yīng)用于植物免疫誘抗領(lǐng)域(Yin et al.,2016)。Shigeru等(2006)研究發(fā)現(xiàn),幾丁寡糖通過誘導水稻根及葉中激發(fā)子響應(yīng)基因及抗性防御基因表達,在水稻中傳遞系統(tǒng)性信號并抵御稻瘟病真菌。姚艷平等(2013)研究表明,幾丁寡糖可通過誘導調(diào)控抗病相關(guān)酶活性及相關(guān)植物保衛(wèi)素等機制調(diào)控機體,抑制木霉菌的產(chǎn)生。王夢雨等(2016)研究報道,噴施殼寡糖可促進小麥中可溶性糖、脯氨酸等低溫抗性相關(guān)物質(zhì)表達,保護小麥抵抗低溫脅迫。田路(2019)研究了殼寡糖對不同花椒種質(zhì)間耐寒性差異的影響,發(fā)現(xiàn)100 mg/L殼寡糖處理能有效調(diào)節(jié)寒害花椒幼苗的滲透系統(tǒng)及抗氧化系統(tǒng),從而促進其抗寒?!颈狙芯壳腥朦c】相關(guān)研究表明,乙?;鶊F在植物免疫誘抗中發(fā)揮重要作用,而NAG作為一種含有乙?;鶊F的甲殼素結(jié)構(gòu)單元,具有抗菌(Gaderer et al.,2017)、抗?。↘ashulin et al.,2000)等多方面生理活性,推測其在水稻抗寒領(lǐng)域可能具有較大的應(yīng)用潛力,但其在農(nóng)作物免疫誘抗領(lǐng)域鮮有研究。同時,NAG現(xiàn)已實現(xiàn)發(fā)酵法進行大規(guī)模的生物制造,將其應(yīng)用于農(nóng)業(yè)領(lǐng)域能降低現(xiàn)有抗寒成本,具有良好的經(jīng)濟效益和市場前景。【擬解決的關(guān)鍵問題】以水稻品種內(nèi)5優(yōu)907為供試材料,外源施用不同濃度NAG進行根系培養(yǎng),測定并比較低溫條件下水稻幼苗的長勢及生長指標,并進一步在生理生化水平上分析NAG對水稻幼苗脫落酸代謝通路、滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)、根系系統(tǒng)和抗氧化系統(tǒng)的調(diào)控影響,探究NAG根系處理對水稻的抗寒效果及其潛在的抗寒機制,為NAG在農(nóng)業(yè)免疫誘抗領(lǐng)域的應(yīng)用提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1. 1 試驗材料
供試材料為內(nèi)5優(yōu)907水稻種子,購自四川豐禾種業(yè)有限公司;N-乙酰氨基葡萄糖(分子式為C8H15NO6,分子量為221.09,純度為98%)購自山東潤德生物科技有限公司;脯氨酸、茚三酮、磺基水楊酸、硫代巴比妥酸和氮藍四唑等均為分析純,購自泰坦科技股份有限公司。
1. 2 試驗方法
1. 2. 1 植物培養(yǎng)與處理 選擇粒大飽滿、顆粒均勻的水稻種子置于清水中充分浸泡,將沉于底部的質(zhì)量較好的種子進行清水漂洗并浸泡于75%乙醇溶液消毒15 min,清水沖洗數(shù)遍直至無乙醇殘留。將水稻種子置于30 ℃去離子水中浸種48 h,然后于30 ℃暗處催芽24 h。待其露白后,小心挑選露白一致的水稻種子移至96孔板中培養(yǎng),然后將其移至植物光照培養(yǎng)箱中進行水培。培養(yǎng)條件:溫度25 ℃,相對濕度75%,光照周期16 h/8 h(晝/夜)。為促進水稻種子及時獲得營養(yǎng),結(jié)合幼苗培養(yǎng)過程中的實際生長狀態(tài),水培(去離子水)約7 d后換用營養(yǎng)液培養(yǎng)(營養(yǎng)液參照國際水稻研究所研制的營養(yǎng)液配方配置),每隔2 d換液一次。
待幼苗生長至2葉1心期(共14 d左右)時添加NAG進行根系培養(yǎng),具體方法如下:(1)抗寒效果濃度篩選時,NAG處理水平分別為0(對照)、50、100和150 mg/L。在光周期中光照條件下開始進行幼苗加糖的根系培養(yǎng),加糖處理48 h后,開始低溫脅迫處理(溫度為5 ℃)24 h。(2)抗寒機制研究時,基于篩選得到的最優(yōu)NAG處理濃度,幼苗分為常溫對照組(未加NAG根系處理幼苗,常溫培養(yǎng))、常溫處理組(施用NAG最優(yōu)濃度根系處理幼苗,常溫培養(yǎng))、低溫對照組(未加NAG根系處理幼苗,5 ℃低溫脅迫培養(yǎng)24 h)和低溫處理組(施用最優(yōu)NAG濃度根系處理幼苗,5 ℃低溫脅迫培養(yǎng)24 h)。隨后在光照處理條件下進行取樣,液氮冷凍后儲存于-80 ℃冰箱,測定后續(xù)相關(guān)指標。
1. 2. 2 幼苗生長指標測定 隨機選取40~50株新鮮水稻幼苗,將幼苗根部用濾紙輕輕擦拭以吸去根部表面水分,測定單株幼苗鮮重。分別測定幼苗根基部到最上部展開葉葉鞘頂部的距離和到根尖部位的距離,即為幼苗株高和根長。
1. 2. 3 幼苗相關(guān)生理生化指標測定 生理生化指標測定參照王學奎和黃見良(2015)的方法。幼苗葉綠素含量采用乙醇提取比色法測定;可溶性糖含量采用蒽酮比色法測定;可溶性蛋白含量采用考馬斯亮藍染色法測定;脯氨酸含量采用磺基水楊酸比色法測定;游離氨基酸含量采用茚三酮顯色法測定;根系活力采用氯化三苯基四氮唑TTC法測定;莖葉組織硝態(tài)氮含量采用水楊酸法測定;幼苗丙二醛(MDA)含量采用硫代巴比妥酸反應(yīng)法測定;超氧化物歧化酶(SOD)活力采用氮藍四唑法測定,過氧化物酶(POD)活力采用愈創(chuàng)木酚顯色法測定;脫落酸含量參照酶聯(lián)免疫分析試劑盒(紀寧生物科技有限公司)的說明方法測定。
1. 2. 4 實時熒光定量PCR測定脫落酸通路關(guān)鍵基因表達 水稻葉片總RNA提取、反轉(zhuǎn)錄及實時熒光定量PCR測定分別按照相應(yīng)試劑盒說明書(諾唯贊生物科技有限公司)進行。于NCBI搜索水稻脫落酸代謝通路相關(guān)基因及常用水稻內(nèi)參基因β-Actin序列,所用引物序列詳見表1。
1. 3 統(tǒng)計分析
采用Excel 2010及SPSS 21進行數(shù)據(jù)處理,采用GraphPad Prism 8.0作圖,采用LSD法進行數(shù)據(jù)顯著差異性分析。
2 結(jié)果與分析
2. 1 NAG對水稻幼苗抗寒性的影響
2. 1. 1 不同濃度NAG對低溫脅迫下水稻幼苗生長的影響 經(jīng)不同濃度NAG根系培養(yǎng)后,由寒害幼苗整體生長情況(圖1-A)可看出,低溫寒害后,0 mg/L對照組幼苗整體萎蔫不立挺,葉片形態(tài)發(fā)生變化,葉緣失水、葉尖卷曲;而經(jīng)50和100 mg/L NAG根系培養(yǎng)的幼苗表型更立挺,葉片顏色更鮮綠,幼苗整體生長狀態(tài)較對照組更優(yōu)。表明外源施用NAG能夠緩解低溫對水稻的傷害,保護水稻幼苗。
由圖1-B和圖1-C可知,與0 mg/L對照組相比,經(jīng)50、100和150 mg/L NAG處理后幼苗的單株鮮重分別增加11.94%、14.14%和9.93%;株高分別增加3.81%、7.14%和6.38%,且均與對照組差異顯著(P<0.05,下同)。從圖1-D可看出,50 mg/L NAG根系培養(yǎng)后幼苗根長與對照組無顯著差異(P>0.05,下同),而100和150 mg/L NAG根系培養(yǎng)后幼苗的根長較對照組分別顯著增加7.22%和5.87%??梢奛AG根系處理對幼苗在低溫條件下的促生長效果顯著,能保護幼苗正常生長,其中,100 mg/L NAG處理組幼苗恢復(fù)生長的效果最佳,其單株鮮重(0.118±0.009 g)、株高(21.21±0.72 cm)和根長(5.76±0.43 cm)均為最大值。
2. 1. 2 不同濃度NAG對低溫脅迫下水稻幼苗葉綠素及可溶性糖含量的影響 圖2-A和圖2-B分別顯示了不同濃度NAG根系培養(yǎng)的幼苗在低溫脅迫24 h及低溫脅迫后于正常溫度下恢復(fù)生長時葉綠素含量的變化。由圖2-A可知,與0 mg/L對照組相比,經(jīng)50、100和150 mg/L NAG處理后寒害幼苗的葉綠素a、葉綠素b和總?cè)~綠素含量均呈增加趨勢,且同一指標不同處理組間差異顯著,其中,100 mg/L NAG處理對寒害幼苗光合系統(tǒng)的促進作用相對較好,其葉綠素a含量(4.253±0.016 mg/g)、葉綠素b含量(1.707±0.008 mg/g)及總?cè)~綠素含量(5.959±0.020 mg/g)較對照組增幅最大,分別顯著增加36.65%、37.13%和36.79%。說明NAG根系處理能促進寒害幼苗葉綠素的合成,保護幼苗進行正常的光合作用以抵御寒害損傷。由圖2-B可知,100 mg/L NAG處理還能顯著促進寒害幼苗在恢復(fù)生長過程中的葉綠素積累,保證后續(xù)正常生長,相比對照組其幼苗中葉綠素a、葉綠素b和總?cè)~綠素含量分別顯著提高14.76%、20.17%和18.94%。
從圖2-C可知,50、100和150 mg/L NAG根系處理促進了幼苗在低溫下滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)可溶性糖的積累,分別較對照組增加23.26%、63.09%和40.46%,其中,100 mg/L NAG處理組的可溶性糖含量(41.031±0.992 μg/g)增長趨勢最明顯,且各處理組間差異均達顯著水平。說明NAG可有效調(diào)控寒害幼苗機體滲透勢,從而保護幼苗抵御寒害損傷。
綜合對比幼苗的長勢、生長指標、葉綠素含量及可溶性糖積累等結(jié)果,發(fā)現(xiàn)低溫脅迫過程中,外源施用一定濃度的NAG可保護水稻幼苗在低溫環(huán)境下正常生長,提高水稻的抗寒效果。從不同濃度NAG的抗寒效果及經(jīng)濟效益考慮,本研究中100 mg/L為最適施用濃度。
2. 2 NAG對水稻幼苗的抗寒生理生化機制研究
2. 2. 1 NAG對水稻幼苗滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)的影響 由圖3-A可看出,100 mg/L NAG根系處理對常溫環(huán)境幼苗起到促生長作用,同時在一定程度上緩解了低溫對水稻生長的損傷,促進幼苗正常生長。
由圖3-B~圖3-D可看出,低溫對照組的可溶性蛋白含量較常溫對照組提高19.88%,低溫處理組的可溶性蛋白含量較常溫處理組提高13.83%;低溫對照組幼苗脯氨酸含量是常溫對照組幼苗的1.93倍,而低溫處理組幼苗的脯氨酸含量升高至常溫處理組的2.07倍,表明在遭受低溫脅迫后,水稻幼苗能在一定程度上通過積累可溶性蛋白和脯氨酸來調(diào)控自身代謝,而外源施用NAG進一步促進了寒害幼苗中可溶性蛋白、脯氨酸和游離氨基酸的積累量,較低溫對照組分別顯著增長19.58%、19.49%和36.82%,從而更進一步調(diào)控幼苗機體滲透勢,保護其抵抗寒害逆境影響。
2. 2. 2 NAG對水稻幼苗根系系統(tǒng)的影響 由圖4-A可看出,低溫脅迫會導致幼苗的根系活力下降,其中低溫對照組的根系活力較常溫對照組幼苗降低23.15%,低溫處理組的根系活力較常溫處理組降低36.17%;而外源NAG能在常溫及低溫環(huán)境下促進幼苗根系活力分別提高至相應(yīng)對照的1.88和1.56倍,說明NAG能有效緩解低溫對幼苗根系的傷害,從而保護水稻根系抵御逆境脅迫。
由圖4-B可知,低溫脅迫24 h后低溫對照組水稻幼苗莖葉部位的硝態(tài)氮含量較常溫對照組提高23.62%,表明低溫會造成幼苗莖葉組織的硝態(tài)氮積累,抑制其被進一步轉(zhuǎn)化利用;而NAG處理顯著降低常溫及寒害幼苗中硝態(tài)氮含量,較相應(yīng)對照組分別降低12.37%和15.65%,促進了幼苗莖葉組織對根系硝態(tài)氮的充分轉(zhuǎn)化,從而調(diào)控機體代謝并抵御寒害。
2. 2. 3 NAG對水稻幼苗抗氧化系統(tǒng)的影響 由圖5-A可知,低溫會導致水稻幼苗中MDA積累,其中低溫對照組水稻幼苗MDA含量較常溫對照組顯著增加36.65%,而低溫處理組幼苗較常溫處理組僅增加11.63%,可見NAG根系處理能減緩低溫環(huán)境幼苗的MDA積累。同時外源NAG能有效降低寒害幼苗中MDA含量,較低溫對照組顯著下降23.92%。
由圖5-B和圖5-C可知,寒害處理后低溫對照組較常溫對照組幼苗的SOD活力顯著提高19.68%,POD活力顯著提高20.21%。NAG的施用能進一步提高幼苗的SOD和POD活力,其中常溫處理組較常溫對照組幼苗SOD活力顯著提高36.34%,POD活力略有提高但差異不顯著;而低溫處理組較低溫對照組幼苗的SOD和POD活力分別顯著提高34.94%和25.42%,表明NAG有效保護了幼苗的抗氧化系統(tǒng),減緩過氧化損傷以抵抗寒害逆境。
2. 2. 4 NAG對水稻幼苗脫落酸代謝調(diào)節(jié)的影響
由圖6-A可看出,低溫脅迫后,幼苗自身脫落酸積累量增加,低溫對照組幼苗的脫落酸含量較常溫對照組增加16.18%;外源施用NAG后低溫處理組較低溫對照組幼苗的脫落酸含量顯著提高16.45%,說明NAG根系處理能進一步促進寒害幼苗的脫落酸積累。
OsZEP、OsNCED、OsSDR和AAO基因是植物脫落酸代謝通路中4類關(guān)鍵酶——玉米黃質(zhì)環(huán)氧化酶(Zeaxanthin epoxidase,ZEP)、9-順式-環(huán)氧類胡蘿卜素雙加氧酶(9-cis-epoxycarotenoid dioxygenase,NCED)、短鏈醇脫氫/還原酶(Short chain dehydrogenases/reductases,SDR)和脫落醛氧化酶(Abscisic aldehyde oxidase,AO)分別對應(yīng)的4個關(guān)鍵調(diào)控基因(Wan and Li,2004)。由圖6-B~圖6-E可知,正常條件下,NAG常溫處理組幼苗中OsNCED和AAO基因相對表達量分別增長至常溫對照組的2.32和1.50倍,OsZEP基因相對表達量顯著下降,而OsSDR基因相對表達量無顯著變化。低溫脅迫后,無論是無糖處理組還是NAG處理組水稻幼苗中4種基因的相對表達量均呈下降趨勢;但外源施用NAG能顯著促進寒害幼苗中OsNCED、AAO和OsSDR基因的相對表達。其中,低溫處理組幼苗的OsNCED和AAO基因相對表達量分別顯著提升至低溫對照組的3.52和1.64倍,OsSDR基因相對表達量增長至1.73倍,幾乎已恢復(fù)至幼苗未經(jīng)寒害處理時的水平。表明NAG根系處理能在低溫脅迫條件下調(diào)控水稻幼苗脫落酸代謝途徑中OsNCED、OsSDR和AAO等脫落酸生物合成關(guān)鍵基因的表達,從而進一步顯著促進寒害水稻幼苗中內(nèi)源脫落酸的合成與積累來抵御寒害損傷。
3 討論
植物的生長狀態(tài)能直觀地反映植物面對外界寒害等逆境的感應(yīng)及耐受能力。研究表明低溫會延緩水稻等農(nóng)作物的生長發(fā)育,造成葉片壞死、脫色、白化、衰老發(fā)黃萎蔫、葉面積減小等嚴重損傷(Li et al.,2017)。本研究發(fā)現(xiàn),外源施用NAG根系培養(yǎng)能有效緩解寒害下水稻幼苗萎蔫、葉緣失水、葉尖卷曲等不良狀態(tài),使幼苗的生長狀態(tài)更優(yōu),表明NAG能有效減緩低溫對水稻的損傷,具有促進水稻抗寒的效果。植物單株鮮重、株高、根長等生長指標能反映植物地上部分及根系組織的生長情況,鄭典元等(2012)研究指出殼寡糖能促進水稻株高、根長等生長指標,降低電導率,提高過氧化氫酶(CAT)活性,進而提高水稻抗寒性。張運紅等(2017)研究表明,鎘脅迫下外源噴施海藻酸鈉寡糖可提高水稻幼苗的株高、穗長和千粒重,進而促進水稻正常生長發(fā)育。本研究結(jié)果與上述研究結(jié)果相似,施用NAG根系處理后水稻幼苗的單株鮮重、株高和根長均較對照組明顯提高,表明NAG對低溫條件下水稻根系及地上莖葉組織的促生長效果顯著,能保護幼苗在低溫脅迫下正常生長發(fā)育,推測其在植物抗寒領(lǐng)域具有較好的實際應(yīng)用潛力。
光合作用的強弱可反映植物的生長狀態(tài),而葉綠素是評價植物光合能力的重要指標,其含量高低與植物抗寒性密切相關(guān),冷適應(yīng)能力強的植物能通過調(diào)控葉綠素等光合作用色素的合成代謝來抵御寒害影響(Liu et al.,2018)。本研究結(jié)果表明,NAG可促進水稻在低溫脅迫及恢復(fù)生長過程中葉綠素含量的積累,促使寒害幼苗保持正常的光合作用。與姜秀梅(2014)研究報道的殼聚糖、甜菜堿、水楊酸等外源物質(zhì)可提高寒害辣椒幼苗中葉綠素含量和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)積累,進而提高其抗冷性的結(jié)論基本一致。但本研究結(jié)果與張洋(2018)研究中指出的殼寡糖可促進水稻寒害后恢復(fù)過程的葉綠素合成,而對水稻低溫脅迫過程中葉綠素積累無顯著促進作用的研究結(jié)果存在差異,表明不同外源糖對植物葉綠素的合成調(diào)控會有所不同,其原因可能在于NAG作為含氮多糖可充當?shù)磪⑴c水稻碳氮代謝過程從而調(diào)控寒害過程中的光合能力,但具體原因尚需進一步研究。
滲透調(diào)節(jié)是植物抵抗逆境脅迫的重要調(diào)控機制,植物體通過積累可溶性糖(蔗糖、海藻糖等)、脯氨酸、可溶性蛋白、有機酸、鉀和鈣離子等不同類型的滲透調(diào)節(jié)離子或分子,以滲透調(diào)節(jié)、活性氧解毒、細胞膜穩(wěn)定等方式維系植物體內(nèi)水分環(huán)境并調(diào)控機體滲透勢,從而抵抗逆境壓力(Singh et al.,2015;邢芳芳等,2018)。本研究中,適宜濃度的NAG可有效促進寒害幼苗中可溶性糖、可溶性蛋白、脯氨酸和游離氨基酸等滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)顯著積累,與匡銀近等(2009)通過殼寡糖浸種處理可增加水稻幼苗中可溶性糖、脯氨酸等滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)并減少電解質(zhì)滲透,從而提高水稻抗冷性的研究結(jié)果相似,說明外源NAG可有效調(diào)節(jié)寒害水稻的滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)進而抵御寒害逆境。
根系是植物體重要的營養(yǎng)物質(zhì)與水分吸收器官,根系活力是反映幼苗根系生長狀況的重要指標,根系活力越高,植物對外界營養(yǎng)吸收的能力越強,相對抗寒能力越強(陳明輝等,2018)。本研究中,低溫條件下水稻的根系活力大大下降,而外源施用NAG能促進寒害水稻幼苗根系活力提高,說明NAG能有效緩解低溫逆境對根系系統(tǒng)的損傷,保護幼苗根系系統(tǒng)。此外,硝酸鹽是植物生長的主要氮源,可促進植物調(diào)節(jié)自身碳氮代謝、營養(yǎng)吸收及生長發(fā)育等過程(張鵬等,2015)。本研究中,外源NAG使得寒害水稻的地上莖葉組織中硝態(tài)氮積累量顯著下降,說明NAG能有效促進水稻莖葉組織對根系硝態(tài)氮的運輸、吸收與還原同化,將硝態(tài)氮充分利用并轉(zhuǎn)化進而提高水稻抗寒性。
抗氧化能力是表征植物抗性的重要指標之一,機體中脂質(zhì)過氧化有害產(chǎn)物(MDA等)含量越少、抗氧化酶活性越高,機體抗氧化防御能力越強,抗寒能力越強(Ao et al.,2013)。Zou等(2017)研究指出外源施用不同聚合度的殼寡糖能促進小麥生長、降低MDA濃度、有效調(diào)控SOD、POD、CAT等抗氧化基因的表達并提高對應(yīng)的抗氧化酶活性,從而緩解外界冷脅迫的損傷。Cao等(2014)研究表明外源蔗糖通過提高黃瓜葉片中SOD等抗氧化酶活性來提高黃瓜幼苗抗寒性。本研究與上述研究結(jié)果相似,當外源施用NAG進行根系處理時,寒害水稻幼苗中MDA積累量顯著降低,SOD和POD活力均明顯增加,表明NAG對寒害水稻幼苗的抗氧化系統(tǒng)具有保護作用。
目前,關(guān)于外源功能性糖在植物抗寒領(lǐng)域的研究主要與抗寒相關(guān)表型和生理生化調(diào)控指標相關(guān),對于相關(guān)代謝通路的研究尚不深入。在已有研究報道中,陳巧(2016)從光合作用通路角度對殼寡糖誘導水稻的抗寒機制進行研究,證明殼寡糖修復(fù)了光損傷的光合系統(tǒng)II,加速了葉綠素b合成,通過改變滲透調(diào)節(jié)并減少氧化損傷從而提高水稻冷脅迫耐受性。Zhang等(2019)研究發(fā)現(xiàn)根系施用殼寡糖能誘導寒害水稻谷氨酸及脯氨酸通路相關(guān)關(guān)鍵基因表達,通過促進水稻谷氨酸代謝進而調(diào)控脯氨酸代謝,最終保護水稻幼苗抵御寒害。在眾多代謝調(diào)控中,植物激素是植物面對逆境環(huán)境時調(diào)節(jié)自身生理和分子反應(yīng)時最主要的內(nèi)源物質(zhì)之一,激素代謝調(diào)控在植物抵抗逆境脅迫時發(fā)揮關(guān)鍵作用(Fahad et al.,2015)。其中脫落酸作為植物面臨寒害等逆境環(huán)境時的重要“脅迫激素”,可通過促進寒害幼苗根部疏水,清除有害自由基,調(diào)控機體迅速啟動抗寒相關(guān)基因等過程來抵御寒害損傷(Cutler et al.,2010)。楊章旗(2011)研究表明,內(nèi)源脫落酸在植物抗寒機制中發(fā)揮重要作用,低溫脅迫條件下馬尾松能通過調(diào)控自身內(nèi)源脫落酸含量變化來調(diào)控自身SOD、POD、CAT、多酚氧化酶(PPO)等抗氧化酶活性的變化趨勢,進而提高自身耐寒能力。劉航等(2015)研究指出,褐藻膠寡糖通過上調(diào)小麥中TaNCED、TaAOX和TaBG等脫落酸合成基因的轉(zhuǎn)錄,調(diào)控小麥脫落酸合成信號通路,進而刺激小麥葉片中內(nèi)源脫落酸積累,并參與褐藻膠寡糖誘導的植物抗旱過程。Sharma等(2019)研究發(fā)現(xiàn),水分脅迫下施用褐藻提取物能通過調(diào)控脫落酸生物合成基因表達進而調(diào)節(jié)脫落酸穩(wěn)態(tài),并特異性增強干旱脅迫保護基因表達,提高小麥耐旱性。本研究從脫落酸代謝通路入手,對NAG誘導水稻的抗寒機制進行研究,結(jié)果表明低溫會造成水稻幼苗脫落酸代謝途徑中關(guān)鍵基因OsZEP、OsNCED、AAO和OsSDR的表達量下降,但外源施用NAG能顯著促進寒害幼苗中OsNCED、AAO和OsSDR基因的相對表達,從而實現(xiàn)幼苗中內(nèi)源脫落酸積累量增長,推測外源NAG能通過調(diào)控水稻幼苗的脫落酸激素代謝途徑來抵御寒害損傷。本研究從相關(guān)脅迫激素的代謝角度出發(fā)對NAG誘導水稻的抗寒機制進行闡述,在現(xiàn)有研究基礎(chǔ)上,未來可與相關(guān)轉(zhuǎn)錄組學、代謝組學等方法結(jié)合,更全面地探究相關(guān)抗逆調(diào)控機制。因此,基于以上研究結(jié)果,推測NAG能充當糖原物質(zhì)和信號物質(zhì),通過兩種效應(yīng)發(fā)揮協(xié)同作用,共同調(diào)控水稻幼苗抵抗外界低溫脅迫損傷。
4 結(jié)論
低溫脅迫下,采用根系處理方式外源施用NAG可保護水稻幼苗,恢復(fù)幼苗低溫脅迫后生長過程中葉綠素的積累,促進其在低溫環(huán)境下正常生長。其可能的調(diào)控機制在于:首先,NAG調(diào)節(jié)水稻幼苗的機體滲透勢,促進滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的積累和硝態(tài)氮的轉(zhuǎn)化利用;其次,NAG的外源施用有效降低寒害幼苗中MDA含量,提高SOD和POD抗氧化酶活力,保護幼苗抗氧化系統(tǒng);此外,NAG顯著促進寒害幼苗脫落酸代謝通路中OsNCED、OsSDR和AAO基因表達,進而促進幼苗中內(nèi)源脫落酸積累,通過脫落酸代謝途徑保護幼苗抵御寒害。
參考文獻:
陳明輝,張志錄,程世平,張保青. 2018. 低溫脅迫對4個果蔗品種幼苗根系活力和保護酶活性的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學,46(3):116-119. doi:10.15889/j.issn.1002-1302.2018. 03.029. [Chen M H,Zhang Z L,Cheng S P,Zhang B Q. 2018. Effects of low temperature stress on root vigor and protective enzyme activities of four cane cultivars[J]. Jiangsu Agricultural Sciences,46(3):116-119.]
陳巧. 2016. 殼寡糖對水稻幼苗抗寒性的誘抗機制探究[D]. 上海:華東理工大學. [Chen Q. 2016. The mechanism of improving rice seedlings cold resistance by chitooligosaccharide[D]. Shanghai:East China University of Science and Technology.]
郝林華,陳靠山,李光友. 2006. 牛蒡寡糖促進黃瓜生長及抗低溫脅迫的生理效應(yīng)[J]. 上海交通大學學報(農(nóng)業(yè)科學版),24(1):6-12. doi:10.3969/j.issn.1671-9964.2006.01. 002. [Hao L H,Chen K S,Li G Y. 2006. Physiological effects of burdock oligosaccharide on growth promotion and chilling resistance of cucumber seedings[J]. Journal of Shanghai Jiaotong University(Agricultural Science),24(1):6-12.]
姜秀梅. 2014. 外源物質(zhì)處理對低溫脅迫下辣椒種子萌發(fā)及幼苗抗冷性的影響[D]. 烏魯木齊:新疆農(nóng)業(yè)大學. [Jiang X M. 2014. Effects of exogenous substances on seed germination and chilling resistance of pepper under low temperature stress[D]. Urumqi:Xinjiang Agricultural University.]
匡銀近,彭惠娥,桂萍,覃彩芹. 2009. 殼寡糖提高茄子幼苗抗冷性的效應(yīng)研究[J]. 北方園藝,(9):14-17. [Kuang Y J,Peng H E,Gui P,Qin C Q. 2009. Effects of oligochitosan on cold resistance of eggplant seedlings[J]. Northern Horticulture,(9):14-17.]
劉航,馮立強,劉興江. 2015. 寡糖對小麥脫落酸合成的影響[J]. 浙江農(nóng)業(yè)學報,27(1):12-15. doi:10.3969/j.issn.1004-1524.2015.01.03. [Liu H,F(xiàn)eng L Q,Liu X J. 2015. Effects of oligosaccharides on abscisic acid synthesis in wheat[J]. Acta Agriculturae Zhejiangensis,27(1):12-15.]
劉瑞志,江曉路,管華詩. 2009. 褐藻寡糖激發(fā)子誘導煙草抗低溫作用研究[J]. 中國海洋大學學報,39(2):243-248. doi:10.3969/j.issn.1672-5174.2009.02.030. [Liu R Z,Jiang X L,Guan H S. 2009. Effects of alginate-derived oligosaccharide on the low temperature resistance of tobacco leaves[J]. Periodical of Ocean University of China,39(2):243-248.]
劉同梅. 2018. 海藻酸鈉寡糖誘導植物抗病作用和機制的初步研究[D]. 大連:大連海洋大學. [Liu T M. 2018. Preliminary study on the alginate oligosaccharide induced plant resistance and its mechanisms[D]. Dalian:Dalian Ocean University.]
田路. 2019. 殼寡糖對花椒幼苗抗寒性的影響[D]. 咸陽:西北農(nóng)林科技大學. [Tian L. 2019. Effects of chitosan oligosaccharide on cold resistance of Zanthoxylum bungeanum Maxim. seedlings[D]. Xianyang:Northwest A & F University.]
王夢雨,王文霞,趙小明,尹恒. 2016. 殼寡糖對低溫脅迫下小麥幼苗的保護作用及相關(guān)代謝產(chǎn)物的影響[J]. 麥類作物學報,36(5):653-658. doi:10.7606/j.issn.1009-1041. 2016.05.17. [Wang M Y,Wang W X,Zhao X M,Yin H. 2016. Effect of chitooligosaccharide on reducing cryoinjury and improving metabolite of winter wheat seedings under low temperature stress[J]. Journal of Triticeae Crops,36(5):653-658.]
王學奎,黃見良. 2015. 植物生理生化實驗原理與技術(shù)[M]. 北京:高等教育出版社. [Wang X K,Huang J L. 2015. Principles and techniques of plant physiological biochemi-cal experiment[M]. Beijing:Higher Education Press.]
邢芳芳,高明夫,周傳志,徐春英,范玲超. 2018. 氨基酸與植物抗逆性關(guān)系的研究進展[J]. 黑龍江農(nóng)業(yè)科學,(3):150-155. doi:10.11942/j.issn1002-2767.2018.03.0150. [Xing F F,Gao M F,Zhou C Z,Xu C Y,F(xiàn)an L C. 2018. Advan-ces in the relationship between amino acid and plant stress resistance[J]. Heilongjiang Agricultural Sciences,(3):150-155.]
楊章旗. 2011. 低溫脅迫下內(nèi)源脫落酸對馬尾松優(yōu)良種源抗寒性的調(diào)節(jié)作用[J]. 廣西植物,31(4):501-506. doi:10. 3969/j.issn.1000-3142.2011.04.016. [Yang Z Q. 2011. Re-gulation of endogenic abscisic acid(ABA)for cold resistance of superior provenance Pinus massoniana under low temperature stress[J]. Guihaia,31(4):501-506.]
姚艷平,王建明,張作剛,李友蓮. 2013. 幾丁寡糖在木霉菌生物防治中的作用[J]. 山西農(nóng)業(yè)科學,41(2):194-196. doi:10.3969/j.issn.1002-2481.2013.02.25. [Yao Y P,Wang J M,Zhang Z G,Li Y L. 2013. Role of N-acetyl-chito-oligosaccharides in plant diseases biological control of Trichoderma spp.[J]. Journal of Shanxi Agricultural Scien-ces,41(2):194-196.]
張鵬,張然然,都韶婷. 2015. 植物體對硝態(tài)氮的吸收轉(zhuǎn)運機制研究進展[J]. 植物營養(yǎng)與肥料學報,21(3):752-762. doi:10.11674/zwyf.2015 0323. [Zhang P,Zhang R R,Du S T. 2015. Research advances in nitrate uptake and transport in plants[J]. Journal of Plant Nutrition and Fertilizer,21(3):752-762.]
張洋. 2018. 殼寡糖提高水稻幼苗抗寒性的機理研究[D]. 上海:華東理工大學. [Zhang Y. 2018. The mechanism of improving rice seedlings cold resistance by chitooligosaccharide[D]. Shanghai:East China University of Science and Technology.]
張運紅,杜君,和愛玲,孫克剛,鄭春風,楊煥煥,丁華. 2017. 海藻酸鈉寡糖對水稻生長發(fā)育、產(chǎn)量及鎘吸收分布的影響[J]. 江西農(nóng)業(yè)學報,29(6):1-6. doi:10.19386/j.cnki.jxnyxb.2017.06.01. [Zhang Y H,Du J,He A L,Sun K G,Zheng C F,Yang H H,Ding H. 2017. Effects of alginate oligosaccharides on growth,development,yield,and cadmium absorption and distribution of rice[J]. Acta Agriculturae Jiangxi,29(6):1-6.]
鄭典元,夏依依,丁占平. 2012. 殼寡糖對水稻幼苗生長及抗寒性能的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學,40(4):77-79. doi:10. 3969/j.issn.1002-1302.2012.04.024. [Zheng D Y,Xia Y Y,Ding Z P. 2012. Effects of chito oligosaccharide on the growth and cold resistance of rice seedlings[J]. Jiangsu Agricultural Sciences,40(4):77-79.]
Ao P X,Li Z G,F(xiàn)an D M. 2013. Involvement of antioxidant defense system in chill hardening-induced chilling tolerance in Jatropha curcas seedlings[J]. Acta Physiologiae Plantarum,35(1):153-160. doi:10.1007/s11738-012-1058-z.
Cao Y Y,Yang M T,Li X,Zhou Z Q,Wang X J,Bai J G. 2014. Exogenous sucrose increases chilling tolerance in cucumber seedlings by modulating antioxidant enzyme activity and regulating proline and soluble sugar contents[J]. Scientia Horticulturae,179:67-77. doi:10.1016/j.scien-ta.2014.09.016.
Cutler S R,Rodriguez P L,F(xiàn)inkelstein R R,Abrams S R. 2010. Abscisic acid:Emergence of a core signaling network[J]. Annual Review of Plant Biology,61(1):651-679. doi:10.1146/annurev-arplant-042809-112122.
Fahad S,Hussain S,Bano A,Saud S,Hassan S,Shan D,Khan F A,Khan F,Chen Y T,Wu C. 2015. Potential role of phytohormones and plant growth-promoting rhizobacteria in abiotic stresses:Consequences for changing environment[J]. Environmental Science and Pollution Research,22(7):4907-4921. doi:10.1007/s11356-014-3754-2.
Gaderer R,Seidl-Seiboth V,de Vries R P,Seiboth B,Kappel L. 2017. N-acetylglucosamine,the building block of chitin,inhibits growth of Neurospora crassa[J]. Fungal Genetics and Biology,107:1-11. doi:10.1016/j.fgb.2017.07. 005.
Hussain H A,Hussain S,Khaliq A,Ashraf U,Anjum S A,Men S N,Wang L C. 2018. Chilling and drought stresses in crop plants:Implications,cross talk,and potential mana-gement opportunities[J]. Frontiers in Plant Science,9:393. doi:10.3389/fpls.2018.00393.
Hussain S,Khan F,Hussain H A. 2016. Physiological and biochemical mechanisms of seed priming-induced chilling tolerance in rice cultivars[J]. Frontiers in Plant Science,7:116. doi:10.3389/fpls.2016.00116.
Kashulin P A,Merzlyak M N,Zhiboedov P M,Zhirov V K. 2000. Extremely rapid effects of polyunsaturated fatty acids and N-acetylglucosamine on free-radical metabolism in cultured potato plant cells[J]. Biochemical Society Transactions,28(6):865-867. doi:10.1042/bst0280865.
Li P F,Ma B L,Xiong Y C,Zhang W Y. 2017. Morphological and physiological responses of different wheat genotypes to chilling stress:A cue to explain yield loss[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture,97(12):4036-4045. doi:10.1002/jsfa.8271.
Liu X M,Zhou Y L,Xiao J W,F(xiàn)ei B. 2018. Effects of chil-ling on the structure,function and development of chloroplasts[J]. Frontiers in Plant Science,9:1715. doi:10.3389/ fpls.2018.01715.
Lukatkin A S,Brazaityte A,Bobinas C,Duchovskis P. 2012. Chilling injury in chilling-sensitive plants:A review[J]. Zemdirbyste-Agriculture,99(2):111-124. doi:10.3906/tar-1112-44.
Sharma S,Chen C,Khatri K,Rathore M,Pandey S. 2019. Gracilaria dura extract confers drought tolerance in wheat by modulating abscisic acid homeostasis[J]. Plant Physio-logy and Biochemistry,136:143-154. doi:10.1016/j.pl-aphy.2019.01.015.
Shigeru T,Mitsuo O,Yusuke J,Hisakazu Y,Hanae K,Naoto S,Eiichi M. 2006. Induction of resistance against rice blast fungus in rice plants treated with a potent elicitor,N-acetylchitooligosaccharide[J]. Bioscience Biotechnology and Biochemistry,70(7):1599-1605. doi:10.1271/bbb.50677.
Singh M,Kumar J,Singh S,Singh V,Prasad S. 2015. Roles of osmoprotectants in improving salinity and drought to-lerance in plants:A review[J]. Reviews in Environmental Science and Biotechnology,14(3):407-426. doi:10.1007/s11157-015-9372-8.
Wan X R,Li L. 2004. Pathways and related enzymes of ABA biosynthesis in higher plants[J]. Chinese Bulletin of Bo-tany,21(3):352-359. doi:10.1300/J079v30n03_01.
Yin H,Du Y G,Dong Z M. 2016. Chitin oligosaccharide and chitosan oligosaccharide:two similar but different plant elicitors[J]. Frontiers in Plant Science,7:522. doi:10.3389/ fpls.2016.00522.
Zhang Y,F(xiàn)an L Q,Zhao M Y,Chen Q M,Qin Z,F(xiàn)eng Z H,F(xiàn)ujiwara T,Zhao L M. 2019. Chitooligosaccharide plays essential roles in regulating proline metabolism and cold stress tolerance in rice seedlings[J]. Acta Physiologiae Plantarum,41(6):1-11. doi:10.1007/s11738-019-2864-3.
Zou P,Tian X Y,Dong B. 2017. Size effects of chitooligomers with certain degrees of polymerization on the chilling tolerance of wheat seedlings[J]. Carbohydrate Polymers,160:194-202. doi:10.1016/j.carbpol.2016.12.058.
(責任編輯 王 暉)