劉 鎖, 王雅倩, 魏安方, 趙 磊, 鳳 權(quán)
(1. 安徽工程大學(xué) 紡織服裝學(xué)院, 安徽 蕪湖 241000;2. 江南大學(xué) 教育部針織技術(shù)工程研究中心, 江蘇 無錫 214122)
工業(yè)生產(chǎn)中,大量含氨氮有機(jī)物的廢水對生態(tài)系統(tǒng)的平衡構(gòu)成了巨大的威脅。這些污染物可以通過多種環(huán)境介質(zhì)遠(yuǎn)距離遷移,具有長期殘留、生物積累和高毒性[1-2]。漆酶作為使用最廣泛的多酚氧化酶,對酚類、芳香環(huán)和羧酸的衍生物等多種底物具有良好的催化降解能力,且催化降解的最終產(chǎn)物都是無毒的小分子物質(zhì)[3-4]。然而,生物酶對環(huán)境敏感性較強(qiáng),在高溫、強(qiáng)酸、強(qiáng)堿和有機(jī)溶劑等反應(yīng)條件下易發(fā)生變性或失活,不易長期儲存,不能重復(fù)使用,這在一定程度上阻礙了酶的廣泛應(yīng)用。
酶的固定化是指通過物理或化學(xué)的方法使生物酶與載體相結(jié)合,提高其抵抗外部環(huán)境對酶活性的影響,同時實(shí)現(xiàn)對生物酶回收和重復(fù)使用的一種技術(shù)。該技術(shù)不僅可以改善酶的穩(wěn)定性,減少或者避免酶對產(chǎn)物的污染,而且方便酶的回收和重復(fù)使用,從而大大降低處理成本[5-6]。目前采用的酶固定化載體主要是價格較為便宜的無機(jī)材料、磁性粒子、高聚物和介孔材料等[7-8],但其與酶結(jié)合之后通常會造成酶的重復(fù)使用性能較差和酶活損失較為嚴(yán)重等問題。選擇合適的載體對提高固定化酶的催化性能有至關(guān)重要的影響。優(yōu)異的載體不僅應(yīng)該具有較高的性價比,更重要的是要具有良好的物理和化學(xué)穩(wěn)定性、較高的酶負(fù)載能力和不對環(huán)境造成二次污染等特性。
近年來,紡織材料由于大的比表面積和易于功能化修飾等優(yōu)點(diǎn)被廣泛用于固定化酶的研究[9-10]。水刺粘膠纖維膜具備較多的羥基官能團(tuán),將其進(jìn)行加工修飾后通過配位法[11-12]固定化酶,能夠提高其對漆酶的固定化量、活性穩(wěn)定性,可作為固定化漆酶優(yōu)良的載體。原子轉(zhuǎn)移自由基聚合技術(shù)(ATRP)是近年來對材料進(jìn)行功能化改性的主要方法之一,其與普通聚合反應(yīng)相比,具有反應(yīng)可控、適用單體范圍廣和生成的聚合物分子量分布窄等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)在纖維的改性和修飾領(lǐng)域得到了很好的應(yīng)用[13-15]。
本文以工業(yè)化生產(chǎn)的水刺粘膠纖維膜為基材,采用ATRP技術(shù)通過引發(fā)、接枝等步驟對其進(jìn)行功能化修飾,接著通過吸附的Fe3+離子作為漆酶固定化的配合位點(diǎn),該方法固定化漆酶不僅可以提高酶使用過程中的環(huán)境(溫度、pH值)穩(wěn)定性,而且具有較好的重復(fù)使用性能。
材料:四氫呋喃(THF)、三乙胺(TEA)、2-溴異丁酰溴(2-BIB)、N,N-二甲基甲酰胺(DMF)、醋酸(CH3COOH)、醋酸鈉(CH3COONa)、考馬斯亮藍(lán)G-250、2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)、甲基丙烯酸羥乙酯(HEMA)、1,1,4,7,10,10-六甲基三亞乙基四胺(HMTETA)、氯化亞銅(CuCl)、氯化鐵(FeCl3),均為分析純,上海阿拉丁生化科技股份有限公司;水刺粘膠纖維膜(面密度為45 g/m2),浙江金三發(fā)集團(tuán)有限公司;漆酶(來自云芝,≥0.5 U/mg),Sigma-Aldrich生物科技有限公司。
儀器:S-4800場發(fā)射掃描電子顯微鏡、掃描電子能譜儀,日本日立公司;IR Prestige-21傅里葉紅外光譜儀,日本島津公司;Lab2000真空手套箱,北京伊特克斯惰性氣體系統(tǒng)有限公司;SHA-B恒溫水浴振蕩器,上海捷呈設(shè)備有限公司;UV-5500紫外-可見分光光度劑,上海元析儀器有限公司;THZ-82恒溫?fù)u床,江蘇太倉市實(shí)驗(yàn)設(shè)備廠。
1.2.1 引發(fā)反應(yīng)
準(zhǔn)確稱取水刺粘膠纖維膜置于THF溶液中浸泡2 h進(jìn)行除雜處理,接著將除雜后的水刺粘膠纖維膜放入70 μL TEA和63 μL 2-BIB和40 mL THF的混合液中,在35 ℃、120 r/min恒溫水浴振蕩器中進(jìn)行引發(fā)反應(yīng),待反應(yīng)4 h后用THF進(jìn)行清洗,待用。
1.2.2 接枝反應(yīng)
將24 mL的DMF和400 μL的HMTETA混合液(DMF/HMTETA)與HEMA分別進(jìn)行冷凍脫氧處理后置于手套箱中,之后準(zhǔn)確稱取100 mg CuCl加入到DMF/HMTETA混合液中攪拌2 h,最后將HEMA和完成引發(fā)反應(yīng)的水刺粘膠纖維膜同時加到DMF/HMTETA/CuCl混合液中,待反應(yīng)結(jié)束后取出改性后的水刺粘膠纖維膜,并用去離子水多次清洗后真空干燥得到接枝HEMA的水刺粘膠纖維膜(SV-poly(HEMA)),反應(yīng)示意圖如圖1所示。
圖1 水刺粘膠纖維膜的ATRP接枝過程示意圖Fig.1 Schematic diagram of ATRP grafting process of spunlaced viscose fiber membrane
1.2.3 Fe3+離子吸附
準(zhǔn)確稱取20 mg的SV-poly(HEMA)置于50 mL Fe3+離子(質(zhì)量濃度為1.0 g/L)溶液的藍(lán)蓋瓶中,隨后將藍(lán)蓋瓶放于恒溫?fù)u床(溫度為25 ℃,轉(zhuǎn)速為120 r/min)中24 h,最后將吸附Fe3+離子后的SV-poly(HEMA)取出,用蒸餾水充分洗滌、真空干燥后得到吸附Fe3+離子后的SV-Poly(HEMA) (SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ))。
1.3.1 形貌觀察與元素分析
將改性前后的水刺粘膠纖維膜經(jīng)過噴金處理后,采用掃描電子顯微鏡、掃描電子能譜儀進(jìn)行形貌表征和元素分析。
1.3.2 化學(xué)結(jié)構(gòu)表征
分別將改性前后的水刺粘膠纖維膜剪碎成粉末狀,采用傅里葉紅外光譜儀通過溴化鉀壓片法確定其所含的官能團(tuán)。
1.4.1 漆酶固定化過程
分別稱取0.02 g SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)置于20 mL、1.0 g/L的漆酶溶液(緩沖液采用100 mmol/L、pH值為4.5的醋酸鈉-醋酸溶液)中,于4 ℃、120 r/min搖床中進(jìn)行酶的固定化12 h。待反應(yīng)結(jié)束后,用緩沖液多次洗滌固定化酶的纖維膜,直至洗滌液中檢測不到漆酶為止。
1.4.2 酶固定化量測定
采用Bradford方法測定SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)對漆酶的固定化量。利用紫外-可見分光光度計(jì)測量吸附前后及清洗固定化酶所用緩沖液中的漆酶溶液的含量。按照下式計(jì)算酶的固定化量:
式中:Ge為漆酶固定化量,mg/g;C0為反應(yīng)前漆酶的質(zhì)量濃度,mg/mL;C1為反應(yīng)后漆酶的質(zhì)量濃度,mg/mL;C2為沖洗液中漆酶的質(zhì)量濃度,mg/mL;V0為實(shí)驗(yàn)所用酶溶液的體積,mL;V1為沖洗液的體積,mL;m為用于固定化酶的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)的質(zhì)量,g。
1.4.3 酶活性的測定
采用ABTS作為漆酶的催化底物,測定游離漆酶與固定化漆酶反應(yīng)前后ABTS溶液的吸光度變化,用于表征游離和固定化漆酶活性,根據(jù)下式計(jì)算酶活性:
式中:v為漆酶的活性,U;A0和A分別表示反應(yīng)前后ABTS溶液的吸光度;V為ABTS溶液的體積,mL;T為實(shí)驗(yàn)反應(yīng)時間,min;K為底物對應(yīng)的常數(shù);me為漆酶的質(zhì)量,mg。
1.5.1 漆酶活性的影響因素
為探究反應(yīng)溫度對游離和固定化漆酶的影響,分別將游離漆酶和固定化漆酶樣品放于pH值為4.5的緩沖液中,在不同溫度條件下用ABTS測定漆酶活性,并以最高活性為100%,得出其他溫度下的相對活性。
為探究pH值對游離和固定化漆酶的影響,分別將游離漆酶和固定化漆酶樣品放于不同pH值的緩沖液中,在各自最適溫度下用ABTS測試漆酶活性,并以最高活性為100%,得出其他pH值下的相對活性。
1.5.2 固定化漆酶的重復(fù)使用性能
為測定固定化漆酶的重復(fù)使用性能,將已經(jīng)固定化漆酶的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)在最適pH值和溫度下進(jìn)行重復(fù)使用,以首次使用時酶活性為100%,測定每次重復(fù)使用后酶相對活性。
將同一批固定化漆酶的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)和游離酶溶液置于4 ℃下儲存,每隔2 d取出固定化漆酶的纖維膜和游離酶溶液進(jìn)行酶活測試,通過比較漆酶相對活性的變化,研究漆酶的儲存穩(wěn)定性能。
2.1.1 改性前后纖維膜的表面形貌分析
改性前后的水刺粘膠纖維膜和SV-Poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)表面形貌變化如圖2所示。
圖2 水刺粘膠纖維膜的掃描電鏡照片(×400)Fig.2 SEM images of spunlaced viscose fiber membrane(a), SV-poly(HEMA) (b) and SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ) (c) (×400)
由圖2可以看出:水刺粘膠纖維膜表面光滑,分布較為均勻,經(jīng)過ATRP改性后的水刺粘膠纖維膜由于功能性分子鏈的存在,纖維直徑和粗糙度略微增加,依然保持著良好的纖維形態(tài);經(jīng)過金屬離子吸附后的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)相較于SV-poly(HEMA)纖維形態(tài)和纖維直徑幾乎沒任何變化,原因是吸附的Fe3+離子的半徑遠(yuǎn)小于接枝的功能性分子鏈的長度,對纖維的形態(tài)結(jié)構(gòu)影響較小。
2.1.2 元素分析
引發(fā)反應(yīng)前后水刺粘膠纖維膜的元素分析結(jié)果如表1所示??煽闯觯陶衬z纖維膜主要含有C和 O這2種元素;通過引發(fā)反應(yīng)后的水刺粘膠纖維膜含有C、O和Br 3種元素,說明已成功地對水刺粘膠纖維膜進(jìn)行了引發(fā)反應(yīng),引入了Br原子。
表1 元素種類及其質(zhì)量分?jǐn)?shù)Tab.1 Element types and its weight percentages
2.1.3 化學(xué)結(jié)構(gòu)分析
圖3 接枝改性前后水刺粘膠纖維膜的紅外光譜圖Fig.3 Infrared spectrum of spunlaced viscose fiber membrane and SV-poly(HEMA)
圖4示出接枝時間為0、2、4、5和6 h時用于配位法固定化酶的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)對漆酶的固定化量。可看出,隨著接枝處理時間的延長,漆酶的固定量呈現(xiàn)出先上升后下降的趨勢,原因是在反應(yīng)初期,隨著接枝時間的延長纖維上的功能性基團(tuán)大量增加,其對漆酶的固定化量表現(xiàn)出快速上升的趨勢;當(dāng)接枝時間從2 h延長到4 h時,纖維上供功能性基團(tuán)結(jié)合的位點(diǎn)逐漸減少,但依然能夠結(jié)合新的功能性基團(tuán),表現(xiàn)出對漆酶的吸附量繼續(xù)增加,但速率有所減緩,且在4 h時其吸附量達(dá)到最大值,為132.9 mg/g;當(dāng)接枝時間進(jìn)一步延長時,纖維上功能性基團(tuán)的配合位點(diǎn)達(dá)到飽和,繼續(xù)增加的官能團(tuán)在減少纖維比表面積的同時伴隨著副反應(yīng)的產(chǎn)生,占據(jù)了之前接枝的功能性基團(tuán),使得其對漆酶的固定化量有所減少。
圖4 水刺粘膠纖維膜對漆酶固定化量Fig.4 Immobilization laccase of spunlaced viscose fiber membrane with different modification time
2.3.1 溫度和pH值對漆酶固定化的影響
在不同溫度和pH值條件下,測定游離漆酶和固定化漆酶的活性,結(jié)果如圖5所示。
圖5 溫度與pH值對游離漆酶和固定化漆酶的影響Fig.5 Relationship of pH (a) and temperature (b) on free and immobilized laccase
由圖5(a)可知,游離漆酶和固定化漆酶的最適pH值都是4.5。從整體而言,固定化漆酶與游離漆酶相比,對于pH值變化表現(xiàn)出更好的穩(wěn)定性,這是因?yàn)檩d體的存在能更好地保證漆酶的空間結(jié)構(gòu),受pH值影響較小,提高其應(yīng)對pH值變化的穩(wěn)定性能。同理,在不同溫度條件下,測定游離漆酶與固定化漆酶的相對活性,從圖5(b)可看出,固定化漆酶的整體活性都較游離漆酶有所提升,同時固定化酶的最適溫度也相較于游離酶有所提高,從50 ℃上升至55 ℃,表明固定化漆酶對較高的溫度表現(xiàn)出更好的穩(wěn)定性。
2.3.2 固定化漆酶的重復(fù)使用性能
重復(fù)使用性能是決定漆酶能否被廣泛應(yīng)用的主要因素之一,也是表征漆酶固定化穩(wěn)定性能的關(guān)鍵因素,本文對固定化漆酶的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)進(jìn)行了10次重復(fù)使用,結(jié)果如圖6所示??煽闯觯潭ɑ崦冈谧钸mpH值和溫度下,隨著使用次數(shù)的增加,漆酶的催化降解性能有所降低,原因是固定化漆酶在催化降解和清洗過程中,部分固定化漆酶的活性下降或脫落所致。經(jīng)過10次重復(fù)使用后,固定化漆酶仍保留較高的活性,為其初始活性的55%以上,表明SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)固定化漆酶具有良好的重復(fù)使用性能。
圖6 固定化漆酶的重復(fù)使用性能Fig.6 Reusability of immobilized laccase
2.3.3 固定化漆酶的儲存穩(wěn)定性能
固定化漆酶和游離酶儲存穩(wěn)定性能測試結(jié)果如圖7所示。
圖7 漆酶的儲存穩(wěn)定性能Fig.7 Storage stability of free and immobilized laccase
由圖7可看出,存儲19 d后,固定化漆酶的活性相較于游離漆酶有很大的提升,從21%增加到57.9%,說明本文研究所制備的功能性復(fù)合纖維膜對酶的存儲性能得到很好地改善,這將對漆酶的廣泛應(yīng)用有非常重要的意義。
本文通過原子轉(zhuǎn)移自由基聚合技術(shù)對水刺粘膠纖維膜進(jìn)行接枝改性,賦予其特殊的功能性官能團(tuán),并對改性后的功能性水刺粘膠纖維膜進(jìn)行Fe3+離子吸附,得到的SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)可作為配位法固定化酶的載體。當(dāng)接枝時間為4 h時,SV-poly(HEMA)-Fe(Ⅲ)對漆酶的固定化量達(dá)到132.9 mg/g;相比于游離漆酶而言,固定的漆酶有效地降低了其對環(huán)境(pH值、溫度)變化的敏感性;對其進(jìn)行10次重復(fù)使用后,固定化漆酶活性依然保持著55%以上,表現(xiàn)出良好的重復(fù)使用性能,為漆酶的進(jìn)一步應(yīng)用提供了一個有效的方法。
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