木薯種質(zhì)資源中醇腈裂解酶基因12G132600編碼區(qū)終止突變及頻率的研究

周新成，陳新，盧誠，廖明馨，王海燕，唐清杰，任軍方，王文泉

摘? 要：木薯是重要的糧食作物，但塊根中含有的氰苷及其產(chǎn)生的氫氰酸嚴(yán)重影響木薯的食用品質(zhì)，增加加工成本。α-醇腈裂解酶（alpha-hydroxy nitrile lyase， HNL）是植物催化醇腈裂解產(chǎn)生氫氰酸的關(guān)鍵酶。重測序數(shù)據(jù)顯示，‘華南8號木薯品種中HNL編碼基因家族的一個成員12G132600在編碼區(qū)內(nèi)部發(fā)生了終止突變，導(dǎo)致基因編碼區(qū)變短。本研究對國內(nèi)外251份木薯種質(zhì)資源的重測序結(jié)果進行分析，共發(fā)現(xiàn)60份材料醇腈裂解酶基因12G132600存在相同的終止突變，該60份材料全部是終止突變與非終止突變的雜合基因型，且全部為栽培類型木薯。說明該突變是木薯由野生型馴化為栽培型以后發(fā)生的。通過對木薯品種‘華南9號該基因的克隆測序以及與已發(fā)表的木薯品種‘TME3基因組序列的比對分析，證實了該突變在木薯品種中真實存在。

關(guān)鍵詞：木薯;氫氰酸;醇腈裂解酶;種質(zhì)資源;基因突變

中圖分類號：S533? ? ? 文獻標(biāo)識碼：A

Premature Mutation Frequencies in Coding Region of Gene 12G132600 Encoding Alpha-hydroxy Nitrile Lyase in Cassava Germplasms

ZHOU Xincheng1，2， CHEN Xin1，2， LU Cheng1，2， LIAO Mingxin1，2， WANG Haiyan1，2， TANG Qingjie3，

REN Junfang4，5*， WANG Wenquan1，2*

1. Institute of Tropical Bioscience and Biotechnology， Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences. Haikou， Haina 571101， China; 2. Key Laboratory of Biology and Genetic Resources of Tropical Crops， Ministry of Agriculture and Rural Affairs. Haikou， Hainan 571101， China; 3. Alimentarn Crop Institute， Hainan Academy of Agricultural Sciences， Haikou， Hainan 571100， China; 4. Tropical Horticulture Research Institute， Hainan Academy of Agricultural Sciences， Haikou， Hainan 571100， China; 5. Hainan Key Laboratory for innovative Development and Utilization of Tropical Special Economic Plants. Haikou， Hainan 571100， China.

Abstract： Cassava is an important food crop in the world. The presence of high-level cyanogenic glucosides and HCN produced poses a major nutritive drawback and means a higher labor costs to remove these toxic substances. Cyanogensis is an important protective mechanism for plant to avoid grazing by animals. Alpha-hydroxy nitrile lyase （HNL） plays a key role in cyanogensis reaction. We found that there was a premature termination mutation in the coding sequence of HNL gene of cassava variety SC8， which would result in short length in protein encoded and could affect the function of the protein. These researches would give useful information about the role of the point mutation and provide new ideals for selecting cassava accessions with low-content hydrocyanic acid in molecular breeding. Firstly we surveyed the resequencing data of 251 cassava varieties from all around the world to characterize the same mutation site in HNL gene and found that there were sixty accessions belonging to cultivated cassava harboring the same mutation as SC8， indicting the premature mutation occurred during or after cassava domestication. We cloned and sequenced the orthologous genes of 12G132600 in SC9 by PCR and compared the corresponding sequence of TME3 from the genome assembly. The results further strengthened the evidence of this premature mutation in cassava varieties.

Keywords： cassava; hydrocyanic acid; alpha-hydroxy nitrile lyase; germplasms; gene mutation

DOI： 10.3969/j.issn.1000-2561.2021.10.004

木薯（Manihot esculenta Crantz）是世界三大薯類作物之一，可作為糧食供人類食用。世界上將木薯作為主糧的人群超過7億人，主要分布在非洲和中南美洲國家，例如尼日利亞，年產(chǎn)鮮薯4000萬噸，其中90%以上充當(dāng)糧食。目前在我國，鮮薯主要作為加工淀粉和酒精的原料，較少直接食用。但隨著我國耕地逐年減少、人口越來越多，糧食安全問題日益突出。而木薯具有抗旱、耐瘠薄等特點，在較少水肥條件下也可獲得比較高的收成，因此，選育食用木薯品種、發(fā)展食用木薯生產(chǎn)，可在一定程度上緩解我國的糧食緊張問題。

木薯作為食物的一個主要限制因子是其塊根的氰苷含量較高。氰苷，又名生氰葡萄糖苷，是一種廣泛存在于高等植物中的糖苷類次生代謝產(chǎn)物，在植物受到蟲害、動物啃食等損傷的情況下，會轉(zhuǎn)化為醇腈，醇腈在α-醇腈裂解酶（又名醇腈酶）催化下裂解產(chǎn)生氫氰酸，對動物產(chǎn)生毒害，從而對植物起保護作用[1-2]，這個過程被稱為生氰反應(yīng)（cyanogenesis）。目前已在超過2500多種植物中檢測到含有氰苷類物質(zhì)，包括常見的高粱、豆類、苦杏仁等等，木薯也以含氰苷聞名[3-4]。含氰苷可使植物抗逆性增強，對自身是有益的，但高氰苷含量的木薯，不僅食用時有苦味，而且會使人中毒。因此，了解木薯氰苷代謝規(guī)律，選育低氰苷含量或者很少產(chǎn)生有毒氫氰酸的木薯品種，是發(fā)展食用木薯的重要課題。

在植物體內(nèi)，人們對生氰反應(yīng)的基本過程已經(jīng)明確，首先是由少數(shù)幾種氨基酸經(jīng)過氧化反應(yīng)生成醇腈，醇腈不穩(wěn)定，需要在糖基轉(zhuǎn)移酶的作用下轉(zhuǎn)化為穩(wěn)定性好的氰苷。例如，在高粱中，L-酪氨酸在2種細(xì)胞色素P450氧化酶CYP79A1和CYP71E1的作用下首先生成不穩(wěn)定的醇扁桃腈[5-6]，最后在糖基轉(zhuǎn)移酶UGT85B1的作用下生成穩(wěn)定的蜀黍氰苷（dhurrin）[7]。在動物啃食過程中，不穩(wěn)定的醇扁桃腈在pH>6時會自發(fā)產(chǎn)生氫氰酸，在pH<6時，需要α-醇腈裂解酶催化才可產(chǎn)生氫氰酸，木薯中情況也是如此[8]。由于植物代謝經(jīng)常產(chǎn)生有機無機的酸類物質(zhì)，細(xì)胞內(nèi)pH通常小于6，所以α-醇腈裂解酶是植物生氰反應(yīng)的關(guān)鍵酶[8]。人們從植物中早已提取到α-醇腈裂解酶的純化物，并獲得該酶的X-射線晶體結(jié)構(gòu)圖。該酶分子由大約260個氨基酸組成，其中121～165位的肽段為底物識別和結(jié)合區(qū)域。而保守的位于第80位的絲氨酸、第208位的天冬氨酸和第236位的組氨酸是催化活性中心位點。這些酶活性結(jié)構(gòu)的知識為利用該酶將氫氰酸人工合成生產(chǎn)醇腈類化合物奠定了重要基礎(chǔ)，也使該酶成為基因工程中重要的工程酶。人們已經(jīng)從木薯中分離到多個編碼α-醇腈裂解酶的基因序列并驗證了其表達(dá)規(guī)律和功能，同時發(fā)現(xiàn)木薯基因組中存在至少7個編碼該酶的基因，但確切的有幾個基因編碼并不清楚[4， 8-10]。

近年來，國內(nèi)外學(xué)者分別對5個木薯材料的基因組進行了測序與基因組注釋，并對100多份栽培品種進行了重測序[11-13]。序列注釋表明，木薯基因組中存在11個HNL基因成員，串聯(lián)分布在12號和13號染色體上。在對‘華南8號木薯品種重測序序列進行分析時，我們發(fā)現(xiàn)其中一個編號為12G132600的基因在編碼區(qū)內(nèi)部存在一個單堿基突變，即SNP，該SNP的出現(xiàn)使編碼精氨酸的CGA突變成終止密碼TGA，理論上該基因編碼的蛋白質(zhì)長度縮短了30%左右。從結(jié)構(gòu)上分析，該短的蛋白序列包含121～165位的底物識別和結(jié)合區(qū)域，也包含第80位的絲氨酸催化位點，但缺少第208位的天冬氨酸和第236位的組氨酸這2個起催化作用的位點。因此，該突變屬于自然突變，可能使基因喪失功能，利用該突變?yōu)榻档湍臼須淝杷岫拘蕴峁┝艘环N可能途徑。

本研究對251份木薯材料的重測序數(shù)據(jù)進行分析，重點研究12G132600基因編碼區(qū)內(nèi)部的終止突變，并對食用木薯品種‘華南9號的12G132600基因進行克隆和Sanger測序，驗證重測序的結(jié)果，旨在了解木薯種質(zhì)群體中該醇腈裂解酶基因編碼區(qū)終止突變的分布狀況，為利用該基因培育低氫氰酸品種提供有用信息。

1? 材料與方法

1.1? 材料

木薯群體重測序數(shù)據(jù)包括241份國外已發(fā)表文章的材料[14]，另外還對10份引進的木薯種質(zhì)材料進行了重測序，一共251份。包括栽培品種（系）、木薯野生亞種（Manihot esculenta ssp. flabellifolia）和在進化上與木薯栽培類型較近的野生種（Manihot glaziovii）。國外測序材料中，栽培品種（系）共217份，野生亞種flabellifolia的材料13份，野生種Manihot glaziovii有11個。本研究進行重測序的材料有10個，即‘GR4‘HB60‘Mianbaomushu‘NZ199‘SC10‘R3‘SC6068‘SC9（‘華南9號）‘Wenchang?hon?gxin‘Yinniyeshengzhong。其中‘Yinniyes?he?ngzhong為野生種Manihot glaziovii，采自巴西Bahil省，其余9份材料屬栽培類型，種植于中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶生物技術(shù)所試驗田。251份分析材料的種、亞種及地理來源等信息見表1。

1.2? 方法

1.2.1? 木薯種質(zhì)重測序數(shù)據(jù)及單核苷酸多態(tài)性（SNP）提取? 國外已發(fā)表木薯重測序數(shù)據(jù)從網(wǎng)站ftp：//ca?s?s?-avabase.org/HapMapII/WGSseq/下載。本研究的10份木薯材料首先利用艾萊德公司新型植物基因組DNA提取試劑盒提取高質(zhì)量基因組DNA，送諾禾致源公司進行建庫和測序。

重測序數(shù)據(jù)利用BWA軟件[15]進行基因組比對，然后利用SAMtools v1.4[16]及BCFtools v1.9[17]軟件進行SNP提取。

1.2.2? ‘華南9號木薯12G132600基因的克隆測序? 木薯基因組有11個α-醇腈裂解酶基因，序列相似度高，為了克隆到12G132600基因，在基因的編碼區(qū)上游和下游各成員非保守區(qū)設(shè)計引物，特異性擴增12G132600基因。所用引物為HNL-1L（5′-GCAGCTGGCCACAAGGTT-AC-3′），HNL-1R（5′-TTTCTGGAAGGCGATGG-AGTT- 3′）;另一對引物為HNL-2L（5′-TGTTGCC-ATT-GC?T?G???CTGATAAA-3′），HNL-2R（5′-TGGAA- ?GG?CG?A?T?GGAGTTGC-3′）。擴增條件為：（1）95 ℃變性5 min;（2）95 ℃變性30 s;（3）53 ℃復(fù)性45 s;（4）72 ℃延伸1.5 min;（5）72 ℃延伸10 min;（6）4 ℃保存。第2步到第4步循環(huán)34次。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳后用膠回收試劑盒（Omega生物技術(shù)有限公司）回收，末端加A后用T載體連接，轉(zhuǎn)化大腸桿菌后挑克隆送上海生工生物公司測序。

2? 結(jié)果與分析

2.1? 木薯群體重測序數(shù)據(jù)中α-醇腈裂解酶基因的變異情況

文獻中測序的木薯品種‘華南8號中α-醇腈裂解酶基因HNL發(fā)生編碼區(qū)提前終止突變的是編號為12G132600的基因。在最新V7.0版木薯AM560基因組上，突變位點發(fā)生在12號染色體33277058位點處（圖1A）。圖1A顯示該基因有2個內(nèi)含子，終止突變發(fā)生在第3個外顯子上，在編碼區(qū)的2/3長度處。通過SNP提取，我們測序的10份材料中只有SC9發(fā)生了同樣的終止突變（圖1B）。在SC9重測序結(jié)果中，覆蓋到該突變位點的測序reads數(shù)為22，在22條reads中，有10條在33277058位點與AM560相同，另12條則發(fā)生C->T的點突變（圖1B箭頭所示）。

另外檢測的241份國外材料中，有59份材料與SC8、SC9在該位點的突變情況相同，即都發(fā)生了G->A的突變，對應(yīng)密碼子則發(fā)生了CGA-> TGA的終止突變（表2）。

2.2? 木薯品種‘華南9號12G132600基因的克隆與測序

二代測序因為技術(shù)原因，測序結(jié)果可能發(fā)生一定錯誤，尤其在測序覆蓋度不高的情況下更是如此。本研究分析的測序深度都在10倍覆蓋度以上，而且在251份木薯材料中有近1/4的材料都在該位點有相同SNP檢出，這說明了分析數(shù)據(jù)的可靠性。然而，我們自己實驗室對‘華南8號（SC8）木薯品種進行了重測序和10×Genomics測序，對結(jié)果進行分析時，在12G132600基因相同位點未發(fā)現(xiàn)變異，與國外所測結(jié)果不同。為進一步證明木薯群體中12G132600基因編碼區(qū)內(nèi)部存在終止突變的真實性，本研究對‘華南9號木薯品種中的該基因用高保真酶擴增，TA克隆后采用Sanger法進行測序，以驗證該變異的真實性。以設(shè)計的2對引物對‘華南9號和‘華南8號進行擴增后得到了目標(biāo)大小的條帶（圖2A）。隨后采用效果更理想的第1對引物對‘華南9號DNA進行擴增，隨機挑選6個克隆送樣測序，其中3個測序結(jié)果證明了該突變確實存在（圖2B，第742位），另3個克隆則無突變。

2.3? 木薯品種‘TME312G132600基因序列分析

國外學(xué)者已對木薯品種‘TME3的基因組進行了測序和組裝[13]，本研究利用木薯‘AM560的12G132600基因編碼區(qū)序列與‘TME3基因組進行比對，結(jié)果顯示，序列比對最好的位置在‘TME3基因組的Scaffold7上，編碼區(qū)從位點25931695到位點25932635。第3個開放閱讀框區(qū)的比對結(jié)果見圖3。其中‘TME3Scaffold7上25931919處的序列堿基為T（圖3箭頭所指），正是本研究發(fā)現(xiàn)的提前終止突變位置?！甌ME3的基因組序列為國外學(xué)者獨立組裝，驗證了本研究發(fā)現(xiàn)的12G132600基因編碼區(qū)內(nèi)部存在終止突變的結(jié)果。

3? 討論

隨著測序技術(shù)的不斷發(fā)展，越來越多的動植物基因組將被測序。當(dāng)一個物種有了參考基因組后，通過價格便宜的高通量測序，就可以發(fā)現(xiàn)物種內(nèi)部大量的遺傳變異，這些遺傳變異對于理解該物種內(nèi)功能基因的多樣性、重要性狀的演化規(guī)律等非常重要。目前已經(jīng)在水稻、玉米、棉花等多種作物中都進行了相關(guān)的研究，不僅發(fā)現(xiàn)了基因內(nèi)部以及基因間存在的大量的遺傳變異，更重要的是找到了與重要性狀關(guān)聯(lián)的變異。相比于Genotyping by sequencing等簡化重測序方法，全基因組重測序的覆蓋度更高（通常在10倍以上），覆蓋基因組區(qū)域的范圍更廣，因此所得到的變異的可靠性更強。本研究所發(fā)現(xiàn)的木薯群體基因組中α-醇腈裂解酶基因編碼區(qū)內(nèi)部存在提前終止突變，正是通過重測序發(fā)現(xiàn)的，且在‘華南9號木薯品種中的Sanger測序也證實了重測序的可靠性?？梢哉f，重測序技術(shù)是后基因組時代研究物種群體遺傳學(xué)的有力工具。

木薯屬共有90多個物種[18]，在M. esculenta這個種內(nèi)，包括栽培類型亞種（M. esculenta ssp esculenta）和野生類型亞種（M. esculenta ssp flabellifolia），現(xiàn)在普遍認(rèn)為栽培類型的木薯是由野生亞種馴化而來。其余的種都為野生型，其中與栽培木薯親緣較近的野生種是M. glaziovii。本研究所分析的251份木薯種質(zhì)中，包括栽培類型的木薯種質(zhì)213份，木薯近緣野生亞種（M. esculenta ssp flabellifolia）16份，另還有9份野生種M. glaziovii和13份野生栽培雜交種材料。值得指出的是，α-醇腈裂解酶基因編碼區(qū)存在終止突變的60份材料均為栽培類型。說明該變異是在木薯從野生亞種馴化成栽培類型以后才出現(xiàn)的。當(dāng)然，由于野生種及野生亞種的材料數(shù)較少，該結(jié)果需要進一步擴大群體進行證實。另外，所有檢測到含終止突變的栽培木薯材料均為雜合基因型，即有一個未突變的等位基因與突變基因同時存在。這可能是該基因在某些特定組織或在特定發(fā)育時期表達(dá)，不能完全突變，突變基因純合的狀況對植物的保護作用大大減弱，不利于木薯對病蟲害等傷害的抵御。

實踐證明，通過基因組重測序，可以在物種內(nèi)不同種質(zhì)材料間發(fā)現(xiàn)大量的遺傳變異，包括單核苷酸多態(tài)性和插入缺失等各種變異，并為此開發(fā)了ANNOVAR[19]等一些生物學(xué)軟件來對重測序數(shù)據(jù)中的變異的功能進行注釋。目前的基因組測序與注釋表明木薯基因組上存在11個HNL基因家族的成員，這11個成員分別串聯(lián)分布在第12號和13號染色體上[10]。其中，13G092100編碼的氨基酸序列與已發(fā)表的經(jīng)過功能驗證的MeHNL10同源性達(dá)100%，應(yīng)該是同一個基因[8]，國內(nèi)學(xué)者王丹等[9]及程樹華等[10]克隆的木薯醇腈酶基因經(jīng)過序列比對及進化分析，事實上也應(yīng)該是HNL10的等位基因。其他的成員（包括12G132600）在結(jié)構(gòu)上具有與α-醇腈裂解酶相同的結(jié)構(gòu)域，但其功能尚需要進一步實驗驗證。通過轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)可以看出，這11個成員中有5個在葉片和塊根組織中有表達(dá)，12G132600是其中之一（結(jié)果未發(fā)表）。由于本研究發(fā)現(xiàn)的突變發(fā)生在編碼區(qū)，會導(dǎo)致所編碼的蛋白質(zhì)長度縮短30%左右。從結(jié)構(gòu)上分析，該短的蛋白序列包含底物識別和結(jié)合區(qū)域，也包含絲氨酸催化位點，但缺少C端的天冬氨酸和組氨酸這2個起催化作用的位點。有報道指出，結(jié)構(gòu)相似的同工酶之間可通過競爭底物的方式相互產(chǎn)生干擾[20]。該突變基因表達(dá)的蛋白能否結(jié)合底物以及是否具有催化活性，在表達(dá)時能否和正常未突變的α-醇腈裂解酶存在底物競爭的關(guān)系，這是非常值得研究的。如果該突變蛋白能和底物結(jié)合，但沒有催化活性，那么其在體內(nèi)大量表達(dá)時便會與正常的α-醇腈裂解酶競爭結(jié)合底物，從而阻止α-醇腈裂解產(chǎn)生氫氰酸，這樣即可一定程度避免人類、動物等在食用木薯時受到氫氰酸的毒害。

參考文獻

[1] János V. Plant cyanogenic glucosides[J]. Toxicon， 2000， 38（1）： 11-36.

[2] M?ller B M. Functional diversifications of cyanogenic glucosides[J]. Current Opinion in Plant Biology， 2010， 13（3）： 337-346.

[3] Kannangara R， Motawia M S， Hansen N K K， et al. Characterization and expression profile of two UDP-glucosyltrans?f?erases， UGT85K4 and UGT85K5， catalyzing the last step in cyanogenic glucoside biosynthesis in cassava[J]. Plant Journal， 2011， 68（2）： 287-301.

[4] White W L B， Arias-Garzon D I， Sayre M M T. Cyanogenesis in cassava： The role of hydroxynitrile lyase in root cyanide production[J]. Plant Physiology， 1998， 116（4）： 1219- 1225.

[5] Sibbesen O， Koch B， Halkier B A， et al. Isolation of the hem-thiolate enzyme cytochrome P-450TYR， which catalyzes the committed step in the biosynthesis of the cyanogenic glucoside dhurrin in Sorghum bicolor （L.） Moench[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America， 1994， 91： 9740-9744.

[6] Kahn， R A， Bak S， Svendsen I， et al. Isolation and reconstitution of cytochrome P450ox and in vitro reconstitution of the entire biosynthetic pathway of the cyanogenic glucoside dhurrin from sorghum[J]. Plant Physiology， 1997， 115（4）： 1661-1670.

[7] Jones P R， M?ller B L， and H?j， P B. The UDP-glucose： p-hydroxymandelonitrile-O-glucosyltransferase that catalyzes the last step in synthesis of the cyanogenic glucoside dhurrin in Sorghum bicolor[J]. The Journal of Biological Chemistry， 1999， 274（50）： 35483-35491.

[8] Hughes J， Keresztessy Z， Brown K， et al. Genomic organization and structure of α-hydroxynitrile lyase in cassava （Manihot esculenta Crantz）[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics， 1998， 356（2）： 107-116.

[9] 王? 丹， 萬? 潔， 李? 維， 等. 木薯醇腈酶（HNL）cDNA在大腸桿菌中高效表達(dá)的初步研究[J]. 四川師范大學(xué)學(xué)報（自然科學(xué)版）， 2006， 29（3）： 360-363.

[10] 程樹華， 嚴(yán)共鴻， 吳? 襟， 等. 木薯α-羥腈酶的克隆、表達(dá)及其初步應(yīng)用[J]. 生物工程學(xué)報， 2001（1）： 78-83.

[11] Wang W Q， Feng B X， Xiao J F， et al. Cassava genome from a wild ancestor to cultivated varieties[J]. Nature Communi- cations， 2014， 5： 5110.

[12] Bredeson J V， Lyons J B， Prochnik S E， et al. Sequencing wild and cultivated cassava and related species reveals extensive interspecific hybridization and genetic diversity[J]. Nature Biotechnology， 2016， 34（5）： 562-570.

[13] Kuon J E， Qi W H， Schl?pfer P， et al. Haplotype-resolved genomes of geminivirus-resistant and geminivirus- susceptible African cassava cultivars[J]. BMC Biology， 2019， 17（1）： 75.

[14] Ramu P， Esuma W， Kawuki R， et al. Cassava haplotype map highlights fixation of deleterious mutations during clonal propagation[J]. Nature Genetics， 2017， 49（6）： 959-965.

[15] Li H. Aligning sequence reads， clone sequences and assembly contigs with BWA-MEM[J/OL]. Genomics， 2013. https：//figshare.com/articles/poster/Aligning_sequence_reads_clone_sequences_and_assembly_con_gs_with_BWA_MEM/963153/1.

[16] Li H， Handsaker B， Wysoker A， et al. The Sequence alignment/map （SAM） format and SAMtools[J]. Bioinformatics， 2009， 25（16）： 2078-2079.

[17] Narasimhan V， Danecek P， Scally A， et al. BCFtools/RoH： a hidden Markov model approach for detecting autozygosity from next-generation sequencing data[J]. Bioinformatics， 2016， 32（11）： 1749-1751.

[18] Nassar N M A， Hashimoto D Y C， Fernandes S D C. Wild Manihot species： Botanical aspects， geographic distribution and economic value[J]. Genetics and Molecular Research， 2008， 7（1）： 16-28.

[19] Wang K， Li M， Hakonarson H. ANNOVAR： Functional annotation of genetic variants from next-generation sequencing data[J]. Nucleic Acids Research， 2010， 38： e164.

[20] Erp H V， Shochey J， Zhang M， et al. Reducing isozyme competition increases targets fatty acid accumulation in seed Triacylglycerols of transgenic Arabidopsis[J]. Plant Physiology， 2015， 168： 36-46.

責(zé)任編輯：崔麗虹