李 帆,張琴星,童祥文,田高輝,顧力行,徐 瑤
武漢科技大學(xué)生命科學(xué)與健康學(xué)院 生物醫(yī)學(xué)研究院,湖北 武漢430081
1975年,洛克菲勒大學(xué)細(xì)胞生物學(xué)教授Bloble等[1]在一項(xiàng)研究中發(fā)現(xiàn)新合成的蛋白質(zhì)具有內(nèi)源性信號(hào),即信號(hào)肽(signal peptide,SP),最后通過(guò)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,他提出了“信號(hào)假說(shuō)”,用以解答蛋白質(zhì)合成后的去向問(wèn)題。SP是一段存在于前體蛋白N-端的短肽鏈,能夠調(diào)節(jié)前體蛋白的折疊和轉(zhuǎn)移。研究[2-5]表明,在原核系統(tǒng)中,SP附著后,外源基因能夠在原核表達(dá)系統(tǒng)中成功表達(dá)并分泌,如芽孢桿菌、乳酸桿菌、L型細(xì)菌、大腸桿菌等。除此之外,SP還廣泛應(yīng)用于真核表達(dá)系統(tǒng),如昆蟲(chóng)桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)和畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)[6-9]。由此可見(jiàn),SP在蛋白質(zhì)的分泌過(guò)程中扮演著極其重要的角色,通過(guò)分子生物學(xué)技術(shù),優(yōu)化SP序列對(duì)于提高外源蛋白的分泌量及活性具有重要的實(shí)際意義。
嵌合抗原受體T淋巴細(xì)胞(chimeric antigen receptor T lymphocyte,CAR-T)技術(shù)是通過(guò)分子生物學(xué)和基因工程改造技術(shù),將靶向特異性抗原的單鏈抗體的輕重鏈可變區(qū)(single chain antibody variable fragment,scFv)序列在患者的T細(xì)胞膜表面表達(dá),進(jìn)而特異性地殺死腫瘤細(xì)胞,達(dá)到治療癌癥的目的。CAR的基礎(chǔ)設(shè)計(jì)中包括一個(gè)腫瘤相關(guān)抗原結(jié)合區(qū)(通常來(lái)源于抗體抗原結(jié)合區(qū)域的scFv段)、一個(gè)細(xì)胞外鉸鏈區(qū)、一個(gè)跨膜區(qū)和一個(gè)細(xì)胞內(nèi)信號(hào)區(qū)[10-11]。細(xì)胞膜外部分是從單克隆抗體中純化的抗原靶向部分,該抗體由scFv(重鏈和輕鏈可變區(qū)的融合蛋白)組成。scFv中的SP對(duì)自身的表達(dá)尤為重要,scFv的N端SP具有三重結(jié)構(gòu),并且與分泌蛋白的SP具有相同的特征[12-13]:疏水性α螺旋核心(h區(qū)),其N(xiāo)端側(cè)翼為極性氨基酸殘基(n區(qū))。C端側(cè)翼在裂解位點(diǎn)(c區(qū))的-1和-3處含有螺旋斷裂的脯氨酸和甘氨酸殘基,以及小的不帶電荷的殘基。scFv一旦與腫瘤抗原結(jié)合,它就會(huì)觸發(fā)T細(xì)胞活化并導(dǎo)致細(xì)胞因子釋放和T細(xì)胞增殖[14]。SP能促進(jìn)CAR在T細(xì)胞膜表面的表達(dá),因此,對(duì)SP結(jié)構(gòu)進(jìn)行優(yōu)化和選擇是提高CAR表達(dá)水平的重要方法。
本研究以CD19為CAR-T治療靶點(diǎn),通過(guò)構(gòu)建4種不同SP的CD19-CAR表達(dá)載體,研究4種不同來(lái)源的SP對(duì)CAR-T轉(zhuǎn)染效率的影響,并驗(yàn)證其對(duì)CD19陽(yáng)性腫瘤細(xì)胞的殺傷效果,為臨床治療急性淋巴細(xì)胞性白血病(acute lymphoblastic leukemia,ALL)提供新的CAR-T治療方案。
人胚腎細(xì)胞293T、K562細(xì)胞系和NALM-6細(xì)胞系均購(gòu)自美國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心(American Type Culture Collection,ATCC),K562-CD19細(xì)胞系為武漢波睿達(dá)生物科技有限公司饋贈(zèng),大腸桿菌DH5α感受態(tài)購(gòu)自南京諾唯贊生物科技股份有限公司。
慢病毒表達(dá)載體BRD-PTK-Kan購(gòu)自武漢波睿達(dá)生物科技有限公司(自行構(gòu)建并保存),慢病毒包裝載體pMDLg/pRRE、pRSV-Rev和pMD2.G均購(gòu)自美國(guó)Addgene公司,大量質(zhì)粒抽提試劑盒購(gòu)自美國(guó)Axygen公司,胎牛血清、DMEM-Basic、RPMI-1640培養(yǎng)基及0.25%的Trypsin-EDTA均購(gòu)自美國(guó)Gibco公司,PE-Labeled Human CD19 Protein購(gòu)自北京百普賽斯生物科技有限公司,7-AAD購(gòu)自美國(guó)BD Bioscience公司,鈣黃綠素購(gòu)自上海阿拉丁生化科技股份有限公司,Human IFN-γ precoated ELISA kit(Cat:1110002)和Human TNF-α precoated ELISA kit(Cat:1117202)ELISA試劑盒購(gòu)自深圳達(dá)科為生物科技股份有限公司。寡核苷酸引物由武漢擎科生物科技有限公司合成。
CD19-CAR分子的單鏈抗體片段來(lái)源于GenBank:HM852952.1,將細(xì)胞外域CD19-scFv(包含SP1序列)、跨膜區(qū)、細(xì)胞內(nèi)域共刺激因子CD28、4-1BB及CD3ζ依次串聯(lián)連接,獲得完整的CD19-CAR片段,CD19抗原的scFv可在細(xì)胞膜上穩(wěn)定表達(dá)。然后通過(guò)分子克隆技術(shù)將SP2、SP3、SP4替換CD19-CAR中原有的SP1,即可得到含不同SP的CD19-CAR分子。SP序列如表1所示。
表1 SP的核苷酸和氨基酸序列及來(lái)源Tab.1 Nucleotide and amino acid sequences and sources of SP
通過(guò)基因合成得到序列大小為792 bp的CD19-scFv序列,包括SP1、VL輕鏈、Linker連接肽和VH重鏈。此外,基因合成得到大小為804 bp的基因序列,包括hinge、共刺激因子CD28、41BB及CD3ζ等結(jié)構(gòu)。
通過(guò)重疊PCR 技術(shù),將上述兩段序列連接,得到CD19-CAR 片段,然后使用引物CAR-F、CAR-R(表2),擴(kuò)增獲得不含SP1的CAR片段。用表2的引物序列分別擴(kuò)增基因合成的SP2、SP3、SP4,使其帶有相同的同源臂,然后與不含SP1的CAR片段連接即可獲得含有不同SP的CD19-CAR片段。隨后,通過(guò)BamHⅠ和EcoRⅠ酶切,利用亞克隆技術(shù)將其連接至慢病毒表達(dá)載體BRD-PTK-Kan。最終獲得分別含4種SP的CD19-CAR目的載體,即SP1-CD19-CAR、SP2-CD19-CAR、SP3-CD19-CAR和SP4-CD19-CAR,用于慢病毒包裝。
表2 引物序列Tab.2 Primer sequences
用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng)K562細(xì)胞系、K562-CD19細(xì)胞系和NALM-6細(xì)胞系。HEK-293T細(xì)胞培養(yǎng)使用含10%胎牛血清的 DMEM培養(yǎng)基,原代T細(xì)胞培養(yǎng)使用含1 000 U/mL IL2、1∶1 000的HEPES 1M、1∶1 000谷氨酰胺的TexMACS? GMP培養(yǎng)基;細(xì)胞通過(guò)添加或替換新鮮培養(yǎng)基維持生長(zhǎng),換液需要300×g離心5 min 去細(xì)胞上清,然后按2×106~3×106個(gè)/mL 的細(xì)胞密度添加培養(yǎng)基,輕輕吹打均勻后置于37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
利用第3代慢病毒包裝系統(tǒng),由慢病毒包裝載體pMDLg/pRRE、pRSV-Rev、pMD2.G和慢病毒表達(dá)質(zhì)粒組成。用PEI轉(zhuǎn)染法將慢病毒系統(tǒng)4種質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染HEK-293T細(xì)胞,轉(zhuǎn)染比例為12∶10∶6∶5,然后37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h后收集上清液,采用超速離心法進(jìn)行濃縮。滴度測(cè)定:采用6孔板,每孔鋪5×105個(gè)HEK-293T細(xì)胞,每孔分別加入0.5、1.0、2.0、5.0、10.0 μL的病毒,并加入聚凝胺(polybrene),使其濃度為5 μg/mL 。并設(shè)置陰性對(duì)照,72 h后通過(guò)PE-Labeled Human CD19 Protein用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)HEK-293T細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率并計(jì)算慢病毒滴度。每種病毒量設(shè)置2 組平行孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。
顯微鏡下觀察待轉(zhuǎn)染細(xì)胞生長(zhǎng)情況,取需要數(shù)目的生長(zhǎng)狀況良好的待轉(zhuǎn)細(xì)胞;于6孔板中按感染復(fù)數(shù)等于5計(jì)算需要加入慢病毒濃縮液的量,補(bǔ)加Polybrene使其終濃度為5 μg/mL;37 ℃斜置溫育4 h,最后補(bǔ)加培養(yǎng)基至正常培養(yǎng)濃度。
收集>5×105個(gè)轉(zhuǎn)染待測(cè)轉(zhuǎn)效或表面表達(dá)的細(xì)胞于流式管中,并選取未染色或未處理細(xì)胞作為陰性對(duì)照。向每管中加入1~2 mL流式細(xì)胞術(shù)用Buffer(PBS+2%~5%FBS,F(xiàn)BS維持細(xì)胞活性),300×g,離心5 min,去掉上清液,重復(fù)洗2遍,用流式細(xì)胞術(shù)用Buffer配制好工作濃度的染色抗體,并除盡離心后的上清液,重懸細(xì)胞于配制好的抗體中,4 ℃避光染色30 min。加入1~2 mL流式細(xì)胞術(shù)用Buffer終止染色,300×g,5 min離心,去掉上清液,重復(fù)洗2遍,加 2 μL 7-AAD 抗體(稀釋比例 1∶100)于 0.2 mL流式細(xì)胞術(shù)用Buffer中重懸細(xì)胞,2~3 h之內(nèi)流式細(xì)胞儀分析檢測(cè)。
以T、SP1-CD19、SP2-CD19、SP3-CD19 和SP4-CD19細(xì)胞作為效應(yīng)細(xì)胞,陽(yáng)性靶細(xì)胞為表達(dá)CD19的NALM-6細(xì)胞系和K562-CD19細(xì)胞系,陰性靶細(xì)胞為不表達(dá)CD19的K562細(xì)胞系。將靶細(xì)胞用calcein-AM 標(biāo)記后,將其接種于U底96孔培養(yǎng)板(100 μL/孔),接種密度為1 × 105個(gè)/mL。將體積為100 μL/孔,不同效靶比(25∶1、5∶1、1∶1)的效應(yīng)細(xì)胞加入對(duì)應(yīng)孔中,共培養(yǎng)體系用含5%胎牛血清的PBS。設(shè)置:陽(yáng)性對(duì)照組(加入裂解液)和陰性對(duì)照組(加入 PBS),各組均設(shè) 4個(gè)復(fù)孔,37 ℃生化培養(yǎng)箱中溫育3 h。將96 孔板在常溫下700×g離心10 min,將每個(gè)孔中所有的上清轉(zhuǎn)移至新的平底96孔板預(yù)標(biāo)記的對(duì)應(yīng)的孔中。分參數(shù)設(shè)置酶標(biāo)儀:激發(fā)光波長(zhǎng)485/20,發(fā)射光波長(zhǎng)530/25,掃描讀取熒光值。各組效應(yīng)細(xì)胞的細(xì)胞毒性根據(jù)以下公式計(jì)算:特異性殺傷百分率(%)=(實(shí)驗(yàn)組熒光值-陰性對(duì)照組熒光值)/(最大釋放組熒光值-陰性對(duì)照組熒光值)×100%,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。
取適量的靶細(xì)胞,加入5×103個(gè)K562細(xì)胞于96孔板中,作為陰性靶細(xì)胞組,陽(yáng)性靶細(xì)胞組加入5×103個(gè)CD19+的NALM-6 細(xì)胞,而空白組中不加入靶細(xì)胞,體積為100 μL。按照效應(yīng)細(xì)胞比靶細(xì)胞為10∶1,加入T 細(xì)胞和4種SP的CD19-CAR-T(5×104個(gè)/孔,體積100 μL)于對(duì)應(yīng)的孔中,每個(gè)樣品做3個(gè)復(fù)孔,使用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基作為共培養(yǎng)體系。37 ℃生化培養(yǎng)箱中溫育24 h后,將96 孔板常溫,700×g,10 min離心后收集100 μL上清液,按酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)試劑盒的說(shuō)明書(shū)常溫操作檢測(cè)IFN-γ和TNF-α的分泌水平,在450 nm波長(zhǎng)下檢測(cè)吸光度(D)值,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算各樣本細(xì)胞因子的含量(pg/mL)。
本研究采用GraphPad Prism 8軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
利用基因合成和分子克隆技術(shù)成功獲得了含不同SP的CD19-CAR片段(圖1A),將4種CD19-CAR分子亞克隆至慢病毒載體BRD-PTKKan上。通過(guò)BamHⅠ和EcoRⅠ雙酶切進(jìn)行鑒定,CD19-CAR分子的重鏈VH結(jié)構(gòu)含有BamHⅠ酶切位點(diǎn),則CD19-CAR分子被切成一段帶SP的序列和一段大小為1 052 bp大小的序列。結(jié)果顯示,含4種SP的重組質(zhì)粒酶切后可見(jiàn)4條帶SP的序列大小分別為 544、547、550和541 bp,兩段序列加起來(lái)的大小與攜帶不同SP的CD19-CAR片段一致(圖1B)。此外,載體測(cè)序結(jié)果證實(shí),4種CD19-CAR片段基因序列和插入的閱讀框與設(shè)計(jì)完全相符,證明4種慢病毒表達(dá)質(zhì)粒SP1-CD19-CAR、SP2-CD19-CAR、SP3-CD19-CAR和SP4-CD19-CAR構(gòu)建成功。
圖1 含4種不同SP慢病毒表達(dá)載體的構(gòu)建Fig.1 Construction of recombinant lentiviral plasmid containing four different SP
流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,用濃縮的4種病毒液分別以 0.1、0.2、0.4、0.8和1.6 μL的體積轉(zhuǎn)染HEK-293T細(xì)胞,以病毒添加量為0.4 μL 時(shí)計(jì)算對(duì)應(yīng)的4 種慢病毒(S P 1、SP2、SP3和SP4)的滴度。結(jié)果顯示,SP4[(2.80±0.10)×108TU/mL]慢病毒的滴度顯著高于SP1[(1.40±0.09)×108TU/mL]、SP2[(1.70±0.11)×108TU/mL]、SP3[(2.10±0.19)×108TU/mL](P<0.01,圖2A),證明4種慢病毒包裝成功,可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。此外,如圖2B所示,病毒添加量為0.4 μL時(shí)對(duì)應(yīng)的4種慢病毒(SP1、SP2、SP3和SP4)的轉(zhuǎn)染效率分別為11.3%、13.1%、16.6%和23.5%。
圖2 4種慢病毒的成功制備Fig.2 Successful preparation of four lentiviruses
通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)不同SP對(duì)CAR-T轉(zhuǎn)染效率的影響,結(jié)果如圖3所示,轉(zhuǎn)染效率隨著時(shí)間的延長(zhǎng)呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),且SP4-CD19組顯著高于SP1-CD19、SP2-CD19和SP3-CD19組(P<0.05)(圖3A)。并且在轉(zhuǎn)染效率最高的第6天檢測(cè)4組慢病毒感染組的表達(dá)情況,結(jié)果顯示,含4種SP的慢病毒(SP1、SP2、SP3和SP4)感染的T細(xì)胞成功表達(dá)CD19-CAR的比例分別為20.9%、22.6%、31.5%和38.6%(圖3B)。此外,本研究還檢測(cè)了相同時(shí)間點(diǎn)CD19陽(yáng)性細(xì)胞的數(shù)量,結(jié)果顯示,SP4-CD19組的陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)均高于其他3組(圖3C),細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,含不同SP的CAR結(jié)構(gòu)對(duì)CAR-T細(xì)胞的增殖活性差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,圖 3D)。
圖3 4種CD19-CAR分子在T細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染效率及增殖情況Fig.3 Transfection and expression rate of four CD19-CAR in the T cells and its proliferation activity
本研究通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)一步檢測(cè)4種SP的CAR-T的體外殺傷效力,實(shí)驗(yàn)選擇不表達(dá)CD19的K562細(xì)胞作為陰性靶細(xì)胞,K562-CD19細(xì)胞(CD19穩(wěn)定表達(dá)細(xì)胞系)和NALM-6細(xì)胞(CD19表達(dá)陽(yáng)性率為99.6%和99.5%),作為陽(yáng)性靶細(xì)胞(圖4A)。
細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn)結(jié)果(圖4B)顯示,用第6天的CAR-T殺傷靶細(xì)胞,在效靶比相同的條件下SP4-CD19細(xì)胞對(duì)K562-CD19腫瘤細(xì)胞的殺傷作用顯著高于SP1-CD19、SP2-CD19、SP3-CD19細(xì)胞和T細(xì)胞[效靶比為25∶1時(shí),分別為(36.77±2.42)%、(15.15±1.35)%、(18.80±0.30)%、(31.58±1.47)%、(9.04±3.25)%,P<0.01]。同樣SP4-CD19細(xì)胞對(duì)NALM-6腫瘤細(xì)胞的殺傷作用明顯高于SP1-CD19、SP2-CD19、SP3-CD19和T細(xì)胞[效靶比為25∶1時(shí),分別為(23.43±1.13)%vs(11.16±0.48)%、(10.54±2.27)%、(1 7.9 0±1.5 3)%和(8.2 7±2.7 5)%,P<0.01]。而兩者對(duì)CD19-腫瘤細(xì)胞K562的殺傷作用差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義[效靶比為25∶1 時(shí),分別為(3.75±0.95)%vs(3.06±0.80)%、(2.4 2±0.7 9)%、(4.0 0±1.0 6)%和(1.92±0.76)%,P>0.05]。
圖4 4種CD19-CAR-T對(duì)CD19+靶細(xì)胞的殺傷效應(yīng)Fig.4 Killing effect of four CD19-CAR-T on CD19+ target cells
前期研究發(fā)現(xiàn),細(xì)胞因子IFN-γ和TNF-α可發(fā)揮協(xié)同作用殺死腫瘤細(xì)胞,因此本研究采用ELISA技術(shù)檢測(cè)細(xì)胞因子IFN-γ和TNF-α的釋放情況[15-16]。結(jié)果顯示,效靶比為10∶1 時(shí),共培養(yǎng)24 h后,陽(yáng)性靶細(xì)胞組與空 白 細(xì) 胞 組 相 比,T 細(xì) 胞I F N-γ 和T N F-α 的分泌水平?jīng)]有顯著變化[IFN-γ:(894.90±8.83)pg/mLvs(649.60±64.70)pg/mL,P>0.05;TNF-α:(419.80±8.81)pg/mLvs(401.60±25.80)pg/mL,P>0.05],而4種不同SP的CD19-CAR-T中IFN-γ和TNF-α的分泌水平在陽(yáng)性靶細(xì)胞組中顯著升高(圖5)。在陽(yáng)性靶細(xì)胞組中,SP4-CD19細(xì)胞IFN-γ和TNF-α的分泌水平比SP1-CD19、SP2-CD19、SP3-CD19細(xì)胞和T細(xì)胞顯著升高[IFN-γ:(5 819.00±281.90)pg/mLvs(2 626.00±154.50)pg/mL、(3 089.00±173.50)pg/mL、(3 844±39.08)pg/mL、(894.90±8.83)pg/mL,P<0.01;TNF-α:(5 004.00±169.50)pg/mLvs(3 014.00±85.20)pg/mL、(3 351.00±66.43)pg/mL、(3 922.00±63.38)pg/mL和(419.80±8.81)pg/mL,P<0.01]。
圖5 4種CD19-CAR-T IFN-γ和TNF-α分泌水平Fig.5 The secretion levels of IFN-γ and TNF-α among four CD19-CAR T
ALL是淋巴細(xì)胞在分化早期惡性增殖造成的,可侵犯骨髓、血液和髓外部位,發(fā)病率高,預(yù)后和生存率不理想[17-18]。CAR-T免疫治療能靶向性地殺傷具有特異性抗原的ALL細(xì)胞,而對(duì)正常細(xì)胞無(wú)殺傷作用,這將大大降低脫靶效應(yīng),為ALL的臨床治療提供新的策略。有研究[19-20]表明,增加CAR在T細(xì)胞表面的表達(dá)可以增加CAR-T的抗腫瘤能力,這為治療ALL提供了一個(gè)全新的方案。本實(shí)驗(yàn)成功構(gòu)建了表達(dá)不同SP的CD19-CAR分子的T細(xì)胞,并在體外驗(yàn)證出其具有靶向特異性,CD19抗原CAR對(duì)CD19+ALL細(xì)胞有較為明顯的殺傷作用,并且SP4-CD19細(xì)胞的轉(zhuǎn)染效率和對(duì)CD19+ALL細(xì)胞的殺傷作用明顯高于SP1-CD19、SP2-CD19和SP3-CD19細(xì)胞。該研究結(jié)果為CAR-T在臨床轉(zhuǎn)化中的優(yōu)化方案提供了重要的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
近年來(lái),靶向CD19的CAR-T在白血病的治療中取得了重大突破[21-22],關(guān)于CAR結(jié)構(gòu)的胞內(nèi)域改造方面的研究也越來(lái)越深入,而對(duì)scFv的N端SP研究較少。CAR的主要結(jié)構(gòu)包括抗原結(jié)合區(qū)(包含SP)、鉸鏈區(qū)、跨膜區(qū)和細(xì)胞內(nèi)信號(hào)區(qū)[23]。這些元件都有各自獨(dú)特的功能,可以通過(guò)使用來(lái)源于各種蛋白的結(jié)構(gòu)域組合,來(lái)優(yōu)化CAR的結(jié)構(gòu)。因此,為了增強(qiáng)CAR結(jié)構(gòu)在T細(xì)胞表面的表達(dá)及殺傷作用,本研究主要采用由單鏈抗體scFv、CD28跨膜區(qū)、CD28細(xì)胞內(nèi)結(jié)構(gòu)域、細(xì)胞內(nèi)共刺激域4-1BB和CD3ζ鏈組成的第三代CAR的結(jié)構(gòu),并在此基礎(chǔ)上優(yōu)化了抗原結(jié)合區(qū)SP結(jié)構(gòu),從而增強(qiáng)對(duì)靶細(xì)胞的殺傷。從細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,攜帶不同SP的SP-CD19 CAR-T對(duì)CD19+ALL細(xì)胞表現(xiàn)出特異性的殺傷效果,由此可以證明,不同的SP能夠影響CAR在T細(xì)胞表面的表達(dá)以及對(duì)靶細(xì)胞的殺傷。
從研究結(jié)果可以看出,SP4-CD19細(xì)胞較其他SP的SP-CD19細(xì)胞對(duì)CD19+ALL細(xì)胞殺瘤效應(yīng)顯著增強(qiáng)。ELISA法檢測(cè)IFN-γ和TNF-α分泌水平結(jié)果顯示,在CD19+腫瘤細(xì)胞刺激下SP4-CD19細(xì)胞較其他SP的SP-CD19細(xì)胞IFN-γ和TNF-α分泌水平顯著提高。研究表明,改造SP是一種有效增加重組蛋白表達(dá)量的方式[24],并且SP具有極強(qiáng)的異質(zhì)性,許多SP即使在不同物種之間也具有功能上的互換性[25]。這可能與CAR結(jié)構(gòu)中的SP與SRP(信號(hào)識(shí)別顆粒)的識(shí)別有關(guān),據(jù)推測(cè),不同的SP對(duì)SRP表現(xiàn)出不同的親和力,SRP隨后決定了新生多肽鏈進(jìn)入分泌途徑的效率[26-27]。本研究發(fā)現(xiàn),SP4-CD19細(xì)胞的轉(zhuǎn)染效率和對(duì)靶細(xì)胞的殺傷力較其他3個(gè)SP均顯著升高,這可能與SP4結(jié)合SRP的效率有關(guān),其中的分子機(jī)制及作用效應(yīng)還有待進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。
綜上所述,隨著國(guó)內(nèi)外科學(xué)家們對(duì)免疫療法的深入研究,越來(lái)越多的研究者關(guān)注CAR-T對(duì)腫瘤細(xì)胞的殺傷作用[28]。本研究制備了含不同SP的CAR-T,并通過(guò)系統(tǒng)的體外實(shí)驗(yàn)初步驗(yàn)證了SP對(duì)提升CAR在T細(xì)胞表面表達(dá)的影響。從本實(shí)驗(yàn)中CAR-T對(duì)靶細(xì)胞的體外功能鑒定結(jié)果來(lái)看,SP4-CD19細(xì)胞較其他SP的CAR-T對(duì)靶細(xì)胞的殺傷和細(xì)胞因子分泌水平顯著提高。這將為ALL的臨床精準(zhǔn)治療提供參考,但是還需要通過(guò)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)評(píng)估其安全性。
利益沖突聲明:所有作者均不存在利益沖突。