陽曦,劉瑋,向世杰
(1.綿陽市食品藥品檢驗所,四川 綿陽 621000;2.四川省農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全中心,成都 610000)
玉米赤霉烯酮(zearalenone,ZEN)是由鐮刀菌產(chǎn)生的一類真菌毒素,在谷類和豆類及其制品中廣泛存在[1]。人或動物食用被玉米赤霉烯酮污染的食物后,會對健康造成一定危害,主要表現(xiàn)為生殖系統(tǒng)和免疫系統(tǒng)毒性[2-4]。世界衛(wèi)生組織規(guī)定玉米赤霉烯酮的最大耐受量為0.5 μg/(kg·d),我國GB 2761-2017《食品安全國家標準 食品中真菌毒素限量》[5]中規(guī)定谷物及其制品中玉米赤霉烯酮的限量值為60 μg/kg。醬油的主要原料為大豆、小麥,均為受玉米赤霉烯酮污染的高風險作物。醬油在生產(chǎn)工藝上雖然有滅菌環(huán)節(jié),但多采用高溫巴氏消毒法(85~90 ℃)進行,而玉米赤霉烯酮具有較強的耐熱性,在110 ℃以下加熱1 h以上才能完全被破壞。個別生產(chǎn)經(jīng)營者對釀造用糧存僥幸心理,在原料上沒有嚴格把關(guān),導致醬油產(chǎn)品中玉米赤霉烯酮超標。因此,非常有必要對醬油中的玉米赤霉烯酮進行檢測和控制。
文獻報道的玉米赤霉烯酮的檢測方法主要有酶聯(lián)免疫法[6]、薄層色譜法[7]、高效液相色譜法[8-9]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[10]、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法等[11-12]。酶聯(lián)免疫法雖然靈敏度高,能夠達到1.0 μg/kg,但特異性差,陽性樣品需要進一步確證。薄層色譜法靈敏度較低,一般為0.1 mg/kg以上,同樣不能準確地定性。高效液相色譜法雖然具有較高的靈敏度(通常能達到1.0 μg/kg),但樣品需要進行柱后衍生,分析時間長。氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同樣需要衍生化處理,且方法的穩(wěn)定性差,應用并不廣泛。目前采用最多的是高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法,該方法選擇性強、靈敏度高、定量準確,是近年來測定真菌毒素的首選方法。免疫親和柱凈化為液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用最常見的凈化方法,但該方法存在成本較高、耗時長等缺點。本文采用液液萃取法對目標物進行提取凈化,前處理步驟簡單,經(jīng)高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定,內(nèi)標法定量,實現(xiàn)了醬油中玉米赤霉烯酮的快速準確測定。
玉米赤霉烯酮標準溶液:100.0 μg/mL(乙腈),青島Pribolab公司;13C18-Zearalenone標準溶液:25.0 μg/mL(乙腈),青島Pribolab公司;乙腈(色譜純):美國Thermo Fisher Scientific公司;甲醇、無水乙醇:分析純,成都市科隆化學品有限公司;三氯甲烷(分析純):重慶川東化工有限公司。
樣品:市售醬油共18批。
U3000-4000 Q TRAP高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀 美國AB SCIEX公司;ME204T/02電子天平 瑞士梅特勒-托利多有限公司;Milli-Q超純水儀 美國Millipore公司。
1.2.1 Zearalenone標準使用溶液的配制
精密吸取Zearalenone標準溶液1 mL置于100 mL容量瓶中,加50%乙腈稀釋至刻度,搖勻,制成濃度為1.00 μg/mL的標準使用溶液。
1.2.213C18-Zearalenone內(nèi)標使用溶液的配制
精密吸取13C18-Zearalenone標準溶液1 mL置于5 mL容量瓶中,加50%乙腈稀釋至刻度,搖勻,制成濃度為5.00 μg/mL的內(nèi)標使用溶液。
1.2.3 樣品前處理
樣品經(jīng)充分混勻后,稱取試樣5 g于50 mL離心管中,加入13C18-Zearalenone內(nèi)標使用溶液40 μL,渦旋混合后靜置30 min。精密加入20 mL乙腈,渦旋5 min后以6000 r/min離心5 min,吸取上清液5 mL于氮吹管中,加入1 mL水、5 mL三氯甲烷,渦旋30 s后靜置分層,棄去上層溶液,下層溶液于50 ℃水浴中用氮氣吹干,加入1 mL 50%乙腈復溶,渦旋混勻,經(jīng)0.22 μm水系濾膜過濾后,待測定。
1.2.4 空白基質(zhì)溶液的制備
稱取空白基質(zhì)樣品5 g于50 mL離心管中加入13C18-Zearalenone內(nèi)標使用溶液40 μL,然后按1.2.3操作。
1.2.5 基質(zhì)標準系列工作液
取Zearalenone標準使用溶液適量,用空白基質(zhì)溶液制成濃度為5.0,25.0,50.0,75.0,100.0 ng/mL的基質(zhì)標準系列工作溶液,每個濃度溶液中內(nèi)標物13C18-Zearalenone的濃度為50 ng/mL。
1.2.6 液相色譜條件
色譜柱:Thermo Acclaim C18(3.0 mm×100 mm,3 μm);流速:0.4 mL/min;進樣體積:5 μL;柱溫:35 ℃;流動相A:乙腈,流動相B:水;梯度洗脫程序見表1。
表1 液相色譜梯度洗脫條件Table 1 The gradient elution conditions of liquidchromatography
1.2.7 質(zhì)譜條件
電噴霧電離源(electrospray ionization, ESI)負離子模式;多反應監(jiān)測(MRM);離子化電壓:4500 V;離子源溫度:500 ℃;噴霧器壓力:55 psi;輔助加熱器壓力:50 psi;氣簾氣壓力:25 psi;其他參數(shù)見表2。
表2 質(zhì)譜分析參數(shù)Table 2 Mass spectrometric analysis parameters
在ESI-模式下,通過外置針泵連續(xù)進樣,將濃度為1 μg/mL的ZEN和13C18-ZEN混合標準溶液泵入質(zhì)譜儀。根據(jù)化合物的相對分子質(zhì)量及分子結(jié)構(gòu)特征,首先確定母離子的質(zhì)荷比(m/z),再調(diào)整碰撞能量,分別選擇兩個響應值大的碎片離子為子離子,以豐度最大的子離子為定量離子,豐度次之的子離子為定性離子,再分別優(yōu)化碰撞能量和去簇電壓,得到MRM方法參數(shù)。
本試驗比較了乙腈-水、乙腈-10 mmol/L乙酸銨溶液、甲醇-水、甲醇-10 mmol/L乙酸銨溶液作流動相的色譜行為。在動態(tài)調(diào)整流動相比例的梯度洗脫程序中,使目標化合物在各流動相體系中獲得最佳保留。結(jié)果表明,目標化合物在乙腈-10 mmol/L乙酸銨溶液和甲醇-10 mmol/L乙酸銨溶液體系中響應強度約為乙腈-水、甲醇-水體系的50%。以甲醇-水為流動相時,雖然目標化合物靈敏度較高,但是不能獲得較好峰形。以乙腈-水為流動相時,目標化合物的峰形最好且靈敏度高。因此,最終確定以乙腈-水為本試驗的洗脫溶劑。ZEN定量離子的MRM圖見圖1。
圖1 ZEN定量離子的MRM圖Fig.1 MRM diagram of quantitative ions of ZEN
本試驗考察了乙腈、甲醇、乙醇作為提取溶劑對檢測結(jié)果的影響。樣品在20 μg/kg的添加濃度下,分別使用乙腈、甲醇、乙醇作提取溶劑,經(jīng)三氯甲烷凈化后采用13C18-Zearalenone做內(nèi)標進行定量。發(fā)現(xiàn)通過內(nèi)標進行校正后,3組檢測數(shù)據(jù)回收結(jié)果相當,均高于90%,但是用乙腈作提取溶劑內(nèi)標物的絕對回收率為72%,甲醇為61%,乙醇為60%,試驗結(jié)果見表3。從最后得到的待測溶液顏色來看,乙腈提取樣品后待測液為澄清透明的微黃色,甲醇和乙醇提取樣品后待測液為黃色,且乙醇提取樣品后待測液顏色最深,說明乙腈起到了較好的去除色素的作用。綜合考慮,最后選擇乙腈作為提取溶劑。
表3 不同提取溶劑對內(nèi)標物回收率的影響Table 3 Effect of different extraction solvents on the recovery rates of internal standard substances
現(xiàn)行國標和文獻中常使用乙腈-水(9+1)[13-14]和乙腈-水(84+16)[15]作為提取溶劑。本試驗首先用乙腈提取目標物,發(fā)現(xiàn)乙腈與醬油完全分層,當在乙腈中加入部分水時,乙腈水提取溶劑會與醬油部分互溶,從而無法確定樣品的稀釋體積。因此,本試驗采用純乙腈作為提取溶劑,渦旋5 min進行充分提取,取得了較好的效果。
常用的真菌毒素提取液凈化方式為免疫親和柱凈化法[16-17]及固相萃取小柱凈化法[18]。這兩種方式的凈化效果雖然較好,但存在操作步驟繁瑣、消耗時間長、成本較高等問題,不利于大批量樣品的處理。本試驗采取液-液萃取的方法進行凈化,在提取液中加入三氯甲烷對目標物進行萃取,利用分配系數(shù)差異將乙腈中的目標物進行轉(zhuǎn)移,起到凈化作用。試驗比較了三氯甲烷為1,3,5,7 mL的凈化效率,當采用外標法定量時,目標物的回收率分別為60%、66%、75%、75%。因此,選擇三氯甲烷使用量為5 mL作為萃取用量。
本試驗通過比較溶劑匹配標準曲線和基質(zhì)匹配標準曲線的斜率來判定基質(zhì)效應[19],按下式進行計算:
當ME<-20%時,表現(xiàn)為離子抑制;當-20%≤ME≤20%時,表現(xiàn)為弱基質(zhì)效應;當ME>20%時,表現(xiàn)為離子增強。
結(jié)果表明,當采用外標法定量時,ME為-47%;當采用內(nèi)標法定量時,ME為-27%,均表現(xiàn)為基質(zhì)效應抑制。
在食品理化分析時,目標物在前處理過程中會有不同程度的損失,在樣品中加入與目標物化學性質(zhì)相近的同位素內(nèi)標,有助于校正樣品的前處理過程,同時也能校正儀器在進樣時引起的誤差。全13C同位素內(nèi)標與目標物有相同的結(jié)構(gòu)和化學性質(zhì),且色譜行為一致,基質(zhì)效應相同,在提取時加入穩(wěn)定同位素內(nèi)標能夠反映樣品前處理的效率,校正進樣體積誤差,對質(zhì)譜離子化效率進行補償,因此本試驗選擇13C18-Zearalenone作內(nèi)標,并采用基質(zhì)匹配標準曲線進行定量。
對空白基質(zhì)系列標準溶液進樣測定,繪制工作曲線,計算回歸方程。以定量離子信噪比S/N=3時對應的濃度水平為檢出限,以定量離子信噪比S/N=10時對應的濃度水平為定量限,結(jié)果見表4。結(jié)果表明,在所測線性范圍內(nèi),ZEN具有良好的線性關(guān)系,檢出限、定量限均優(yōu)于國家標準。
表4 玉米赤霉烯酮標準品回歸方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限及定量限Table 4 The regression equation, correlation coefficient, LOD and LOQ of ZEN
按試驗方法進行了3個水平的加標回收試驗,每個加標水平平行6次試驗,添加水平及結(jié)果見表5。結(jié)果表明,方法回收率為92.7%~96.0%,相對標準偏差小于3.0%,該方法具有良好的準確度和精密度。
表5 回收試驗結(jié)果(n=6)Table 5 The results of recovery test (n=6)
對市售18批醬油以及原料用8批小麥、8批大豆按選定方法進行測定,結(jié)果18批醬油均未檢出ZEN,3批小麥檢出ZEN(3.5~41.3 μg/kg),4批大豆檢出ZEN(8.2~22.8 μg/kg),均未超過GB 2761-2017規(guī)定的谷物及其制品中玉米赤霉烯酮的限量值60 μg/kg,說明生產(chǎn)企業(yè)在原料把控和生產(chǎn)工藝上控制良好。
對5批空白基質(zhì)樣品添加標準溶液進行基質(zhì)加標試驗,模擬陽性醬油樣本,加標水平為20 μg/kg,通過該方法進行測定,回收率分別為91.5%、98.7%、99.2%、90.6%和96.3%。
本試驗建立了醬油中玉米赤霉烯酮的高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測方法,樣品經(jīng)20 mL乙腈提取,5 mL三氯甲烷萃取凈化,用乙腈-水作流動相進行梯度洗脫,在負離子模式下進行多反應監(jiān)測掃描,內(nèi)標法定量測定樣品中玉米赤霉烯酮的含量,該方法玉米赤霉烯酮在5~100 ng/mL濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,回收率在90%以上,檢出限為0.1 μg/kg。該方法前處理簡單、靈敏度高、重復性好,能有效地滿足醬油中玉米赤霉烯酮的測定。